1. Propagation des ondes sismiques 2. Densité des

Classe de 1ère S
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Préparation TP/Cours
B. Savoye 26/sept.2006
1.
Propagation des ondes sismiques
Au bureau :
 Dispositif rupture d’un solide
 Fluorescéine
 Huile d’olive
 Scotch
 Sismographe
Pour chaque binôme :
 1 grand et 1 petit cristallisoir
 Papier d’arménie + allumettes
 Laser (vérifier les piles et prévoir des piles
d’avance)
 Sismogramme
 PCP avec
Sismolog
Ondes P
Excel + ‘EtudeEnveloppeInterne’
2.
Densité des enveloppes terrestres
Au bureau :
 Balances de ménage
 Echantillons basalte, granite, péridotite
 Ordinateur chariot +
Excel
Pour chaque binôme :
 Eprouvette, bécher
3.
Composition des roches magmatiques
Au bureau :
 Deux filtres polarisants
 Echantillons basalte, gabbros, granite, péridotite
 Lames basalte, gabbros, granite, péridotite
 Vidéomicroscope
Par binôme :
 Microscopes polarisants (les vieux microscopes
avec les vieux filtres)
 PC portables ( Excel + ‘EtudeEnveloppeInterne)
 Feuille de papier calque
4.
Les plaques lithosphériques et leurs
mouvements
Au bureau :
 Echantillons de basalte
 Boussoles « sensibles »
Pour chaque binôme (PCP) :

Sismolog
 triGPS
5.
Magmatisme des dorsales
Au bureau :




Vanilline
Lames et lamelles
Lames minces basalte, gabbro et péridotite
Pointes lancéolées
Par binôme :
 Microscope polarisant
 Réchaud électrique
 Reticulum
6. Divergence
Par binôme (PCP) :
 EAO ‘baïkal’, ‘Djibouti’ et ‘Afar’
 GoogleEarth avec données des zones ci-dessus
en cache.
7. Machinerie Terre
Au bureau :
 Support réglable hauteur
 2 béchers hauts
 4 thermomètres électroniques
 Bécher
 Craie rouge broyée
 2 pipettes
 Papier sopalin
 Petit aquarium
 Blocs bois « isostasie »
 2 grandes boîtes de Pétri
 Sable
 Passoire à thé
Par binôme :
 Chauffe-plat
 2 blocs bois
 Boîte allumettes
 Bécher pyrex
 Huile
 Pot de yaourt verre
8. Interrogation de TP géologie
Par binôme :
 Microscope polarisant
 Clé de détermination des minéraux
Au bureau :
 Lames minces basalte, gabbro, granite, péridotite
anonymées
 Echantillons basalte, gabbro, granite, péridotite
9. Électrophorèse des protéines
Par binôme :
 Une boîte Pétri + burette eau + burette huile
 Anagène
 Molécule 3D
Pour le groupe :
 Matériel électrophorèse
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 Sérum
10. Activité enzymatique de l’amylase
Par binôme :
 Bain marie à 37°C, , bec bunsen + support +
grille (ou réchaud électrique), 2 plaques alvéolées
 Empois d’amidon, solution de maxilase, solution
d’HCl, de NaOH, eau iodée, liqueur de Fehling
 8 tubes à essai, pince tube, 2 porte tubes
Pour le groupe :
 cristallisoir rempli de glace
 bécher
 HCl très concentré, papier pH
11. Cinétique enzymatique (GOD)
Pour chaque poste EXAO :
 Sonde à dioxygène, qui délivre une tension proportionnelle au taux de dioxygène du milieu
 Un dispositif EXAO (EXpérimentation Assistée
par Ordinateur), qui permet d’exploiter la tension,
délivrée par la sonde, sur un ordinateur, avec le
logiciel Réacell.
 Excel (ou tableur équivalent)
 Une enceinte de réaction avec agitateur magnétique
 Une pipette-poire pour injecter l’enzyme
 Papier absorbant (pour nettoyer la sonde)
Pour le groupe :
1. Une pipette de 10 ml + pro pipette par flacon de
glucose
2. 500 ml de solutions de glucose à 1, 2, 3, 4, 6 g.l1
-1
, et 1000 ml de glucose à 5 g.l .
3. Glucose oxydase lyophilisée, eau distillée > dans
bécher à préparer au dernier moment
12. Cinétique enzymatique et mode d’action
des enzymes
Par binôme :
 EAO enzymo DOS, molécule 3D
13. Équipement enzymatique (levures)
Par binôme :
 Bain marie, thermomètre et plaque pour tubes,
pince en bois
 6 tubes à essais, portoir, pipette graduée de 10
ml avec pro-pipette
 Réchaud électrique (ou bec Bunsen, allumettes)
 Filtrats de levures :
filtrat F obtenu avec des levures placées
dans de l’eau distillée à 20°C durant une
heure, puis filtré ;
o filtrat F’ obtenu en plongeant les levures
dans l’eau bouillante (levures tuées), puis en
les plaçant dans de l’eau distillée à 20°C durant une heure  eau colorée en brun clair
 Substrats (en flacons) : solution de saccharose
1% (S), solution de lactose 1% (L), solution
d’empois d’amidon 1% (A), eau distillée (D)
 Réactifs : liqueur de Fehling, 6 bandelettes Glucotest pour la recherche du glucose.
o
14. De l’ADN aux protéines
Par binôme :
 Anagène
 ADN-ARN (Cosentino)
15. Variations du génotypes et conséquences
phénotypiques
Au bureau :
 Flexcam
 EAO Anagène
16. Foie et régulation de la glycémie
Au bureau :
 Morceaux de foie (pas trop gros)
 Sable
 Sulfate de soude
 2 éprouvettes 40 ml min.
Par binôme :
 Bécher, 3 tubes à essais, pince, réchaud électrique (ou bec bunsen)
 Liqueur de Fehling, eau distillée.
 2 Béchers, 4 tubes à essais.
 Eau iodée, éthanol à 95°, eau distillée.
 Mortier, pilon
17. Pancréas et régulation de la glycémie
Au bureau :
 Lames de pancréas normal et diabétique
Par binôme :
 Microscope
18. Phénotypes diabétiques
EAO internet ?
19. Réflexe myotatique
Au bureau :
 Maquette squelette + élastiques
 2 marchepieds
 EXAO réflexe myotatique
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20. Structure du nerf
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