Biografie - Institut Huemer

Curriculum Vitae
Dr. Markus Stöcher
Daten zur Person
26. Juni 1973
geboren in Pregarten, Oberösterreich
Eltern: Johann und Waltraud Stöcher, geborene Resch
Staatsbürgerschaft:
Österreich
Familienstand:
ledig
Hauptwohnsitz:
Schafgasse 247
5071 Wals
Telefon: 0699/10518118
Schulbildung
1979 – 1987
Volks- und Hauptschule in Pregarten
1987 – 1992
Höhere technische Bundeslehranstalt II – Linz
(Maschinenbau)
Matura am 6. Juni 1992
Oktober 1992
Immatrikulation an der Johannes-Kepler-Universität
Linz (Wirtschaftsingeneurwesen Technische Chemie)
März 1993 – Okt.1998
Immatrikulation an der Universität Wien
Studium der Biologie (Zoologie) mit dem Nebenfach
Biochemie
Sponsion am 20. Oktober 1998
Juli – Okt. 1996
Praktikas in verschiedenen Instituten des „Biocenters“
Dr. Bohrgasse
Nov. 1996 – Sep. 1998
Diplomarbeit am Institut für Biochemie und molekulare
Zellbiologie, Universität Wien, Dr. Bohrgasse 9,
A-1030 Wien, unter Anleitung von Prof. Dr. Gerhard Wiche
Titel: „Etablierung und Charakterisierung von normalen und Plectin-defizienten
Astroglia-Kulturen aus Mausgewebe, und erste Hinweise auf unterschiedliche
Spleißvarianten von Plectin in normalen primären Astroglia-Kulturen.“
Beruflicher Werdegang
Okt. 1998 – Ok.t 1999
Zivildienst am Allgemeinen Öffentlichen Krankenhaus
Linz, Institut für Med.- Chem.- Labordiagnostik.
Forschungsprojekt: Entzündungsprozesse in der
Schilddrüse (Publikation siehe unten)
März - Juni 1999
Werbelehrgang am Wifi Linz
Abschlussprüfung: 12. Juni 1999
Nov. - Dez. 1999
Praktikum Werbung (Text und Konzept)
Fa. Demner, Merlicek & Bergmann Wien
Jän. - Feb. 2000
Praktikum Werbung (Text und Konzept)
Fa. Ogilvy Wien
Mai 2000 - Feb. 2001
Produktmanager Immunologie
Fa. Szabo-Scandic Wien
Feb. - Mai 2001
Pharmareferent (Oberösterreich)
Fa. Pharmacia Austria Wien
Mai 2001 - Nov. 2003
Dissertation am Institut für Med.- Chem.- Labordiagnostik
AKH-Linz (Molekularbiologie), Krankenhausstrasse 9,
4020 Linz; unter Anleitung von Doz. Dr. Jörg Berg.
Thema: Methodenentwicklung für Real-Time PCRApplikationen.
Titel: “Composite Primer Technology Used to Develop a Modular System for the
Generation of Artificial Internal Controls for Real-Time PCR and RT-PCR Assays in
Molecular Diagnostics Virology.”
Die Dissertation im Fach Genetik wurde an der Universität Wien mit Auszeichnung
abgeschlossen.
Nov. 2002 – Feb. 2003
Praktikum am Institut für molekulare Pathologie (IMP)
Wien in der „Microarray facility“ bei Dr. Peter Steinlein
Dez. 2003 - Dez. 2004
Fixe Anstellung im AKH-Linz Zentrallabor, Abteilung
Molekularbiologie.
Aufgabenbereich: Methodenentwicklung und
Methodenpflege in der Molekularen Diagnostik.
Jänner 2005-Okt.2011
Technischer Leiter des Molekularzytologischen Labors
bzw. Gruppenleiter im neu gegründeten Labor für
immunologische und molekulare Krebsforschung (LIMCR);
beides Teil der III. Universitätsklinik für Inneren Medizin
der Paracellsus Privatuniversität Salzburg
Leitung: Prof. Dr. Richard Greil
Aufgabenbereich (Routinelabor): Quantitative und qualitative
Methoden zur Bestimmung der Tumorlast bzw. Prognose
bei Leukämie- und Lymphompatienten, Mutationsdetektion
im Rahmen von Pharmakogenetischen Fragestellungen.
Aufgabenbereich (Forschungslabor): Evaluierung von
Biomarkern im genomischen Bereich. Einführung neuer
Technologien/Methoden für die Analyse von genetischem
Material.
Nov. 2006 – März 2008
Weiterbildung im Bereich Prävention
Fernlehrgang Hannover mit Abschluss zum geprüften
Präventologen®
Seit August 2008
Vorstandsvorsitzender des Berufsverbandes
Österreichischer Präventologen
Seit April 2010
Selbstständig im Bereich BGM mit Vorträgen, Seminaren
und Workshops zum Thema Prävention
Seit Dez. 2011
Ausbildung zum Orthomolekularen Referenten
D.ON Akademie Berlin
März. 2013
Gründung des Instituts für personalisierte Prävention und
Kooperationsvereinbarung mit Gesundheit 2.0 Akademie für personalisierte Prävention
Publikationen
1. K. Andrä, B. Nikolic, M. Stöcher, D. Drenckhahn and G. Wiche (1998). Not just
scaffolding: Plectin regulates actin dynamics in cultured cells. Genes & Development
12: 3442-3451.
2. J. Berg, M. Stöcher, S. Bogner, S. Wölfl, R. Pichler and H. Stekel (2000). Inducible
cyclooxygenase-2 gene expression in the human thyroid epithelial cell line Nthy-ori31. Inflamm. Res. 49:139-143.
3. R. B. Raggam, E. Leitner, G. Mühlbauer, J. Berg, M. Stöcher, A. J. Grisold, E. Marth
and H. H. Kessler (2002). Qualitative detection of Legionella species in
bronchoalveolar lavages and induced sputa by automated DNA extraction and realtime polymerase chain reaction. Med. Microbiol. Immunol. 191:119-125.
4. M. Stöcher and J. Berg (2002). Normalized quantification of human cytomegalovirus
DNA by competitive real-time PCR on the LightCycler instrument. J. Clin. Microbiol.
40:4547-53.
5. M. Stöcher, V. Leb, G. Hölzl and J. Berg (2002). A simple approach to the generation
of heterologous competitive internal controls for real-time PCR assays on the
LightCycler. J. Clin. Virol. 25 Suppl 3:47-53.
6. M. Stöcher and J. Berg (2002). A convenient approach to the generation of multiple
internal control DNA for a panel of competitive real-time PCR assays. J. Virol.
Methods 108: 108:1-8.
7. M. Stöcher, V. Leb, M. Bozic, H. H. Kessler, G. Halwachs-Baumann, O. Landt, H.
Stekel and J. Berg (2003). Parallel detection of five human herpes virus DNAs by a
set of real-time polymerase chain reactions in a single run. J. Clin. Virol. 26:85-93.
8. G. Hölzl, M. Stöcher, V. Leb, H. Stekel and J. Berg (2003). Entirely automated
quantification of human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) RNA in plasma using
the ultra-sensitive COBAS AMPLICOR HIV-1 monitor test and RNA purification on the
MagNAPure LC instrument. J. Clin. Microbiol. 41:1248-51.
9. J.D.C. Yao, J. Germer, R. Patel, J. Berg, G. Hölzl, M. Stöcher, V. Leb and H. Stekel
(2003). Need for procedural details in automated specimen-processing protocol by
the MagNA Pure LC instrument. J. Clin. Microbiol. 41: 4911-4912.
10. V. Leb, M. Stöcher, E. Valentine-Thon, G. Hölzl, H.H. Kessler, H. Stekel and J. Berg
(2004). Fully automated internally controlled quantification of hepatitis B virus DNA by
real-time PCR by use of the MagNAPure LC and LightCycler instruments. J. Clin.
Microbiol. 42:585-90.
11. M. Stöcher, H. Stekel and J. Berg (2004). Automated detection of five human herpes
virus DNAs by a set of LightCycler PCRs complemented with a single multiple internal
control. J. Clin. Virol. 29:171-8.
12. C. Koidl, M. Bozic, J. Berg, M. Stöcher, G. Mühlbauer, A.J. Grisold, E. Marth and H.H.
Kessler (2004). Detection of transfusion transmitted virus DNA by Real Time PCR. J.
Clin. Virol. 29:277-81.
13. M. Stöcher and J. Berg (2004). Removal of template DNA from cRNA preparations by
combined oligo-dT affinity chromatography and DNAase I digestion. BioTechniques
36:480-2.
14. M. Stöcher and J. Berg (2004). Internal control DNA for PCR assays introduced into
lambda phage particles exhibits nuclease resistance. Clin. Chem. 50: 2163-6.
15. Koidl C, Bozic M, Berg J, Stocher M, Muhlbauer G, Marth E, Kessler HH
(2005).Addition of a homologous internal control to a real-time PCR assay for
detection of Bordetella pertussis. Clin Chem. 51:2404-6
16. Bodlaj G, Stocher M, Hufnagl P, Hubmann R, Biesenbach G, Stekel H, Berg J (2006).
Genotyping of the lactase-phlorizin hydrolase -13910 polymorphism by LightCycler
PCR and implications for the diagnosis of lactose intolerance. Clin Chem. 52:148-51.
17. Tinhofer I, Rubenzer G, Holler C, Hofstaetter E, Stoecher M, Egle A, Steurer M, Greil
R (2006). Expression levels of CD38 in T cells predict course of disease in male
patients with B-chronic lymphocytic leukemia. Blood 108:2950-6.
18. Gryschenko I, Stoecher, et. al (2007). SNP 309 MDM-2 in CLL.
JCO
Kongreßbeiträge
1. Berg J, Stöcher M, Bogner S, Wölfl S, Pichler R, Stekel H (1999): Evidence for
induced cyclooxygenase-2 expression in human thyroid epithelial cells in vivo and in
vitro; Berichte der ÖGKC 22(3): 84.
2. Berg J, Stöcher M, Bogner S, Wölfl S, Pichler R, Stekel H (1999): Induced
cyclooxygenase-2 expression in human thyroid epithelial cells in auto-immune thyroid
tissues and in vitro.; Jahrestagung der österreichischen Gesellschaft für Allergologie
und Immunologie, Wien, 19.-21. November 1999
3. Berg J, Stöcher M, Bogner S, Wölfl S, Pichler R, Stekel H (2000): Induced
cyclooxygenase-2 expression in human thyroid epithelial cells in vivo and in vitro;
Endocrinologia y Nutricion 47: 15.
4. Stöcher M, Leb V, Hölzl G, Stekel H, Berg J (2002): A simple approach to the
generation of competitors as internal controls for real-time PCR assays. J Lab Med
26: 205.
5. Stöcher M, V. Leb, M. Bozic, H.H. Kessler, G. Halwachs-Baumann, O. Landt, H.
Stekel, and J. Berg (2002): Parallel detection of five human herpes virus DNAs by a
set of real-time polymerase chain reactions in a single run on the LightCycler
instrument. J Lab Med 26: 213.
6. Stöcher M, Stekel, J. Berg (2002): Competitive real-time PCR using a calibrator and
an internal control for the quantification of CMV-DNA on the LightCycler instrument. J
Lab Med 26: 214.
7. Berg, J., V. Leb, M. Stöcher, E. Valentine-Thon, H.H. Kessler, G. Hölzl, H. Stekel
(2003): Automated detection and quantification of hepatitis B virus-DNA by real-time
polymerase chain reaction on the LightCycler instrument. Clin Chem Lab Med 41:
S177.
8. Stöcher, M., G. Hölzl, H. Stekel, J. Berg (2003): Entirely automated detection of five
human herpes virus DNAs by a set of LightCycler-PCRs complemented with a single
multiple internal control. Clin Chem Lab Med 41: S174.
9. Stöcher, M., and J. Berg (2004): An automated procedure towards the elimination of
template DNA from cRNA preparations for the use as controls in RT-PCR assays.
JMD accepted.
10. Stöcher, M., and J. Berg (2004): A lambda-phage cloning approach towards nuclease
resistant internal amplification controls in PCR assays. JMD, accepted.
Buchbeiträge
1. Berg; J, M. Stöcher, V. Leb, M. Bozic, H.H. Kessler, G. Halwachs-Baumann, O. Landt
and H. Stekel (2003): Parallel detection of five human herpes virus DNAs by a set of
rapid cycle real-time PCR assays in a single run. Part of the series rapid cycle realtime PCR - Methods and applications. C. Wittwer et al. (editors), Springer Verlag,
Heidelberg, Deutschland.
2. Stöcher, M and J. Berg. (2004): Normalized quantitative rapid cycle real-time PCR for
the assessment of CMV-DNA Copies. In rapid cycle real-time PCR - Methods and
applications; “Quantification“. C. Wittwer, M. Hahn, K. Kaul (editors), Springer Verlag,
Heidelberg, Deutschland.
Vorträge
Fourth international symposium on molecular diagnostics in laboratory medicine and first
international symposium on gene therapy. Graz, Karl-Franzens-University, Mai 2002
a. Parallel detection of five human herpes virus DNAs by a set of real-time PCRs
in a single run on the LightCycler instrument.Normalized quantification of CMV
DNA by competitive real-time PCR on the LightCycler instrument.
Roche Applied Science PCR User-Meeting. Saalbach, Juni 2002
Titel: Troubleshooting bei LightCycler PCR Assays.
Kliniken Graz Laborstammtisch. Graz, Oktober 2002
Titel: LightCycler Assays im molekularen Routinelabor.
Roche Applied Science PCR User-Meeting. Saalbach, Oktober 2003
Titel: Troubleshooting bei LightCycler PCR Assays.
Lymphom-Workshop (Schering) 2005
Titel: Bcl-2 als Surrogatmarker des Follikulären Lymphoms.
Lehrtätigkeit
Weiterbildung von Ärzten: III. Med. Universitätsklinik Salzburg
Themen:
-
Einführung in die PCR bzw. RT-PCR
- Neue Methoden in der Analyse des humanen Genoms
(Arrays, Sequenzieren )
- Chromosomen-Aberrationen bei B-NHL
- Biobanken
Betreuung von Wissenschaftlichen Projekten
Mitarbeit bei der Etablierung von klinischen Studien
Weiterbildung von Pflegepersonal: III. Med. Universitätsklinik Salzburg
Themen:

Biologische Hintergründe der Krebsentstehung

Früherkennung und Prävention von Krebserkrankungen

Biologische Hintergründe und Grundzüge der molekularen Diagnostik
Ausbildung MTA Akademie bzw. FH Salzburg (Linz bzw. Salzburg):
-
Unterricht: Molekularbiologische Diagnostik + Praktikum
-
Vortrag: Durchflußzytometrie in der Forschung
-
Betreuung verschiedener Diplomarbeiten zum Thema

Methodenentwicklung mittels Real-Time PCR bzw. Sequenzierung
Wissenschaftliche Preise
B.R.A.H.M.S-Forschungspreis für Schilddrüsenerkrankungen der österreichischen
Gesellschaft für Nuklear-Medizin, 2000.