Evaluation quantitative et qualitative de examens parasitologiques

Transcription

UNIVERSITE CHEIKH ANTA DIOP DE DAKAR
-,
*
_FACULTE DE MEDECINE, DE PHARMACIE ET D'ODONTO-STOMATOLOGIE
ANNEE 2001
EVAlUATION QUANTITATIVE ET QUAliTATIVE DES
EUMENS PARASITOlOGIQUES ET MYCOlOGIQUES
EFFECTUES AU lABORATOIRE DE
PARASITOlOGIE-MYCOlOGIE DE l'HOPITALIBN-ROCHO
DE CASABLANCA IMAROCl de 1996 à 2000
THESE
POUR OBTENIR LE GRADE DE DOCTEUR EN PHARMACIE
(DIPLÔME D'ETAT)
Présentée et soutenue publiquement
le 1er Août 2001
par
Mme Imane BENNIS Epouse ALJ
Née le Il Mai 19n à CASABLANCA (MAROC)
1
MEMBRES DU JURY
Président du Jury
:
M.
Membres
: M.
M.
M.
Directeur de Thèse
:
M.
Ibrahima
WONE
Professeur
Omar
Cheikh Sâad Bouh
llAmadou
NOIR
BOYE
DIOUF
Professeur
Professeur
Maître de Conférences Agrégé
Omar
NOIR
Professeur
(~
«((((((
FACULTE DE MEDECINE DE PHARMACIE
ET D'ODONTOLOGIE
~
«««««««(
.
DECANAT & DIRECTION
((((((((((
DOYEN
M. Doudou TI-llAM
PREMIER A~SESSEUR
M. Cheikh Saad Bouh BOYE
DEUXIEME ASSESSEUR
M. Malick SEMBENE
CHEF DES SERVICES ADMINISTRATIFS
M. Assane CISSE
, Fait, le 13 mars 2001
t
..
I-MEDECINE
LISTE DU PERSONNEL ENSEIGNANT PAR GRADE
POUR L'ANNEE lTNlVERSITAIRE
2000-2001
***
PROFESSEURS TITULAIRES
***
.
.
·M. José Marie
'M.
Mamadou
,
M. Mamadou
M. Serigne Abdou
M. Salif
M. Fallou
M. Moussa Fafa
M. Fadel
M. Baye Assane
M. Lamine
+M. El Hadj Malick
.Mme Thérèse
M. Sémou
M. Souvasin
M.Oumar
M.Mamadou
M.Momar
M. Serigne Magueye
M. Nicolas
M. Bassirou
M. Ibrahima ~ierre
+M. Madoune Robert
.Mm Mbayang NIANG
..' .M. Mouhamadou
1
M. Mouhamadou M
M. Papa Amadou
+M. Mamadou
M.Abibou
AFOUTOU
BA
BA
BA
BABIANE
CISSE
CISSE
DIADHIOU
DIAGNE
DIAKHATE
DIOP
MORElRA/DIOP
DIOUF
DIOUF
GAYE
GUEYE
GUEYE
GUEYE
KUAKUVI
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NDOYE
SAMB
+ Professeur Associé;
# Personnel mis en Disponibilité
Histologie Embryologie
Pédiatrie
Urologie
Cardiologie
Maladies Infectieuses
Physiologie
Bactériologie-Virologie
Gynécologie-Obstétrique
Urologie
Hématologie
O.R.L
Médecine Interne 1
Cardiologie
Orthopédie-Traumatologie
Parasitologie
Neuro-chirurgie
Psychiatrie
Urologie
Pédiatrie
Dennatologie
Neurologie
Ophtalmologie
Physiologie
Chirurgie Thoracique et
Cardiovasculaire
Neurologie
Ophtalmologie
Chirurgie Infantile
& Personnel en détachement
M. Mamadou
& Mme. Awa
M. Seydina Issa Laye
M.Dédéou
M.Abdourahmane
M. Housseyn Dembel
-M. Mamadou Lamine
M. Moussa Lamine
*M. Cheikh Tidiane
M. Meïssa
M. Pape
M. Alassane
SARR
COLL/SECK
SEYE
SIMAGA
SOW
SOW
SOW
SOW
TOURE
TOURE
TOURE
WADE
Pédiatrie
Orthopédie-Trawnatologie
Chirurgie Générale
Médecine Préventive
Pédiatrie
Médecine Légale
Anatomie
Biochimie Médicale
Cancérologie
Ophthalmo10gie
MA/TRES DE CONFERENCES AGREGES
***
",
.
l . M. Moussa.
T
M. Seydou Boubakar
M. Mohamed Diawo
M. jean' Marie
M. Abdarahmane
*M. Massar
*M .Issakha
M. Amadou Gallo
M. Bernard Marcel
M. El Hadj Ibrahima
M. Ibrahima Bara
M. Saïd Norou
M.Alassane
M. Boucar
M. Raymond
. M. Babacar
.'M. Ibrahima
.Mme Marne Awa
M.Oumar
Mme Sylvie SECK
Mme Gisèle WOTO
M. Lamine
*Associé
BADIANE
BADIANE
BAH
DANGOU
DIA
DIAGNE
DIALLO
DIOP
DIOP
DIOP
DIOP
DIOP
DIOUF
DIOUF
DIOUF
FALL
FALL
FAYE
FAYE
GASSAMA
GAYE
GUEYE
Radiologie
Neurb-chirurgie
Anatomie Pathologie
Anatomie
Neurologie
Santé Publique
Neurologie
Orthopédie-Trawnato10gie
Cardiologie
Médecine Interne II
Médecine Interne 1
(Néphrologie)
O.R.L
Chirurgie Pédiatrique
Parasitologie
Biophysique
Anatomie-Pathologie
Physiologie
& Personnel en détachement
,
,
::
1
M.Abdoul Almamy
*M.Mamadou Mourtalla
M. Abdoul
M. Victorino
M. Jean Charles
*M. Claude
M.lsaa
M. Alain Khassim
M. Abdoulaye
M. El Hadji
*M. Youssoupha
M. NiamaDiop
Mme Bineta
M. Mohamadou Guélaye
M.Moustapha
M. Birama
M. El Hassane
M. Ahmed Iyane
*M. Pape Salif
Mme Haby SIGNATE
M. Mouhamadou Habib
M. Cheickna
M.Omar
M. Doudou
HANE
KA
KANE
MENDES
MOREAU
MORElRA
NDIAYE
NDOYE
NDIAYE
NlANG
SAKHO
SALL
SALLIKA
SALL
SARR
SECK
SIDIBE
SOW
SOW
SY
SY
SYLLA
SYLLA
THIAM
Pneumophtisiologie
Médecine Interne 1
Cardiologie
Anatomie-Pathologie
Gynécologie
Pédiatrie
O.R.L
Urologie
Anatomie-Chirurgie
Radiologie
Neuro-Chirurgie
Biochimie Medicale
Anesthésie-Réanimation
Pédiatrie
Cardiologie
Pédopsychiatrie
Pédiatrie
Urologie
Psychiatrie
Hématologie.
MAITRES ASSISTANTS
***
i
i.
M. El hadj Amadou
M. Moussa
M. Momar Codé
. Mme Sokhna
. M. Boubacar
M~ El Hadj Souleymane
, M.' Cheikh Ahriled T.
'Mme Mariama Safiétou- KA
M; André Vauvert
BA
BA
BA
BNDIOP
CAMARA
CAMARA
CISSE
CISSE
DANSOIŒO
# Personnel mis en Disponibilité
Ophtalmologie
Psychiatrie
Neurochirurgie
Radiologie
Pédiatrie
Gynécologie-Obstérique
Associé
MmeAnta Tal
*M.Ibrahima
··M.Djibril
DIA
DIAGNE
DIALLO
*M. Marne Thiemo
M.Yémou
Mme Elisabeth
M. Mamadou Lamine
DIENG
DIENG
DIOUF
DIOUF
M. Saliou
M.El Hadji Fary
M. Assane
*M.Mouhamadou
DIOUF
KA
KANE
MBENGUE
Mme Coura SEYE
M. Ousmane
M. Cheikh Tidiane
Mme Paule Aida ROTH
M.Ndaraw
M. Abdoulaye
Mme Anne-Aurore
.. M. Masserigne
M. Abdoulaye
Mme Anna
M. Doudou
M. Amadou Makhtar
M. Gora
Mme Hassanatou TOURE
M. Abdourahmane
M.Alé
NDIAYE
NDIAYE
NDOUR
NDOYE
NDOYE
POUYE
SANKHALEIDIOUF
SOUMARE
SAMB
SARR
SARR
SECK
SECK
SOW
TALL
THIAM
Pédiatrie
GynécologieObstétrique
Dennatologie
Parasito10gie
Anesthésie-réanimation
Médecine Interne l
(Gastroentérologie)
Pédiatrie
Médecine Interne
Dennatologie
Médecine Interne l
Orthopédique
Ophtalmologie
Pédiatrie
Ophtalmologie
Neurochirurgie
Médecine Interne l
Chirurgie générale
Maladies infectieuses
Physiologie
Psychiatrie
Psychiatrie
Physiologie
Biophysique
O.R.L.
Neurologie
ASSISTANTS DE FACULTE-ASSISTANTS
DES SERVICES UNIVERSITAIRES DES HOPITAUX
***
Melle Agaïcha Tamdette
M. Boubacar Samba
. M. Abdoulaye Séga
. M. Alassane
• Associé
ALFIDJA
DANKOKO
DIALLO
DIATTA
Physiologie
Histologie-Embryologie
Biochimie Médicale
M.Dialo
M. Mamadou
M. Moctar
M.Salïou
Mme AwaOumar TOURE
..Mme Mam~ Cownba GAYE
-M. Oumar
M.EI Hadj Alioune
M.Ismai1a
M. Mamadou
M. Oumar
M. Ndéné Gaston
M .Kamadore
M .Issa
DIOP
DIOP
DIOP
DIOP
FALL
FALL
FAYE
LO
MBAYE
MBODJ
NDOYE
SARR
TOURE
WONE
Anatomie (Cancérologie)
Hématologie
Hématologie
Médecine Légale
Anatomie (Organogénèse)
Médecine Légale
Biophysique
Biophysique
Biochimie Médicale
CHEFS DE CLINIQUE - ASSISTANTS
DES SERVICES UNIVERSITAIRES DES HOPITAUX
***
1
i
Mme Aïssata LY
Mme Marième GUEYE
M. Maguette
-M. Mamadou Diarra
Mme Elisabeth FELLE
- M. Ahmadou
Melle Ndèye Méry
M. saïdou
M.Oumar
M Charles Bertin
M. Rudolph
Mme Fatou SENE
_M. Papa Ahmed
M.Oumar
*M. Abdoul Aziz
Mme Aminata DIACK
M. Philippe Marc
M. Amadou Koura
M. Moustapha
BA
BA
BA
BEYE
DANSOKHO
DEM
DIA
DIALLO
DIARRA
DIEME
DIOP
DIOUF
FALL
KANE
KASSE
MBAYE
MOREIRA
NDAO
NDIAYE
·······················;·······Assoëlit..· · · . · · · · _
- -
1
Radiologie
Cancérologie
Médecine Interne 1
Stomatologie
Neurologie
Urologie
Cancérologie
Pédiatrie
Gynécologie obstétrique
Neurologie
Neurologie
.
Mme Ndèye Maimouna
* M. Abdou
Mme Suzanne Oumou
MMoussa
Mme Aida
M Mamadou Habib
M. Silly
NDOUR
NIANG
NIANG
SEYDI
SYLLA
THIAM
TOURE
MédecUlelnternel1
Néphrologie
Dennatologie
Psychiatrie
Psychiatrie
Stomatologie
ATTACHES CHEFS DE CLINIQUE
***
'M..Oumar .
BA
M~Mamadou
COUME
M. Mor
NDIAYE
Pneumophtisiologie
MédecUle Interne 1
Pneumophtisiologie
ATTACHES - ASSISTANTS
***
Mme Nafissatou NDIAYE
~I\e Fatou
M.Papa
* Associés
BA
DIALLO
NDIAYE
Anatomie-Pathologie
Biochimie Médicale
11- PHARMACIE
.PROFESSEURS TITULAIRES
***
M. Doudou
BA
M. Emmanuel
M. Cheikh Saad Bouh
M. Alioune
* M. Babacar
BASSENE
BOYE
DIEYE
FAYE
M. Issa
LO
MBOUP
NDIR
* M..Souleymane
* M. Oumar
Chimie Analytique et
Toxicologie
Pharmacognosie
Bactériologie-virologie
Immunologie
PharmacologiePharmacodynamie
Pharmacie Galénique
Parasitologie
MAITRESDE CONFERENCES AGREGES
***
BADIANE
CISSE
CISS
DAFFE
DIALLO
DIALLO
DIOUF
DIOP
M. Mamadou
.. *M~ Ay:riliia .
: M. Mounirou
..M. Balla Moussa
Mme Aïssatou GAYE
Mme Aminata SALL
M.Amadou
M. Pape Amadou
Chimie Thérapeutique
Biochimie Pharmaceutique
Toxicologie
Pharmacognosie
Physiologie Pharmaceutique
Toxicologie
MAITRES- ASSISTANTS
***
Melle Issa Bella
*M. Amadou Moctar
:M. y érim Mbagnick .. .
Mme Rita BEREHOuNDOUGOU
-M. Matàr
BA
DIEYE
DIOP
NONGONIERMA
SECK
M.Oumar
THIOUNE
* Associé
Parasitologie
Pharma~ologie
Chimie analytique
. Pharmacognosie
Pharmacie Chimique et
Chimie Organlque
ASSISTANTS
***
M. Ahmédou Bamba K.
& M. Djibril
DIARRA
DIATTA
DIENG
GADJI.
GOMIS
FALL
FALL
M. Mamadou
M. Modou
* M. Augustin
M. Bara
*M. Marnadou
Mme Maguette Dème SYLLA
Mme Philomène LOPEZ
·M. Mamadou
*M. Elirnane Amadou
& M.Alassane
FALL
LO
NDIAYE
NDIAYE
NDIAYE
NIANG
SALL
SARR
SY
WELE
M. Mounibé
·M. William
~lIe· Thérèse
M.· Macoura
~leEdwige
Physique Pharmaceutique
Botanique
Parasitologie
Hématologie
Pharmacognosie
Pharmacie Chimique et
Chimie Organique
Toxicologie
Botanique
Physique Pharmaceutique
Chimie Analytique
Pharmacologie
Immunologie-Biochimie
Chimie Générale et Minérale
Chimie Physique
1
ATTACHES
***
Mme Amy THIAM
M.Mor
M. Pape Madièye
M. Modou Oumou
M. Sarra
* Assistants Associés
& En Stage
FALL
GUEYE
GUEYE
KANE
NGOM
Chimie Analytique
1
III - CHIRURGIE DENTAIRE
PROFESSEURS TITULAIRES
***
M.lbrahima
Mme Ndioro
BA
NDIAYE
Pédodontie-Prévention
Odontologie Préventive et
Sociale
MAITRES DE CONFERENCES AGREGES
***
DIALLO
DIALLO
NDIAYE
SEMBENE
*M.Boubacar
, M.Papa Demba
. Mme Charlotte FATY
M. Malick
Chirurgie Buccale
Parodontologie
Chirurgie Buccale
Parodontologie
MAITRES-ASSISTANTS
***
i
MDaouda
CISSE
*M Falou
Mme Fatou
~lIeFatou
DIAGNE
DIOP
GAYE
M.Abdou Wahab
KANE
*M. Mohamed Talla
Melle Soukèye DIA
M Abdoul Aziz
SECK
TINE
YAM
sociale.
Orthopédie Dento-Faciale
Pédontie-Prévention
Odontologie Conservatrice
Endodontie
Endodontie
Prothèse Dentaire
Chirurgie Buccale
Pédodontie
ASSISTANTS DE FACULTE
***
M. Abdou
Mme Aïssatou TAMBA
MmeKhady DIOP
M. Henri Michel
Mme Adam Marie A. SECK
M.~
*M. Lambane
.1
i
1
BA
BA
BA
BENOIST
DIALLO
DIENG
DIENG
.* Maître Assistant - Associé
Chirurgie Buccale
Pédontie-Prévention
Orthopédie Dento-Faciale
Parodontologie
Parodontologie
Odontologie Légale
Prothèse Dentaire
*M.Malick
MBAYE
M.
M.
M.
M.
M.
NABHANE
NDIAYE
NIANG
SARR
TOURE
Edmond
Cheickh
Paul Dédé Amadou
Farirnata Youga
Babacar
M. Saïd Nour
TOURE
Endodontie
Prothèse Dentaire
Prothèse Dentaire
Chirurgie Buccale
Matières Fondamentales
Endodontie
Prothèse Dentaire
ATTACHES
***
M.Babacar
FAYE
M.Daouda
FAYE
M.Malick
M.Mohamed
FAYE
SARR
Mme Fatoumata DIOP
THIAW
*Assistant Associé
Endodontie
Sociale
Pédodontie-Orthodontie
Endodontie
Endodontie
·1.
•
:
J,
,lE BEllE CE TIIVlll..
A la mémoire de mes grands parents :
.Que les' portes du paradis vous soient grandes ouvertes.
A mon grand-père 5idi Ali :
Que dieu te prête long vie afin que nous puissions jouir très
longtemps de ta présence.
Mon amour pour toi sera éternel.
A la mémoire de mon père :
J'imagine qu'elle serait ta joie aujourd'hui;
J'aurais tant voulu que tu assistes à l'aboutissement de ces années
de dur labeur. Dieu en a décidé autrement.
. Que Dieu t'accordes la paix éternelle et t'accueille dans son paradis.
A 'ma mère:
Combien long a été ce chemin dont j'attends le but aujourd'hui
grâce à Dieu et à tes prières, ta patience et tes sacrifices qui ont été
pour moi le plus précieux des soutiens
Je ne retrouvais assez de mots pour t'exprimer tout mon amour, ma
reconnaissance et ma profonde gratitude pour les sacrifices
consentis.
Que le travail soit pour toi la récompense de tes efforts et le gage de
ma profonde affection. Mon amour pour toi est sans limite.
Je prie Allah te tout puissant pour qu'il t'accorde une longue vie
afm que tu puisses bénéficier des fruits de l'arbre que tu as si bien
entretenu.
A mon mari Ahmed
Ta contribution dans le parcours de combattant a été totale.
Puisse Dieu m'aider à vivre à tes côtés dans le bonheur, dans la joie
et la reconnaissance toute ma vie.
J e ne saurais retrouver les mots pour dire ce que tu représentes pour
.
mol.
Je t'adore.
A mon frère Anouar
C'est grâce à toi que je n'ai pas pu pleurer mon père.
Tu as achevé mon éducation, m'as soutenu et m'as encouragé tout
au long de mes études.
Les mots sont incapables d'exprimer l'admiration que je porte pour
toi.
A mon grand frère Simohammed et sa femme Mouna
Tu as été pour moi le grand frère et l'ami que ce travail soit pour
vous uri modeste témoignage de ma profonde reconnaissance et de
mon affection éternelle.
A mes sœurs Khadija et Mirième
Mon attachement et ma tendresse envers vous ne peuvent être
exprimés ni traduits par ces quelques mots imparfaits.
J'ai toujours apprécié l'estime que vous portez, sachez qu'elle est
. réciproque.
Puissions- nous rester toujours aussi unis dans la vie.
Nous avons reçu de notre mère la meilleure des éducations, la plus
grande des affections.
Espérant avec l'aide d'Allah de ne pas la décevoir.
Je vous adore tous.
A mon oncle 5aid et sa femme Rachida
Vous m'avez soutenu et encouragé tout au long de mes études.
Les mots sont incapables à exprimer toute l'admiration que je vous
porte.
Puisse ce travail témoigner encore toute ma reconnaissance.
A ma tante Nouzha et son mari Houssine
l'aurai voulu partager ce moment avec vous car vous y avez
largement contribué, mais la distance ne nous permet pas.
Trouver en ce travail, le gage de mon profond attachement.
.A mon oncle 5IDI Hassan et sa femme Fadila
Trouver en ce travail, toute ma profonde reconnaissance.
A mes tantes Najat, Fatim Zahra et son mari
Que ce travail soit pour vous, un modeste témoignage de ma
profonde reconnaissance et de mon affectio éternelle.
Puisse nos liens familiaux se resserrer davantage.
A mon oncle Abderrahman et sa femme Chadia
Pour l'aide inestimable que vous m'avez apportée à la réalisation de
ce document, ta constante sollicitude à mon égard, tes conseils ta
. . : générosité et ton sensdes relation, sachez qu'ils resterontpour moi
. une référence.
Ce travail est le votre soyez assuré de mon attachement infini et de
.
ma reconnaissance.
A ma tante Hajja Rougui Ba et ses enfants
En témoignage du merveilleux et chaleureux accueil que vous
m'aviez réservé dés mon arrivé à Dakar, pour commencer mes
études de pharmacie.
Sans votre soutien, je ne serai jamais arrivée où j'en suis.
Trouver en ce travail toute ma profonde reconnaissance car c'est
également le fruit de vos sacrifices.
A mes cousins et cousines.
Que notre esprit de famille se fortifie et notre fraternité demeure
toujours intacte.
A mes amis et sœurs sanôa, Loubna, Sofia, Afafe,
sanaa.b, Halima, Badiaa, Ndéye, Rim, Hind, Samira
En souvenir de toutes nos belles années de complicité et d'études,
vous êtes les bonnes amies et les meilleure compagnie toujours
disponible et d'un grand cœur ouvert là où j'ai besoin de vous.
Tout mon amour et mes vœux de réussite
A Fatima Zahra et Youness
Pour toute l'estime et la gratitude que je vous porte
Aux familles
Lebbar, Mechatt, Karam, Tamba.
Ma sympathie et mon profond respect.
A mes promotionnaires
En souvenir des années passées ensemble dans une atmosphère de
fraternité et d'ententes sympathiques
A tous mes amis du Maroc et de Sénégal
Au personnel de ·Ia scolarité de la faculté de Médecine
et de pharmacie.
A tous ce que je n'ai pas cité par inattention.
A tous ce qui, d'une manière ou d'une autre, ont
contribué à l'élaboration de ce travail.
A tous ·mes enseignants depuis la maternelle, jusqu'à
l'université.
Sincères remerciements
A
Mme Guessous. N
Maître de conférence du laboratoire de Parasitologiemycologie de l'hôpital CHU IBN ROCHD
Vous m'avez tellement bien reçue, aidé et épaulée à tous les moments.
Vos conseils précieux m'ont permis de mener à bien cette étude.
Je vous en remercie profondément.
1Ils IIiTRES nIIIEI
A
Notre MaÎtre et président de jury
Monsieur le professeur Ibrahima Wone
Vous nous faites un très grand honneur en acceptant de présider notre jury de
thèse.
Nous avons été fortement marquée durant toutes nos études par la qualité de
votre enseignement enrichissant et dispensé avec méthode et clarté, nobles
qualités qui vous ont valu toute l'estime et l'affection des étudiants.
Nous vous prions de bien croire à notre profonde gratitude et notre sincère
reconnaIssance.
A
Notre MaÎtre et Directeur de thèse
Monsieur le professeur Omar Ndir
Nous avons su apprécier au cours de nos études un maître respecté et aimé.
Vous nous avez confié un travail et grâce à votre disponibilité pennanente votre
extrême gentillesse, votre aide et vos conseils, nous avons pu le réaliser.
Veuillez trouver dans ces quelques phrases, notre reconnaissance, notre estime
et notre profond respect.
A
Notre Maître et Juge
Monsieur le professeur Cheikh Saad Bouh Boye
Nous avons le grand plaisir de vous avoir panni notre honorable jury.
Votre compétence et vos qualités morales fond de vous une personne très
.respect~e.
Veuillez trouver dans cet ouvrage d'expression de notre profond respect et
sincère estime.
A
Notre Maître et juge
Monsieur le professeur Amadou Diouf
Nous sommes particulièrement flattés en vous voyant siéger à notre jury de
thèse.
Votre disponibilité et votre ouverture d'esprit demeureront un exemple pour
nous.
Nous vous disons merci de tout cœur.
· "Par délibération, la Faculté a arrêté que les opinions émises
: dans les dissertations qui lui seront présentées, doivent être
considérées comme propres à leurs auteurs et qu'elle 'n'entend
leur donner·aucune approbation ni improbation".
SOMMAIRE
-INTRODUCTION
--PREMIERE PARTIE:
1
GENERALITES SUR LES DIFFERENTES
METHODES DE DIAGNOSTIC PARASITAIRE ET MYCOSIQUE.
Chapitre 1 : DlAGNOSnC DES DIFFERENTES ESPECES
PARASffAiRES.
1-1 Examens parasitologiques des selles
3
1-1-1 Prélèvement des selles
3
1-1-2 Examen macroscopique
5
1-1-3 Examen microscopique
5
1-1-3-1 Examen direct
5
1-1-3-1-1 Etat frais
6
1-1-3-1-2 Examen après coloration
6
1-1-4 Examen après concentration
1-1-4-1 Méthodes physiques
9
9
1-1-4-1-1 Technique de sédimentation
9
1-1-4-1-2 Technique de flottation
11
1-1-4-2 Méthodes diphasiques
1-2 Techniques spéciales:
14
17
1-2-1 Numération des œufs
17
1-2-2 Extraction des parasites
18
1...:3 Techniques spécifiques
19
1-3-1 Recherche d'œufs d'oxyure
19
1-3-2 Tubage duodénal
20
1-3-3 Enterotest
20
1-3-4 Examens des urines
22
1-3-5 Biopsie de la muqueuse rectale
23
1-4 Diagnostic biologique du paludisme
24
1-5 Diagnostic biologique des lesbmanioses
26
".Chapltre 1/ : Diagnostics biologiques des mycoses
11-1 Les Candidoses
28
11-1-1 Définition
28
11-1-2 Diagnostic mycologique
28
11-1-2-1 Prélèvement
28
28
II-1-2-3 Culture et identification
29
11-2 Les dermatophyties
31
II-2-1 Définition
31
11-2-2 Diagnostic biologique
31
39
II-2-2-2 Examen direct
32
11-2-2-3 Culture
33
11-3 Les aspergilloses
34
11-3-1 Définition
34
11-3-2 Diagnostic biologique
34
34
34
11-3-2-3 Culture
35
II-3-2-4 Examen anatomo-pathologique
35
11-4 La cryptococcose
36
II-4-1 Définition
36
ll-4-2Diagnostic biologique
36
II-4-2-1 Prélèvement
36
II-4-2-2 Examen direct
36
11-4-2-3 Culture
36
11-4-2- 4 Identification
36
II - 5 La sporotrichose
37
II - 5 - 1
Définition
37
II - 5 - 2
Diagnostic
37
II - 6 Chromomycose ou chromoblastomycose
37
II - 6 - 1
Définition
37
II - 6 - 2
Diagnostic
37
-DEUXIEME PARTIE = TRAVAIL PERSONNEL
CHAPITRE 1 : CADRE BIOGEOGRAPHIQUE
1-1 Localisation géographique et climat
38
1-2 Infrastructures
38
1-3 Présentation de l'hôpital CHU mN ROCHO.de Casablanca
40
CHAPITRE II : MATERIELS ET METHODES
1-1
Materiels
41
1-2 Methodes
41
CHAPITRE III : RESULTATS ET COMMENTAIRES
1- Année 1996
43
1 - 1 Examens parasitologiques , mycologiques et
sérologiques effectués par mois et par an
43
1 - 2 Examens parasitologiques et mycologiques selon leur
origine al' exclusion des examens sérologiques.
44
45
11- Année 1997
II-l Examens parasitologiques , mycologiques et
45
II-2 Examens parasitologiques et mycologiques selon leur
origine a l'exclusion des examens sérologiques
46
~
il
111- Année 1998
111-1 Examens parasitologiques , mycologiques et
47
47
111-2 Examens parasitologiques et mycologiques selon leur
origine al'exclusion des examens sérologiques
48
IV- Année 1999
49
IV-1 Examens parasitologiques, mycologiques et
49
IV-2 Examens parasitologiques et mycologiques selon leur
origine al'exclusion des examens sérologiques
50
v- Année 2000
51
V-1 Examens parasitologiques, mycologiques et
51
V-2 Examens parasitologiques et mycologiques selon leur
origine al' exclusion des examens sérologiques
52
VI- Bilan global des 5 années
53
VII- Analyse détaillée des examens parasitologiques
effectués durant de l'année 2000
54
VII-l Résultats globaux
54
Vll-2 Résultats par type d'analyse.
55
VII-3 Répartition ~obale des examens parasitologiques
selon les services
63
VIII- Analyse détaillée des examens mycologjques durant
l'année 2000.
64
!
VIll-l Examens ~ycologiques effectués par mois et par an .
64
VIll-2 Examens JP.ycologiques selon leur origine.
66
VIII-3 Examens mycologiques selon les services.
67
VIII-4 Résultats globaux des examens mycologiques.
68
CHAPITRE W: DISCUSSION
72
CONCLUSION ET RECOMMANDATIONS
79
BffiLIOGRAPHIE
82
ABREVIATIONS
A. lumbricoïdes
A. bronchique
A. fumigatus
B.hominis
C. albicans
C. g.mondü
C. glabrata
C. humicola
C. mesnili
C. neoformans
C. non albicans
C. parapsilosis
C. tropicalis
CA
CC
Cuta
D
S. haematobium
E. coli
E. histolytica
E. vermicularis
EXAM.MYCOL
EXAM.SEROL
G. intestinalis
G.E
H.nana
HC
I. belli
K.A.O.P
L
LCR
T.microscopique canis
OD
Oesop
00
P. butschlli
P. pedrosoi
P.V
Pulmo
S. schenkü
SQU
T. mentagrophytes
T. rubrum
T. violaceum
T .interdi~italis
Verteb
Ascaris lumbricoïdes
Aspiration bronchique
Aspergillus fumigatus
Blastocystis hominis
Candida albicans
Candida guillier mondü
Candida glabrata
Candida humicola
Chilomastix mesnili
Candida neoformans
Candida non albicans
Candida parapsilosis
Candida tropicalis
Candida albicans
Cuir chevelu
Cutanées
Divers
Schistosoma haematobium
Èntamoeba coli
Entamoeba histolytica
Enterobius vermicularis
Examens mycologiques
Examens sérologiques
Giardia intestinalis
Gouttes épaisses
Hymenolepis nana
Hemoculture
Isospora belli
Kystes,Amibes,Œufs,Parasites
Leshmanies
Liquide cephalo rachidien
Teigne microsporique canis
Ongle doigt
Œsophagienne
0ngle orteil
Pseudolimax butschlli
Phialophora pedrosoi
Prélèvement vaginal
Pulmonaire
Sporothrix schenkü
Squame
Trichophyton mentagrophytes
Trichophyton rubrum
Trichophyton violaceum
Trichophyton interdigitalis
Vertébrale
•
lU
INTRODUCTION
Les parasitoses et les mycoses occupent une place très importante panni
les problèmes de santé publique, surtout dans les pays du tiers monde.
Cette importance est liée au nombre considérable d'habitants qu'elles
touchent, puisqu'on estime que:
+ près d'un milliard d'individus sont atteints d'ascaridiose.
+ L'amibiase frappe environs 10 % de la population du globe.
+ La trichocéphalose, les schistosomiases et l'anguillulose, frappent
environ 500 millions de personnes.
- L'importance de ces affections est aussi due au fait qu'elles
peuvent
entraîner une pathogénicité, pouvant se compliquer d'accidents
graves voire mortels (ascaridiose, amibiase, bilharziose) ;
- Quant aux mycoses, elles constituent un ensemble d'affections
particulières impliquant plusieurs espèces différentes de champignons .
-
On peut classer les mycoses humaines en trois catégories :
+ Les mycoses superficielles localisées à la peau, aux phanères et aux
muqueuses
+ Les mycoses sous cutanées.
+ Les mycoses profondes ou systémiques (dues à la pénétration des
champignons dans la profondeur des tissus).
- Nous avons mené une étude rétrospective des examens parasitologiques
et mycologiques effectués au laboratoire de parasitologie-mycologie au CHU
mN ROCHD de Casablanca.
1
L'objectif de ce travail réalisé au service de Parasitologie-Mycologie de
l'hôpital CHU mN ROCHO est:
- D'une part, évaluer la fréquence des différentes espèces parasitaires et
fongiques par une étude rétrospective allant de 1996 à 2000
,
- D'autre part,
~
Détenniner le nombre globale d'examens parasitologiques et
mycologiques effectué de 1996 à 2000
~
Etudier les variations de ce nombre en fonction du mois et de
l'origine du malade (externe ou hospitalisé)
~
Analyser de façon détaillée les résultats des examens
parasitologiques et mycologiques effectués durant l'année 2000.
Notre travail comportera:
+ Une première partie où nous faisons un rappel sur les différentes
méthodes de diagnostic des différentes espèces parasitaires et mycosiques.
+ Une deuxième partie où après avoir décrit le cadre de notre étude, les
. patients et les méthodes employées, nous avons présenté les résultats obtenus.
+ Enfin une troisième partie consacrée à l'analyse et à la discussion de
nos résultats.
+Nous avons tenniné par une conclusion et des recommandations.
2
T ,ct
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11A.IIDSTIC
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1
1-
DIAGNOSTIC DES PARASITOSES INTESTINALES:
Le diagnostic des parasitoses intestinales est soit demandé de façon
systématique : dans le cadre de la médecine préventive pour le personnel de
bouche (cuisinier, serveurs) soit évoqué devant l'existence de signes
cliniques: digestifs (douleurs abdominales) biologiques (hyperéosinophilie,
anémie) ou plus rarement, endoscopiques ou radiologiques.
Ce diagnostic sera affirmé par la découverte des fonnes parasitaires
(fonnes végétatives, kystes, oeufs, oocytes...) à l'examen parasitologique de
selles ou des prélèvements particuliers (biopsie rectale, scotch test...)
1-1 EXAMENS PARASITOLOGIQUES DES SELLES
1~1-1
PRELEVEMENT DES SELLES:
C'est une étape essentielle qui va conditionner les résultats de l'examen
.. pârasitologique des selles.
- Sous peine de lyse des fonnes parasitaires les plus fragiles (fonnes
végétatives),· l'examen direct doit porter sur les selles émises depuis moins
d'une heure.
- Des selles recueillies au laboratoire sont donc bien préférables aux
selles apportées par le patient.
- Des boites transparentes seront utilisées car elles pennettront un
meilleur examen macroscopique des selles.
-La quantité des selles doit être suffisante pour pennettre la mise en
oeuvre de toutes les techniques nécessaires.
- Pour améliorer les résultats, certaines précautions jugées utiles doivent
être prise en considération :
3
* Il faut recommander aux malades de s'abstenir de prendre des
médicaments à base de charbon de sel de baryum, de bismuth et d'huile
purgative car ces médicaments surchargent la préparation en matière fécale et
gênent la recherche des parasites.
* Il faut donner aux malades des conseils d'ordre alimentaire pour avoir
un transit régulier avec des selles pauvres en résidus,
*si le malade est constipé, il faut le réactiver en lui donnant un purgatif
salin tel: le sulfate de magnésie ou de soude.
* certains parasites intestinaux nécessitent des techniques particulières
de prélèvement, c'est le cas :
• Des amibes qui nécessitent parfois un prélèvement sous rectoscopie au
niveau des lésions en« coup d'ongle» de la muqueuse rectale.
• Les oxyures pour lesquelles on fait un prélèvement périanal par la
cellophane adhésive (scotch test).
• Parfois on est amené à faire un tubage duodénal pour la recherche de
.lamblia.
4
1-1-2 :EXAMEN MACROSCOPIQUE
Tout
compte-rendu
d'examen
coprologique
doit
comporter
une
description des selles :
- Leur couleur
- Leur abondance
- Leur aspect: selles en billes, en fragments moulées, pâteuses,
semi liquides ou franchement liquides.
- Les selles sont homogènes ou hétérogènes par exemple : selles dures
fragmentées dans du sang, du mucus etc.
- La présence d'éléments nutritionnels macroscopiquement visibles qui
seront recueillis à l'aide d'une pipette pasteur et disposés dans une boite de
pétri avec un peu de soluté physiologique de Nad.
1-1 -3 EXAMEN MICROSCOPIQUE :
Il
c~nstitue
l'étape essentielle de la recherche des parasites dans les selles
et comprend :
1-1-3-1 EXAMEN DIRECT
- Il est important car en pratique, il est le seul moyen de diagnostic de
protozoaires ne possédant que la forme végétative comme : T. intestinalis
-Il porte sur les différents fragments de selles prélevés en plusieurs
endroits au niveau du mucus ou du sang s'il y en a.
5
1-1-3-1-1 Etat frais:
• La fragilité des formes végétatives des protozoaires explique leur lyse
rapide en dehors de l'organisme imposant d'effectuer ce premier temps de
l'examen le plutôt possible après l'émission des selles.
• L'identification de ces formes végétatives repose sur leur taille, leur
forme, leur contenu cytoplasmique le moyen de déplacement
• Le diagnostic des kystes lorsqu'ils existent, se base sur les mêmes
critères de taille, de forme, et de contenu cytoplasmique.
1-1-3-1-2 Examen après coloration:
Les colorations spéciales sont effectuées pour préciser la morphologie
. d'un protozoaire observé et par conséquent pour affiner le diagnostic
.d'espèce. Elles peuvent correspondre à une recherche spécifique d'un parasite
cryptosporidium responsable des diarrhées du nourrisson ou des sujets
immunodéficients.
6
Différentes techniques de coloration:
* Coloration en tubes.
~ Au
merthiolate iode formol (M.LF)
[Technique de sapero Lawless strome]
Dans un tube à hémolyse :
- On met 0,15 ml d'une solution de lugol à 5%.
- On y ajoute 2,35 ml d'une solution de merthiolate-eosine-formol
- Après mélange, la coloration peut s'effectuer en ajoutant dans le tube
un gros poids de matières fécales à l'aide d'une tigelle qui permet
d'homogénéiser le tout.
- Après 20 à 30 mn, les selles se sont déposées dans le fond du tube.
- La couche superficielle du sédiment est la plus riche en protozoaires.
- La chromatine des noyaux est colorée en brun par l'iode.
- Les kystes mûrs apparaissent en clair sur fond rose et semblent donc
avoir des reflets verdâtres.
Les noyaux fixés par le formol sont nets et parfois déjà coloré par
l'iode. Ultérieurement l'éosine pénètre à l'intérieur des kystes.
~ Au
cristal violet de bailenger :
• Elle peut être réalisée en tube ou directement sur la lame en diluant une
goutte de la suspension de selles avec le colorant.
• Les parasites sont colorés très rapidement
• Le. cytoplasme des protozoaires devient rose tandis que la chromatine
des noyaux apparaît en noir.
7
*Coloration sur lame :
On peut citer quelques techniques :
~Coloration
- Cette coloration
au noir chlorazol de Kohn :
p~rmet
de colorer les trophozoites en gris et de bien
voir la structure des noyaux.
- Les kystes apparaissent en bleu pâle avec des noyaux bien nets.
~Coloration
pour la recherche de cryptosporidies :
• Cette technique est la plus fiâble pour trouver des oocystes de
cryptosporidium est la coloration de Niehl-Neelsen modifiée par Henriksen et
Pohlenz.
• Elle s'effectue sur frottis mince de selles ou sur le surnageant après
centrifugation des selles selon la technique de Janeckson-Urbanyi.
- Sécher le frottis à l'air ;
- Fixer au méthanol pur pendant 5mm ;
- Sécher de nouveau;
- Colorer la lame dans un bain de fuchsine phéniquée environs 1 heure ;
- Rincer à l'eau puis différencier dans de l'acide sulfurique à 2% pendant
20 secondes en agitant.la lame ;
- Rincer à l'eau puis colorer dans une solution de vert malachite à 5%
pendant 5mn ou dans une solution de bleu de méthylène à 3% ;
- Rincer à l'eau et sécher à l'air ;
- Les cryptosporidies apparaissent en rouge sur fond vert ou bleu et sont
donc faciles à repérer;
- Leur cytoplasme granuleux renferme quatre sporozoïtes
Cette technique permet aussi de voir les oocystes d' Isospora heU ,.
8
1-1-4 EXAMEN APRES CONCENTRATION
La concentration a pour but de réunir dans un faible volume, les éléments
parasitaires initialement dispersés dans une grande masse de fèces.
- Les méthodes de concentration
Sont très nombreuses mais aucune d'entre elles ne peut mettre en
évidence tous les parasites qui hantent le tube digestif
Ces méthodes se répartissent en deux groupes :
• Méthodes physiques:
• Méthodes diphasiques :
1-1-4-1 METHODES PHYSIQUES:
1-1-4..1-1 Techniques de sédimentation:
Elle pennet de traiter une masse importante de selles et donc de retrouver
des parasites rares.
G"
SEDIMENTATION SIMPLE:
- Intérêt
Technique recommandée pour les larves d'anguillules et les oeufs
d'ascaris non fécondés.
-Inconvénients
De nombreuses cellules végétales sédimentent aUSSI vite que les
parasites recherchés et l'examen microscopique n'est pas toujours facile.
-Technique
• 10 à 20g de selles sont diluées dans 250 à 500 ml d'eau du robinet.
• Mettre la dilution ainsi réalisée dans un verre à pied
9
• Après 1 heure le surnageant est rejeté et le sédiment renns en
suspension dans une même quantité d'eau.
• Recommencer plusieurs fois ces opérations jusqu'à obtention d'un
liquide surnageant clair. Le culot est alors examiné.
c:3"
METHODE DE FAUST ET INGALLS EN EAU GLYCÉRINÉE
- Intérêt
Cette technique est employée pour rechercher les œufs de Schistosoma
mansoni mais permet aussi de trouver les œufs d'ascaris non fécondés et
larves d'anguillule.
- Inconvénients :
Comme pour la technique précédente, l'examen microscopique peut être
rendu difficile par la présence de certains résidus.
- Technique:
- 5g de selles sont diluées dans 300ml d'eau glycérolé à 0,5% ;
- on pratique 3 sédimentations successives en verres à pied d'une durée
d'une heure, 45 mn puis 30 mn ;
-Les œufs de schistosoma sont plutôt en superficie du sédiment;
Gr
METHODE DE VAN SOMEREN ET GREGOIRE EN
COLONNE HAUTE
- Intérêt
Cette méthode est utilisée pour rechercher essentiellement les œufs de
grande douve.
10
- Inconvénients
Réside dans la nécessité d'utiliser un appareillage spécial c'est à dire un
tube de verre de 1 cm de diamètre intérieur et de 2,1 Om de haut. En bas de ce
tube un tuyau de caoutchouc de quelques centimètres peut être fermé par une
pince. Il relie le grand tube de verre à un autre tube de verre, court, muni d'un
robinet.
-Technique
Le grand tube est empli de solution de Teepol à 1% en évitant une forte
agitation (bulles).
-4 g de selles diluées dans 36ml de cette solution sont tamisées à travers
la passoire ordinaire voire à travers une 2ème passoire à mailles plus fines.
- Le filtrat est versé lentement dans le liquide de la colonne.
- Après 20mn la pince du tuyau en caoutchouc est serrée et au robinet, on
recueille quelques gouttes de liquide où se sont condensés les œufs de douve
particulièrement denses (densité= 1,2).
1-1-4-1-2 Techniques de flottation:
Méthodes utilisées
c:?
METHODE DE WILLIS
- Intérêt
Dans les enquêtes épidémiologiques, cette technique présente l'avantage
de la simplicité
d'exécutio~
de la rapidité et d'un faible prix de revient ( eau
chlorurée sodique ).
Elle concentre bien les œufs d'ancylostomidés et d'hyménolepidés
Il
- Inconvénient
La solution de chlorure de sodium pénètre assez facilement dans les œufs
et il ne faut pas dépasser le temps prescrit dans le déroulement de la
technique.
- Technique
•
Les selles sont diluées au dixième environ dans une solution aqueuse
de chlorure
de Na à saturation (25g dans 100ml environ) puis filtrées
rapidement.
•
La suspension obtenue est versée dans un tube jusqu'à la limite
supérieure.
•
On place alors délicatement une lamelle qui doit recouvrir tout le tube
sans bulle d'air.
•
Un quart d'heure plus tard on retire la lamelle qui est déposée sur une
lame et la lecture de la concentration est effectuée avant évaporation de l'eau
et cristallisation du sel ce qui peut se produire rapidement en pays chaud.
CJ?
METHODE DE FAUST SIMPLIFIEE
- Intérêt
Alors que la méthode originale exige plusieurs sédimentations dans l'eau
par centrifugation, avant la flottation, dans la méthode simplifiée on se
contente d'une seule centrifugation.
- Inconvénient
La densité du liquide de dilution (1,18) est proche de celle de la solution
de Willis et n'a pas l'avantage de la simplicité pour se procurer le corps
chimique de base(sulfate de zinc).
Cette méthode ne permet guère de trouver plus d' œufs que la méthode
de Willis, Elle exige l'utilisation d'une centrifugeuse.
12
- Technique
• Les selles sont diluées au dixième environ dans une solution saturée de
sulfate de zinc.
• Tamiser et recueillir le filtrat dans un tube à centrifuger.
• Centrifuger 2 mn à 1500 tri mn.
• Récolter immédiatement un fragment de la pellicule formée en surface
à l'aide de l'anse de platine.
• Puis examiner entre lame et lamelle.
c3"
METHODE DE JANECKSO ET URBANYI
- Intérêt
Cette technique concentre bien les œufs de grande douve, des
schistosomes
et
d'ancylostomidés
ainsi
que
les
larves
d'anguillule,
elle concentre assez bien les embryophores de trenia et les œufs de
trichocéphale.
- Inconvénient
La solution iodo-mercurique est toxique, cette technique est inefficace
pour trouver les kystes sauf ceux de Giardia.
-Technique
.3 à 5g de selles sont triturées dans 20ml de la solution iodo-mercurique
• Pour préparer la solution: dissoudre l'iodure dans un peu d'eau, ajouter
le bi' iodure en remuant, puis après dissolution complète, ajouter le reste de
l'eau. La densité obtenue est de 1440.
• Après tamisage, le filtrat est centrifugé à 2500 tri mn pendant trois à
quatre minutes.
• La couche superficielle recueillie à l'aide d'une baguette de verre
aplatie en spatule est examinée au microscope.
13
1-1-4 -2 METHODES DIPHASIQUES :
- Principe:
Par une solution chimique, certains résidus fécaux sont dissous et
d'autres acquièrent une affinité pour l'éther.
Le principe de ces techniques est donc de mélanger les selles avec une
solution déterminée puis d'agiter le tout avec de l'éther avant de centrifuger
pour recueillir œufs et kystes.
PRINCIPALES TECHNIQUES DIPHASIQUES :
CS?
METHODE DE TELEMANN
- Avantage
Facile à pratiquer, rapide, elle concentre bien les parasites les plus
courants (Giardia, Entamoeba , œuf de trichocéphale).
- Inconvénient
Les œufs de bilharzies, d'ascaris, ou de grande douve restent dans la
couche lipophile
=
c'est donc une méthode à déconseiller dans les pays où
sévissent ces parasitoses.
- Technique
Liquide de dilution avec: Ac. acétique cristallisable (5 ml), eau distillée
. (95 ml).
• Triturer les selles dans ce liquide de dilution.
• Tamiser en recueillant le filtrat dans le tube à centrifuger qui ne doit
pas être rempli qu'à moitié.
• Ajouter l'éther sulfurique en laissant vide le dernier centimètre de la
hauteur du tube
• Agiter vigoureusement jusqu'à émulsion parfaite.
• Centrifuger immédiatement 1 mn à 1500 tours Imn
14
• Prélever le cu10t
• Examiner entre lame et lamelle.
CT
METHODE DE RITCHIE
- Avantages
Elle peut être utilisée sur les selles fonnolées donc sur des selles
collectées pour enquêtes épidémiologiques. Elle concentre bien les œufs
d'ascaris et de schistosome.
- Inconvénient
Le cu10t souvent volumineux est de lecture difficile.
- Technique
Les selles sont diluées dans environ 10 fois leur volume d'une solution
de fonnol à 10% de façon à obtenir une suspension homogène.
* Tamiser sur une passoire métallique ;
* Ne jamais utiliser à cet usage une compresse
de gaze susceptible de
retenir un grand nombre d'éléments parasitaires ;
* Laisser
sédimenter 30 secondes à 2 mn. Ce temps ne doit pas être
prolongé sous peine de perdre les éléments parasitaires les plus lourds ;
* Décanter dans un tube à centrifuger conique ;
* Ajouter 1/3 du volume total d'éther: le niveau final
doit s'arrêter à 1
ou 2 centimètres du bord du tube ;
*
Boucher avec le pouce et agiter de façon à obtenir une émulsion
homogène;
* Centrifuger 2 mn à 2000 tours ;
* On obtient 3 couches :
• une couche aqueuse
• une couche fonnée de débris divers
15
• une couche éthérée colorée en jaune
* Vider le
contenu du tube en décollant la couche solide à l'aide d'une
pipette pasteur ;
- Si l'enrichissement est réussi, on doit obtenir un très petit cillot qu'on
ramasse à l'aide d'une pipette pasteur et qu'on examine entre lame et lamelle.
Gi"
METHODE DE BAILENGER
La méthode proposée par bailenger tient compte de l'importance du PH
mais la technique ne diffère pas de celle de Telemann et Rivas.
- Avantage
Elle est beaucoup plus fiable dans la recherche des kystes et des œufs
se concentrant bien dans un PH aux environs de 5 (Giardia , amibes,
trichocéphale, ankylostome)
- Inconvénient
Pour rechercher les œufs de schistosome une autre technique est
nécessaire.
- Technique
On opère de la même façon en remplaçant le formol à 10%
par la
solution suivante :
• Acétate de Sodium :15g
• Acide acétique :3,60ml
• Eau distillée : 1000ml
Ajuster à PH =5 avec de
l'ac. acétique. Ce PH a été reconnu par
Bailenger comme étant le plus favorable à la concentration des éléments
parasitaires.
16
1-2- TECHNIQUES SPECIALES
1-2-1 NUMERATION DES ŒUFS:
- Intérêt
Pouvoir mesurer l'importance d'une infestation parasitaire permet:
* d'apprécier les possibilités de retentissement physiologique des parasites
* d'évaluer l'efficacité d'une thérapeutique
* de chiffrer des enquêtes épidémiologiques
METHODE UTILISEE:
Gr
METHODE DE KATO
- Principe
C'est un microtechnique de concentration, elle permet
la nuse en
évidence des œufs d'helminthes dans une quantité relativement importante de
selles.
- Technique
• Etaler 30 à 50 mg de selles en flottis épais sur la lame et recouvrir du
rectangle de Cellophane imprégné ( de glycérine pure, eau distillée solution
aqueuse de vert malachite ,à 3%).
• Retourner sur un pàpier filtre
• Laisser reposer 20mn
• Examiner la lame au microscope.
- Inconvénient
Cette méthode n'est pas utilisable pour des selles liquides ou
dysentériques, ne doit pas être employée pour la recherche de protozoaires
intestinaux.
17
1-2-2 EXTRACTION DES PARASITES:
METHODES UTILISEES:
C3"
METHODE DE BAERMANN ET DE LEE MODIFIEE
- Principe
Meilleure technique pour la recherche des larves d'anguillules dont on
utilise les propriétés d'hydro et thermotropisme positif: les larves se
déplacent de la selle fraîche vers l'eau tiède (30°c).
- Technique
• De l'eau chauffée à 45° est versée dans l'entonnoir jusqu'à mi-hauteur.
• La passoire métallique est remplie de selles pâteuses.
• Lorsque la passoire est placée dans l'entonnoir, les selles doivent
afileurer le niveau de l'eau chaude.
• 2 à 3 heures plus tard, l'eau est soutirée soit dans une boite de pétri que
l'on examine à un fort grossissement soit dans un tube à centrifuger.
• Après 5 mn de centrifugation à 1500 à 2000 tours Imn.
• On examine le culot.
C3"
METHODE DE CARNERI :
- Principe
Elle permet de rechercher le balantidium coli
Technique
• Les selles sont comme dans la technique de Baermann mises en contact
d'eau chaude. La particularité de la méthode de Carnéri repose sur le fait que
l'eau doit être tamponnée à PH= 7,2.
• L'eau est ensuite centrifugée.
• Le culot est examiné.
18
1-3 TECHNIQUES SPECIFIQUES
1-3-1 RECHERCHE D'OEUFS D'OXYURE PAR LA
CELLOPHANE ADHESIVE
(scotch test de Graham)
- Principe
• la femelle de l'oxyure vient mourir sur la marge anale en libérant les
œufs qu'elle contient. Ces œufs entourés d'un peu de mucosités restent
souvent collés pendant quelques heures dans les petits plis de la marge anale
avant de tomber dans les draps ou sous vêtements.
• Les œufs seront retrouvés sur la marge anale plus que dans les selles.
- Technique de prélèvement:
• Au réveil, avant la défécation, il faut essuyer la marge anale, en la
déplissant si possible avec le côté adhésive d'une bande de cellophane
transparente du type «Scotch».
• Après le prélèvement, la bande est collée sur une lame porte objets qui
sera transmise au laboratoire.
- Technique de l'examen:
• Les œufs seront recherchés directement à travers le papier adhésive.
• Il est recommandé alors de décoller presque totalement la bande.
• De déposer une goutte d'huile à immersion sur la lame.
• Et de remplacer le papier en ne recollant que l'extrémité.
• D'autres utilisent une goutte de toluène.
Le but de cette manœuvre est d'éliminer les bulles d'air.
19
1-3-2 TUBAGE DUODENAL
Principe
Pour les parasites duodénaux, pour les œufs de douve éliminés dans la
bile, certains recommandent de transmettre au laboratoire de parasitologie le
liquide d'aspiration duodénale ce qui élimine la dilution par la masse des
matières fécales.
Utilisation du liquide d'aspiration:
Examen direct d'une goutte de liquide et d'une parcelle de mucosités (
recherche de Giardia).
+ Décantation et centrifugation.
- Dans les ampoules à décanter, on laisse sédimenter quelques heures les
différents prélèvements, au besoin après dilution dans l'eau salée isotonique.
- Les sédiments sont recueillis et centrifugés, les culots sont examinés.
+ Frottis du reste du culot de centrifugation pour coloration spécifique à
la recherche de cryptosporidium ou de microsporidia.
1-3-3 ENTEROTEST
- Principe
• Il s'agit d'une étude comparable au tubage duodénal mais plus facile
• C'est une technique mise au point dans les années 60 après une
expérimentation aux USA et au Nicaragua
20
- Technique
• L'enterotest se présente sous fonne d'une gélule de gélatine lestée
d'une bille métallique d'un gramme et tapissée intérieurement d'une pellicule
en plastique.
• Dans la capsule est enroulé un 111 de nylon de 1,40m de long dont l'une
des extrémités sort de la gélule.
• Une fois le fil collé sur le visage et la gélule avalée la partie distale
progresse lentement vers le duodénum qu'elle atteint en 4 heures environ
• La gélule se détache alors du fil puis est évacuée dans les selles.
• Après retrait du fil, les quelques gouttes de mucosité et de bile
recueillies sont examinées.
21
1-3-4 EXAMENS DES URINES:
- Principe:
Dans les urines sont éliminés les œufs de Schistosoma haematobium.
Il est possible de trouver des trichomonas vaginalis.
-Recueil des urines et techniques:
* Pour une recherche de trichomonas
Recueillir les urines du premier jet matinal, centrifuger et examiner le
culot à l'examen direct à frais et après coloration de May-Grünwald-Giemsa
en utilisant une eau légèrement alcaline.
* Pour
une recherche d'œufs de Bilharzie
• Ou bien on recueille les urines dans un grand verre (importance des
urines de :fin de miction ),ou bien on demande l'apport des urines de
24heures.
• Sera prélevé à la pipette et examiné au microscope tout filament visible
en suspension dans l'urine d'autant plus si ce filament est plus ou moins
imprégné de sang.
• Après une heure de sédimentation dans des verres à pied, une partie du
surnageant est rejetée et le reste versé dans de grandes ampoules à décanter
forme poire.
• Quelques heures plus tard le sédiment est soutiré, centrifugé et examiné
au microscope. Les cristaux urinaires peuvent souvent être dissous par
acidification progressive de l'urine à l'ac.acétique dilué.
22
1-3-5 BIOPSIE DE LA MUQUEUSE RECTALE
- Méthode
• Le sujet est placé en position génupectorale et le rectoscope, lubrifié,
est introduit dans le rectum.
• On prélève un petit fragment soit sur la paroi antérieure du rectum, soit
sur le bord libre d'une valvule de HOUSTON.
• Le fragment sera déposé sur une lame (éventuellement dans une goutte
de gomme au chloral qui éclaircit la biopsie) et écrasé à l'aide d'une autre
lame qui sera laissée en place .
- Résultat
La biopsie de la muqueuse rectale permet de retrouver aisément les œufs
de Schistosoma Mansoni.
23
1-4 DIAGNOSTIC BIOLOGIQUE DU PALUDISME:
+ FROTTIS MINCE
.- Avantages:
- Réalisation rapide
- Pennet de différencier les plasmodiums
- Inconvénient:
Lecture longue si faible parasitémie
-Technique:
• Déposer une petite goutte de sang à l'extrémité d'une lame. Avec une
lamelle (ou une autre lame) inclinée à 45° environ, sur le bord de la goutte,
étaler le sang d'un geste rapide. Agiter la lame pour faire sécher le frottis,
surtout au niveau de la frange
• Coloration immédiate par le May-Grunwald-Giemsa ou un colorant
rapide.
+GOUTTES EPAISSES:
- Avantage:
-
Concentre les parasites
Lecture rapide
- Inconvénient
-
Séchage long (24h)
Identification des plasmodiums parfois difficile
- Technique:
• Déposer une grosse goutte de sang prélevé directement au bout du doigt
du malade, au milieu d'une lame.
• Avec le coin d'une autre lame , tourner le sang pendant 1 à 2 minutes
en agrandissant progressivement le diamètre original de la goutte.
• Laisser sécher 24 heures dans un récipient fenné (pour éviter la
poussière et les mouches) avant coloration.
24
* Coloration au May-Grunwald-Giemsa
• Recouvrir le tlottis de la solution de May-Giemsa
• Verser à travers un filtre en papier pour éliminer les dépôts de colorant
pendant 3 minutes.
• Ajouter de l'eau distillée jusqu'à disparition du colorant. Jeter cette
eau.
• Recouvrir le tlottis de Giemsa dilué (Mettre 3 gouttes de Giemsa dans 2
ml d'eau distillée). Laisser agir pendant 20 minutes.
• Rincer et sécher
• La coloration de la goutte épaisse nécessite tout d'abord une hémolyse
en recouvrant la goutte séchée avec de l'eau que l'on élimine quand toute
l'hémoglobine a disparu.
• Après fixation par l'alcool méthylique, recouvrir le frottis de Giemsa
(5 gouttes par ml d'eau distillée) pendant 5mn
• Rincer et sécher.
* Coloration rapide
• Il existe actuellement des colorants rapides comprenant trois solutions :
un fixateur, un colorant acide et un colorant basique.
• Il suffit de tremper la lame cinq secondes successivement dans chaque
solution. Rincer et sécher.
• D'autres solutions (type hemoquick) permettent une coloration en cinq
à dix secondes avec une seille solution.
• Pour la recherche et l'identification des parasitoses sanguinoles:
paludisme, filariose, trypanosomiase, borréliose.
25
1-5 DIGNOSTIC BIOLOGIQUE DES LESHMANIOSES :
On distingue deux types de leshmanies :
- Leshmanies viscérales
- Leshmanies cutanées
Diagnostic des leshmanioses viscérales:
Il se déroule en trois étapes :
* Etape séro-hématologigue:
o Signes hwnoraux:
- La vitesse de sédimentation est accélérée à 80 - 100mm.
- Augmentation notable du taux des globulines
- Chute de l' albwnine
- Ce qui entraîne une inversion du rapport albwnine/globuline < à 1
o Signes hématologiques:
Les plus évocateurs :
- Anémie, leucopénie, thrombocytopénie
* Etape immunologigue :
Les réactions de fixation du complément, d'hemagglutination, de
précipitation en gélose et surtout d' immunofiuorescence pennettent de
confinner la suspicion clinique et hématologique dans près de 95 % des cas
de leshmanioses viscérale.
26
* Etape parasitologigue :
Elle apporte seule sur la certitude diagnostique :
- La mise en culture sur milieu N.N.N ( Novy-McNeal-Nicolle ) des
prélèvements ou leur inoculation au hamster (animal le plus régulièrement
sensible) peut être mise en route mais donnera des résultats inconstants et
tardifs.
- C'est la recherche directe des leshmanies au rnveau du système
réticulo-endothélial qui constitue l'examen primordial.
- Le prélèvement est obtenu par ponction médullaire, l'étalement coloré
au May-Grunwald-Giemsa exige une lecture attentive, prolongée et orientée.
- La mise en culture sur milieu NNN ou équivalent
associée confirmant avec un certain retard
L8 jours
sera utilement
et plus ) le diagnostic
parasitologique et permettant par l'isolement de la souche l'étude éventuelle
de sa sensibilité aux anti-leshmaniens et son typage.
- La ponction ganglionnaire peut être réalisée s'il Ya des adénopathies
- La biopsie ostéo-médullaire est également une méthode de prélèvement
devenue courante. Elle permettra de la même façon, la réalisation de frottis et
la mise en culture.
- Les ponctions hépatiques et spléniques, en raIson des nsques
d'hémorragie, ne sont utilisées qu'en cas d'échec de la ponction médullaire.
Diagnostic des leshmanioses cutanées:
- On pratique un étalement sur lame du produit de raclage du versant
interne de l'ulcération, après ablation éventuelle de la croûte, ou un frottis par
apposition d'un fragment biopsique de cette même zone, par exemple une
«carotte» ( technique du punch)
- Culture sur milieu N.N.N
27
IiSNOSTIC BIOllllQln
I pES IftCOIE. "
TI- 1- LES CANDIDOSES
II-1-1 Définition:
Les candidoses sont des affections cosmopolites dues aux levures
appartenant au genre candida.
11-1- 2 Diagnostic:
11-1-2-1 Prélèvement:
- A partir des lésions cutanées ou cutanéo-muqueuses : par grattage ou à
l'aide d'écouvillons stériles.
- A partir des ongles grattage des lésions
- Les prélèvements broncho-pulmonaires seront toujours effectués après
rinçage de la bouche avec une solution d'antiseptique et si possible pratiqués
par fibroscopie ou lavage broncho-pulmonaire
- Les prélèvements viscéraux sont effectués dans des tubes stériles
- Les hémocultures sont ensemencées sur milieu diphasique de
sabouraud chloramphénicol
- Les biopsies acheminées au laboratoire sans fixateur sont toujours
partagées en deux: l'une destinée à l'examen histologique, l'autre à
l'ensemencement sur milieu de sabouraud
11-1-2-2 Examen direct des prélèvements :
Il montre des levures bourgeonnantes avec ou sans pseudo filaments
+ à l'état frais (selles, urines)
+ après éclaircissement (squames, ongles ... )
+ après coloration ( frottis, coupes biologiques)
28
11-1-2-3 Culture et identification
- Après ensemencement sur milieu de sabouraud gelosé à 27° ou 37°,
apparition de colonies de levures en 24 à 48 heures.
- Le test de blastèse ( filamentation en sérum à 37°) pennet de
soupçonner le diagnostic de C. albicans en moins de 4 heures. Celui-ci sera
confinné par la recherche de la pseudofilamentation (genre candida) et des
chlamydospores (espèce albicans).
- L'identification des autres espèces de candida sera basée sur l'étude de
leur
caractères
physiologiques
avec
en
particulier,
les
techniques
d'auxanogramme (assimilation des sucres) et de zymogramme (fennentation
des sucres)
- On peut être amené à pratiquer sur la souche isolée un antifongique.
AUXANOGRAMME :
ETUDE DE L'ASSIMILATION DES SUCRES
- technique:
• Utiliser le milieu yeast-nitrogen-base(YNB) fondu au bain marie ramené à
45°c.
• Préparer une suspension à 107 lev / ml de la levure à étudier dans 2 ml
d'eau distillée stérile.
• Dans une grande boite de pétri, verser la suspension de levures puis le
milieu YNB.
• Mélanger le tout. Laisser solidifier.
• Déposer les disques de sucres à la surface de la gélose.
• Incuber 24 à 48 heures à 27° c.
L'assimilation du sucre se traduit par la croissance de la levure autour du
disque correspondant.
29
ZYMOGRAMME :
ETUDE DE FERMENTATION DES SUCRES
-Technique
-Utiliser une batterie de tubes de milieu gélose molle pour fermentation.
-Ajouter dans chaque tube 1ml de sucre à étudier après avoir fait fondre la
gélose. Laisser solidifier.
-Prélever une pointe de pipette de la levure et ensemencer chaque tube par
piqûre centrale jusqu'au fond du tube.
-Incuber 24 à 48 heures à 37°
AUTRES TECHNIQUES D'IDENTIFICATION
La réduction de sels de tétrazolium ;
L'assimilation du nitrate de potassium
La recherche de l'uréase.
Les tests enzymatiques
30
11-2 LES DERMATOPHYTIES
11-2-1 Définition
Les
dennatophytoses
sont
des
mycoses
cosmopolites
dues
aux
dennatophytes, intéressant l'épidenne et les phanères, très exceptionnellement les
tissus profonds. Ce sont des champignons filamenteux appartenant aux genres
epidennophyton, microsporum, trichophyton.
11-2-2 Diagnostic
Il conditionne la valeur des résultats. Il doit être fait avant l'institution d'une
thérapeutique ou effectué après un arrêt du traitement d'au moins 5 jours voire 3
semaines pour les ongles. S'il existe
plusieurs lésions il faut prélever chaque
lésion séparément.
- La pratique des prélèvements est différente suivant les lésions :
Dans les teignes, kérions, prélever les cheveux , les poils et les squames
(ou les croûtes) au niveau des lésions.
Dans le cas de teignes microsporiques, prélever à la pince les cheveux
qui apparaissent vert fluorescent lorsqu'on éclaire la tête avec une lampe de Wood
( les recueillir dans une boite de pétri stérile ainsi que les squames).
Dans le cas de kerion en phase aiguë, prélever quelques gouttes de pus
au niveau des orifices pilaires, au stade subaigu, on peut presque toujours arracher
des cheveux ou des poils cassés.
Dans les teignes trichophytiques: racler fortement les squames
tapissant le fond des plaques d'alopécie.
31
Dans les teignes faviques: recueillir des cheveux parasités, sous
éclairage à la lampe de Wood.
Dans les plis inguinaux axillaires et les espaces interdigito plantaires:
racler les squames à la périphérie de la lésion.
Dans l'herpès circiné: gratter fortement les lésions en périphérie de
manière à recueillir des squames.
11-2-2-2 Examen direct:
*11 pennet de mettre en évidence le champignon à la phase parasitaire et
confinne la mycose lorsqu'il est positif.
Principales techniques:
• La potasse KüH à 30%
Déposer quelques gouttes de squames ou cheveux sur une lame porte objet
avec 2 à 3 gouttes de potasse.
Mettre une lamelle, chauffer très doucement à la veilleuse au bec bunsen.
•
La chlorolactophénol.
( même technique).
• Le liquide ou noir chlorazole
Le noir chlorazole, ajouté à la potasse à 5% colore électivement les éléments
fongiques en noir et supprime les artéfacts.
*L'examen microscopique des squames permet de mettre en évidence des
filaments mycéliens plus ou moins arthrosporés. Celui des cheveux et des poiles
32
pennet de distinguer le type de parasitisme pilaire et d'orienter l'attitude sur le plan
épidémiologique.
111-2-2-3 Culture:
- Les différents prélèvements sont ensemencés sur deux milieux de culture
- Le milieu de sabouraud auquel est ajouté un antibiotique antibactérien
thennostable (chloramphénicol), et le même milieu additionné d'un antifongique
(1'ACTIDIONE) (cycloheximide) destiné à inhiber la pousse de la plupart des
champignons contaminants. Les dermatophytes poussent sur ces milieux à une
température de 20 à 30°C.
-L'identification d'un dennatophyte peut être donnée en 10 à 30 jours.
33
11-3 LES ASPERGILLOSES:
11-3-1 Définition:
Les aspergilloses sont des mycoses le plus souvent pulmonaires provoquées
par le développement des champignons filamenteux appartenant au genre
aspergillus. Ce sont des affections opportunistes, fréquentes, parfois mortelles.
11-3-2 Diagnostic:
Etant donné le caractère saprophytique des aspergillus leur isolement à partir
d'une cavité naturelle ne suffit pas au diagnostic. Seules les réactions sérologiques
positives pennettront confrontées à la clinique et parfois à l'examen anatomo pathologique, d'affirmer le diagnostic.
Les expectorations seront recueillies après lavage de la bouche avec une
solution d'antiseptique ou mieux, prélevées par aspiration bronchique. Il faut
prendre de grandes précautions au moment du prélèvement pour limiter les
possibilités de souillure.
11-3-2-2 Examen direct:
Il peut montrer:
• des spores peu caractéristiques,
• des filaments mycéliens de 2 à 4 microns de diamètre, ramifiés
• des têtes aspergilloses rares mais caractéristiques
+ La présence de filaments mycéliens et de têtes aspergillaires est une forte
présomption d'aspergillose si le prélèvement a été fait dans de bonnes conditions
mais il faudra répéter les examens et toujours faire les examens sérologiques.
+ Que l'examen direct soit positif ou négatif, on met toujours en culture le
prélèvement suspect.
34
11-3-2-3 Culture:
On note l'apparition rapide, en 3 ou 4 jours de colonies dont l'examen
microscopique permet le diagnostic du genre aspergillus. Le diagnostic
d'espèces fumigatus se fait sur l'aspect macroscopique et microscopique.
-L'examen microscopique:
Entre lame et lamelle, d'un peu de culture dans une goutte de bleu de
lactophénol permet de noter l'aspect:
de conidiophore
- de la tête aspergillaires
11-3-2-4 L'examen anatomo-pathologigue :
Il s'effectue après intervention ou à la nécropsie dans le cas d'un
aspergillome ou d'une aspergillose invasive, il est réalisé grâce au PAS (coloration
en rouge) et au Gomori Gorocot (coloration en noir)
35
11-4-LA CRYPTOCOCCOSE
II-4-1Définition
La cryptococcose est une infection due à une levure encapsulée cryptococcus
néoformans.
11-4-2 Diagnostic:
II-4-2-1 Prélèvement:
Il consiste à ramener du LCR par ponction lombaire chez le patient
11-4-2-2 Examen direct :
La présence de levures encapsulées à l'examen direct du LCR dans l'encre
de chine dilué en 1/5 permet le diagnostic
11-4-2-3 Culture:
La culture de cryptococcus néoformans est facile. Il pousse sur tous les
milieux, en particulier la gélose de sabouraud, sans actidione (plus vite à 30°)
Les colonies poussent en 2 à 3 jours et peut nécessiter des incubations plus
longues (2 à 3 semaines ).
L'examen au microscope montre la levure comme une auréole.
11-4-2-4Identification :
C'est une levure possédant une activité uréase. Le test à l'urée fait donc
partie de l'identification.
L'analyse de l'assimilation des auxanogrammes permet l'identification
définitive.
36
11-5 LA SPOROTRICHOSE
Infection à sporothrix schenkii
11-5-1 Définition:
La sporotrichose est caractérisée par des lésions cutanées modulaires et du
tissu sous cutanés avec diffusion lymphatique locale.
11-5-2 Diagnostic:
Le diagnostic est porté sur la positivité des cultures en particulier des
prélèvements cutanés
• prélèvement de pus
• culture sur milieu Sabouraud.
• Biopsie de la peau : corps astéroïdes
11-6 LA CHROMOMYCOSE OU CHROMOBLASTOMYCOSE
Infection à phialophora pedrosoï
11-6-1 Définition:
.
Champignon dimorphique. in vitro : croissance lente, colonie noire, aspect
.
.
nucroscoplque : nucrospores .
Champignon cosmopolite, contamination par épineux, ulcération cutanée
indolore et chronique.
11-6-2 Diagnostic:
Pus, examen direct et culture, biopsie.
37
OhlPitre
·1
1-1 SITUATION GEOGRAPHIQUE ET CLIMAT
CASABLANCA
Ma ville natale est aussi la plus grande métropole du Maghreb, elle incarne
le Maroc moderne, elle s'implante en extrême Sud de la partie Nord Ouest du pays
dans la· plaine du Chaouia qui est considérée du côté agricole avec ses autres
voisines plaines de Doukkala et Abda le grenier principal des céréales du point de
vue quantité produite. Signalons aussi l'existence des célèbres étendues de
vignoble de Boulaouane d'où provient ses fameux vins « gris ».
Elle a un climat typiquement modéré avec 4 saisons distinctes. Sa grande
façade sur l'océan Atlantique la privilégie par ses plages de sables fins et ses
stations balnéaires avec des complexes touristiques pour toute catégorie de
personnes. A ses frontières la magnifique et majestueux forêt de chênes-lièges de
Ben Slimane avec son renommé golf sur un adorable parcours de 18 trous
agrémenté d'un lac où vivent carpes et canards.
1-2 INFRASTRUCTURES
Afin d'assurer un environnement socio-économique équilibré, Casablanca a
dû développer en parallèle : infrastructures économiques et infrastructures sociales
-Infrastructures économiques:
*L'alimentation en eau et électricité ont été déléguées à la LYDEC, la
Lyonnaise des eaux de
Casablanca qui a pris en charge pour 30 ans
l'assainissement et la distribution de l'eau et de l'électricité. Les investissements
prévus pour améliorer ce secteur devraient s'élever à 30 milliard de Dirhams sur 30
ans.
La demande en énergie ne cesse de croître en raison de l'extension des
différents
centres
urbains,
de
l'électrification des
zones
rurales
et de
l'industrialisation. La consommation moyenne par ménage et par mois est de 130
kWh.
38
·
'.
*Dans le domaine aéroportuaire, l'aéroport Mohamed V fait l'objet d'une
extension dont la première tranche des travaux est estimée à 300 millions de
Dirham, une cinquantaine de vols par jour assurent une liaison régulière avec la
quasi totalité des pays de l'union Européenne, les Etats Unis, le Canada, le Moyen
Orient et quelques capitales Africaines.
*Le réseau routier de la région du Grand Casablanca est un réseau
relativement dense qui s'étend sur une longueur de 346 km. Ce réseau connaîtra
une extension prochaine, lors de l'ouverture de l'autoroute Casablanca-Sattat et
l'autoroute Casa-El Jadida.
Infrastructures sociales:
*Au niveau de l'équipement sanitaire.
Les infrastructures sanitaires
placent Casablanca en tête des villes
marocaines en terme d'encadrement médical avec notamment 90 médecins pour
100.000 habitants contre 36 pour 100.000 au niveau national.
*Enseignement supérieur
De nombreuses mesures ont été poses afin d'encourager l'enseignement
supérieur privé, ce qui a permis en 1997-1998, l'ouverture de 43 établissements
dans la région du Grand Casablanca contre 79 au niveau national.
L'effectif des étudiants casablancais inscrits dans l'enseignement supérieur
privé s'élève à 4557 élèves soit 53.6% de l'effectifglobal national.
*Administration
L'administration
judiciaire
établissements: une cour
casablancaise
est
composée
de
10
d'appel, six tribunaux de 1ère instance, un tribunal
administratif, un tribunal de commerce et une prison civile.
39
1-3 PRESENTATION DU SERVICE DE PARASITOLOGIE
MYCOLOGIE DE L'HOPITAL CHU IBN ROCHD
Le service de parasitologie mycologie est constitué de 7 salles :
-Une salle de prélèvement;
-Un salle de secrétariat;
-Un bureau pour le chef du laboratoire;
-Une salle les analyses;
-Une salle pour la sérologie;
-Une salle pour les assistants;
-Une salle de cours;
Le personnel du laboratoire est composé de :
- Un chef du laboratoire
- Un médecin biologiste
- 4 biologistes
- 2 secrétaires
-4 techniciens
40
IhaPbre -II
ItJTEIIELS n MUIlIIIS
1I-1MATETIELS
Dans le cadre de notre étude nous nous sommes servis :
• Des Registres ;
• Des rapports mensuels ;
• De l'ordinateur ;
• Des interviews (questions ouvertes adressées aux médecins, biologistes et
personnel du laboratoire.
11-2 METHODES
Il s'agit d'un travail rétrospective basé sur l'utilisation des registres du
laboratoire du CHU IBN ROCHD de Casablanca, registres dans lesquels diverses
rubriques ont été retenues :
- L'année du prélèvement
- Le mois et la date du prélèvement
- Le nom et le numéro d'ordre du malade
- La provenance du prélèvement (sujet hospitalisé ou suivi à titre externe).
- Les parasites et les mycoses isolées
Pour les mycoses, on note le niveau du prélèvement.
Méthodes utilisées
Examens parasitologiques du sang
Les lames où sont confectionnées les gouttes épaisses et les frottis sanguins
sont colorées au Giemsa, examinées en vue de la mise en évidence de trophozoites
de plasmodium falciparum.
Concernant les leshmanioses on procède :
- A une leuco-cyto-concentration qui consiste à concentrer les parasites sanguins
sur la petite surface possible d'une lame en éliminant les globules rouges et les
plaquettes.
- Par culture du sang sur milieu N.N.N
41
Examens parasitologigues des selles
La méthode la plus utilisée c'est l'examen direct entre lame et lamelle,
l'observation se fait au microscope optique à l'objectif 10 puis 40 pour la
reconnaissance des éléments parasitaires.
Examens parasitologigues des urines
Les échantillons d'urines collectés sont examinés sur place. Chaque flacon est
vigoureusement agité puis à l'aide d'une éprouvette graduée, 10 ml d'urines sont
prélevés et filtrés.
Le filtre est coloré au lugol pour examen direct. Les résultats sont exprimés en
nombre d'œufs pour 10ml d'urines.
Examens mycologigues
On effectue toujours un examen direct, suivi d'une culture de champignons.
42
ChaplInI -III
BplLTIfS n CO.MENTIIRES
I-ANNEE 1996
1-1 Examens parasitologiques, mycologiques et sérologiques
effectués par mois et par an :
Durant l'année 1996, le laboratoire de Parasitologie-Mycologie a effectué:
-
5467 analyses parasitologiques ainsi reparties:
o
5297 soit(57%) examens de selles K.A.O.P
o
52 soit (0,60/0) recherches de leshmanies
o
72 soit (0,8%) autres examens parasitologiques
o
26 soit (0,3) examens d'urines
o 20 soit (0,2) gouttes épaisses
- 1956 soit (22%) analyses mycologiques
- 1851 soit (200/0) analyses sérologiques
Au total 9274 analyses ont été effectuées durant l'année 1996.
Tableau 1 : Nombre mensuel d'examens parasitlogiques, mycologiques et
sérologiques effectués en 1996.
MOIS
Janv.
Fév.
Mars
Avr.
Mai
Juin
Juil.
Août
Sept.
Oct.
Nov.
Déc.
TOTAL
K.A.O.P
415
339
486
454
483
472
419
304
462
620
454
389
5297
5,70/0
URINE AUTRES
G.E
L
4
1
2
1
1
1
3
2
0
2
3
0
5
0
3
2
4
2
0
1
2
4
1
2
20
52
0,6 0,2%
26
0,3%
5
3
5
6
3
4
0
2
3
8
8
5
%
43
7
7
8
5
5
4
8
6
4
6
6
6
72
0,8%
EXAM.
MYCOL
EXAM
SEROL
TOTAL
120
137
174
150
168
188
179
137
156
202
157
188
157
131
161
147
159
127
171
132
154
206
139
167
713
618
839
765
823
798
780
584
781
1048
768
757
1956
22%
1851
20%
9274
En moyenne 772 analyses ont été effectuées par mois
- Le maximum a été réalisé en octobre (11,3%)
-
Le minimum en août (6,3%).
1-2 - Examens parasitologigues et mycologigues selon
leur origine ft l'exclusion des examens sérologiques
Dès 7423 examens pratiqués:
-
3151 soit (42,5%) étaient prescrits pour des patients hospitalisés au CHU
mNROCHD
-
4272 soit (57,5%) étaient prescrits pour des patients à titre externe ayant
consultés dans ce cas CHU ou dans d'autres formations sanitaires
Tableau 2 : Représente le nombre global d'examens parasitologiques et
mycologiques à titre
hospitalier et à
titre externe effectué durant l'année
1996.
EXAMENS
EXTERNES
HOSPITALISES
TOTAL
3268
2029
5297
18
34
52
AUTRES
0
72
72
G.E
1
19
20
URINES
5
21
26
980
976
1956
4272
(57,5%)
3151
(42,5%)
7423
K.A.O.P
L
EXAM.MYCOL
TOTAL
44
11- ANNEE 1997
Durant l'année 1997, le laboratoire de Parasitologie -Mycologie a effectué:
- 5147 analyses parasitologiques ainsi reparties :
o 4980 soit ( 54,8%) examens de selles K.A.O.P
o 43 soit ( 0,5%) recherches de leshmanies.
o 75 soit (0,8%) autres examens parasitologiques
o
16 soit ( 0,2%) examens d'urines
o
33 soit (0,4%) gouttes épaisses
- 2018 soit (22,2%) analyses mycologiques
1915 soit (22%) analyses sérologiques
Au total 9080 analyses ont été effectuées durant l'année 1997
Tableau 3 : Nombre mensuel d'examens parasitologiques, mycologiques et
sérologiques effectués en 1997
MOIS
G.E URINE AUTRES
K.A.O.P L
EXAM. EXAM
TOTAL
MYCOL SEROL
Janv.
419
6
2
2
15
135
190
Fév.
341
2
2
3
3
138
158
Mars
482
6
4
4
7
140
149
Avril
464
8
3
1
5
182
161
Mai
531
6
1
1
6
140
162
Juin
448
2
1
2
8
195
160
Juil.
258
0
1
1
7
219
129
Août
260
1
2
1
1
122
125
Sept.
338
4
2
0
3
151
131
Oct.
533
2
5
0
7
194
170
Nov.
396
4
8
1
4
173
172
Déc.
510
2
2
0
9
229
208
4980
54,8%
43
0,5
0fc»
33
0,4
%
16
0,20/0
75
0,80fc»
2018
22,2°fc»
1915
22°fc»
TOTAL
4~
769
647
792
824
847
816
615
512
629
911
758
960
9080
- Le maximum a été réalisé en décembre soit ( 10,6%)
Le minimum en août soit ( 5,6%).
-
ll- 2 Examens parasitologiques et mycologiques selon
leur origine à l'exclusion des examens sérologiques
Dès 7165 examens pratiqués :
- 3126 soit (43,6%) étaient prescrits pour des patients hospitalisés au CHU
ffiNROCHD
- 4039 soit (56,4%) étaient prescrits pour des patients à titre externe ayant
mycologiques à titre hospitalier et à titre externe effectué durant l'année
1997.
EXAMENS
K.A.O.P
HOSPITALISES
EXTERNES
TOTAL
2962
2018
4980
15
28
43
AUTRES
4
71
75
G.E
2
31
33
URINES
6
10
16
EXAM.
MYCOL
1050
968
4039
(56.4%)
3126
(43.6%)
2018
7165
L
TOTAL
46
III - ANNEE 1998
-
5075 analyses parasitologiques ainsi reparties:
o
4896 soit (54,5%) examens de selles K.A.O.P
o
56 soit ( 0,6%) recherches de leshmanies
o
81 soit (0,9%) autres examens parasitologiques
o
14 soit (0,15%) examens d'urines
o
-
1832 soit (20,3%) analyses mycologiques
-
2123 soit (23,5%) analyses sérologiques
Au total 9030 analyses ont été effectuées durant l'année 1998.
sérologiques effectué en 1998.
MOIS K.A.O.P
L
G.E
URINE AUTRES
EXAM.
EXAM.
MYCOL SEROL TOTAL
Jan.
365
2
1
0
4
116
151
Fév.
394
6
2
4
4
91
125
Mars
495
8
0
4
13
158
184
Avr.
417
2
1
0
7
172
155
Mai
415
5
3
1
8
171
253
Juin
533
1
3
1
5
207
197
Juil.
406
5
1
0
4
156
201
Août
289
2
4
0
5
154
137
Sept.
403
4
1
3
2
118
202
Oct.
443
6
6
1
15
160
186
Nov.
372
4
3
0
8
157
163
Déce.
364
11
3
0
6
172
169
4896
54,5%
56
0,62
0/0
28
0,3
0/0
14
0,15 %
81
0,9 %
1832
20,3%
2123
23,5 %
TOTAL
47
639
626
862
754
856
947
773
591
733
817
707
725
9030
- Le maximum a été réalisé en juin (10,5%)
-
Le minimum en août (6,5%)
ID - 2 Examens· parasitologiques et mycologiques selon
leur origine à l'exclusion des examens sérologiques
- 3278 soit (47,4%) analyses effectuées à titre hospitalier
- 3629 soit (52,5%) analyses effectuées à titre externe.
mycologiques à
titre hospitalier et à titre externe effectué durant l'année
1998.
EXAMENS
EXTERNES
HOSPITALISES
TOTAL
2701
2195
4896
21
35
56
AUTRES
2
79
81
G.E
4
24
28
URINES
4
10
14
897
935
1832
3629
(52.50!c»)
3278
(47.4 0!c»)
6907
K.A.O.P
L
EXAM.MYCOL
TOTAL
48
IV -ANNÉE 1999
IV -1 Examens parasitologigues, mycologigues et sérologiques
.effectués par mois et par an :
- 3884 analyses parasitologiques ainsi reparties:
•
•
•
•
•
3732 soit (49%) examens de selles K.A.O.P
37 soit (0,5%) recherches de leshmanies
85 soit (1,1 %) autres examens parasitologiques
8 soit (0,1 %) examens d'urines
- 1656 soit (21,3%) analyses mycologiques
- 2221 soit (28,6%) analyses sérologiques
sérologiques effectués en 1999
MOIS
K.A.O. P
G.E
L
URINE AUTRES
EXAM. EXAM.
TOTAL
MYCOL SEROL
Janvier
198
2
2
0
2
77
110
391
Février
374
1
1
3
10
96
197
682
Mars
299
2
1
1
8
99
173
583
Avril
396
5
4
1
5
116
168
695
Mai
342
3
1
0
10
141
204
701
Juin
327
2
3
0
10
198
207
747
Juillet
326
6
1
0
7
196
197
733
Août
218
3
4
0
7
127
132
491
Sept.
338
4
2
0
6
213
307
870
Oct.
340
2
0
2
2
139
180
665
Nov.
269
4
3
1
12
127
161
577
Déc.
305
3
0
0
6
127
185
626
22
37
0.30/0
0.5%
8
85
1.1 0/0
1656
2221
21.30/0 28.60/0
7761
TOTAL
3732
490/0
0.1°~
49
En moyenne 646 analyses ont été effectuées par mois.
-
Le maximum a été réalisé en septembre (11,2%)
-
Le minimum en janvier (5%)
IV- 2 Examens parasitologigues et mycologigues selon
leur origine à l'exclusion des examens sérologiques:
-
2867 soit (51,8%) étaient prescrits pour des patients hospitalisés au CHU mN
ROCHD
- 2673 soit (48,2%) étaient prescrits pour des patients à titre externe dans ce
CHU ou d~ d'autres formations sanitaires.
Tableau 8: Représente le nombre global d'examens parasitologiques et
myco1ogiques à titre hospitalier et à titre externe effectué durant l'année 1999
EXAMENS
HOSPITALISES
EXTERNES
TOTAL
1845
1887
3732
12
25
37
AUTRES
3
82
85
G.E
4
18
22
URINES
-
8
8
EXAM.
MYCOL
809
847
1656
2673
(48,2%)
2867
(51,8%)
5540
K.A.O.P
L
TOTAL
50
v- ANNEE 2000
V-1 Examens parasitologiques, mycologiques et sérologiques
- 4113 analyses parasitologiques ainsi reparties :
o
3942 soit (50,6%)examens de selles K.A.O.P
o
43 soit ( 0,5%) recherches de leshmanies
o
90 soit ( 1,15%) autres examens parasitologiques
o
10 soit ( 0,1 %) examens d'urines
o
28 soit ( 0,4%) gouttes épaisses
-
1559 soit (200/0) analyses mycologiques
-
2124 soit ( 27,20/0) analyses sérologiques
sérologiques effectué en 2000
MOIS
Janv.
Fév.
Mars
Avr.
Mai
Juin
Juil.
Août
Sept.
Oct.
Nov.
Déc.
TOTAL
K.A.O.P
L
G.E
URINE AUTRES
EXAM.
MYCOL
0
0
13
103
5
1
0
1
11
15
133
129
2
4
0
2
0
7
97
165
1
3
5
182
7
139
3
3
2
1
0
1
0
2
0
2
6
5
8
8
89
135
126
132
129
28
43
0,5%
0,40/0
50,60/0
10
0,10/0
90
1,150/0
1559
20%
253
319
321
297
457
422
498
226
327
322
365
195
3942
5
3
3
1
6
5
4
3
3
4
4
2
1
5
4
51
EXAM
SEROL
115
180
TOTAL
489
651
621
151
142
541
237
876
209
240
825
896
126
452
158
157
210
199
632
618
720
535
2124
27,2%
7796
- Le maximum a été réalisé enjuil1et (11,5%)
-
Le minimum en août (5,8%)
V-2 - Examens parasitologigues et mycologigues selon
leur origine a l'exclusion des examens sérologigues
-
3037 soit ( 53,5%) étaient prescrits pour des patients hospitalisés au CHU
mNROCHO
-
2635 soit (46,5%) étaient prescrits pour des patients à titre externe ayant
mycologiques à titre hospitalier et à titre externe effectué durant l'année 2000
EXAMENS
EXTERNES
HOSPITALISES
TOTAL
1879
2063
3942
10
33
43
AUTRES
8
82
90
G.E
6
22
28
URINES
1
9
10
EXAM.
MYCOL
731
828
1559
2635
3037
(46,5°t'o)
(53,5°t'o)
K.A.O.P
L
TOTAL
52
5672
VI- BILAN GLOBAL DES 5 ANNEES:
Tableau Il : Représente le nombre global d'examens parasitologiques,
mycologiques et sérologiques effectués au laboratoire de Parasitologie-Mycologie
du CHU mN ROCHD de 1996 à 2000.
:s:
K.A.O.P
L
Autres
G.E
Urines
1996
5297
52
72
20
26
1956
1851
9274
1997
4980
75
16
43
33
2018
1915
9080
1998
4896
56
81
28
14
1832
2078
8985
1999
3732
37
85
22
8
1656
1808
7348
2000
3942
43
90
28
43
1559
2094
7766
TOTAL
22847
53.8%
124
0.30/0
9021
21.2°;"
9746
23°;"
42453
Années
263
344
141
0.6°;" 0.8°;" 0.3°;"
Exam. Exam.
TOTAL
Mycol Sérol
Commentaire:
D'après le tableau nO Il, de 1996 à l'an 2000, un total de 42453 examens ont
été effectués. Parmi eux, nous avons 22.847 examens de selles soit ( 53.8%),263
examens
pour
la
recherche
de
leshmanies
(0.6%),344
autres
examens
parasitologiques soit ( 0.8%), 141 gouttes épaisses soit ( O. 3%), 124 examens
d'urines soit (0.3%), 9021 examens mycologiques soit (21.2%), 9746 examens
sérologiques soit ( 23%) .
vu - ANALYSE DETAILLEE DES EXAMENS PARASITOLOGIQUES
EFFECTUES DURANT L'ANNEE 2000:
VII-l-RESULTASGLOBAUX:
-
Sur les 4113 analyses parasitologiques effectuées, 844 ont été positives.
-
Le tableau suivant exprime le pourcentage de positivité des différents
types d'examens parasitologiques pratiqués.
Tableau 12 : Résultats globaux en pourcentage de positivité des examens
parasitologiques effectués en 2000.
Nature de
l'analyse
Nombre total
d'examens
Nombre
d'examens
positifs
Pourcentage de
Positivité
3942
831
21,1%
G.E
28
3
10,7%
Urines
10
-
0%
Autres
90
3
3,3%
4113
844
K.A.O.P
TOTAL
20,5°/'0
Remarque:
Il fiches des autres examens parasitologiques n'ont pas été retrouvées dans
les archives.
14
VII - 2 - RESULTATS PAR TYPE DtANALYSE:
a) - Selles K.A.O.P :
-
Sur 3942 examens de selles effectués pour la recherche de parasites
fécaux intestinaux, 831 étaient positifs.
_ La répartition mensuelle des prélèvements positifs est indiquée dans le
tableau suivant:
Tableau 13 : Résultats mensuels des examens de selles K.A.O.P en
pourcentage de positivité.
Mois
Nombre total de
K.A.O.P
Nombre de
K.A.O.P
positifs
Pourcentage de
Positivité
JANVIER
253
48
19%
Février
319
73
22,9%
Mars
321
96
26,8%
Avril
297
72
24,2%
Mai
457
73
16%
Juin
422
83
19,6%
Juillet
398
77
19,3%
Août
266
38
14,30/0
Septembre
327
54
16,5%
Octobre
322
68
21,1%
Novembre
365
97
26,6%
Décembre
195
62
31,8%
3942
831
21,1%
TOTAL
- On note que le mois de Décembre représente le maximum des cas
positifs(31,8%). Le minimum a été observé au mois d'août (14,3%).
55
Tableau 14
identifiés.
Fréquence des différentes espèces de parasites intestinaux
Parasites
identifiés
Nombre de cas
Fréquence
relative
Fréquence
Absolue
E. histolytica
502
60,4%
12,7%
G. intestinalis
203
24,4%
5,2%
E. coli
128
15,4%
3,2%
Cryptosporidium
38
4,6%
1%
C. mesnili
26
3,1%
0,7%
E. vermicularis
7
0,8%
0,2%
B. hominis
7
0,8%
0,2%
T. intestinalis
6
0,7%
0,2%
P. butschlii
5
06%
0,1%
T. saginata
5
0,6%
0,1%
H nana
4
0,5%
0,1%
l belli
3
0,4%
0,07%
A. lumbricoîdes
1
0,1%
0,02%
Cyc/ospora
1
0,1%
0,02%
96
11,5%
2,4%
Polyparasitisme
- Ce tableau récapitule les espèces de parasites présents dans les prélèvements
par ordre de fréquence décroissante :
- On constate que l'espèce E.histolytica(12. 7%) prédomine largement.
- Viennent ensuite G. intestinalis(5.2%), E. coli(3.2%) ,Cryptosporidis (1%)
C.mesnili (0.7%).
- Les Parasites les plus rares (- de 0.5% de cas positifs) sont:
E. vermicularis(O. 2%)B. hominis(O. 2%), T. intestinalis(0.2%),
P.butschlii(O.l%), T. saginata(O.l%), Hnana(O.l%), l
A.lumbricoïdes(0.02%), Cyc/ospora(0.02%)
be//i(0.07%)
- Parmi les 843 prélèvements positifs, 96 renfermaient plus qu'un parasite soit
un Index de polyparasitisme de 2,4%.
- Du point de vue quantitatif, il s'agissait d'une association de 2 parasites dans
88 prélèvements, de 3 parasites dans 7 prélèvements et de 4 parasites dans un
prélèvement.
Composition et nombre d'association à 2 parasites intestinaux :
NATURE DE L'ASSOCIATION PARASITAIRE
NOMBRE DE CAS
E. histolytica + E. coli
41
E. histolytica + G. intestinalis
18
E. histolytica + C. mesnili
9
G. intestinalis + C. mesnili
2
G. intestinalis +E. coli
4
G. intestinalis + T. intestinalis
1
E. histolytica + H. nana
3
E. histolytica + E. vermicularis
1
E. coli + T. saginata
1
E. coli + P. butschlii
1
E. histolytica + B. hominis
2
G. intestinalis + Cryptosporidium
1
l belli+ Cryptosporidium
1
3
TOTAL
88
57
Composition et nombre d'association à 3 parasites intestinaux
Nature de l'association parasitaire
Nombre de Cas
E. histolytica + E. coli + G. intestinalis
2
E. histolytica + G. intestinalis + C. mesnili
2
E. histolytica + E. coli + C. mesnili
2
E. histolytica + G.intestinalis + H nana
1
TOTAL
7
Composition et nombre d'association à 4 parasites intestinaux :
On a 1 seul cas :
E. histolytica + G. intestinalis + C. mesnili + T. intestinalis
Tableau 15 : La distribution mensueIie
dès
parasites identifiés lors des
examens des selles K.A.O.P durant l'année 2000
Parasites
Janv Fév Mars Avr Mai Juin Juil Août Sept Oct Nov Dec
18
44
55
33
44
52
52
52
33
31
75
38
E. coli
8
14
11
5
3
15
13
13
22
10
13
10
P. butschlii
-
-
1
-
-
-
-
-
-
1
1
2
16
18
19
24
23
19
16
16
10
26
14
12
C. mesnili
2
2
7
1
-
1
6
6
1
2
1
3
T. intestinalis
-
-
-
-
-
1
4
4
-
-
1
-
B. hominis
-
-
-
1
-
-
3
3
-
1
-
-
Cryptosporidis
4
1
6
9
-
1
1
1
-
8
2
5
Lbelli
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
Cyc/ospora
-
-
-
-
-
-
-
-
-
1
-
E. vermicularis
-
1
-
1
1
1
2
2
-
1
-
-
A.lumbricoides
-
-
-
-
-
1
-
-
-
-
-
-
T.saginata
-
-
-
-
2
1
-
-
1
-
-
-
H.nana
-
-
-
-
1
-
1
1
-
1
-
-
48
80
99
74
74
92
98
42
67
84 108
70
E. histolytica
G. intestinalis
TOTAL
Certaines espèces sont plus fréquentes à une période de l'année ainsi E.
histolytica est isolée de façon plus importante en Novembre, G. intestinalis en
Avril, Octobre et en Mai, E. coli en Septembre, Cryptosporidium en Avri1 et
c'est au mois de Mai, Juin, Juillet, Août qu'on isole les autres espèces.
59
- Au total 3942 examens parasitaires effé6tûés durant l'an 2000 dont:
o
+ 3111 sont négatifs ( absence de parasites).
o
+ 831 ont présenté au moins un parasites
- Panni les 831 examens parasitaires positifs :
o
+ 735 soit 88,5% mono parasités
o
+ 96 soit Il,5% poly parasités
Tableau 16: La répartition mensuelle des examens parasitaires négatifs
(EP-) et mono parasités et poly parasités de l'année 2000 :
Mois
EP(-)
Janv Fév Mars
Avr
Mai
Juin
JDet
Août
204 248
237
226
395
343
325
228
Sept Oct Nov Dec Total
280 252
271 133 3142
Mono
parasités
48
66
73
70
72
74
58
35
43
53
87
56
936
Poly
parasités
-
7
13
2
1
9
19
3
11
15
10
6
96
60
b) - Gouttes épaisses:
-
Sur 28 gouttes épaisses pratiquées, 3 étaient positives par la présence
de Plasmoduim falciparum.
La répartition mensuelle des résultats est donnée dans le tableau suivant :
Mois
Nombre total de
gouttes épaisses
Nombre de gouttes
épaisses positives
JANVIER
-
-
Février
5
Mars
1
-
Avril
2
-
Mai
4
-
Juin
1
-
Juillet
5
1
Août
4
1
Septembre
3
-
Octobre
2
1
Novembre
1
-
Décembre
-
-
28
3
TOTAL
Pourcentage de positivité = 10,71 0/'0
- On a 3 cas positifs, il stagit :
o
o
2 marocains ayant séjournés en Côte d'Ivoire
Une étudiante d'origine sénégalaise
- Ces résultats confirment exclusivement que le Plasmoduim falciparum est
actuellement un parasite d'importation au Maroc.
fll
~
- Examens d'urines:
Tous les examens d'urines effectués à la recherche de parasites notamment
schistosoma haematobuim étaient négatifs.
..!D - Recherche de leshmanies :
-
Sur 43 recherches de leshmanies pratiquées, 9 étaient positives.
- La répartition mensuelle des résultats est donnée dans le tableau suivant
Nombre de Leshmanies positifs
Mois
Nombre de Leshmanies
Total
Janvier
5
2
Février
3
1
Mars
3
3
Avril
1
Mai
6
Juin
5
Juillet
4
Août
3
Septembre
3
Octobre
4
Novembre
4
Décembre
2
-
TOTAL
43
3
4
Leshmanies
cutanées
Leshmanies
viscérales
1
-
-
Pourcentage de positivité = 16.3%
el - Autres examens parasitologiques:
14 recherches de Sarcoptes scabiei = 2 cas positifs
- 26 recherches de parasites dans le liquide pleural = Négatives
- 3 recherches de parasites dans du pus d'abcès hépatique = Négatives.
- 35 recherches de scolex et crochets de T. échinocoque dans des
vomiques = 1 seul cas positif par la présence de crochets dans le liquide
d'aspiration bronchique
1 recherche de parasites dans le liquide biliaire = Négative.
(;?
VII - 3 - Bilan global des examens parasitologigues et leur répartition
selon les services :
Tableau 17 : La répartition globale des examens parasitologiques selon les
services durant l'année 2000.
K.A.O.P
SPECIALITES
G.E
URINES
AUTRES
Chirurgie
117
1
-
Pédiatrie
621
432
3
10
6
-
8
6
13
339
26
22
13
-
-
2
2
-
-
-
9
15
-
-
-
28
103
1
1
-
3
-
118
12
135
3
-
-
-
-
-
2
2
11
56
3
3
4
-
-
2
1
-
-
-
-
-
-
-
2
-
-
-
Externes
1879
6
1
8
TOTAL
3942
28
10
90
M. infectieuse
Gastro-entérologie
Réanimation
Pneumologie
Maternité
Endocrinologie
Hématologie
Néphrologie
Cardiologie
Dermatologie
Rhumatologie
Laboratoire
Cancérologie
Traumatologie
Brûlés
- La répartition globale par service montre que la pédiatrie, M.infectieuse,
Gastro-entérologie
sont
les
parasitologiques surtout des selles.
plus
grands
pourvoyeurs
d'examens
VIII- ANALYSE DETALLEE DES EXAMENS MYCOLOGIQUES
DURANT L'ANNEE 2000
VIII-I Examens mycologigues effectués par mois et par an :
Durant l'année 2000, le laboratoire de Parasitologie-Mycologie a effectué
1559 analyses mycologiques ainsi reparties :
-
341 soit (21,9%) examens d'ongle orteils (00)
-
128 soit (8,2%) examens d'ongle doigts (OD)
-
154 soit (9,9%) examens de cuir chevelu (CC)
-
191 soit (12,2%) examens de squames
61 soit (4%) examens de plis
-
684 soit (43,9%) divers.(D)
Tableau 18 : Nombre mensuel d'examens mycologiques effectué en 2000
Mois
CC
OD
00
SQUAMES
D
PLIS
TOTAL
Janv.
19
12
15
6
4
47
103
Févr.
24
9
15
10
6
69
133
Mars
27
17
12
22
8
43
129
Avril
30
10
12
11
8
26
97
Mai
35
16
17
20
8
69
165
juin
44
11
17
30
9
71
182
Juillet
38
9
10
12
1
69
139
Août
18
5
5
15
1
45
89
Sept.
28
8
10
8
3
78
135
Oct.
28
7
Il
19
5
96
126
Nov.
27
11
14
16
7
57
132
Déc.
23
13
16
22
1
54
129
341
21,9°/'0
128
8,2%
154
9,90/0
191
12,2°/'0
61
40/0
684
43,90/0
1559
TOTAL
• En moyenne 129 analyses mycologiques ont été effectuées par mois
• Le maximum a été réalisé en juin (11,7%)
• Le minimum en août (5,7%).
h4
- LES DIVERS
Il s'agit des examens suivants:
84 examens mycologiques de LCR ( Liquide céphalo rachidien) ;
-
187 hémocultures (HC) ;
83 examens de biopsies cutanées (BC) ;
-
131 prélèvements de muqueuses ( PM ) ;
61 examens d'urines ;
82 examens d'aspiration bronchique (AB) ;
20 examens de pus ;
18 scotch test cutané (STC) ;
.
Autres examens mycologiques ;
Tableau 19: Nombre mensuel d'examens mycologiques de divers effectué
en 2000
Mois
LCR
HC
BC
PM
Urines
AB
Pus
STC
Àutres
-
Janv.
5
8
13
6
2
8
4
1
Févr.
8
23
6
11
4
9
2
3
Mars
7
13
6
3
1
11
1
0 - Grattage de la cornée
Avril
7
8
2
3
1
5
0
0
Mai
Il
21
13
6
6
9
0
0 - 3 Sérosités cutanées
Juin
Il
23
7
10
9
6
0
4 - 1 Sérosité cutanée
Juillet
5
21
10
11
12
6
1
2 - 1 Sérosité cutanée
Août
3
13
7
7
6
4
3
Sept.
6
16
10
27
7
4
5
3
Oct.
9
19
5
10
4
5
2
1 - Crachat
Nov.
5
11
3
22
8
4
0
- Sourcil
0 - Cil
- Grattage de la cornée
Déc.
TOTAL
7
84
3
15
1
11
2
187 85
131
61
82
20
11
65
18
- 2 Sérosités cutanées
- 1 Crachat
-
-
18
VIII -2 Examens mycologigues selon leur origine:
Dés 1559 examens mycologiques pratiqués:
-
731 soit (47%) analyses effectuées à titre externe
-
828 soit (53%) analyses effectuées à titre hospitalier
Tableau 20 : Représente le nombre global d'examens mycologiques pratiqués à
titre hospitalier et à titre externe effectué durant 2000.
MOIS
EXTERNES
HOSPITALISES
TOTAL
Janvier
41
62
103
Février
69
64
133
Mars
57
72
129
Avril
50
47
97
Mai
83
82
165
Juin
99
83
182
Juillet
69
70
139
Août
20
69
89
Septembre
75
60
135
Octobre
51
75
126
Novembre
48
84
132
Décembre
69
60
129
731
828
1559
TOTAL
(47%)
(53%)
66
VIII-3 -Examens mycologigues selon les services:
Tableau 21 : Répartition globale des examens mycologiques selon les
services durant l'année 2000.
SERVICES
00
OD
PLIS
CC
SQU
D
-
-
9
-
-
-
-
-
2
2
1
1
9
-
-
1
-
60
2
1
5
4
2
78
GASTROLOGIE
1
-
-
2
-
2
PNEUMOLOGIE
1
1
8
ENDOCRINOLOGIE
6
-
1
4
3
HÉMATOLOGIE
1
-
-
-
29
NEPHROLOGIE
2
1
-
-
1
8
DERMATOLOGIE
171
82
79
39
87
89
RHuMATOLOGIE
5
4
-
1
1
PERSONNEL
-
-
6
LABORATOIRE
1
2
5
CARDIOLOGIE
1
1
-
2
5
ANAPATHE
-
-
-
-
-
-
1
EXTERNES
148
38
64
13
93
375
TOTAL
341
128
154
61
191
684
CHIRURGIE
-
-
NEUROLOGIE
2
-
MATERNITE
-
PEDIATRIE
-
-
-
1
REANIMATION
-
M. INFECTIEUSE
1
- La répartition globale par service montre que les services de dennatologie et de
réanimation sont les plus grands pourvoyeurs d'examens mycologiques.
67
vIII -4 Résultats globaux des analyses mycologigues:
Examen direct:
ANALYSES
00
OD
CC
E.D+
85
22
31
71
E.D -
256
106
123
TOTAL
341
128
154
ANALYSES
00
OD
CC
C+
90
39
26
40
24
112
331
C-
251
89
128
151
37
572
1228
TOTAL
341
128
154
191
61
684
1559
SQUAMES PLIS
DIVERS
TOTAL
15
123
293
174
46
561
1266
191
61
684
1559
Culture:
SQUAMES PLIS
DIVERS TOTAL
Examen direct et culture :
ED+
C+
EDC+
ED+
CEDCTOTAL
00
OD
CC
SQUAMES
PLIS
DIVERS
TOTAL
52
15
23
16
13
62
181
36
24
3
24
11
43
141
33
7
8
1
2
44
95
220
82
120
150
35
535
1142
341
128
154
191
61
684
1559
Les résultats globaux des analyses mycologiques montrent:
- 293 soit 18,8 % d'examens directs positifs
- 331 soit 21, 2 % de cultures positives
- 26,7 % de positifs par Examen direct et par culture
68
. :~,.i.~~j,
~,:';.
TABLEAU DES LEVUROSES
~
Biopsies
Champignons
identifiés
Ongles 1Cheveux 1 Peau
53
C albicans
o
1
i
rua
V!fd>
l
1
Œ1q>
20
2
I--'-------....--------+-------+------+----+-----+---.-.-.---+-----~+
35
C. non albicans
o
9
.------.----------+--.----t-----+-----t---+-------+-.-~-
L. non candida 1 •
1 1------------+---+-C. tropicalis
1
J1IIrro
1
P.V
I-P.-bucca-I
Urines
He
10
12
8
5
. -----·---..-f---·-- -+--..- ---t-.--------j-
Pus
2
,.
LCR
Anal
A.
bronchique
Nasal
4
2
·-----I---·----+-----·--+-·----~-------
.1
. +-------.-/----.---+.------+.. - ----+--.--.-.---+------+-------+------+----t------
1 2
1
----t-----t-.----j----
1
-----t-------t-------t"----t-"t-..- - j - - - - - r - - j - - -
1
Il
--.-----.. --.----.----..-..-+--.. . . .-.------.. + --------/-----.----./--...-.------1----------..-.-+-.-------..-.-..+---.--..---.----/-.-..- . -. .--.----+--.. .-.. ------.-+----.---..--.-+--.---------.+..--.-----.---.j---.-..--.-.---.....-+..--.. -.- . -·-..-·..-1---·--------+-----·..--
J
c.parapsilosis
5
----------.------ . -----------J.----..--+---.~------ . . -+_.---.--.-.-_I__-----.-+.--.----+---.--.-----+-.--.--.---.-+----.---.----.--+------·-'--+-..·-----..-..-I----..--......-+-------·---+-·---·----~- . - ---
~_~.~~orman~_._.J_ _~J-.-~---.-L_~J. --~-l--~---_l---~ . -J--.-~--j--~-.-L~---.-L---~-_l--J-·-.J-.-_5 ---l---------+---------+-.----3
1-~~!~~~~ata__J-----~----L---~---.--L---~-.--.l--~----l-~.-. -L--~ . -L---:..--L----~---+--.-----.__+_-----.-----.+-------.-+--.-.-----.--I--------.--l-.-.--.---.--~- . --.. _ . . .__
C. humicola
2
---....·------------·4-----·--------+..·-------·+--·--·-·-+.--.---+.----.-.. --+-----.-t------..--+---------.+---------------+.-...-----..-+-.-----..-. +.--.----------+--.-.-------+-----.-..--/---.-.-.-.-.--+-..-----...----
C.guillier
mondii
Tableau 22 : Nombre de levuroses identifiés durant l'an 2000
Les candidoses représentent 71°,/0 dont l'espèce Candida albicans domine largement puisqu'elle constitue 58% des souches
isolées. Elle est suivi de Candida non albicans (23%)
L'espèce Candida tropicalis vient en troisième position (7%).
Les autres souches ont été rarement rencontrées.
69
1
TABLEAU DES DERMATOPHYTES
~ 1 Chewux 1 Pœu
Champigoons
identifiés
Urines 1 HC 1 Pus 1 LCR 1 Anal 1Nasal 1 b~que
23
25
T. rubrum
---.-----+--.-.+---.---I-.---+--+----+-..-.~- ..---+..--t_.."--.--+---.--+----+---+--+----f--.-+--..-.-..-.-.
16
T. violaceum
- - -..-----~-·--+--·-·--l·---+--+- . - _+_-·-·-+--_+---+------l_---t_.--1---+---f-..---+---+--,,-.-.--
8
T.M.canis
--------.---..-.---.--.--/-------+--.-..-+---.-J.------I--.-.--+..--.-.-+..-.-...-+------.-+-----+"---f--.-.-t--.--f---.-+-------t-..------
De""atophyte
atypique
2
3
---_._-------1------+....---_...----1.-._._.-+-_.--+..-----+--. 1
1
. -+.--.----..---+--.--+--.----~---""+-.-+----+--.+.---.-" . -
T. interdigitalis
t---
1
--+-----+----+.--I-.----+--.-+-.---+--+-.----+----------+----+-....-+---..-}---..-+-----1..-.-..-.-..- ..--
T.
mentagrophytes
Tableau- 23 : Nombre .de dennatophyties identifiés.durant Ean .2000.
Les dennatophyties constituent 28,2% dont l'espèce T rubrum représente 59% des souches de champignons identifiés, c'est
l'espèce de dennatophyte la plus fréquemment isolée.
T. violaceum vient en 2éme position (21 0/0)
Les autres souches ont été rarement rencontrées.
70
TABLEAU DES MYCOSES PROFONDES ET ASSOCIATIONS
Champignons identifiés 1 ~es 1 Cheveux 1 Peau
AspergiUlls
fumigatus
-- ----.-..--.-- -.---..- --1---.-- -./- -
.._.__
__._
__
__
~que
5
-..-+..--··
· ·-·..l---···+---··-·-·..+·-·--.J.- ·
Phialophol'a
pedrosor
.....__.
Urine 1 HC 1 Pus 1 LCR 1 Anal 1 Nasal 1
_..- - 1 -
-~-.--
-+----+----+--------+---.-
--~---
. -I-..--
-- -.-.j....------+..-----__J....---
-.j....- --..-+-
--J.
-.--+--- - -.-
. -_I_--.----..j._ --.---f·-·---·---+-..--+..· -·--+---l------l--..·-·---·--
Spol'othrlx schenkU
_ __ .~ __ ~._._.
.
..
_-.~
-._-.-.~.N--_H_-_
-+-._-_.._ _ _--+-_.--- _-_
-t-
_
--4
._..~--
..
_
-H.....-..&--- -
..L.-.- _•. _-J_
_.-+---- - -"" ---
,.-+ -.-.,.-..-.. ~
_.._•..-•.._ ,
-
C.albicans
+
A. fumigatus
___
__._..
_.._
_.__ ._~ _
- ..-.1---_ _.__._-_
_
-+-.__
-
..-.
1"••__
-
•••__ ..,··,
·
·--1---···
·_.._ · ..
C.albicam
+
S.schenkii
.~~
__._._
.._.
__
.H~_H
.._.H._.._
_.._ H_ H__ H.,._ _ __
_._.._
__
_-+._._· · ..+-.._._.__..__--'_.._
~·
_.Io _ .. _~. __ •
_.._·
_·__·_·_..·_
_·-_.- --
D.atypique
+
T. mentagrophytes
Tableau 24 : Nombre de mycoses profondes identifiées durant l'an 2000
En ce qui concerne les mycoses profondes on a noté :
- Aspergillus fumigatus (6 cas)
Phialophora pedrosoï (1 cas)
Sporothrix schenkii (1 cas)
Nous avons également noté 3 types d'association de mycoses:
Candida. albicans + Aspergillus. fumigatus
Candida. albicans + Sporothrix schenkii
.
- Dermatophyte atypique + Trichophyton mentagrophytes
71
__
_
_ _-..j.- _
_
~
.'.
,
.
'
* Les parasitoses intestinales:
D'après notre étude sur 3942 selles examinées, 831 renfennaient des
parasites intestinaux soit un pourcentage de 21,1% de sujets porteurs d'un ou de
plusieurs parasites intestinaux.
Ce taux de prévalence, comparé à d'autres travaux menés par de nombreux
auteurs, montre des variations selon les localités, notamment au Maroc.
- A Casablanca en 1978 Laraqui H.(33) avait mené une enquête chez 3247
personnes dont 948 étaient parasitées, soit un taux de prévalence de 29,2%, résultat
supérieur au notre.
-A Fès, El Messaoudi M.(24) avait enregistré un taux de prévalence de 9,4%
inférieur au notre. 5947 examens coprologiques ont été effectués par la méthode de
l'examen directe pendant une période de trois ans (1985-1988) au laboratoire
provincial de 1'hôpital Ghassani.
-En Tunisie Ayadi A. (4) sur une période de deux ans (1988-1990) dans le
CHU de Sfax ont effectué 5898 examens parasitologiques des selles par les
méthodes d'examen direct d'enrichissement et de coloration. Le nombre de sujets
parasites était de 1946, soit un taux de prévalence de 32,9%.
Par contre un taux plus élevé de 53,4% a été enregistré par Thiers G. et
Trabelsi M.(43) en 1974 en milieu scolaire à Cap-Bon (Tunisie).
Ils ont examiné 2698 échantillons dont 1441 étaient positifs. La technique
d'enrichissement utilisée était celle de Ritchie.
Au Sénégal, dans la vallée de Sandougou, Diao F.(18) a effectué en 1999
une étude portant sur· la prévalence des endemies parasitaires (paludisme,
bilharzioses, parasitoses intestinales), elle a trouvé une prévalence de 9% de sujets
porteurs d'un ou de plusieurs parasites intestinaux.
72
D'autres auteurs sénégalais ont obtenu des prévalences qui sont supérieures,
notamment Atlia M L.(1) en 1997 qui a noté une prévalence de 43,1% des sujets
examinés au cours d'une enquête effectuée dans les villages riverains du lac de
Guiers.
Dans la Vallée fossile du Salown, Bâ M.(5) a enregistré un taux de 22,3%.
-Au cours de notre enquête nous avons noté un cas de polyparasitisme chez 96
personnes sur 831 examens positifs effectués soit un taux de prévalence de 2,4%.
.Lahmani M.(32) lors de son étude faite à l'hôpital d'enfants à Casablanca pendant
la période de 1984-1988 avait examiné 729 enfants dont 319 sont parasités et 79
étaient polyparasités. Rhari N.(39) avait aussi relevé des cas de polyparasitisme à
l'hôpital militaire Med V de Rabat. 846 cas de polyparasitisme sur 5898 examens
positifs, soit un taux de 5,6%.Enfin Diawara L.(19) et Ndiaye N.P.(35) ont
également signalé des cas de polyparasitisme au Sénégal.
Dans notre série, la répartition globale des parasites montre une prédominance
des protozoaires.
•:. Les parasites les plus répondus ont été :
Entamoeba histolytica :
Avec un taux de prévalence de 12,7%, E histolytica constitue dans notre série
le protozoaire intestinal le plus fréquent.
Des études antérieures ont également montré que l'espèce E. histolytica est le
parasite le plus fréquent dans l'étude d'El Jebbari A. (25) qui a effectué une
enquête sur 1863 sujets pendant la période de 1976-1978 à l'hôpital CHU Ibn
Rochd de Casablanca et dont 431 étaient parasités.
Elle occupe par contre la 2ème place dans l'étude de Bennani H.(8) avec un taux
de prévalence de 8,1%.
73
Giardia intestinalis
La Giardiase vient en 2 ème position avec un taux de prévalence de 5,2%,
Basset D. (6) , Bourée P. (10) et 1biers G.(43) trouvent respectivement 28%,
19,6% et 17,6%.
Ces chiffres sont plus élevés que les nôtres.
Toute fois la giardiase reste une parasitose essentiellement rencontrée dans nos
régions où les conditions défectueuses favorisent la circulation des kystes.
La Giardiase tient sa gravité au fait qu'elle occupe le premier rang des
malabsorptions d'origine parasitaire d'après Aubry P.(2) à la suite d'une étude
publiée en 1986
Entamoeba coli
Avec un taux de prévalence de 3,2% ce qui est comparable à celui obtenu par
1biam M.(42) (3,1 %) dans la région de Fatick à Touba Khelcom.
C'est l'espèce la plus répondue en milieu rural d'après les résultats des enquêtes
effectuées dans le pays du Sénégal.
Cette présence parfois à des taux de prévalence importants dans des zones où
n'existent pas de cultures maraîchères a amené à considérer E. coli comme un
indicateur de la contamination fécale de l'eau de boisson.
Cryptosporidium :
La cryptosporidiose occupe la quatrième position dans notre étude avec un taux
de prévalence de 1%.
Ce taux est supérieur à celui trouvé par Bennani H.(8) (0,3%)
Gendrel D. (28) signale que la première description humaine de cette
parasitose date seulement de 1976 et que c'est surtout l'exploration des malades
atteints du SIDA où cryptospiridium donne une diarrhée intense et chronique qui a
permis des nouvelles identifications.
Il a noté également que l'importance du pouvoir pathogène de cryptosporidium
reste mal connu, il existe de nombreux porteurs sains mais le parasite semble plus
souvent retrouvé chez les enfants diarrhéiques surtout avant un an.
74
Chilomastix mesnili :
Cette espèce représente la cinquième position dans notre étude avec un taux de
prévalence de 0,7 0/0.
•:. Les espèces les plus rares sont :
Blastocystis hominis:
Avec un taux de prévalence de 0,2 % .
Trichomona intestinalis :
Le taux de prévalence noté dans notr~ étude est de 0,2 % . La rareté de cette
parasitose au Maroc est également men~ionnée dans la thèse de Bennani H.
en 1993 à Casablanca (0,8 %).
La trichomonase à T. intestinalis est ~n général une affection bénigne.
Pseudolimax butschlii :
Représente le même pourcentage que T. intestinalis 0,2%.
Isospora belli: avec un taux de prévalepce trop faible 0,07 %.
•:. Concernant les helminthes, ils ne constituent dans cette étude que 2% des
parasites identifiés: (0,2%) pour E. vermicularis, H. nana (0,1 %),
T. saginata (0,1 %).et A.
lumbric~ides
avec (0,02%).
Enterobius vermicularis :
Avec un taux de prévalence de 0,2 ~, l'oxyure constitue une parasitose rare
d'après notre étude ce qui confirme les résultats obtenus au cours des enquêtes
antérieures menées au Maroc par EL Messa<?udi M. à Fès (24) (0,3 %) et en
Tunisie par Thiers G. (43) (0,4 %)
Les prévalences les moins faibles sont observées par PENALI K.L.(37) en côte
d'Ivoire (2,1 %) et Bourée P.(lO) à Paris (1,4 %).
C'est une oxyure qui mérite une
atte~tion
particulière à cause de sa ténacité et de
l'existence d'éventuelles complications telles que: L'insomnie, L'eczéma
;
perianal. ..
7S
Taenia saginata :
Le taux de prévalence observé est de 0,1 %.
Des prévalences supérieures sont rencontrées par: Diawara L.( 19) et
Diack P.A.(16) avec 0,8 %.
Hymenolepis nana:
Le taux de prévalence de ce nématode dans notre série est de 0,1 %, Diouf
C.G.(20) avait trouvé un taux de 12,3 %.
Dans tous les cas, cette verminose ne doit pas inquiéter étant donné sa
symptomatologie bénigne et sa guérison spontanée s'il n'y a pas de phénomène
d'auto infestation.
Ascaris lumbricoides :
Le taux de prévalence est de 0,02 % pour l'ensemble des sujets examinés, ce
qui est extrêmement faible par rapport à des études menées antérieurement au
Maroc par Fehri M.et Coll.(25) à Casablanca (21 %) et Chentoufi M.(13) qui
a trouvé un taux de prévalence de 17,5 % au cours d'une étude menée chez 500
personnes dans la ville de Taza en 1980 où seul l'examen direct a été effectué.
D'après d'autres enquêtes menées par Diallo S. et Coll.(17) à Bakel (Sénégal) en
1984 et Quittacon F. et Coll.(38) en 1973 à Abidjan (Côte d'Ivoire).
Cette parasitose semble plus fréquente en zone urbaine qu'en zone rurale.
En ce qui concerne le rôle- pathogène de l'Ascaris, BassetD. (6) au cours
d'une enquête menée en 1984 en Bolivie chez 100 enfants indiens scolarisés
et dont l'examen direct et le MlF concentration ont été utilisés à moitié a montré
que la présence de 26 Ascaris chez un même individu provoque :
> Une perte de l'apport journalier en protéines de 10 %
}>
Des perturbations nutritionnelles sont beaucoup plus graves chez l'enfant.
Par ailleurs, Gaxotte P. (27) a remarqué qu'en dessous d'un certain nombre de
parasites, l'affection devient asymptomatique, mais certains accidents dus à la
migration des vers adultes peuvent se produire en l'absence d'un taux
d'infection élevé.
76
* Paludisme:
Le diagnostic a été confirmé par la mise en évidence d'hématozoaire sur un
frottis ou une goutte épaisse après coloration par le May Grunwald Giemsa.
Sur 28 gouttes épaisses effectuées, 3 cas étaient positifs avec la présence de
Plasmodium falciparum avec un pourcentage de positivité de 10,7%.
Il s'agit:
• Deux marocains ayant séjournés en Côte d'Ivoire
• Une étudiante d'origine sénégalaise.
- Ces résultats confmnent la rareté du paludisme qui est actuellement une
maladie d'importation au Maroc.
* Bilharzioses urinaires:
Tous les examens d'urines effectués étaient négatifs, ils n'ont pas permis de
mettre en évidence les œufs de Schistosoma haematobium.
Ceci confirme la rareté de la bilharziose qui est une maladie en VOle
d'éradication au Maroc.
* Leshmanioses :
Avec un pourcentage de positivité de 16,3%, les leshmanioses constituent
des affections assez fréquentes au Maroc ou il existe 2 formes :
Leshmanioses cutanées (7%) et Leshmanioses viscérales (9%)
* Les mycoses:
D'après notre étude 1559 examens mycologiques ont été pratiqués ce qui a
permis d'isoler:
~
71 % des candidoses renfermaient 9 espèces dont les plus fréquentes
sont:
- L'espèce C. albicans dans 58%des souches isolées.
- Elle est suivi de Candida non albicans (23%)
- L'espèce C. tropicalis vient en troisième position avec un pourcentage de
7%
77
- Les autres souches ont été rarement rencontrées.
D'une façon générale, C.albicans occupe toujours la première place parmi les
espèces de Candida isolées.
Ainsi LIFSON AR. , et AL. ont démontré la prédominance de C. albicans avec
un taux de prévalence de 27%.
Concernant les dermatophytes, ils représentent 28,2% des champignons
isolés:
-
T.rubrum est l'espèce la plus fréquemment isolée (59%)
-
T. violaceum vient en deuxième position avec un pourcentage de 21 %
- Les autres espèces de dermatophytes ont été rarement rencontrées.
Ainsi DUPONT B. a trouvé chez des malades séropositifs 18 à 300/0 des cas de
dermatophyties et que T. rubrum était le plus souvent isolé
~
En ce qui concerne les agents de mycoses profondes, trois ont été
rencontrés :
- Aspergillusfumigatus (6 cas)
- Phialophora pedrosoi (1 cas ) et Sporothrix schenkii (1 cas)
~
Nous avons noté 3 types d'associations de mycoses:
- Candida albicans + Aspergillus fumigatus.
- Candida albicans + Sporothrix schenkii
- Dermatophyte atypique + Teigne mentagrophyte.
78
CONCLUSION:
Les parasitoses et les mycoses sont des affections cosmopolites dont
le développement est particulièrement favorisé par le climat chaud et humide, le
manque d'hygiène et les conditions d'habitat et de vie précaire dans les pays du
tiers -monde.
Elles y constituent un problème majeur de santé publique par le nombre
d'individus qu'elles frappent et par leur retentissement sur l'état de santé des
populations.
Notre étude rétrospective de l'année 1996 à 2000 effectuée au Maroc dans un
laboratoire de Parasitologie-Mycologie de l'hôpital Ibn ROCHD de Casablanca
nous a permis d'obtenir les résultats suivants:
~
3942 examens de selles dont 831 renfermaient des parasites intestinaux, soit un
taux de prévalence de 21,1 % de sujets porteurs d'un ou plusieurs parasites
intestinaux.
- La grande majorité de sujets parasités à été suivi à titre hospitalier surtout au
niveau des services de Pédiatrie, Gastroenterologie, Maladies infectieuses
- Nous avons aussi noté la prédominance des protozoaires intestinaux
- 96 cas de polyparasitisme sur les 3942 examens effectués ont été répertoriés soit
2,4 %, ils concernent deux, trois, voir quatre parasites
- 14 espèces de Parasites intestinaux ont été identifiées dont les plus fréquentes
sont:
- E. histolytica (12,7 %).
- G. intestinalis (5,2 %).
- E.coli (3,2 0/0).
~
Seuls 10 examens d'urines ont été demandés ,et nous n'avons pas observé de
cas de bilharziose urinaire puisque sur les dix personnes examinées, nul n'est
porteur d' œufs de Schistosoma haematobium.
79
~
28 gouttes épaisses seulement ont été effectuées dont, trois étaient positives
avec la présence de Plasmodium falciparum.
~
43 recherches de leshmanies ont été effectuées avec un pourcentage de
positivité de 16% dont 7% de leshmaniose cutanée et 9% de leshmaniose viscérale.
- En ce qui concerne les agents de mycoses profondes, trois ont été rencontrés
il s'agit de :
- Aspergillus fumigatus (6 cas)
- Phialophora pedrosoi (lcas) et Sporothrix schenkii (1 cas)
RO
Au vu de ces résultats, nous voulons faire certaines recommandations
destinées à améliorer les examens parasitologiques et mycologi.ques sur le
plan quantitatif et sur le plan qualitatif
--» Sur le plan quantitatif
Nous avons constaté une baisse du nombre d'examens parasitologiques et
mycologiques effectué qui sont passés de 9274 soit ( 21,8%) en 1996 à 7766 soit
( 18,3%) en 2000 soit une diminution de 1508 soit un pourcentage de( 3,5% )
[tableau 11].
Ceci pourrait s'expliquer par l'augmentation du coût des examens et aussi par
la construction de nouvelles formations sanitaires dans les environs de l'hôpital
.C'est pourquoi nous recommandons :
Une baisse des prix des analyses.
--» Sur le plan qualitatif
Nous avons constaté :
- L'étroitesse des locaux ce qui ne permet pas d'isoler les examens
parasitologiques des examens mycologiques.
- L'absence d'un système de contrôle de la qualité des analyses.
C'est pourquoi nous recommandons :
1) L'agrandissement des locaux avec création d'une salle pour les examens
parasitologiques et une autre pour les examens mycologiques.
2) La mise en place d'un contrôle de qualité en collaboration avec des
laboratoires externes de référence.
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