Erfassung der Apoptoserate von Lymphozyten und Granulozyten
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Erfassung der Apoptoserate von Lymphozyten und Granulozyten
Aus der Neurologischen Klinik des St. Josef-Hospital Bochum – Universitätsklinik – der Ruhr-Universität Bochum Direktor: Prof. Dr. med. H. Przuntek Erfassung der Apoptoserate von Lymphozyten und Granulozyten und Messung von Zytokinen, Adhäsionsmolekülen und Entzündungsparametern im Serum von Patienten mit akutem ischämischen Hirninfarkt in Korrelation zum klinischen Verlauf in der postakuten Phase Inaugural-Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Medizin einer Hohen Medizinischen Fakultät der Ruhr-Universität Bochum vorgelegt von Christos Krogias aus Wissen 2004 2 __________________________________________________________ Dekan: Prof. Dr. med. G. Muhr Referent: Prof. Dr. med. H. Przuntek Korreferent: Priv.-Doz. Dr. med. P. Faustmann Tag der mündlichen Prüfung: 07. Dezember 2004 3 Meinen Eltern gewidmet. Ekaterina Krogia, geb. Zioga, aus Sykorachi / Alexandroupolis und Dimitrios Krogias aus Thalassia / Xanthi. „ Wir riefen Gastarbeiter und es kamen Menschen “ Max Frisch 4 Inhaltsverzeichnis Abkürzungsverzeichnis .................................................................................... 6 Tabellenverzeichnis .......................................................................................... 8 Abbildungsverzeichnis ..................................................................................... 9 1 Einführung ........................................................................... 10 1.1 Das Krankheitsbild des ischämischen Hirninfarktes .............................. 11 1.1.1 Definition und Epidemiologie ................................................... 11 1.1.2 Risikofaktoren und deren Behandlung ...................................... 12 1.1.3 Die Therapie des akuten ischämischen Hirninsultes .................. 14 1.1.3.1 Therapie in der Akutphase ................................................. 14 1.1.3.2 Sekundärprophylaxe ........................................................... 1.1.3.3 Lysetherapie ....................................................................... 17 1.1.4 1.2 16 Die ischämische Penumbra ........................................................ 18 Immunologische Grundlagen ................................................................ 19 1.2.1 Apoptose .................................................................................... 19 1.2.2 Zytokine .................................................................................... 23 1.2.2.1 Interleukin-1β . ..................................................................... 23 1.2.2.2 Interleukin-6 ......................................................................... 25 1.2.3 Interzelluläres Adhäsionsmolekül – 1 ( ICAM-1 ) .................... 26 1.2.4 Akute Phase – Proteine . ............................................................. 27 1.2.4.1 C–Reaktives Protein (CRP) .................................................. 27 1.2.4.2 Fibrinogen ........................................................................... 28 2 Methodik ............................................................................... 29 2.1 Übersicht zum experimentellen Vorgehen ............................................. 29 2.2 Auswahl der Patienten ............................................................................ 30 2.3 2.2.1 Einschlußkriterien ...................................................................... 30 2.2.2 Ausschlußkriterien ..................................................................... 31 Graduierung des klinischen Verlaufes ................................................... 32 2.3.1 European Stroke Scale ………………………………………... 32 2.3.2 National Institutes of Health Stroke Scale ……………………. 32 5 2.4 2.5 Nachweis von Apoptose .......................................................................... 33 2.4.1 Prinzip der Durchflußzytometrie ................................................. 33 2.4.2 Isolierung und Markierung von peripheren Leukozyten ............. 37 2.4.3 FACScan® - Auswertungsprozedur ............................................ 39 Bestimmung von Zytokin- und Adhäsionsmolekülkonzentrationen ....... 40 2.5.1 Prinzip eines nicht-kompetetiven, direkten EIA .......................... 40 2.5.2 Probengewinnung und –bearbeitung ........................................... 42 2.5.3 Materialien und Testdurchführung ............................................. 42 2.6 Messung der CRP- und Fibrinogenkonzentration ................................... 46 2.7 Statistische Datenanalyse ........................................................................ 46 3 Ergebnisse ............................................................................. 47 3.1 Aufteilung der Patienten nach klinischem Verlauf ................................ 47 3.2 Apoptose peripherer Lymphozyten im Vergleich .................................. 49 3.3 3.4 3.2.1 Lymphozyten-Gesamtpopulation ............................................... 50 3.2.2 CD4+ - Lyphozyten 3.2.3 Granulozyten ............................................................................... 52 ................................................................... 51 Zytokine und Adhäsionsmoleküle .......................................................... 53 3.3.1 Interleukin-1β ............................................................................. 53 3.3.2 Interleukin-6 ............................................................................... 54 3.3.3 Interzelluläres Adhäsionsmolekül-1 (ICAM-1) ......................... 55 Akute-Phase-Proteine ............................................................................. 56 3.4.1 C-Reaktives Protein (CRP) ........................................................ 56 3.4.2 Fibrinogen ................................................................................... 57 4 Diskussion .............................................................................. 59 4.1 Apoptose nach cerebraler Ischämie ......................................................... 59 4.2 Inflammatorische Reaktion nach cerebraler Ischämie ............................ 62 5 Zusammenfassung ................................................................. 69 6 Anhang ................................................................................... 70 7 Literaturverzeichnis .............................................................. 73 6 Abkürzungsverzeichnis A. Arteria Abb. Abbildung ACM Arteria cerebri media ACTH Adrenocorticotropes Hormon AK Antikörper APP Akute Phase Proteine ASS Acetylsalicylsäure Ca2+ Kalziumionen CBF Cerebral Blood Flow cCT Cranielle Computertomographie CD Cluster of Differentiation CRH Corticotropin-Realising Hormon CRP C–Reaktives Protein DISC Death Inducing Signaling Complex DNS Desoxiribonukleinsäure EASIA Enzyme-Amplified-Sensitivity-Immunoassays EDTA Ethylendiamintetraacetat EIA Enzyme-Immuno-Assay ESS European Stroke Scale FACS Fluorescence Activated Cell Sorter and Analyzer FITC Fluoreszeinisothiozyanat FL-Detektor Fluoreszenz-Detektor FSC Forward Light Scatter GF Growth Factor griech. Griechisch H2O2 Wasserstoffperoxid H2SO4 Schwefelsäure HDL High Density Lipoproteins HEPES 4-(2-Hydroxyethyl)-1-Piperazinethansulfonsäure HSF Hepatozyten-stimulierende Faktoren i.S. im Serum ICAM–1 Interzelluläres Adhäsionsmolekül–1 7 ICE Interleukin-1 Converting Enzyme IF Interferon IgG Immunglobulin G IL Interleukin Jh. Jahrhundert KHK Koronare Herzkrankheit LFA Lymphozyte Function-Associated Antigen λ Lambda = Wellenlänge MBP Mannosebindende Protein mg/l Milligramm pro Liter ml Milliliter µl Mikroliter n.s. Nicht signifikant NIHSS National Institutes of Health Stroke Scale NO Stickoxid PBS phosphate buffered saline PE Phycoerythin PE-Cy5 Phycoerythrin Cyanin-5 pg Pikogramm PG Prostaglandine RANTES Regulated upon activation, normal T-cell expressed and secreted rt-PA Recombinant Tissue Plasminogen Activator SAP Serumamyloidprotein SSC Side Light Scatter Tab. Tabelle TFH Thrombozytenfunktionshemmer TMB Tetrametylbenzidine TNF Tumornekrosefaktor TNF-R1 Tumornekrosefaktor-Rezeptor 1 TRAIL TNF-related-Rezeptoren U/min Umdrehungen pro Minute VCAM Vascular Cell Adhesion Molecule zDEVD-fmk N-Benzyloxycarbonyl-Fluoromethyl-Ketone ZNS Zentrales Nervensystem 8 Tabellenverzeichnis: Tab. 1: Schlaganfall - modifizierbare Risikofaktoren .............................. 13 Tab. 2: Grundsätzliche Unterschiede zwischen Nekrose und Apoptose ... 20 Tab. 3: Einteilung der Caspasen ............................................................... 21 Tab. 4: Akute-Phase-Proteine - Vergleich reaktionskinetischer Parameter 28 Tab. 5: Bestimmung der IL-1β-Konzentration im Serum ........................ 45 Tab. 6: Bestimmung der ICAM-1-Konzentration im Serum ................... 45 Tab. 7: Deskriptive Merkmale der beiden Vergleichsgruppen . ............... 47 Tab. 8: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Lymphozyten .... 50 Tab. 9: Verlauf der relativen Apoptoserate peripherer Lymphozyten .... 50 Tab. 10: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer CD4+ - Lymphozyten ................................................ 51 Tab. 11: Verlauf der relativen Apoptoserate peripherer CD4+ - Lymphozyten ............................................... 51 Tab. 12: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Granulozyten ... 52 Tab. 13: Verlauf der relativen Apoptoserate peripherer Granulozyten .... 52 Tab. 14: Verlauf der absoluten Konzentration von Interleukin-6 i.S. ....... 54 Tab. 15: Verlauf der Konzentration von IL-6 i.S. in Relation zum Ausgangswert .................................................... 54 Tab. 16: Verlauf der absoluten Konzentration von ICAM-1 i.S. .............. 55 Tab. 17: Verlauf der Konzentration von ICAM-1 in Relation zum Ausgangswert .................................................... 55 Tab. 18: Verlauf der absoluten Konzentration von CRP i.S. ..................... 56 Tab. 19: Verlauf der Konzentration von CRP i.S. in Differenz zum Ausgangswert .................................................. 56 Tab. 20: Verlauf der absoluten Konzentration von Fibrinogen i.S. ............ 57 Tab. 21: Verlauf der Konzentration von Fibrinogen in Relation zum Ausganswert ..................................................... 57 Tab. 22: Synopsis der Ergebnisse ............................................................. 58 Tab. 23: Die European Stoke Scale .............................................................. 68 Tab. 24: Die National Institutes of Health Stroke Scale ............................ 70 9 Abbildungsverzeichnis: Abb. 1: Schematische Zeichnung über die Veränderungen der Penumbra ............................................................................ 19 Abb. 2: Rezeptormediierte und nichtrezeptormediierte Apoptosewege ... 22 Abb. 3: Übersicht zum experimentellen Vorgehen .................................. 29 Abb. 4: Funktionsprinzip eines Durchflußzytometers ............................ 34 Abb. 5: Beispiel eines dot-plot Graphen . ................................................ 35 Abb. 6: Überlappung der Emissionsspektren von FITC und PE ............ 37 Abb. 7: Histogramm zur Selektion von CD4+Lymphozyten ................. 39 Abb. 8: Histogramme zur Bestimmung des Anteils apoptotischer Zellen Abb. 9: Prinzip eines nicht-kompetetiven, direkten 40 Enzym-Immuno-Assay ………………………………………… 41 Abb. 10: Prinzip des „Sandwich-EIA“ ..................................................... 41 Abb. 11: Exemplarisches Schema auf der Mikrotiterplatte Abb. 12: Beispiel einer Eichkurve ............................................................ 44 Abb. 13: Klinischer Verlauf beider Gruppen anhand der Schlaganfallskalen 48 Abb. 14: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Lymphozyten ... 50 Abb. 15: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer ..................... 43 CD4+-Lymphozyten ................................................................... 51 Abb. 16: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Granulozyten ... 52 Abb. 17: Verlauf der absoluten IL-6 - Konzentration in den Vergleichsgruppen ........................................................... 54 Abb. 18: Verlauf der absoluten ICAM-1-Konzentration in den Vergleichsgruppen ........................................................... 55 Abb. 19: Verlauf der absoluten CRP-Konzentration in beiden Vergleichsgruppen ...................................................... 56 Abb. 20: Verlauf der absoluten Fibrinogenkonzentration in den Vergleichsgruppen ........................................................... 57 10 1 Einführung „Die Apoplexia nun betrifft den Körper im Ganzen, und bei ihr kann sowohl das Gefühl als auch der Verstand und die Bewegung verloren gehen „ (Aretaios von Kappadokien, 1. Jh. n. Chr.). Dieses aus der Antike stammende Zitat verdeutlicht einerseits die Vielgestaltigkeit der Symptomatik als auch die diachrone Prävalenz des Hirninfarktes in der Menschheitsgeschichte (Karenberg et al. 1997). Bis heute ist der Hirninsult eine der häufigsten schweren Erkrankungen mit weitreichenden Folgen für Patient und Gesellschaft. In der westlichen Welt stellt er nach dem Herzinfarkt und den Krebsleiden die dritthäufigste Todesursache dar (Klijn 2003 et al.). Neben dem bekannten ischämisch bedingten nekrotischen neuronalen Zelltod, werden darüber hinaus gehende, immunologisch vermittelte Nervenzellverluste durch Apoptose und sekundäre Inflammation, zunehmend in pathophysiologischen Ischämiemodellen berücksichtigt (Graham et al. 2001). Tierexperimentell gewonnene Erkenntnisse belegen, dass ein nicht unerheblicher Anteil an Neuronen und Gliazellen einen induzierten apoptotischen Zelltod sterben (Moskowitz et al. 2003). Darüber hinaus hat eine ischämische Nekrose eine sekundäre Entzündungsreaktion zur Folge, die ihrerseits das Ausmaß der resultierenden Hirnschädigung erweitert (Buisson et al. 2003, Vila et al. 2000). Das Verständnis dieser immunologischen Reaktionen könnte in Zukunft zu einem weiteren Therapieansatz in der Behandlung von Schlaganfallpatienten führen. Das Ziel der vorliegenden Studie war es, den Verlauf mehrerer immunologischer Parameter in der postakuten Phase eines ischämischen Hirninfarktes zu dokumentieren und einen möglichen Zusammenhang zwischen dieser Dynamik und dem klinischen Verlauf zu prüfen. Dabei wurden die Apoptoserate von Lymphozyten und Granulozyten sowie Zytokine, Adhäsionsmoleküle und Akute-Phase-Proteine im peripheren Blut untersucht, um gegebenenfalls einen für den klinischen Alltag praktikablen Marker herausstellen zu können. Einen Überblick über den aktuellen Stand der Kenntnisse in der Therapie und Sekundärprohylaxe des ischämischen Hirninsultes sowie einen Überblick über relevante immunologische Grundlagen soll folgendes Kapitel bieten. 11 1.1 Das Krankheitsbild des ischämischen Hirninsultes 1.1.1 Definition und Epidemiologie Beim Schlaganfall ist die Blutversorgung einer Hirnregion unterbrochen. Daraus resultiert eine Funktionsstörung, die mit neurologischen Symptomen einhergeht (Adams and Victor 1993). Es handelt sich um ein Syndrom. Die Ätiologien sind vielfältig. Wir unterscheiden zwei Kategorien: Erstens den ischämischen und zweitens den hämorrhagischen Hirninsult. 85% aller Schlaganfälle sind ischämisch bedingt (Williams 1999). Pathologisch unterscheidet man hierbei eine Makroangiopathie der supraaortalen Gefäße (Häufigkeit 35%) von einer cerebralen Mikroangiopathie (Häufigkeit 30%). In weiteren 30% der Fälle sind proximale Emboliequellen, am häufigsten eine Thrombenbildung bei kardialem Vorhofflimmern für das ischämische Ereignis verantwortlich (Hufschmidt und Lücking 1999). Sehr seltene Ursachen von Mangeldurchblutungen sind Gerinnungsstörungen und hämatologische Erkrankungen (Häufigkeit <5%). 15% aller Schlaganfälle sind auf vaskuläre Hirnblutungen zurückzuführen. Neben einer hypertensiven Massenblutung bei Hypertonikern, können intracerebrale Hämatome und Subarachnoidalblutungen auf dem Boden vaskulärer Malformationen entstehen (Poeck und Hacke 1998). Eine Amyloid-Angiopathie oder Koagulation mit Marcumar sind weitere Ursachen für eine Hirnblutung. Mit jeder gewonnenen Lebensdekade verdoppelt sich das Risiko eines Schlaganfalls. Die alterspezifische Inzidenz beträgt bis zum 64. Lebensjahr 300, zwischen dem 65. und 74. Lebensjahr 670, zwischen dem 75. und 84. Lebensjahr 1.620 und jenseits des 85. Lebensjahres mehr als 2.400 pro 100.000 Einwohner (Eckstein et al. 1999). In Deutschland erleiden pro Jahr über 250.000 Menschen einen Schlaganfall. Nur ein Drittel der Kranken wird wieder voll rehabilitiert. 30% der Schlaganfallpatienten bleiben auf Dauer schwer behindert und auf die Hilfe Dritter angewiesen (Berlit 2000). Entsprechend hoch sind medizinische und soziale Folgekosten. In den USA jährlich 40 Mrd. US$, entsprechend 10% der jährlichen Gesamtgesundheitsausgaben der Vereinigten Staaten für cerebrovaskuläre Erkrankungen benötigt (Taylor et al. 1996). Nach Angaben der Deutschen Schlaganfallstiftung werden in Deutschlang ca. 16 Mrd. DM jährlich zur Behandlung des Schlaganfalles und seiner Folgen ausgegeben (Eckstein et al. 1999). 12 1.1.2 Risikofaktoren und deren Behandlung Der ischämische Hirninfarkt ist eine typische risikofaktorassoziierte Erkrankung, wobei sich durch Reduktion der Risikofaktoren eine deutliche Reduktion der oben genannten Inzidenzzahlen erreichen liesse. Wie bereits erwähnt ist der Schlaganfall typischerweise eine Erkrankung des höheren Lebensalters, jedoch sind in seltenen Fällen auch Kinder- und Jugendliche betroffen. Frauen in mittleren Lebensjahren haben ein geringeres Risiko als Männer einen Hirninfarkt zu erleiden (Brown et al. 1996). Die arterielle Hypertonie stellt sowohl für den ischämischen als auch für den hämorrhagischen Hirninsult den wichtigsten modifizierbaren Risikofaktor dar (Goldstein et al. 2001). Eine antihypertensive Behandlung reduziert dabei nicht nur das Schlaganfallrisiko, sondern wirkt auch der Entwicklung einer vaskulären Demenz entgegen (Forette et al. 1998). Nach Empfehlungen der HOT-Studie ist eine Blutdruckeinstellung mit Werten um 135/85 mmHg anzustreben (Hansson et al. 1998). Nach Ergebnissen der SHEP-Studie läßt sich durch Senkung des isoliert erhöhten systolischen Blutdrucks um 11 mmHg das Schlaganfallrisiko um 36% reduzieren (SHEP 1991). Neben hohem Alter und Hypertonie sind verschiedene kardiale Erkrankungen wie Vorhofflimmern oder Linksherzinsuffizienz die dritte wichtige Ursache von Hirninfarkten. Durch Flussunregelmäßigkeiten besteht hierbei die Gefahr der kardialen Thrombenbildung mit konsekutiver Hirnembolie (Hufschmidt und Lücking 1999, Poeck und Hacke 1998). Bei Nikotinabusus ist das Risiko zerebraler Ischämien und Blutungen um das zweifache erhöht. Ursachlich ist dabei eine Fibrinogen- und Hämatokriterhöhung, eine vermehrte Plättchenaggregabilität, eine verminderter HDL-Cholesterol-Spiegel und eine direkte Endothelschädigung anzusehen (Berlit 2000). Nach Einstellung des Nikotinkonsums ist nach fünf Jahren statistisch kein erhöhtes Schlaganfallrisiko im Vergleich zu Nichtrauchern mehr gegeben (Wilson et al. 1997). Auch Alkoholkonsum bietet ein erhöhtes Risiko einen Hirninfarkt zu erleiden. Dies gilt jedoch für nur für den Konsum hoher Alkoholmengen. Niedrigen Mengen hingegen wird sogar eine protektive Wirkung zugesprochen (Rodgers et al. 1993). Ein weiterer wichtiger Risikofaktor ist der Diabetes mellitus, der aufgrund einer diabetischen Angiopathie mit einem 2- bis 3-fach erhöhtem Risiko ischämischer Hirninfarkte einhergeht (Klijn et al. 2003). 13 Die Bedeutung der Hyperlipidämie als eigenständigen Risikofaktor ist weiterhin unklar, jedoch ist ein Kausalzusammenhang zwischen Hypercholesterinämie und arteriosklerotischen Veränderungen hirnversorgender Gefässe nachgewiesen (Heiss et al. 1991). Verschiedene Studien mit lipidsenkenden Medikamenten erbrachten uneinheitliche Ergebnisse. Bisher sind für Simvastatin und Pravastatin eine Reduktion des Schlaganfallrisikos dokumentiert (Plehn et al. 1999, SSSS 1994). Bei der Frage nach Erhöhung des Infarktrisikos durch Hormonpräparate wie Kontrazeptiva scheint sich eine klare Dosisabhängigkeit herausgestellt zu haben. So haben zwei großangelegte Studien ergeben, daß ein Östrogenanteil unter 50µg nicht mit einem erhöhten Schlaganfallrisiko einhergeht (Petitte et al. 1996, Schwartz et al. 1998). Dies gilt jedoch nur für den Fall dass keine weiteren Risikofaktoren bestehen, da auch die Einnahme geringer Östrogenmengen das Schlaganfallrisiko bei bestehender Hypertonie oder Nikotinabusus zu potenzieren scheint (Poulter et al. 1999). Ein weiterer unabhängiger Risikofaktor ist eine Hyperhomocysteinämie (Diaz et al. 2004). Zur Behandlung wird ein Substitutionsversuch mittels Vitamin B6, Vitamin B12 und Folsäure empfohlen (Hankey et al. 2001). Adipositas und Bewegungsmangel gelten wie für den Myokardinfarkt auch als Risikofaktoren für cerebrale Ischämien (Berlit 2000). Einen Überblick über die genannten beeinflußbaren Risikofaktoren und über die relative Erhöhung des Schlaganfallrisikos gibt folgende Tabelle (Tab. 1): Tab. 1: Schlaganfall - modifizierbare Risikofaktoren (nach Berlit 2000) Modifizierbare Risikofaktoren Erhöhung des Schlaganfallrisikos Arterielle Hypertonie 2- bis 10fach Vorhofflimmern 1- bis 17fach Nikotinabusus 2- bis 2,5fach Alkoholkonsum 1,5- bis 2fach (J-förmige Beziehung) Diabetes mellitus 2- bis 3fach Hyperlipidämie 1,5- bis 2fach Kontrazeptiva (Östrogengehalt > 50µg) bis 2fach Hyperhomocysteinämie bis 5fach Übergewicht 1,5- bis 2fach Bewegungsmangel 1,5- bis 2fach 14 1.1.3 Die Therapie des akuten ischämischen Hirninsultes „Eine schwere Apoplexia zu heilen, ist unmöglich, eine leichte [zu bessern] schwierig“ konstantiert einer der berühmten hippokratischen Aphorismen (Karenberg et al. 1997). Seit Jahrtausenden hat sich an dieser therapeutischen Ohnmacht gegenüber einem stattgehabten Schlaganfall wenig geändert. Den Erkenntnissen und Fortschritten in der Primär- und Sekundärprophylaxe durch Modifikation der Risikofaktoren (siehe Abschnitt 1.1.2.) stehen nur begrenzte kurative Interventionen gegenüber. Die Therapie des akuten Schlaganfalles hat überwiegend nur supportiven Charakter. Kardiorespiratorische und andere Komplikationen werden vermieden und behandelt. Mit Einführung der fibrinolytischen Therapie ergab sich erstmals die Möglichkeit das Ausmaß der zentralen Hirnschädigung aktiv zu begrenzen. Die Anwendbarkeit der Lyse-Therapie ist nur innerhalb eines kurzen Zeitfensters von bis zu 6 Stunden gegeben. Jeder Schlaganfall ist somit ein Notfall (Grond et al. 1998). 1.1.3.1 Therapie in der Akutphase a) Blutdruck Der Blutdruck sollte in der Akutphase hochnormal toleriert werden. Erst Werte >220 mmHg syst. und Werte >120 mmHg diast. erfordern eine moderate Senkung mit gut steuerbaren Antihypertonika (Klijn et al. 2003, Cummins et al. 2000). Werte über 160/95 mmHg werden bei über 70% der Patienten in der Akutphase beobachtet, und normalisieren sich nach ca. einer Woche (Harper et al. 1994). Dies wird als physiologische reaktive Autoregulation zur Erhaltung eines ausreichenden cerebralen Blutflusses erachtet. Eine vorzeitige aggressive Normalisierung der Blutdruckwerte ging in mehreren Studien mit einem ungünstigeren Verlauf einher (Chalmers et al. 1998, Kaste et al. 1994, Lisk et al.1993). b) Körpertemperatur Da eine erhöhte Körpertemperatur die Bildung eines Hirnödems fördert, und weiterhin das Risiko einer sekundären Einblutung erhöht, sollten Hyperthermien mit Antipyretika behandelt, und gegebenenfalls eine Infektionsquelle antibiotisch saniert werden (Ginsberg et al. 1998, Davalos et al. 1997). 15 c) Blutzucker Erhöhte Blutzuckerwerte gehen ebenfalls mit einer schlechteren Prognose einher. Eine Korrektur wird bei Blutzuckerwerten über 140 mg/dl empfohlen (Bruno et al. 1999). d) Hirndruck Ein letaler Ausgang in der postakuten Phase ist meist auf ein Hirnödem und erhöhten intrakraniellen Druck zurückzuführen. Deshalb sollten Patienten mit großem hemisphärischen Infarkt in 20-30 Grad hochgestelltem Oberkörper gelagert werden. Auf eine ausreichende Oxygenierung ist zu achten. Gegebenfalls sind eine kontrollierte Hyperventilation, die Gabe von Osmotherapeutika und Diuretika oder auch eine operative Dekompression mittels Hemikraniektomie indiziert (Schwarz et al. 2002). e) Antikoagulantien oder Thrombozytenaggrerationshemmer? Weiterhin kontrovers wird die Diskussion darüber geführt, ob in der Akutphase Antikoagulantien gegenüber Thrombozytenaggregationshemmer von Vorteil sind (Cummins et al. 2000, Diener 2000, Bousser et al. 1997, Schellinger et al. 1997). In der IST-Studie wurde an über 19.000 Patienten die subkutane Gabe von Heparin getestet (IST 1997). In diesem Teil der Studie erhielten die Patienten zwei mal täglich entweder 5.000 oder 12.500 IE Heparin s.c. bzw. kein Heparin. Zwar traten in der Heparin-Gruppe weniger Reinfarkte und thromboembolische Ereignisse im venösen Stromgebiet auf (2,9% vs. 3,8%), dieser positive Effekt wurde jedoch durch die erhöhte Blutungsrate wieder aufgehoben (1,2% vs. 0,4%). Ein Vergleich zwischen der mit 5.000 IE und der mit 12.500 IE Heparin behandelten Patientengruppe zeigt auf, dass das Blutungsrisiko bei Hochdosis-Heparinisierung erhöht ist. Auch nach Veröffentlichung von weiteren Studienanalysen wird der Nutzen einer Heparinbehandlung zunehmend in Frage gestellt (Diener 2000). Somit stehen in der Therapie des akuten nicht kardioembolischen Hirninfarktes Thrombozytenfunktionshemmer wasserlösliches, (TFH) wie Acetylsalicylsäure (ASS) und ihr injezierbares Mono-Lysinsalz (Aspisol®) an erster Stelle (CAST 1997, IST 1997, SPIRIT 1997, MAST-I 1995, Böger et al. 1993). Zusammenfassend gilt, daß eine high-dose Heparintherapie aktuell nur bei kardiogenen oder arterioarteriellen Embolien, bei Dissektionen, bei höhergradigen Stenosen hirnversorgender Gefäße und beim progressive Stroke nach Ausschluß von Kontraindikationen empfohlen wird (Klijn et al. 2003, Cummins et al. 2000). 16 1.1.3.2 Sekundärprophylaxe Thrombozytenaggregationshemmer sind in der Sekundärprophylaxe die etablierten Substanzen (Diener 2000, ATC 1994, SALT1991, Dutch-TIA 1991, UK-TIA 1991). ASS ist dabei die am besten untersuchte Substanz, wobei weiterhin Unklarheit über die optimale Dosis besteht (Masuhr et al. 1998). In der Sekundärprophylaxe kardiogen-embolischer Hirninfarkte werden jedoch orale Antikoagulantien empfohlen. In der Europäischen Vorhofflimmern-Studie konnte eine relative Schlaganfallrisikoreduktion von über 60% im Vergleich zu Thrombozytenfunktionshemmern erreicht werden (EAFT 1993). Neuere TFH wie Ticlopidin und Clopidogrel, und die Kombination von ASS und Dipyridamol erlauben unter Berücksichtigung des individuellen Risikoprofils eine noch bessere sekundärprophylaktische Einstellung von Schlaganfallpatienten (CAPRIE 1996, Diener 1996, CATS 1989, Hass et al. 1989). Bedingt durch ein stärkeres Nebenwirkungsprofil (Durchfälle, Neutropenien, thrombotisch thrombozytopenische Purpura), sollte Ticlopidin jedoch nur Patienten verordnet werden, die ASS nicht tolerieren. Vorteilhafter erweist sich Clopidogrel, da sich eine relative Risikoreduktion gegenüber ASS erreichen liesse, ohne dabei ein erhöhtes Risikoprofil aufzuzeigen (CAPRIE 1996). Untersuchungen ob eine Kombination von ASS und Dipyridamol gegenüber einer Monotherapie mit ASS von Vorteil ist, erbrachten uneinheitliche Ergebnisse. In der Anwendung von Dipyridamol besteht weiterhin Zurückhaltung, da es in Verdacht steht, Angina pectoris-Attacken auszulösen. In der mit 6602 Patienten größten Studie konnte jedoch eine klare relative Risikoreduktion durch die Kombinationsbehandlung (50mg ASS und 400mg Dipyridamol tgl. gegenüber ASS 50mg) erreicht werden, und darüber hinaus konnte in einer Subgruppenanalyse gezeigt werden, dass die Gabe von retardiertem Dypiridamol keine negativen Auswirkungen auf kardiale Ereignisse bei Patienten mit KHK hat (Diener et al. 2001). 17 1.1.3.3 Lysetherapie Im Jahr 1995 begann mit der Veröffentlichung zweier Studien (ECASS und NINDS) mit systemischer Gabe von rekombinantem Gewebsplasminogenaktivator (rt-PA) die Ära rekanalisierender Therapien, die erstmals die Möglichkeit einer aktiven Intervention zur Begrenzung des ischämischen Hirnschadens, über die genannten supportiven und präventiven Maßnahmen hinaus bot (Hacke 1995, NINDS 1995). Beide Studien (ECASS erst nach Abzug mehrerer Protokollverletzungen) konnten positive Resultate bzgl. des klinischen Outcomes aufzeigen, jedoch war die Behandlung in beiden Studien mit einer erhöhten Rate cerebraler Blutungskomplikationen verbunden. Weitere Studien belegten, daß eine thrombolytische Therapie nur unter konsequenter Beachtung der Ein- und Ausschlußkriterien wie Infarktausdehnung, Infarkfrühzeichen, Zeitfenster usw. als effektiv und sicher gelten kann, so daß sie nur für weniger als 5% aller Hirninfarktpatienten in Frage kommt (Cummins et al. 2000, Steiner et al. 2000, Clark et al. 1999, Hacke et al. 1998). Auch durch eine lokale Lysetherapie läßt sich keine wesentliche Erweiterung der Zielgruppe erreichen (Furlan et al. 1999). Dem verlängerten Zeitfenster von sechs Stunden steht die geringe Anzahl von neuroradiologischen Interventionszentren entgegen. Des weiteren ist eine lokale Lysetherapie nur bei einer geringen Anzahl von Patienten mit isoliertem proximalen Mediastammverschluß indiziert. Diese geringe Anzahl von thrombolytisch behandelbaren Patienten zeigt die Notwendigkeit auf, nach weiteren, über die rekanalisierende Möglichkeit hinausgehenden Therapiemaßnahmen zu forschen, denn neben dem direkt ischämisch bedingten Zelltod werden beim Hirninfarkt sekundär weitere biochemische Vorgänge wie Exzitotoxizität und Apoptose in Gang gesetzt, welche einen zusätzlichen Untergang von Nervenzellen in der Penumbra bedingen (Graham et al. 2001, Morgenstern et al. 2001, Block et al. 1999). Die Begrenzung solcher postischämisch-immunologischen Reaktionen könnte eine Therapieoption zum Überleben der Penumbra bieten, und zugleich einem größeren Patientengut zugänglich sein (Onteniente et al. 2003). Im folgenden sollen das Penumbramodell und die für vorliegende Studie relevanten immunologischen Grundlagen vorgestellt werden. 18 1.1.4 Die ischämische Penumbra Als Penumbra wird die Randzone um das nekrotische Kerngebiet eines Hirninfarktes definiert, in der zwar der Funktionsstoffwechsel erloschen, der Strukturstoffwechsel hingegen noch erhalten ist (Astrup et al. 1981). Das Gehirn mit nur 2% der Körpermasse benötigt etwa 20% des Herzzeitvolumens, um seinen enormen Sauerstoff- und Energieverbrauch zu decken. Da es nur über geringe Energiereserven und Kompensationsmechanismen verfügt, führt die Abnahme des zerebralen Blutflusses (CBF, normal ca. 0,5 ml/g/min), zu neuronalen Funktions- und Strukturausfällen (Hamann 1997). Im Falle einer fokalen Ischämie führt der Verschluß einer hirnversorgenden Arterie zum Auftreten von Regionen mit unterschiedlicher Restdurchblutung und Kompensation durch Kollateralisierung. Dabei können zwei Schwellenwerte reduzierter Hirnperfusion definiert werden: bei einem Abfall des CBF auf 40% des Normwertes kommt es zum elektrischen Funktionsausfall von Nervenzellen, bei einem Abfall auf 20% der Norm kommt es zum Zusammenbruch des Membranpotentials und damit zu einem strukturellen Nervenzellschaden (Hamann 1997). Eine Hirnregion mit einem CBF zwischen diesen Schwellenwerten entspricht der Penumbra. Es handelt sich dabei nicht um eine statische Region, sondern vielmehr um ein Gebiet, in dem eine Vielzahl von Zellreaktionen wie Exzitotoxizität, vermehrte Bildung freier Radikale, Apoptose und Inflammation stattfinden (Block et al. 1999). Vom Ausmaß dieser Zellschädigungen und vom zeitlichen Einsetzen einer möglichen Reperfusion hängt es ab, ob eine Nekrosematuration (Umwandlung der Penumbra in eine nekrotische Infarktzone) oder eine funktionelle Erholung stattfindet. Im Allgemeinen wird davon ausgegangen, daß die Penumbra nur innerhalb der ersten sechs Stunden nach Onset des Schlaganfalles revitalisierbar ist (Ginsberg et al. 1994). In Einzelfällen konnte jedoch eine vollständige Nekrosematuration erst nach 48 Stunden nachgewiesen werden (Heiss et al. 1992). Die Penumbra stellt somit den sensiblen und gefährdeten Bereich beim Schlaganfall dar. Die Einflussnahme auf in ihr stattfindende immunologische Prozesse stellt eine potentielle Interventionsmöglichkeit dar, um das endgültige Ausmaß der Hirn- schädigung zu reduzieren. 19 Abb. 1: Schematische Zeichnung über die Veränderungen der Penumbra (Block 1999). oben: Ohne Intervention kann es zu einer Ausbreitung des Infarktes (grau) auf die gesamte Penumbraregion (hellgrau) kommen. unten: Durch Reperfusion, antiapoptotische und antiinflammatorische Intervention erhofft man sich, diese Ausbreitung einzugrenzen, so daß ein Teil der Penumbra als intaktes Gewebe (weiß) erhalten bleibt. 1.2 Immunologische Grundlagen 1.2.1 Apoptose Bereits 1951 wurden verschiedene Formen des Zelltodes nach morphologischen Charakteristika klassifiziert (Glücksmann et al. 1951). In den sechziger Jahren wurde beobachtet, daß bestimmte Zellen nach einem vorbestimmten Muster untergehen, und daß dieser Vorgang von der zelleigenen Proteinsynthese abhängig ist (Lockshin et al. 1964, Tata et al. 1966). Es entstand somit der Begriff des „programmierten Zelltodes“, welcher der Nekrose morphologisch und funktionell gegenüber gestellt wurde. 20 Die Apoptose (griech. für Herabfallen welkender Blütenblätter), als häufigste Form des programmierten Zelltodes, wurde erstmals 1972 von Kerr, Wyllie und Currie beschrieben (Kerr et al. 1972). Es handelt sich hierbei um einen im Erbgut programmierten Selbstmordmechanismus, der unter aktiver zellulärer Kontrolle abläuft (Steller et al. 1995). Die grundsätzlichen Unterschiede zur Nekrose sind in Tabelle 2 aufgelistet. Durch diese selektive Zelleliminierung sind die vielzelligen Organismen in der Lage, die Homöostase zwischen Zellproliferation und Zelltod aufrecht zu halten. Tab. 2: Grundsätzliche Unterschiede zwischen Nekrose und Apoptose Nekrose Apoptose Zellschwellung Zellschrumpfung Plasmamembran lysiert Plasmamembran intakt Energieunabhängig ATP-abhängig Konjunkter Gewebsuntergang isolierter Zelluntergang Entzündliche Gewebsreaktion keine Entzündung Morphologisch zeichnet sich die Apoptose durch Zellschrumpfung bei erhaltenen Membranstrukturen, sowie durch Chromatinkondensation mit meist folgender DNSFragmentation durch aktivierte Endonukleasen aus (Gold et al. 2001, Kuschinski and Gillardon 2000, Wyllie et al. 1980). Diese Autolyse erfolgt ohne Freisetzung proinflammatorischer Enzyme, und ist somit auch nicht von einer sekundären Entzündungsreaktion gefolgt. In der Terminalphase zerfällt die apoptotische Zelle in mehrere apoptotische Körperchen, die schliesslich von benachbarten Zellen phagozytiert werden. Es wird angenommen, daß es sich bei der Apoptose um einen relativ raschen, innerhalb von 4-5 Stunden ablaufenden Prozess handelt (Bursch et al. 1990). Verschiedene unspezifische und spezifische Stimuli wie ionisierende Strahlen, der Entzug von Wachstumsfaktoren oder freie Radikale können das Apoptoseprogramm einer Zelle aktivieren (Lewen et al. 2000, Warren et al. 2000, Jacobson et al. 1997). 21 Dabei werden rezeptormediierte und nichtrezeptormediierte Mechanismen unterschieden (siehe Abbildung 2). Zu den Apoptoserezeptoren gehören z.B. der Tumornekrosefaktor-Rezeptor 1 (TNF-R1), die TNF-related-Rezeptoren 1 und 2 (TRAIL-R1 und TRAIL-R2) als auch das ebenfals zur TNF-Rezeptorfamilie zählende Fas-Protein (Apo1/CD95). Es handelt sich dabei um transmembrane Proteine, die nach Aktivierung an ihrer zytosolischen Seite spezifische Proteininteraktionen in Gang setzen. Durch diesen als „death inducing signaling complex (DISC)“ bezeichneten Komplex, werden Caspasen aktiviert, welche die Spaltung wichtiger Regulator- und Strukturproteine bewirkten, und damit die für die Apoptose typische DNS-Fragmentation hervorrufen. „Caspase“ ist der Name für die bis vor wenigen Jahren noch als „ICE (interleukin-1 converting enzyme) – artige Proteasen“ bezeichneten Enzyme. „C“ steht für Cysteinproteinaseaktivität, „aspase“ für die Eigenschaft jeweils nach Asparaginsäure zu schneiden. Inzwischen sind 14 Caspasen beschrieben, die entsprechend ihrer funktionellen Rolle in der Apoptosekaskade, in drei Gruppen unterschieden werden (Graham et al. 2001): Tab. 3: Einteilung der Caspasen Gruppe Funktion Caspasen I Zytokinprozessoren Caspase 1, 4, 5, 11, 12, 13 und 14 II Effektorcaspasen Caspase 3, 6 und 7 III Initiatorcaspasen Caspase 2, 8, 9 und 10 Nichtrezeptormediierte Auslöser wie frei Radikale, bewirken die Freisetzung von Cytochrom C aus den Mitochondrien, wodurch ebenfalls die Aktivierung der Caspasen ausgelöst wird. Des weiteren greifen verschiedene Proteine der bcl-2 Familie regulatorisch in die Apoptosekaskade ein (Gold et al. 2001). 22 Apoptoserezeptoren wie TNF-R1, Fas (CD95), TRAIL-R1 und -R2 andere Apoptose-induktoren wie Toxine, erhöhter Ca2+Einstrom und freie Radikale DISC Mitochondrium Initiator - Caspasen Cytochrom C Aktivierung von Effektorkaspasen EffektorCaspasen (-) (+) Spaltung von Enzymen, Strukturproteinen, Apoptoseinhibitoren bcl-2, bcl-xL u.a. bax, bad, bak u.a. anti- und proapoptotische Regulatorproteine DNS- Fragmentation => Zelltod Abb. 2: Rezeptormediierte und nichtrezeptormediierte Apoptosewege (vereinfachte schematische Darstellung nach Gold et al. 2001) Eine Rezeptoraktivierung (z.B. Fas und Fas-Ligand) bewirkt über Proteininteraktionen die Aktivierung von Effektorcaspasen. Weitere Apoptoseauslöser (z.B. freie Radikale) führen über eine Cytochrom C –Ausschüttung der Mitochondrien zur Aktivierung der selben Effektorcaspasen. Verschiedene Proteine wie bcl-2 und bax greifen regulierend in die Apoptosekaskade ein. Eine transkriptionelle Aufregulation dieser pro- und antiapoptotischen Proteine bietet der Zelle einen weiteren Mechanismus in ihr Suizidprogramm regulatorisch einzugreifen. 23 1.2.2 Zytokine Zytokine sind von verschiedenen Zellen produzierte Proteine, die als Signalmoleküle das Verhalten anderer Zellen beeinflussen (Janeway and Travers, 1995). Sie üben regulatorische Funktionen im Rahmen der Hämatopoese, der Hämostase, der Zelldifferenzierung, der Immunreaktion und Immunmodulation aus. Die überwiegend parakrin sezernierten Polypeptide binden an bestimmten Rezeptorkomplexen, und lösen verschiedene Proteininteraktionen innerhalb der Zielzelle aus. Dadurch können Zellaktivierung, Proliferation, Differenzierung, Chemotaxis und Proteinsynthese induziert werden. Ebenso können Zytokine die Zielzelle zur Produktion von weiteren Zytokinen, Zytokinrezeptoren oder auch deren Antagonisten stimulieren. Die von Leukozyten produzierten Zytokine werden übergeordnet als Interleukine (IL) bezeichnet. Weitere Gruppierungen stellen die Tumornekrosefaktoren (TNF), die Interferrone (IF) und die Wachstumsfaktoren (GF) dar. All diese Faktoren interagieren untereinander, so daß im Organismus ein komplexes Zytokin-Netzwerk existiert, welches zur Koordination von Prozessen wie der Immunreaktion beiträgt. Die in dieser Studie gemessenen Zytokine sollen im folgenden etwas genauer vorgestellt werden. 1.2.2.1 Interleukin-1β IL-1 ist zentraler Mediator infektiöser, entzündlicher und immunologischer Reaktionen. Es werden zwei verschiedene Polypeptid-Monomere (IL-1α und IL-1β) unterschieden, die jedoch an die selben Oberflächenrezeptoren (CDw121a+b) binden, und somit gleiche biologische Aktivität besitzen (Colotta et al. 1998). IL-1β stellt dabei den weit überwiegenden Anteil des zirkulierenden Plasma-IL-1 dar. Zellen der Monozyten-Makrophagen-Reihe (im ZNS die Mikrogliazellen) bilden die Hauptproduzenten von IL-1β, jedoch sind eine Vielzahl weiterer Zellen, wie T- und BLymphozyten und Endothelzellen in der Lage dieses Zytokin zu exprimieren (Sairanen 1997). 24 Verschiedene Induktoren wie Lipopolysaccharide, Komplementfaktoren und Zytokine (TNF, IFN-γ und auch IL-1β selbst) stimulieren die Produktion von IL-1β. Das Aktionsspektrum von IL-1β erreicht eine Vielzahl von Zellen und Geweben (Colotta et al. 1998, Dinarello et al. 1991 und 1994). Über die Induktion von Wachstumsfaktoren hat IL-1β Einfluß auf die Differenzierung und Proliferation hämatopoetischer Zellen wie T- und B-Lymphozyten (Oppenheim et al. 1993). In Endothelzellen wird die Produktion von Chemokinen, vasodilatatorischen Mediatoren (NO, PG) und die Expression von Adhäsionsmolekülen induziert (Mantovani 1992). Außer diesem stark proinflammatorischen Einfluß ist auch ein prothrombotischer Effekt von IL-1β auf Gefäßzellen beschrieben worden (Colotta et al. 1998). IL-1β ist zentraler Mediator der Akute-Phase-Reaktion. Die Produktion von AkutePhase-Proteinen in der Leber, wird einerseits direkt durch IL-1β, zum anderen indirekt über die Induktion von IL-6 stimuliert (s. Kapitel 1.2.2.2). Somit werden IL-1β und IL-6 oft als „Hepatozyten-stimulierende Faktoren (HSF)“ zusammengefaßt. Im zentralen Nervensystem (ZNS) bewirkt IL-1β über eine vermehrte Produktion von Prostaglandinen (PGE2) im Hypothalamus eine Erhöhung der Körpertemperatur. Aufgrund dieser Eigenschaft wird IL-1β ebenso wie IL-6 und TNF als endogenes Pyrogen bezeichnet. Weitere Einflüsse von IL-1β auf das ZNS sind das Hervorrufen von Schläfrigkeit und Anorexie, welche oft infektassoziiert auftreten (Krueger et al. 1994, Hellerstein et al. 1989). Des weiteren stimuliert IL-1β die Freisetzung von Corticotropin-Realising Hormon (CRH) und bewirkt damit eine Erhöhung des Cortisol-Spiegels i.S. (Basedovsky et al. 1986). Da Glucocorticoide eine antiinflammatorische und immunsuppressive Wirkung haben, und da sie die Bildung von IL-1β direkt hemmen, wird dies als FeedbackMechanismus betrachtet, der den Körper vor einer möglichen IL-1β Intoxikation bewahrt (Colotta et al. 1998). 25 1.2.2.2 Interleukin-6 Interleukin–6 ist ein Hauptmediator in der akuten Phase eines inflammatorischen Prozesses. Erhöhte Werte von IL-6 können mehrere Stunden bis Tage vor Erhöhung anderer Entzündungsparameter im Blut gemessen werden. Zu Beginn einer entzündlichen Reaktion wird IL-6 von Zellen der Monozyten-Makrophagen-Reihe sezerniert. Unter weiterem stimulatorischen Einfluss von IL-1 und TNF beginnen auch Fibroblasten, Keratinozyten, Endothelzellen und Lymphozyten mit der Produktion von IL-6 (Richards et al. 1998). Außer IL-1 und TNF, induzieren verschiedene Faktoren wie bakterielle Lipopolysaccharide, Fibrinfragmente, Interferron-γ und weitere Zytokine die Bildung von Interleukin-6. Glucocorticoide und einige Zytokine (IL-4, IL-10) inhibieren dagegen dessen Produktion (Janeway und Travers 1995). IL-6 wirkt regulatorisch auf die Reifung und Differenzierung von B-Lymphozyten zu Plamazellen und auf die Aktivierung von T-Helfer-Zellen, zytotoxischen TLymphozyten und natürlichen Killerzellen (Richard et al. 1998). Wie erwähnt ist IL-6 zentraler Initiator der hepatischen Akute-Phase-Reaktion. Es induziert in der Leber die Bildung positiver akute-Phase-Proteine wie CRP und Fibrinogen, und reduziert die Produktion von Albumin und Transferrin (Tilg et al. 1997, Castell et al. 1989). Im Nervensystem wirkt IL-6 als endogenes Pyrogen und es erhöht die Synthese von adrenocorticotropen Hormon (ACTH). Viele dieser Funktionen von Interleukin-6 werden durch Interaktion mit IL-1 synergistisch ausgeübt. Für IL-6 ist gezeigt worden, daß es die Produktion von IL-1Rezeptorantagonisten induziert, und damit die Wirkung von IL-1 hemmt (Tilg et al. 1994, Schindler et al. 1990). Somit ist hier auf einen negativen Rückkoppelungsmechanismus innerhalb des Zytokin-Netzwerkes zu schliessen. 26 1.2.3 Interzelluläres Adhäsionsmolekül – 1 ( ICAM-1 ) Adhäsionsmoleküle sind Bindungsproteine die bei der Leukozytenwanderung, bei ihrer Zielortbestimmung (homing) und bei Zell-Zell-Interaktionen beteiligt sind (Janeway and Travers 1995). Die wichtigsten Klassen die bei der Leukozytenadhäsion eine Rolle spielen sind die Selektine (z.B. L-Selektin), die Integrine ( z.B. LFA-1), Mitglieder der Immunglobulinsuperfamilie (ICAM-1 bis -3 und VCAM-1), einige dem Mucin ähnliche Adressine (GlyCAM-1) und das CD44-Rezeptormolekül. Zu Beginn der Zelladhäsionskaskade nähern sich zirkulierende Leukozyten der Gefäßwand und gehen mittels L-Selectinen eine lockere Bindung untereinander und mit dem Gefäßendothel ein. Proadhäsive Zytokine wie IL-1, TNF-α, IL-8 und RANTES induzieren die Expression von Integrinen wie LAF-1 auf Leukozyten (Frijns et al. 2002). Diese Integrine interagieren nun mit Molekülen der Immunglobulin-Superfamilie auf den Gefäßendothelien. Dadurch kommt es zu einer stabilen Zelladhäsion an der Gefäßwand. Über Diapedese können nun die Leukozyten ihre Migration ins Gewebe fortsetzen (Schürmann et al. 1997). Das interzelluläre Adhäsionsmolekül-1 (ICAM-1) ist ein Membranprotein mit Rezeptorfunktion aus der Immunglobulin-Superfamilie. Es wird sowohl auf hämatopoetischen als auch auf nicht-hämatopoetischen Zellen, am stärksten jedoch auf Gefäßendothelzellen exprimiert (Dustin et al. 1986). Die Expression wird dabei durch Zytokine wie IL-1, TNF-α und IL-6 stimuliert (Mickelson et al. 1995). Endotheliales ICAM-1 reguliert die Adhäsion von Leukozyten an die Gefäßwand, und ermöglicht damit die Diapedese ins subepitheliale Gewebe. Des weiteren ist es an der Adhäsion zwischen Zellen beteiligt, und somit für eine Reihe weiterer Leukozytenfunktionen wie T- und B-Zellproliferation und T-Zell-vermittelte Zytolyse von Bedeutung. Aufgrund der Fähigkeit, zirkulierende Zellen in Entzündungsgewebe zu rekrutieren, wird ICAM-1 als essentieller Regulator der lokalen immunoinflammatorischen Aktivierung angesehen (Schürmann et al. 1997). 27 1.2.4 Akute-Phase-Proteine Als Immunantwort der akuten Phase (acute phase response) bezeichnet man die Veränderungen im Blut in der frühen Phase einer entzündlichen Reaktion. Dazu gehört die Produktion von bestimmten Proteinen und zellulären Elementen (Janeway und Travers 1995). Wie erwähnt, stimuliert IL-6 die Hepatozyten zur Synthese von Akute-Phase-Proteinen (APP). IL-1 gilt als indirektes Stimulans, da es Kupffer’sche-Zellen zur Produktion von IL-6 anregt. Zu den Proteinen der akuten Phase gehören das C-reaktive Protein (CRP), das mannosebindende Protein (MBP), Fibrinogen und das Serumamyloidprotein (SAP). Albumin und Transferrin gelten als typische negative Akute-Phase-Proteine, da ihre Synthese bei einer entzündlichen Reaktion durch IL-1 und IL-6 herunterreguliert wird (Richards et al. 1998). 1.2.4.1 C – Reaktive Protein (CRP) Das C – Reaktive Protein (CRP) erhielt seinen Namen aufgrund des Bindungsvermögens am C-Polysaccharid der Zellwand von Streptococcus pneumoniae. In seiner biochemischen Struktur bildet es ein Pentraxin, das die Eigenschaft besitzt an Phosphorylcholin, einem Membranbestandteil vieler Mikroorganismen zu binden. Dadurch wirkt es einerseits opsonierend, und andererseits kann es durch Aktivierung der klassischen Komplementkaskade die direkte Lyse eines Erregers induzieren (Janeway und Travers 1995). Obwohl das CRP als klassischer Marker einer bakteriellen Infektion gilt, wird eine Erhöhung des CRP auch in nicht-infektiösen immunologischen Erkrankungen wie Kollagenosen und Vaskulitiden, und auch nach Traumata beobachtet (Kalabalikis et al. 1999). Bei inflammatorischen Ereignissen zeigt die CRP-Konzentration einen relativ raschen und steilen Anstieg. Dabei können Werte um das 10- bis 1000- fache der Norm ansteigen (Normwert: <8 mg/l). Die Reaktionszeit liegt zwischen 6 und 10 Stunden, so daß das CRP als reaktionsschneller Marker einer zunehmenden oder abklingenden Entzündungsreaktion gilt (Greiling und Gressner 1995, Schulz et al. 1990). 28 1.2.4.2 Fibrinogen Fibrinogen ist zentraler Gerinnungsfaktor in der plasmatischen Blutgerinnungskaskade. Sowohl endogene als auch exogene Aktivierung des plasmatischen Gerinnungssystems gehen in ihrer Endreaktion mit der Umwandlung von löslichem Fibrinogen in eine unlösliche, polymere Faserform, dem Fibrin einher (Dörner 1992). Fibrinogen ist ein großes Dimeres Molekül, das größtenteils in Hepatozyten gebildet wird. Es gehört zu den typischen positiven Akute-Phase-Proteinen, dessen Synthese ebenfalls durch IL-6 stimuliert wird (Richards et al. 1998). Im Unterschied zu CRP, zeigt die Fibrinogen-Konzentration bei entzündlichen Reaktionen einen langsameren und flacheren Anstieg. Die vergleichenden kinetischen Parameter der in dieser Studie gemessenen akute-Phase-Proteine sind in folgender Tabelle aufgelistet (nach Greiling und Gressner 1995): Tab. 4: Akute-Phase-Proteine - Vergleich reaktionskinetischer Parameter Normwert Reaktionszeit Anstieg CRP < 8 mg/l 6 – 10 h 10 – 1000 fach Fibrinogen 200 - 400 mg/dl 24 – 48 h 2 – 3 fach 29 2. Methodik 2.1 Übersicht zum experimentellen Vorgehen In die Studie wurden Patienten mit akutem ischämischen Mediainfarkt aufgenommen. Innerhalb von 24 Stunden nach Onset, als auch am 3., 5. und 10. postapoplektischen klinische Untersuchung Tag, wurden folgende klinische und experimentelle Untersuchungen durchgeführt: Scoring - European Stroke Scale - National Institutes of Health Stroke Scale Nachweis von Apoptose - Lymphozyten Gesamtpopulation CD4+ - Lymphozyten Granulozyten Blutentnahme Durchflußzytometrie Messung von Zytokinen und Adhäsionsmolekülen - Interzelluläres Adhäsionsmolekül-1 (ICAM-1) Interleukin – 1ß Interleukin – 6 Enzym-Immuno-Assay Messung von akute Phase-Proteinen - C – Reaktives Protein Fibrinogen im Rahmen von klinisch-chemischen Routineuntersuchungen Abb. 3: Übersicht zum experimentellen Vorgehen 30 2.2 Auswahl der Patienten In der Studie wurden Patienten rekrutiert, die innerhalb von 24 Stunden nach Auftreten eines akut einsetzenden und persistierenden neurologischen Defizites, auf der StrokeUnit der neurologischen Universitätsklinik im St. Josef-Hospital Bochum (Universitätsklinik der Ruhr-Universität Bochum) stationär aufgenommen wurden. Folgende Ein- und Ausschlußkriterien mussten erfüllt werden: 2.2.1 Einschlußkriterien Patienten wurden in die Studie eingeschlossen, wenn alle der folgenden Kriterien erfüllt wurden: Ö Der Zeitraum zwischen dem Einsetzen der neurologischen Symptomatik und der stationärer Aufnahme, musste weniger als 24 Stunden betragen. Ö Die Diagnose eines Insultes im Versorgungsgebiet der Arteria cerebri media (ACM), wurde zunächst klinisch vom diensthabenden Neurologen in der Notaufnahme, und vom Ärzteteam der Stroke-Unit gestellt. Ö Die Bestätigung der Diagnose erfolgte durch die radiologische Darstellung eines frischen ischämischen Infarktes im Versorgungsgebiet der A. cerebri media, mittels kranieller Computertomographie (cCT) bei Aufnahme. Ö Bei unauffälligem initialem cCT-Befund, musste sich die Diagnose durch Demarkierung eines frischen computertomographischen ischämischen Kontrolluntersuchung Mediainfarktes bestätigen. in der Die Kontrollunteruchung erfolgte um den fünften stationären Behandlungstag, und wurde auch bei positivem Aufnahmebefund zur Verlaufskontrolle und zum Ausschluß einer sekundären Einblutung durchgeführt. Ö Der Patient musste sein Einverständnis an der Studie teilzunehmen mündlich bekunden. Ö Erlaubte der klinische Zustand des Patienten ihm nicht, sein Einverständnis oder Widerspruch frei zu bekunden (z.B. bei global-aphasischer Symptomatik), war die Zustimmung eines Angehörigen erforderlich. Ö Das Alter des Patienten sollte zwischen 18 und 90 Jahren betragen. 31 2.2.2 Ausschlußkriterien Patienten wurden aus der Studie ausgeschlossen, wenn mindestens eines der folgenden Kriterien zutraf: Ö Radiologischer Nachweis eines primär oder sekundär hämorrhagischen Insultes Ö radiologischer Nachweis eines nicht dem Versorgungsgebiet der A. cerebri media entsprechenden Infarktareals. Ö Cerebrovaskuläres Ereignis in der Vorgeschichte mit persistierendem neurologischem Defizit. Ö Andere Erkrankungen, welche die Bewertung der neurologischen Untersuchung verzerren könnten. Ö Rückbildung der neurologischen Symptomatik innerhalb von 24 Stunden (Transitorische Ischämische Attacke). Ö Bekannte maligne Erkrankungen. Ö Bekannte infektiöse Begleiterkrankungen (es erfolgten Röntgenaufnahmen des Thorax zum Ausschluß pneumonischer Infiltrate, und Kontrollen des Urinstatus zum Ausschluß von Harnwegsinfektionen). Ö Bekannte rheumatologisch-immunonolgische Erkrankungen. Ö Therapie mit Kortikosteroiden oder zytostatischen Medikamenten innerhalb der letzten 30 Tage vor dem ischämischen Ereignis. Ö Bestrahlung von lymphoidem Gewebe innerhalb der letzten 90 Tage vor dem ischämischen Ereignis. In die Studie wurden insgesamt 15 Patienten eingeschlossen. Davon waren 5 männlichen und 10 weiblichen Geschlechts. Bei einem Alterspektrum zwischen 54 und 87 Jahren, betrug das Durchschnittsalter 75 Jahre (Median). Bezüglich der Infarktlokalisation überwogen 11 Patienten mit linkhemisphärischem, gegenüber 4 Patienten mit rechtshemisphärischem Mediainfarkt. 32 2.3 Graduierung des klinischen Verlaufes Zur standardisierten Beurteilung des klinischen Verlaufes wurde bei Aufnahme, am 3., 5. und am 10. postapoplektischen Tag der neurologische Status eines jeden Patienten einem Punktewert einer Schlaganfallskala zugeordnet. Als Vorlage dienten die European Stroke Scale und die National Institute of Health Stroke Scale. 2.3.1 European Stroke Scale Die European Stroke Scale (ESS) ist eine von Hanston et al. entwickelte Schlaganfallskala, die insbesondere zur Erfassung des neurologischen Defizites in der akuten und postakuten Phase eines Infarktes im Mediastromgebiet Anwendung findet (Hantson et al. 1994). Der Bewußtseinsstatus, bestehende Blickfeldausfälle, das Sprachverständnis, die Sprachproduktion, verschiedene Hirnnervenfunktionen, die proximale und distale Kraftentwicklung in den Extremitäten und die Gehfähigkeit werden mit Punkten bewertet (siehe Tabelle 5). Der zu vergebende Punktebereich liegt zwischen 0 und 100 Punkten. Je schwerer das neurologische Defizit, desto niedriger ist die erreichte Punktzahl. 2.3.2 National Institutes of Health Stroke Scale Die National Institutes of Health Stroke Scale (NIHSS) ist eine aus 15 Items bestehende Schlaganfallskala, welche den Bewußtseinstatus, die Orientierung, bestehende Blickfeldausfälle, das Sprachverständnis und die Sprachproduktion, verschiedene Hirnnervenfunktionen, die grobe Kraft in Armen und Beinen, bestehende Sensibilitätsausfälle, die Koordination und das Vorhadensein von Neglect und pathologischen Reflexen, in ihre Bewertung einbezieht (Brott et al. 1989). Der zu vergebende Punktebereich liegt zwischen 0 und 42 Punkten, wobei eine hohe Punktzahl, ein größeres neurologisches Defizit widerspiegelt. Es existieren mehrere leicht modifizierte Versionen dieser Schlaganfallskala (Kothari et al. 1997, Lyden et al. 1999, Spilker et al. 2000), wobei in dieser Studie die von Brott et al. publizierte Originalversion Anwendung fand (siehe Tab. 6). Inzwischen sind für ESS und NIHSS standartisierte deutsche Versionen ausgearbeitet worden (Berger et al. 1999). 33 2.4 Nachweis von Apoptose Der durchflußzytometrische Nachweis von apoptotischen Zellen erfolgte selbständig im neuroimmunologischen Labor des St. Josef-Hospitals Bochum. Verwendung fand das Annexin V/Propidiumiodid-Assay, eine Methode, die auf die Bindungsaffinität von Annexin V auf Phosphatidylserin beruht (Vermes et al. 1995). Phosphatidylserin ist ein negativ geladenes Phospholipid, das normalerweise auf der dem Zytosol zugewandten Seite der Zellmembran exprimiert wird. Beim apoptotischen Zelluntergang wird diese Phospholipidasymmetrie aufgehoben, so daß Phosphatidylserin auf die Zelloberfläche transloziert wird (Martin et al. 1995). Das auf der Oberfläche exprimierte Phophatidylserin kann nun mit Annexin V, einem kalziumabhängigen, phospholipidbindenden Protein mit hoher Affinität zu Phosphatidylserin markiert werden. Da die Aufhebung der Phospholipidasymmetrie auch beim nekrotischen Zelluntergang beobachtet wird, ist es notwendig, zeitgleich mit der Annexin-Markierung die Integrität der Zellmembran zu überprüfen. Dies geschieht mit der Markierung von DNA durch Propidiumiodid. Somit sind Zellen als apoptotisch definiert, wenn sie ein positives Signal für Annexin V und zugleich ein negatives Signal für Propidiumiodid aufweisen, während nekrotische Zellen für beide Marker positiv sind (Van der Eijnde et al. 1997). 2.4.1 Prinzip der Durchflußzytometrie Die Analyse einzelner Zellen wird in der Durchflußzytometrie über die simultane Messung von Fluoreszenzintensität und Streulichtsignalen ermöglicht. Mittels mehrerer unterschiedlicher Fluoreszenzfarbstoffe besteht die Möglichkeit, verschiedene Zellmerkmale gleichzeitig darzustellen. Die zu untersuchende Zellsuspension wird in einer Kapillarküvette zu einem laminaren Strom vereinzelt. Während die Zellen einen Laserstrahl passieren, erfolgt für jede einzelne Zelle eine separate Analyse mehrerer physikalischer und chemischer Parameter (Carter and Meyer 1994). Das grundlegende Funktionsprinzip wird in Abbildung 4 erläutert. 34 numerische und graphische Aufbereitung Filter PEDetektor integrierte Software halbdurchlässige Spiegel SSCDetektor FSCDetektor LASER Meßkammer Funktionsprinzip eines Durchflußzytometers Abb. 4: (vereinfachte Darstellung nach Carter und Mayer, 1994) Die markierten Zellen werden nach dem Prinzip der hydrodynamischen Fokussierung in die Meßkammer aufgesaugt. Dort trifft ein Laserstrahl auf die einzelne Zelle und wird, abhängig von den Eigenschaften dieser Zelle, gestreut. Durch optische Einrichtungen und elektronische Detektoren wird das nach vorn (FSC = forward light scatter) und das um 90º gestreute Licht (SSC = side light scatter) gemessen. Zwei weitere Detektoren registrieren quantitativ die den Fluoreszenzfarbstoffen FITC (Fluoreszeinisothiozyanat) und PE (Phykoerythin) Wellenlänge. entsprechenden Emissionssignale jeweils definierter 35 In vorliegender Studie kam ein FACScan® (Fluorescence Activated Cell Sorter and Analyzer) zur Verwendung (Becton Dickinson, Heidelberg). Die Einstellung der Betriebsparameter, die Steuerung der Messungen sowie die numerische und graphische Aufbereitung der vom Durchflußzytometer übertragenen Daten erfolgte über das integrierte Softwarepaket CellQuest® auf dem angeschlossenen Rechnersystem, einem Apple Macintosh Quadra 650 (Becton Dickinson, Heidelberg). Die Streulichtsignale bilden die Grundlage zur Identifikation und Selektion der zu untersuchenden Zellpopulationen. Das forward light scatter (FSC)-Signal ist von der Querschnittsfläche abhängig und gibt somit Auskunft über die Zellgröße. Das side light scatter (SSC)-Signal hängt von der Oberflächenbeschaffenheit und von intrazellulären Einschlüssen ab und erlaubt somit Rückschlüsse auf die Granularität der Zellen (Jacobs 1996). Die graphische Darstellung der Steulichtsignale erfolgt in einem sogenannten Zytogramm oder „dot-plot“-Graphen. Es handelt sich um eine korrelierte Zweiparameterdarstellung, die auf der Abszisse die Größe (FSC) und auf der Ordinate die Granularität (SSC) der Zellen darstellt. Abb. 5: Beispiel eines dot-plot Graphen. Nach Größe (FSC) und Granularität (SSC) lassen sich die registrierten Zellen identifizieren und können mit Hilfe von Gates selektiert werden. Die Messung erfolgt oberhalb eines als „Threshold“ bezeichneten Schwellenwertes (Pfeil), um Zelldetritus weitgehend auszuschliessen. 36 Jede Zelle wird als einzelner Punkt dargestellt, so daß sich abgrenzbare Punktwolken ergeben, die jeweils distinkte Zellpopulationen repräsentieren. Hier zeigt sich die Qualität der durchgeführten Leukozytenisolierung: die homogenen Lymphozyten- und Granulozytenpopulationen lassen sich untereinander und von Erythrozyten und Zelldetritus abgrenzen. Aus dem dot-plot Graphen läßt sich im nächsten Schritt die zu untersuchende Zellgruppe selektieren, indem bestimmte Punktwolken mit einem Fenster umrahmt werden (Gating). Die Software betrachtet anschliessend die Zellen in diesem Gate als Ausgangspopulation für weitere Analysen (entsprechend 100 %). Weiterhin lassen sich die ausgewählten Zellen nach den ermittelten Fluoreszenzintensitäten differenzieren. Bei der Fluoreszenz handelt es sich um eine rasch abklingende Lichtemission von Molekülen nach Absorption energiereicher Strahlung. Absorptions- und Emissionsspektrum eines jeden fluoreszierenden Farbstoffes liegen dabei in einem charakteristischen, unterschiedlich breitem Wellenlängenbereich mit definiertem Maximum. Grundsätzlich verfügt jede Zelle über eine gewisse Autofluoreszenz. Sind jedoch zusätzlich mit Fluorochromen gekoppelte Antikörper (z.B. Annexin V-FITC) zwecks Apoptosenachweis auf der Zelle gebunden, wird die Fluoreszenzintensität erheblich stärker: Der Fluoreszenzfarbstoff wird durch das monochromatische Licht (ArgonLaser, λ=488nm) angeregt, und emittiert Lichtsignale von bekannter Wellenlänge, die mit geeigneten Photodetektoren erfaßt werden können (siehe Abb. 4). Das in dieser Studie eingesetze Gerät verfügte über drei Photodetektoren, die jeweils unterschiedliche Fluoreszenzen quantitativ nachweisen können: FL1- Detektor (Spektralmeßbereich λ=515-545 nm), nimmt Emissionen des Farbstoffes Floureszeinthiozyanat (FITC) wahr, während Phycoerythrin (PE) von Detektor FL2 (Spektralmeßbereich λ=564-606 nm) und Phycoerythrin Zyanin-5 (PE-Cy5) von Kanal FL3 (Spektralmeßbereich λ >650 nm) detektiert werden. Die ermittelten Daten werden als Histogramm der Fluoreszenzintensität gegen die Zellzahl dargestellt. Um diese spezifischen Meßsignale von der unspezifischen Autofluoreszenz einer Zelle zu unterscheiden, müssen vorerst die Fluoreszenzkanäle durch eine Negativkontrolle justiert werden (Isotyp-Kontrolle). Im einzelnen wird zunächst durch die Gabe eines Isotypen-Antikörpers die höchste Kanalnummer bestimmt, in die die Fluoreszenz (Autofluoreszenz und unspezifische Bindung) einer negativen Zelle noch fallen kann. 37 Die Software berücksichtigt diesen Kanalwert als Schwellenwert für die folgenden Messungen, und die Ergebnisse werden als Prozentwerte positiver und negativer Zellen ausgedrückt. Weiterhin ist zu berücksichtigen, daß durch den Einsatz mehrerer Fluoreszenzfarbstoffe die Möglichkeit der Überlagerung der Fluoreszenzspektren gegeben ist. Durch Kompensationseinstellungen wird der Fluoreszenzanteil, der durch die spektrale Überlappung verursacht wird, von jedem Signalpuls subtrahiert (siehe Abb.6). FL1 FL2 (515-545 nm) 500 (564 – 606nm) 550 600 Wellenlänge in nm 650 FITC PE Überlappung der Emissionsspektren (Kompensation durch FL2 - % FL1) Abb. 6: Überlappung der Emissionsspektren von FITC und PE (vereinfachte Darstellung nach Carter and Mayer, 1994) Die Fluoreszenz-Kompensationselektronik subtrahiert den Anteil der FITC-Emission, der im Bereich des Photodetektors FL2 erscheint. 2.4.2 Isolierung und Markierung von peripheren Leukozyten Nach der an einer Cubitalvene vorgenommenen Blutentnahme (5ml EDTA–Vollblut je Patient und Untersuchungstag), erfolgte umgehend die Isolierung und Markierung von peripheren Leukozyten nach folgendem Präparationsschema: 38 a) Lysierung von im Vollblut enthaltenen Erythrozyten: Dazu wurden jeweils 100 µl des EDTA-Vollblutes in vier FACS-Röhrchen pipettiert, mit 1000 µl einer Lyse-Lösung (Immunotech, 1:25 in PBS verdünnt) versetzt und für 10 min inkubiert. b) Abwaschen der lysierten Erythrozyten und der zugefügten Lyse-Lösung: Nach Zugabe von 3ml HEPES-Lösung wurden die Röhrchen 10 Minuten lang bei 1200 U/min mit Bremse zentrifugiert (Heraeus Sepatech Minifuge RF). Nach der Zentrifugation erfolgte die vorsichtige Dekantierung des flüssigen Überstandes, so daß nur die mononukleären Zellen als Bodensatz erhalten blieben. Der Waschvorgang wurde nochmals wiederholt, so daß am Ende dieses Präparationsschrittes vier FACSRöhrchen mit gereinigten Leukozyten zur weiteren Bearbeitung zur Verfügung standen. c) Markierung der Leukozyten mit Fluorochrom gekoppelten Reagentien: Für den durchflußzytometrischen Nachweis der Apoptose wurden die nun isolierten Leukozyten in 200 µl HEPES-Lösung resuspendiert und mit entsprechenden Reagentien versetzt: FACS-Röhrchen 1 wurde mit 10µl PE-Cy5-gekoppeltem Maus-IgG1 (CoulterImmunotech #1473, Marseille, France) versetzt und diente als Negativ- und Isotypenkontrolle zum Abgleich der Autofluoreszenz und unspezifischen Bindung für die folgenden Messungen. FACS-Röhrchen 2 und 3 wurden mit 10 µl Fluoreszeinisothiozyanat (FITC)gekoppeltem Annexin V (Bender MedSystems #BMS306FI, Wien, Austria) bzw. 20 µl eigenfluoreszierenden Propidiumiodid (Sigma-Aldrich #4170, Deisenhofen) versetzt, und dienten als Kompensationsproben zur Korrektur von Überlagerungen in den Emmissionsspektren. FACS-Röhrchen 4 wurde mit 10µl Annexin V-FITC, 20µl Propidiumiodid und 10µl PE-Cy5-gekoppelten CD4-Antikörpern (Coulter-Immunotech #1574, Marseille, France) versetzt, und diente somit als die eigentliche Komplettprobe im Meßansatz. Nach Hinzufügen der fluorochromgekoppelten Reagentien, wurden die Messansätze für 15 Minuten im Dunkeln inkubiert. Es folge ein weiterer Waschvorgang mit HEPESLösung, um ungebundene Antikörper, Propidiumiodid und Annexin V aus den Proben zu entfernen. Vor den anschliessenden FACScan®-Messung wurde das Zellpellet mit den markierten Zellen in 500µl HEPES-Lösung resuspendiert. 39 2.4.3 FACScan®-Auswertungsprozedur Die standartisierte Auswertung der vom Durchflußzytometer übertragenen Daten erfolgte nach folgender Prozedur : a) Mit Hilfe der Kompensationsproben Negativkontrolle erfolgte die (Isoptypen-Kontrolle) Justierung und und den Kontrolle der Geräteeinstellungen. b) In der anschliessenden Komplettprobenmessung, wurde die Lymphozyten- bzw. Granulozytenpopulation im Dot-plot-Graphen lokalisiert und eingegrenzt. c) Die Selektion der CD4+-Zellen erfolgte über die Identifizierung von CD4-PE-Cy5positiven Zellen in einem gesonderten Histogramm (siehe Abb. 7) Abbildung 7: Histogramm zur Selektion von CD4+Lymphozyten Der hier klar abgrenzbare, spezifische Fluoreszenz-Peak erlaubt die Auswahl der CD4+-Zellen für weitergehende Analysen dieser Subpopulation d) Für jede zu untersuchende Population (Gesamt-Lymphozyten, CD4+-Lymphozyten und Granulozyten) erfolgte die Markierung des Anteils FL1-(Annexin V)-positiver und FL2-(Propidiumiodid)-positiver Zellen in den jeweiligen Histogrammen e) Berechnung des prozentualen Anteils apoptotischer Zellen in der jeweiligen Zellpopulation, und Übertragung der gewonennen Daten in die statistische Datenverarbeitung. (siehe Abb. 8) 40 Abb. 8: Histogramme zur Bestimmung des relativen Anteils apoptotischer Zellen Die Häufigkeit Annexin V -, und Propidiumiodid - positiver Zellen wurde separat ermittelt. Für abgebildetes Beispiel gilt: Von über 11.000 registrierten Zellen waren 2036 (17,08%) für Annexin V, und nur 75 (0,63%) für Propidiumiodid positiv. Somit beträgt der Anteil apoptotischer Zellen in dieser Granulozytenpopulation ( 17,08% - 0,63% ) = 16,45 %. 2.5 Bestimmung von Zytokin- und Adhäsionsmolekülkonzentrationen Die Bestimmung der Serumkonzentrationen von Interleukin-1β (IL-1 β), Interleukin-6 (IL-6) und vom Interzellulären Adhäsionsmolekül-1 (ICAM-1) erfolgte selbständig im neurochemischen Labor des St.Josef-Hospitals Bochum. Verwendung fanden nichtkompetitive, direkte Enzyme-Immuno-Assay (EIA)-Tests, deren Prinzip im folgenden vorgestellt wird. 2.5.1 Prinzip eines nicht-kompetetiven, direkten Enzym-Immuno-Assay Zur quantitativen Bestimmung von Antigenkonzentrationen ist der Enzyme-ImmunoAssay eine etablierte Methode (Varsanyi 1994). Die gebundenen Antigene werden mit Hilfe eines gekoppelten Enzyms, das ein farbloses Substrat in ein farbiges Produkt umwandelt, nachgewiesen. Die Extinktion dieses Farbkomplexes wird mit einem Spektrophotometer gemessen, wobei proportional der Antigenkonzentration ist. die ermittelte Farbstoffintensität direkt 41 E Antigen (IL-1ß, IL-6 bzw. ICAM-1) Abb.9: Enzymgekoppelter Antikörper E E Substrat markierter Antikörper gebunden an Antigen farbloses Substrat farbiges Produkt Prinzip eines nicht-kompetetiven, direkten Enzym-Immuno-Assay Bei den in dieser Studie verwendeten EIA-Kits sind die sogenannten „FängerAntikörper“ (AK-1) bereits an die feste Phase der mitgelieferten Mikrotiterplatten gebunden. Nach Hinzufügen der antigenhaltigen Probe (Patientenserum) läßt sich das gebundene Antigen durch einen zweiten, markierten Antikörper (AK-2) nach oben beschriebenem Prinzip nachweisen. Der zweite Antikörper muß gegen ein anderes Epitop gerichtet sein als der primäre Antikörper. Dieser auch als „Sandwich-EIA“ bezeichnete Test ist hochspezifisch, da Antigene, die mit einem Antikörper kreuzreagieren, mit großer Wahrscheinlichkeit nicht auch noch an den zweiten binden. 1. Antikörper 1 (AK-1) ist bereits an die feste Phase der Mikrotiterplatte gebunden. AK-1 2. Antigenhaltige Probe (Patientenserum) wird hinzugegeben. 3. Der zweite, fluoreszenzgekoppelte Antikörper (AK-2) wird hinzugefügt. Dieser Antikörper reagiert AK-2 E mit einem anderen Epitop am Antigen als der erste Antikörper. 4. Nach Substratzugabe wird die Extinktion des entstandenen farbigen Produktes spektrophotometrisch bestimmt, die direkt proportional der Antigenkonzentration in der Probe ist. Abb. 10: Prinzip des „Sandwich-EIA“ E 42 2.5.2 Probengewinnung und -bearbeitung Zur Serumgewinnung wurden Röhrchen verwendet, die mehrere kaolinbeschichtete Polystyrolkügelchen als Gerinnungsaktivatoren enthielten. Pro Patient und Untersuchungstag wurden 20 ml Vollblut aus einer Cubitalvene in ein solches Serum-Röhrchen entnommen. Es erfolgte die 10 Minuten lange Zentrifugation bei 3000 U/min (Hereus Sepatech Minifuge RF) mit anschliessender Aliquotierung der flüssigen Fraktion. Bis zur Testdurchführung der Enzymimmunoassays, wurde das Serum bei -20º C eingefroren. 2.5.3 Materialien und Testdurchführung Folgende Enzyme-Amplified-Sensitivity-Immunoassays (EASIA)-Kits der Firma BioSource Europe S.A., Nivelles / Belgium, wurden verwendet: Medgenix IL-6 EASIA Kit (#40.126.00), Medgenix IL-1β EASIA Kit (#40.121.00) und Medgenix sICAM-1 EASIA Kit (# 40.115.00) 1. Bestimmung der IL-6 Konzentration im Serum Den Angaben des Herstellers entsprechend, wurden folgende Prozeduren befolgt: a) Ansetzen der Proben: Von jeder Patientenprobe und von jeder der mitgelieferten Standard- und Kontrollproben, wurden jeweils 100µl auf die mit „FängerAntikörpern“ beschichtete Mikrotiterplatte pipettiert. Die Standardproben dienten der Erstellung einer Eichkurve für die Spektrophotometrie, die Kontrollproben dienten der abschliessenden Qualitätskontrolle. Jeder Probenansatz wurde doppelt gestellt, so daß sich folgendes exemplarisches Schema auf der Mikrotiterplatte (96 wells) widerspiegelte (Abbildung 11): 43 Standard Standard Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 1 5 A A A A A A A A A A Standard Standard Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 1 5 A A A A A A A A A A Standard Standard Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 2 6 B B B B B B B B B B Standard Standard Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 2 6 Standard Kontroll 3 e1 Standard Kontroll 3 e1 Standard Kontroll 4 e1 Standard Kontroll 4 e1 Abb. 11: B B B B B B B B B B Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 C C C C C C C C C C Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 C C C C C C C C C C Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 D D D D D D D D D D Patient 1 Patient 2 Patient 3 Patient 4 Patient 5 Patient 6 Patient 7 Patient 8 Patient 9 Patient 10 D D D D D D D D D D Exemplarisches Schema der angesetzten Proben auf der Mikrotiterplatte A= Probe vom Tag des Schlaganfalls, B= Probe vom 3. postapoplektischen Tag, C= Probe vom 5. postapoplektischen Tag, D= Probe vom 10. postapoplektischen Tag b) Nach Zugabe von 50 µl einer mitgelieferten Pufferlösung wurden die Ansätze 60 Minuten lang, auf einem horizontalen „Shaker“ bei 700 rpm inkubiert. c) Um die nicht gebundenen, irrelevanten Serumbestandteile zu entfernen, erfolgte die dreimalige Aspiration und Waschung mit der mitgelieferten und nach Angaben des Herstellers verdünnten Medgenix-Waschlösung. d) 100 µl eines Peroxidase (HRP)-gekoppelten Antikörpers wurden hinzugefügt, der an ein zweites Epitop von IL-6 bindet, und somit das „EIA-Sandwich“ komplettiert. e) Die Ansätze wurden erneut für 60 Minuten auf dem Shaker bei 700rpm inkubiert. f) Um die ungebundenen enzymgekoppelten Antikörper aus der Probe zu entfernen, erfolgten wiederum drei Waschvorgänge wie oben beschrieben. g) Nach Zugabe von jeweils 200µl des chromogenen Substrates (TetrametylbenzidineH2O2), erfolgte eine 30 Minuten lange Inkubation im Dunkeln und unter kontinuierlichem Schütteln bei 700 rpm. h) Die chromogene Reaktion wurde durch Zugabe von 50 µl einer schwefelsäurehaltigen Lösung gestoppt, so daß die Proben nun meßbereit für die Spektrophotometrie zur Verfügung standen. 44 i) Die Extinktionswerte des in jedem Well der Mikrotiterplatte entstandenen Farbproduktes wurden nun bei 450 nm spektrophotometrisch ermittelt. j) Da jeder Probenansatz doppelt gestellt wurde, wurde der Mittelwert der beiden Extiktionswerte für jede Probe berechnet. Dies war zugleich die erste interne Qualitätskontrolle für den durchgeführten Test, da sich die ermittelten Extinktionswerte beider Ansätze nur unwesentlich unterscheiden durften. k) Anhand der angegebenen Konzentrationen in den Standardproben, wurde nun eine Eichkurve erstellt. Die angegebene Konzentration wurde gegen die ermittelte Extinktion aufgetragen (Abbildung 12): Abb. 12: Beispiel einer Eichkurve Die angegebene Konzentration der Standardproben wird gegen die ermittelte Extinktion aufgetragen. l) Anhand dieser Eichkurve berechnete die Software die jeweilige Konzentration in jedem Probenansatz. m) Als zweite interne Qualitätskontrolle dienten die angegebenen Konzentrationen der mitgelieferten Kontrollproben. Sie wurden mit den ermittelten Konzentrationen verglichen, und durften nicht außerhalb des angegebenen Bereichs liegen. n) Die gewonnenen Daten konnten nun in die statistische Datenverarbeitung übertragen werden. 45 Entsprechend wurde bei der Bestimmung der Konzentrationen von IL-1β und ICAM-1 verfahren. Die jeweiligen Präparationsschritte sollen hier nur tabellarisch aufgezeigt werden: Tab. 5: Bestimmung der IL-1β -Konzentration im Serum: Standart-, Kontroll- und Patientenproben 200µl HRP-gekoppeltes Anti-IL-1β 50 µl 120 min Inkubation auf horizontal continuous shaker bei 700 rpm Dreimaliger Waschvorgang mit 0,4 ml verdünnter Medgenix-Waschlösung Chromogenes Substrat (TMB+H2O2) 200µl 15 min Inkubation im Dunkeln auf horizontal continuous shaker bei 700 rpm Stop-Lösung (H2SO4) 50 µl Spektrophotometrische Extinktionmessung bei 450 nm Berechnung der jeweiligen Konzentrationen Tab. 6: Bestimmung der ICAM-1-Konzentration im Serum: Verdünnung der Proben in Medgenix-Lösung 1:100 Standart-, Kontroll- und Patientenproben 25µl HRP-gekoppeltes Anti-ICAM-1 75 µl 120 min Inkubation auf horizontal continuous shaker bei 700 rpm Dreimaliger Waschvorgang mit 0,4 ml verdünnter Medgenix-Waschlösung Chromogenes Substrat (TMB+H2O2) 200µl 30 min Inkubation im Dunkeln auf horizontal continuous shaker bei 700 rpm Stop-Lösung (H2SO4) Spektrophotometrische Extinktionmessung bei 450 nm Berechnung der jeweiligen Konzentrationen 50 µl 46 2.6 Messung der CRP- und Fibrinogenkonzentration Die Messung der CRP- und Fibrinogenkonzentrationen i.S. erfolgte im Rahmen von klinisch-chemischen Laboruntersuchungen durch die Mitarbeiter im Zentrallabor des St.-Josef Hospitals Bochum, so daß hier auf eine ausführliche Darstellung der Bestimmungsmethoden verzichtet wird. Anwendung fanden die funktionelle Bestimmung der Fibrinogenkonzentration nach Clauss und nephelometrische Verfahren für die Bestimmung der CRP-Konzentration. Als Referenzbereiche gelten nach den regelmäßig durchgeführten Ringversuchszertifikaten für CRP eine Konzetration von < 8,0 mg/l und für Fibrinogen eine Konzentration von 200-400 mg/dl. 2.7 Statistische Datenanalyse Die statistische Datenanalyse erfolgte mit dem Softwarepaket SPSS Version 10.1., die graphische Darstellung mit dem Softwareprogramm Microsoft Excel 97. Aufgrund der relativ kleinen Stichproben fanden nichtparametrische Verfahren Verwendung. Im Rahmen der deskriptiven Statistik wurde als Lagemaß der Median und als entsprechendes Streuungsmaß der mittlere empirische Quartilsabstand verwendet: mittlere empirische Quartilsabstand = ½ * [(Median -1.Quartile)+(3. Quartile-Median)] Wo es sinnvoll erschien, wurden zusätzlich Streubereich, 1. und 3. Quartile angegeben. Neben der deskriptiven Darstellung mit absoluten Werten, erfolgte zur Analyse von dynamischen Verläufen die zusätzliche Darstellung der Relativ- oder Differenzwerte in Bezug zum Ausgangswert. Die graphische Darstellung erfolgt in Form von Kurvendiagrammen. Wo es sinnvoll erschien, wurden den Kurven Whiskers hinzugeführt (beispielhaft erläutert in Abb. 14) um Streuungsmaße in die Graphik mit einzubeziehen. Um Unterschiede zwischen den beiden Gruppen auf statistische Signifikanz zu prüfen, wurde der nichtparametrische Mann-Whitney U-Test für zwei unabhängige Stichproben durchgeführt (Kolles 1989). Um Unterschiede, die sich während des zehntägigen Beobachtungszeitraums innerhalb der gleichen Gruppe einstellten, auf statistische Signifikanz zu prüfen, wurde der nichtparametrische Wilcoxon-Test für zwei verbundene Stichproben angewendet (Kolles 1989). 47 3. Ergebnisse Inhalt vorliegender Studie war, den dynamischen Verlauf mehrerer immunologischer Parameter in der postakuten Phase eines ischämischen Hirninfarktes zu dokumentieren, und einen möglichen Zusammenhang zwischen dieser Dynamik und dem klinischen Verlauf, zu prüfen. Dazu wurden die Patienten, ihrem klinischen Verlauf entsprechend, in zwei Gruppen aufgeteilt. Für jede Gruppe erfolgte zunächst eine deskriptivstatistische Auswertung der erhobenen Daten, um anschliessend den dynamischen Verlauf in beiden Gruppen miteinander zu vergleichen. Unterschiedliche Verläufe wurden auf ihre statistische Signifikanz hin geprüft. 3.1 Aufteilung der Patienten nach klinischem Verlauf Anhand des klinischen Verlaufes wurden die Patienten in zwei Untersuchungsgruppen aufgeteilt: Ö Gruppe A: Patientenkollekiv mit deutlich rückläufigen neurologischen Ausfallerscheinungen („positiver Verlauf“) Ö Gruppe B: Patientenkollekiv mit nur geringer Rückbildung oder auch Progredienz der Symptomatik („negativer Verlauf“) Als Trennlinie zwischen positivem und negativem Verlauf wurde ein Anstieg im ESS-Score von über 15 Punkten während des Untersuchungszeitraums definiert. Es ergab sich folgende Aufteilung der 15 Patienten: Tab. 7: Deskriptive Merkmale der beiden Vergleichsgruppen Gruppe A Gruppe B Anzahl der Patienten: 7 8 Altersverteilung (in Jahren): 54-86 (Median = 70) 57-87 (Median=76) Geschlechtsverteilung: weibl.= 5, männl. = 2 weibl.= 6, männl.= 2 Anstieg im ESS-Score: 16 bis 36 (Median=25) -7 bis11 (Median=10,5) Abfall im NIHSS-Score: 5 bis 9 (Median=7) -3 bis 8 (Median 3) Gruppe A: Patienten mit Anstieg im ESS-Score von über 15 Punkten = „positiver Verlauf“ Gruppe B: Patienten mit geringerem Anstieg oder Abfall im ESS-Score = „negativer Verlauf“ 48 Der unterschiedliche klinische Verlauf beider Gruppen ist in den folgenden Diagrammen dargestellt. Es sei nochmals erwähnt, daß eine Rückbildung des neurologischen Defizits in der ESS mit einem Anstieg, in der NIHSS jedoch mit einem Abfall des Scores einhergeht. Schlaganfallskalen - Gruppe A 100 36 30 80 60 24 18 42 40 NIHSS - Score ESS - score 65 61 59 ESS NIHSS 12 16 20 13 0 0 0 1. Tag 10,5 10 0 3. Tag 0 5. Tag 6 0 10. Tag S c h la g a n fa lls k a le n - G ru p p e B 100 36 30 80 24 ESS - score 2 0 ,5 60 2 0 ,5 17 18 40 32 30 2 7 ,5 ESS N IH S S 12 28 20 0 NIHSS - Score 22 6 0 1. Tag 0 3. Tag 0 5. Tag 0 0 10. Tag Abb. 13: Klinischer Verlauf beider Gruppen anhand der Schlaganfallskalen Die erreichten Punktwerte (Median) in den jeweiligen Schlaganfallskalen zeigen die deutlich schwächere Erholungstendenz der Gruppe B gegenüber der Gruppe A auf. Die während dieser Zeit gemessenen immunologischen Parameter werden im folgenden zwischen beiden Gruppen verglichen. 49 3.1 Apoptose peripherer Lymphozyten im Vergleich In einer Vorauswertung werden die erhobenen absoluten Apoptoseraten jeder untersuchten Leukozytenpopulation für jeden Untersuchungstag deskriptiv dargestellt. Um den dynamischen Verlauf zu prüfen, werden die postapoplektischen Apoptoseraten in Relation zu den am Tag des Ereignisses ermittelten Ausgangswert gesetzt. Wie aus folgenden Diagrammen hervorgeht, lässt der Vergleich beider Untersuchungsgruppen unterschiedliche Tendenzen im dynamischen Verlauf erhobener Apoptoseraten vermuten: Einige der Patienten mit ungünstigerem klinischen Verlauf (Gruppe B) verzeichneten in den ersten beiden Tagen eine leichtgradig ansteigende Rate apoptotischer Lymphozyten, während Patienten mit rückläufiger Stroke-Symptomatik (Gruppe A) eine stabile bzw. leicht abnehmende Apoptoserate aufwiesen. Diese Beobachtung erreicht jedoch im angewandten Mann-Whitney U-Test keine statistische Signifikanz. Bei der Analyse der CD4+-Lymphozyten-Subpopulation ist diese Beobachtung nur sehr schwach ausgeprägt, wobei die Analyse der Granulozyten-Population keinen erkennbaren Unterschied zwischen beiden Gruppen erbrachte. Der Vergleich der Apoptoseraten peripherer Granulozyten lässt keinen Unterschied zwischen den beiden Gruppen erkennen. 50 3.2.1 Lymphozyten-Gesamtpopulation Tab. 8: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Lymphozyten Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % Gruppe A 15,04 (0,54) 14,97 (0,60) 15,16 (1,70) 13,57 (1,58) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 14,07 (1,80) 15,56 (1,16) 15,12 (2,86) 16,75 (2,31) pb n.s. n.s. n.s. n.s. pª n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe A Gruppe B 25 25 20 15,04 15 14,97 15,16 13,57 10 5 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Apoptoserate in % Apoptoserate in % 20 15 14,07 15,56 16,75 15,12 10 5 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Abb. 14: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Lymphozyten Auf diesen Graphiken ist der Verlauf der absoluten Apoptoseraten (Mediane) dargestellt. Die sich vertikal aus jedem Wert nach oben und unten erstreckenden Ausläufer (whiskers) repräsentieren den Bereich zwischen 1. und 3. Quartile. Tab. 9: Verlauf der Apoptoserate peripherer Lymphozyten in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 1,00 (0,06) 1,00 (0,12) 0,91 (0,10) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 1,08 (0,06) 1,04 (0,07) 1,14 (0,17) pª n.s. n.s. n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 51 3.2.2 CD4+ - Lymphozyten - Subpopulation Anmerkung: Da der zur Markierung von CD4+-Leukozyten benötigte PE-Cy5–CD4-Antikörper zum Untersuchungszeitpunkt eines Patienten nicht vorrätig war, werden hier die 7 Patienten der Gruppe A nur mit 7 (anstatt 8) Patienten aus der Gruppe B verglichen. Tab. 10: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer CD4+-Lymphozyten Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 13,46 (0,68) 13,23 (0,84) 12,87 (1,05) 11,95 (0,55) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 13,36 (1,51) 13,68 (0,94) 14,70 (2,43) 12,69 (1,51) pb n.s. n.s. n.s. n.s. pª n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe A Gruppe B 25 25 20 20 Apoptoserate in % 15 13,36 13,23 11,95 12,87 10 5 Apoptoserate in % 13,46 13,68 14,70 15 12,69 10 5 0 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Abb. 15: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer CD4-Lymphozyten Tab. 11: Verlauf der Apoptoserate peripherer CD4-Lymphozyten in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 0,99 (0,08) 0,96 (0,02) 0,89 (0,07) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 1,03 (0,05) 1,06 (0,10) 1,02 (0,09) pª n.s. n.s. n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 52 3.2.3 Granulozyten Tab. 12: Verlauf der absoluten Apoptoserate peripherer Granulozyten Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % Gruppe A 11,27 (2,36) 12,87 (4,42) 13,63 (3,64) 13,56 (3,25) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 10,05 (4,05) 9,56 (2,30) 8,48 (5,10) 10,54 (4,22) pb n.s. n.s. n.s. n.s. pª n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe A 25 20 20 13,63 13,56 15 Apoptoserate in % 12,87 15 Apoptoserate in % Gruppe B 25 11,27 10 5 10 10,05 9,56 10,54 8,48 5 0 0 1. Tag 1. Tag 3, Tag 5.Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag 10. Tag Abb. 16: Verlauf der absoluten Apoptoseraten peripherer Granulozyten Tab. 13: Verlauf der Apoptoserate peripherer Granulozyten in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in % 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 1,05 (0,40) 1,17 (0,27) 1,20 (0,10) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 1,25 (0,44) 1,46 (0,47) 0,87 (0,33) pª n.s. n.s. n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Der Vergleich der Apoptoseraten peripherer Granulozyten lässt keinen Unterschied zwischen den beiden Gruppen erkennen. Auffällig ist die große Streubreite der ermittelten Werte. 53 3.3 Zytokine und Adhäsionsmolekule 3.3.1 Interleukin-1β Bei der Bestimmung der Interleukin-1β-Konzentration i.S. der ersten 9 Patienten lagen die ermittelten Werte durchgehend im nicht messbaren Bereich bzw. konstant unter 1 pg/ml, und zeigten somit keine Unterschiede zwischen den beiden Gruppen. Dies entspricht den von Tarkowski und Mitarbeitern veröffentlichten Ergebnissen, so daß von weiteren Untersuchungsgängen aus Kostengründen abgesehen wurde (Tarkowski et al. 1995). Auf eine tabellarische oder graphische Darstellung der ermittelten Konzentrationen wird aus Gründen der Übersichtlichkeit verzichtet. Die Interpretation dieses Ergebnisses wird in der Diskussion erörtert. Dem analytischen Vorgehen bei der Darstellung der unterschiedlichen Apoptoseraten entsprechend, werden auch in diesem Abschnitt die ermittelten Konzentrationen zunächst tabellarisch in Absolutwerten und in Relation zum Ausgangswert aufgeführt. Dabei ist zu erkennen, daß Patienten mit einem ungünstigeren klinischen Verlauf (Gruppe B) höhere Konzentrationen mehrere Entzündungsparameter aufweisen, als die Patienten mit rückläufiger Stroke-Symptomatik (Gruppe A). Diese Unterschiedlichkeit erreicht bei einigen Messparametern statistische Signifikanz (s.u.). Um Fehlinterpretationen zu vermeiden galt bei der Prüfung des dynamischen Verlaufs der CRP-Konzentrationen nicht die Relation, sondern die Differenz zur Ausgangswert als Vergleichparameter. (Bsp.: ein Anstieg von 1 auf 3 mg/l bedeutet eine Erhöhung um 200%, gilt jedoch nicht als pathologisch. Hingegen bedeutet ein Anstieg von 25 auf 35 mg/l lediglich eine Erhöhung um 40%, weist jedoch auf eine vorliegende Entzündungsreaktion hin. Der Vergleich der Differenzen (in diesem Beispiel 2 und 10 mg/l) erlaubt eine der klinisch-chemischen Bedeutung des Parameters angepasste Interpretation.) 54 3.3.2 Interleukin-6 Tab. 14: Verlauf der absoluten Konzentration von Interleukin-6 i.S. Median der Konzentrationen (mittlerer Quartilsabstand) in pg/ml Gruppe A 23,29 (7,92) 16,96 (7,70) 15,71 (22,58) 14,89 (8,08) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 32,65 (18,31) 32,91 (11,31) 44,49 (16,16) 38,36 (19,64) pb n.s. 0,040 n.s. n.s. pª n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe B 80 60 60 44,49 32,91 40 23,29 16,96 15,71 20 14,89 0 1. Tag Abb. 17: 3, Tag 5.Tag 10. Tag Konzentration in pg/ml Konzentration in pg/ml Gruppe A 80 40 38,36 32,65 20 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Verlauf der absoluten IL-6 - Konzentration in den Vergleichsgruppen Tab. 15: Verlauf der Konzentrationen von IL-6 i.S. in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in pg/ml 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 0,87 (0,12) 0,77 (5,32) 1,28 (1,12) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 0,67 (0,84) 1,28 (0,85) 0,65 (0,30) pª n.s. n.s. n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 55 3.3.3 Interzelluläres Adhäsionsmolekül – 1 (ICAM-1) Tab. 16: Verlauf der absoluten Konzentration von ICAM-1 i.S. Median der Konzentrationen (mittlerer Quartilsabstand) in ng/ml Gruppe A 293,3 (254,9) 562,6 (289,8) 524,8 (201,3) 617,7 (282,6) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 479,82 (400,29) 477,41 (295,36) 376,86 (226,29) 373,53 (276,69) pb n.s. n.s. n.s. n.s. pª n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe A Gruppe B 1000 1000 750 524,8 562,6 617,7 500 293,3 250 0 1. Tag Abb. 18: 3, Tag 5.Tag 10. Tag Konzentration in ng/ml Konzentration in ng/ml 750 477,4 500 376,9 479,8 373,5 250 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Verlauf der absoluten ICAM-1 - Konzentration in den Vergleichsgruppen Tab. 17: Verlauf der Konzentrationen von ICAM-1 i.S. in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in ng/ml 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 1,33 (0,25) 0,98 (0,30) 1,05 (0,32) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 1,00 (0,08) 1,16 (0,20) 1,07 (0,13) pª n.s. n.s. n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 56 3.4 Akute-Phase Proteine 3.4.1 C-Reaktives Protein Tab. 18: Verlauf der absoluten Konzentration von CRP i.S. Median der Konzentrationen (mittlerer Quartilsabstand) in mg/l Gruppe A 7,9 (11,9) 5,1 (9,3) 4,5 (5,9) 4,0 (5,5) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 16,7 (5,4) 29,8 (12,9) 34,8 (16,4) 18,8 (11,8) pb n.s. n.s. 0,029 n.s. pª 0,050 0,036 n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe B 70 60 60 50 50 40 40 30 30 20 7,9 10 5,1 4,5 4 0 1. Tag Abb. 19: Tab. 19: 3, Tag 5.Tag 10. Tag Konzentration in mg/l Konzentration in mg/l Gruppe A 70 34,8 29,8 20 18,8 16,7 10 0 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Verlauf der absoluten CRP-Konzentration in beiden Vergleichsgruppen Verlauf der Konzentrationen von CRP i.S. in Differenz zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in mg/l 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 0 (0) -2,70 (1,92) -3,40 (6,38) -1,20 (9,18) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 0 (0) 17,05 (15,70) 18,30 (12,83) 8,10 (9,30) pª 0,050 0,036 n.s. pb 0,021 0,040 n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 57 3.4.2 Fibrinogen Tab. 20: Verlauf der absoluten Konzentration von Fibrinogen i.S. Median der Konzentrationen (mittlerer Quartilsabstand) in mg/dl Gruppe A 381 (36) 396 (75) 420 (72) 443 (49) 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 381 (73) 456 (59) 534 (86) 496 (58) pb n.s. n.s. n.s. n.s. pª 0,050 0,017 n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). Gruppe B 600 500 500 420 396 381 443 400 300 200 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag 534 456 496 Konzentration in mg/dl Konzentration in mg/dl Gruppe A 600 400 381 300 200 1. Tag 3, Tag 5.Tag 10. Tag Abb. 20: Verlauf der absoluten Fibrinogenkonzentration in den Vergleichsgruppen Tab. 21: Verlauf der Konzentrationen von Fibrinogen i.S. in Relation zum Ausgangswert Median der Apoptoserate (mittlerer Quartilsabstand) in mg/dl 1. Tag 3. Tag 5. Tag 10. Tag Gruppe A 1 (0) 1,17 (0,10) 1,09 (0,09) 1,12 (0,09) pª n.s. n.s. n.s. Gruppe B 1 (0) 1,15 (0,09) 1,32 (0,10) 1,33 (0,35) pª 0,035 0,017 n.s. pb n.s. n.s. n.s. pª= Signifikanzniveau (Wilcoxon) für Vergleich zwischen Verlaufs- und Ausgangswerte (bei p<0,05). pb= Signifikanzniveau (Mann-Withney U) für Vergleich zwischen Gruppe A und B (bei p<0,05). 58 Tab. 22: Synopsis der Ergebnisse Vergleich von Apoptoseraten: Patienten mit einem ungüstigeren klinischen Verlauf (Gruppe B) zeigten eine leicht aufsteigende Tendenz in der Apoptoserate von Lymphozyten, während Patienten mit günstigerem klinischen Verlauf (Gruppe A) eine stabile bzw. leicht abnehmende Apoptoserate aufwiesen. Diese Beobachtung erreichte jedoch keine statistische Signifikanz. Lymphozyten: Ein tendentiell unterschiedlicher Verlauf zwischen beiden Gruppen erreichte keine statistische Signifikanz. CD4+-Lyphozyten: Die unterschiedliche Tendenz war nur noch schwach ausgeprägt. Granulozyten: Es war kein unterschiedlicher Verlauf zwischen beiden Gruppen zu erkennen. Vergleich von immunologisch-inflammatorischen Parametern: Patienten mit einem ungünstigeren klinischen Verlauf (Gruppe B) zeigten eine deutlich stärkere postischämische Entzündungsreaktion als Patienten mit einem günstigeren klinischen Verlauf (Gruppe A). Einige Parameter erreichten statistische Signifikanz. Interleukin-1β: Die ermittelten Serumwerte von IL-1β lagen in beiden Gruppen durchgehend unter 1 pg/ml bzw. im nicht detektierbaren Bereich. Interleukin-6: Patienten der Gruppe B zeigten am 3. Tag einen statistisch signifikant erhöhten Wert gegenüber der Gruppe A. ICAM-1: Es war kein unterschiedlicher Verlauf zwischen beiden Gruppen zu erkennen. C-reaktives Protein: Patienten der Gruppe B zeigten am 3. und am 5. postapoplektischen Tag einen statistisch signifikanten Anstieg der CRP-Werte im Vergleich zum Ausgangs-wert. Auch im Vergleich zur Gruppe A waren die Werte signifikant erhöht. Fibrinogen: Patienten der Gruppe B zeigten am 3. und am 5. postapoplektischen Tag einen statistisch signifikanten Anstieg der Fibrinogenwerte im Vergleich zum Ausgangswert. Auch im Vergleich zur Gruppe A waren tendentiell deutlich erhöhte Fibrinogenwerte gemessen worden, dieser Unterschied erreichte jedoch keine statistische Signifikanz. 59 4. Diskussion 4.1 Apoptose nach cerebraler Ischämie Bis vor wenigen postapoplektischen Jahren neuronalen war das pathophysiologische Zellunterganges auf einen Verständnis des ischämiebedingten nekrotischen Zelltod limitiert. Vorliegende Untersuchung beschäftigte sich u.a. mit der Frage, inwieweit der klinische Verlauf von Patienten mit akutem ischämischen Mediainfarkt, von dem Ausmaß der Apoptose beeinflußt wird. Obwohl nur sehr vereinzelte Daten über einen apoptotischen Zelltod nach cerebraler Ischämie beim Menschen vorliegen, belegen tierexperimentell gewonnene Erkenntnisse, daß eine nicht unerhebliche Anzahl von Neuronen und Gliazellen einen induzierten apoptotischen Zelltod sterben (Zhu et al. 2004, Moskowitz et al. 2003, Graham et al. 2001). Die vorliegenden Ergebnisse erbrachten keinen signifikanten Zusammenhang zwischen der Apoptoserate peripherer Lymphozyten bzw. Granulozyten und dem klinischen Verlauf. Bei der Interpretation ist jedoch zu berücksichtigen, daß die hier aufgestellte Hypothese zwei hypothetische Ansätze beinhaltet. Erstens stellte sich die Frage ob eine Hirnischämie eine relevante Apoptose neuronaler Zellen induziert, und zweitens ob diese indirekt über die Apoptose peripherer Lymphozyten bzw. Granulozyten messbar ist. Die in den letzten Jahren publizierten Ergebnisse anderer Arbeitsgruppen erbrachten Evidenz für ersteren Ansatz in der aufgestellten Hypothese. So konnten Li und Mitarbeiter in einem Ischämiemodell an Ratten bereits 1995 den elektronenmikroskopischen Nachweis apoptotischer Zellcharakteristika erbringen (Li et al. 1995). Dabei war die typische DNA-Fragmentation in einer schmalen Zone um den Infarktkern, die der ischämischen Penumbra entspricht, lokalisiert. Wie in Abschnitt 1.1.4 beschrieben, findet in dieser Randzone eine Restperfusion statt, die den Strukturmetabolismus in den Zellen aufrecht erhält. Offensichtlich ermöglicht gerade dieser Grundmetabolismus den Zellen, das ATP-abhängige Apoptoseprogramm auszuführen. Weitere Arbeitsgruppen kommen in ähnlich angelegten Studien zu gleichen Ergebnissen (Zheng et al. 2003, Li et al. 2002, Charriaut-Marlangue et al. 1996). 60 Neben dem morphologischen Nachweis von Apoptose konnten auch biochemische Nachweismethoden die Bedeutung des apoptotischen Zelluntergangs nach einem ischämischen Hirninfarkt belegen. So ist die Aktivität von Caspase-3 nach fokaler Ischämie in der betroffenen Hemisphäre signifikant erhöht (Rau et al. 2003, Namura et al. 1998). Durch Gabe eines Caspasen-Inhibitors (zDEVD-fmk) kann das apoptotische Selbstmordprogramm gestoppt werden, wodurch sich im Rattenversuch eine deutliche Reduktion des resultierenden Infarktvolumens erreichen läßt (Fink et al. 1998). Der Caspasen-Inhibitor boc-Aspartyl-Fluoromethyl-Keton (BAF) erbrachte tierexperimentell ebenfalls eine Reduktion des Infarktvolumens, jedoch ohne statistische Signifikanz zu erreichen (Joly et al. 2004). In Caspasen-Knockout-Mäusen ist das Infarktvolumen nach fokaler Ischämie ebenfalls signifikant reduziert im Vergleich zu Wildtypen (Le et al. 2002, Hara et al. 1997). Untersuchungen über die Genexpression von apoptoseregulierenden Proteinen der bcl2-Familie erbrachten ebenfalls Erkenntnisse über die Relevanz von Apoptose nach cerebraler Ischämie (Graham et al. 2001). Eine vermehrte Expression von antiapoptotischen bcl-2-Genen wurde in Neuronen dokumentiert, die eine transiente cerebrale Ischämie überlebten (Minami et al. 2000). Eine Hemmung der bcl-2Expression nach fokaler Ischämie führt in Tiermodellen erwartungsgemäß zu größeren Infarktvolumina (Chen et al. 2000). Kürzlich konnten Zhu und Mitarbeiter im Tierexperiment belegen, dass durch eine adäquate Hypothermie-Behandlung die apoptosefördernde Cytochrom C-Ausschüttung und Caspase-3-Aktivität gehemmt werden können (Zhu et al. 2004). Die Autoren sehen in dieser Apoptosehemmung eine Erklärung für den bekannten neuroprotektiven Effekt einer Hypothermie-Behandlung. Somit ist am ehesten der zweite Ansatz der Hypothese, nämlich daß der Anteil peripher apoptotischer Lymphozyten oder Granulozyten ein Korrelat zur Infarktausdehnung und zur klinischen Symptomatik bei Patienten mit akutem ischämischen Hirninsult bietet, zu verwerfen. Dieser Ansatz wurde von Erkenntnissen aus Studien mit Polysklerosepatienten abgeleitet, in denen die periphere Apoptoserate ein Korrelat zur zentralnervösen Apoptose darstellt (Bansil et al. 1997, Zipp et al. 1998). Ebenso wie bei der Multiplen Sklerose, wurde auch nach akuter Hirnischämie eine Fas-sensitive Apoptose berichtet (Felderhoff-Mueser et al. 2000, Rosenbaum et al. 2000). 61 Als weitere Apoptose-Induktoren gelten freie Radikale, eine Kalziumüberladung und verschiedene Exzitotoxine wie das Glutamat (Zhu et al. 2004, Graham et al. 2001, Kuschinsky et al. 2000). Durch die nach Ischämie resultierende Störung der Blut-Hirn-Schranke ist ein peripherer Nachweis der zentralen apoptotischen Reaktion denkbar. In vorliegender Studie ist eine solche Tendenz bei der Apoptoserate der Gesamtpopulation der Lymphozyten zu erkennen, diese erreicht jedoch keine statistische Signifikanz. Bedingt durch das relativ kleine Kollektiv von insgesamt 15 Patienten sind die errechneten statistischen Testwerte jedoch nur von deskriptiver Bedeutung. Die Tatsache daß keine gültigen Normwerte für die Apoptoserate peripherer Lymphozyten bestehen, wirkt sich ebenfalls limitierend auf die Interpretation vorliegender Daten aus. Die im Rahmen einer anderen Studie im neuroimmunologischen Labor des St. Josef- Hospitals anhand von 15 gesunden jungen Kontrollpersonen aufgestellten Vergleichswerte lagen gering unterhalb der vorliegenden Apoptoseraten (Aktaş 1999). Die Vergleichbarkeit mit diesen Werten ist jedoch eingeschränkt, da es sich um ein deutlich jüngeres Kollektiv (Alter = 32 +/- 6 Jahre) ohne weitere Erkrankungen handelte, und altersabhängige immunologische Reaktionsprofile beschrieben sind (Chipeta et al. 1998). Zusammenfassend läßt sich feststellen, daß die Apoptose von neuronalen Zellen zunehmend an Bedeutung in pathophysiologischen Ischämiemodellen gewinnt. Der in dieser Studie unternommene Versuch einen aussagekräftigen und für den klinischen Alltag praktikablen peripheren Marker herauszustellen erwies sich als verfrüht. Weitere klinisch- als auch grundlagenorientierte wissenschaftliche Arbeiten sind notwendig, um die tierexperimentell gewonnenen Erkenntnisse und Therapieansätze in Zukunft in ein Humanmodell zu übertragen, und dies für Patienten nutzbar zu machen. 62 4.2 Inflammatorische Reaktion nach cerebraler Ischämie Seit mehreren Jahren ist bereits nachgewiesen, daß das zentrale Nervensystem immunmodulatorische Eigenschaften besitzt, und daß es nach einem ischämischen Ereignis mit der Freisetzung von verschiedenen Zytokinen und Adhäsionsmolekulen reagiert. Dabei sind neben den im ZNS lokalisierten Monozyten, Fibroblasten, Endothelzellen und T-Lymphozyten auch Mikroglia und Astrozyten zur Zytokinproduktion befähigt (Kim 1996). Hypothese vorliegender Studie ist, daß ein ischämischer Hirninsult eine sekundäre Entzündungsreaktion bedingt, die ihrerseits Einfluß auf das Ausmaß der resultierenden Hirnschädigung und damit auf den klinischen Verlauf nimmt. Die dabei erhobenen Parameter zeigten bei Schlaganfallpatienten mit einem ungünstigen klinischen Verlauf in der postakuten Phase eine deulich stärkere postischämische Entzündungsreaktion als bei Patienten mit rückläufiger Schlaganfallsymptomatik, so daß die aufgestellte Hypothese angenommen werden konnte. Die jeweils ermittelten Parameter werden im folgenden einzeln diskutiert: a) Interleukin-1β: Nach Durchführung des ersten Enzym-Immuno-Assay-Kit, bei dem die Werte der ersten neun in die Studie aufgenommenen Patienten ermittelt wurden, ergab die Untersuchung durchgehend Werte unterhalb von 1 pg/ml, teilweise sogar Werte im nicht detektierbaren Bereich. Dies entspricht der von Medgenix BioSource S.A. angegebenen Referenzwerte von gesunden Probanden (Referenzbereich= 0-15 pg/ml, mean= 5 pg/ml, SD=8 pg/ml). Somit war weder ein Unterschied zu gesunden Individuen, noch zwischen den beiden Vergleichsgruppen zu erkennen. In einer Studie an 30 Schlaganfallpatienten dokumentierten Tarkowski et al. ebenfalls, daß die gemessenen Serumwerte von IL-1β unterhalb von 1 pg/dl lagen (Tarkowski et al. 1995), so daß hier auf die Durchführung weiterer EIA-Kits verzichtet wurde. Anzumerken ist, daß in der erwähnten Studie von Tarkowski und Mitarbeitern die parallel dazu ermittelten Liquorkonzentrationen von IL-1β erhöhte Werte ergaben. Daneben waren die zusätzlich erhobenen Liquor- und Serumwerte von Interleukin-6 im Vergleich zu gesunden Probanden signifikant erhöht, wobei auch für IL-6 höhere Liquor- als Serumwerte ermittelt wurden. 63 Die Autoren schlußfolgerten, daß eine cerebrale Ischämie eine lokale und im Liquor nachweisbare Entzündungsreaktion bedingt, die sich im Serum durch IL-6 und nicht durch IL-1β widerspiegeln läßt. Dies konnte durch die vorliegenden IL-1β- und IL-6Werte (s.u.) bestätigt werden. b) Interleukin-6: Die in dieser Studie ermittelten IL-6 Werte waren im Vergleich zu den von Medgenix BioSource S.A. angegebenen Referenzwerten von gesunden Probanden (0 – 8,5 pg/ml) deutlich erhöht. Postischämisch erhöhte Serumwerte von IL-6 sind in der Literatur mehrfach beschrieben, und als Marker einer ablaufenden ischämiebedingten Entzündungsreaktion interpretiert worden (Vila et al. 2000, Kim et al. 1996). Darüber hinaus, konnte in vorliegender Studie beobachtet werden, daß die am 3. Tag gemessenen Serumwerte von IL-6 bei Patienten mit ungünstigerem Verlauf (Gruppe B), signifikant gegenüber Patienten mit günstigerem Verlauf (Gruppe A) erhöht sind (p=0,04). Dies ergibt einen ersten Hinweis darauf, daß eine stärkere entzündliche Reaktion die Erholungstendenz in der postakuten Phase eines Schlaganfalles ungünstig beeinflußt. Ein Zusammenhang zwischen IL-6-Serumwert und klinischen Verlauf konnten auch Vila und Mitarbeiter aufzeigen, wobei stark erhöhte IL-6-Werte mit einer klinischen Verschlechterung einhergingen (Vila et al. 2000). Auf diesen Ergebnissen aufbauend, überprüften Clark et al. die Hypothese, daß eine Hemmung der IL-6-Synthese mit einem günstigeren Verlauf einhergehen würde (Clark et al. 2000). Sie versetzten IL-6-knockout-Mäuse in eine reversible fokale Ischämie. Weder für das Infarktvolumen, noch für den Grad der neurologischen Behinderung konnten signifikante Unterschiede im Vergleich zu Wildtyp-Mäusen beobachtet werden. Diese Beobachtung zeigt auf, daß es sich bei der inflammatorischen Reaktion nach cerebraler Ischämie um eine komplexe Interaktion zwischen mehreren immunologischen Faktoren handeln muß, die simplifizierende Schlußfolgerungen nicht zulässt, zumal für Interleukin-6 auch antiinflammatorische Eigenschaften beschrieben wurden (Vgl. Abschnitt 1.2.2.2). 64 c) ICAM-1 Bereits 1996 wurde eine vermehrte Expression von Adhäsionsmolekülen im Bereich eines Hirninfarktareales beschrieben, welche mit einer Leukozytenakkumulation einherging (Lindsberg et al. 1996). Akkumulierte Leukozyten stehen dabei in Verdacht die lokale Perfusion durch physikalische Obstruktion kleiner Gefäße zu verschlechtern, und somit den therapeutischen Effekt von rheologischen Maßnahmen nach cerebraler Ischämie zu reduzieren. In einer Studie an ICAM-1-knockout-Mäusen konnten Kitagawa et al. aufzeigen, daß ein ICAM-1-Defekt die Mikrozirkulation im Infarktgebiet deutlich verbessert, und damit das resultierende Infarktvolumen gegenüber Wildtypen signifikant reduziert (Kitagawa et al. 1998). Über dieses lokale Geschehen hinaus, sind bei Schlaganfallpatienten auch erhöhte Serumwerte von ICAM-1 dokumentiert (Shyu et al. 1997). Die in dieser Studie ermittelten Serumwerte von ICAM-1 lagen insgesamt leicht oberhalb den von Medgenix BioSource S.A. angegebenen Referenzwerten von gesunden Probanden (range= 73 – 604 ng/ml, mean= 304 ng/ml, SD= 158 ng/ml). Da sowohl der angegebene Referenzbereich, als auch die eigenen Daten eine sehr hohe Streuung aufweisen, und die erhobenen Werte sich zwischen den beiden Untersuchungsgruppen nicht unterschieden, ist aus diesem Vergleich keine verwertbare Aussage über einen Zusammenhang zwischen den im Serum gemessenen ICAM-1Werten un dem klinischen Verlauf in der postakuten Phase zu treffen. Ein Zusammenhang zwischen der Expression von Adhäsionsmolekülen und dem klinischen Outcome ist jedoch aufgrund publizierter tierexperementeller Erkenntnisse zu postulieren, zumal auch klinische Studien Hinweise erbrachten, daß der neuroprotektive Effekt einer Hypothermiebehandlung beim Schlaganfall u.a. auf eine verminderte ICAM-1-Expression beruht, da diese auch von der Körpertemperatur abhängig ist (Inamasu et al. 2001). Eine vermutete Manifestation dieses lokalen Prozesses im Schlaganfallpatienten lies sich in vorliegender Studie nicht bestätigen. Serum von 65 d) C-reaktives Protein Der pathophysiologische Zusammenhang, als auch die prognostische Aussagekraft von C-reaktivem Protein (CRP) in kardiocaskulären Erkrankungen ist hinreichend beschrieben (Möckel et al. 2000, Albert et al. 1999, Hoffmeister et al. 1998). Die Bedeutung von CRP bei cerebrovaskulären Ereignissen wird jedoch weiterhin kontrovers diskutiert. Die in den letzen Jahren gewonnene Einsicht, daß ein ischämischer Hirninsult eine sekundäre Entzündungsreaktion bedingt, die ihrerseits Einfluß auf das Ausmaß der resultierenden Hirnschädigung nimmt, legt die Vermutung nahe, daß das CRP als Marker dieser Reaktion dienen, und somit prognostische Aussagekraft zum klinischen Verlauf liefern könnte. Muir und Mitarbeiter konnten erstmals dokumentieren, daß Patienten mit einem erhöhten CRP-Wert in den ersten 72 Stunden nach einem Hirninfarktergnis ein signifikant schlechteres Outcome aufwiesen als Patienten mit niedrigen CRP-Werten (Muir et al. 1999). Das Design entsprach dabei vorliegendem Studienabschnitt, jedoch wurden die Patienten nach initialem CRP-Wert in zwei Gruppen eingeteilt und mit dem klinischen Verlauf gemessen an der NIHSS getestet. Patienten mit rückläufiger Schlaganfallsymptomatik wiesen dabei nach 72 Stunden einen CRP-Mittelwert von 4,2 mg/l , Patienten mit ungünstigerem Verlauf einen CRP-Mittelwert von 33,9 mg/l. Dies entpricht auch den in vorliegender Studie ermittelten Daten: Patienten mit ungünstigerem Verlauf verzeichneten einen signifikanten Anstieg der CRP-Konzentration im Vergleich zum Ausgangswert mit Maximun am dritten (p=0,050) bis fünften (p=0,036) Untersuchungstag. Die CRP-Werte von Patienten mit günstigerem Verlauf hingegen, lagen überwiegend im physiologischen Bereich, oder zeigten bei vereinzelt erhöhten Ausgangswerten einen abnehmenden dynamischen Verlauf. Dieser Unterschied zwischen beiden Gruppen zeigte statistische Signifikanz (p=0,029), so daß hier ein weiterer Hinweis darauf besteht, daß eine stärkere entzündliche Reaktion die Rückbildung neurologischer Defizite in der postakuten Phase eines Hirninsultes ungünstig beeinflußt. Im Gegensatz zu diesen Ergebnissen, konnten Canova und Mitarbeiter keinen signifikanten Zusammenhang zwischen CRP-Konzentration und Schweregrad der neurologischen Beeinträchtigung feststellen (Canova et al. 1999). 66 Diese inkonsistente Studienlage veranlasste Di Napoli et al. den Verlauf der CRPKonzentration zwischen dem 24-Stundenwert und dem 72-Stundenwert mit dem klinischen Verlauf zu korrelieren (Di Napoli et al. 2001b). Es konnte demonstriert werden, daß Patienten mit konstant erhöhten CRP-Werte über 15 mg/dl, als auch Patienten mitaufsteigenden CRP-Konzentrationen ein signifikant schlechteres Outcome gegenüber Patienten haben, deren CRP-Konzentrationen einen konstant niedrigen oder einen abfallenden Verlauf zeigten. Die Autoren interpretieren ihre Ergebnisse dahingehend, daß aufsteigende CRP-Werte als Marker für eine zunehmende postischämische Entzündungsreaktion gelten, und die Ausbreitung des Infarktareals wiederspiegeln können In vorliegender Studie wurde erstmals der dynamische Verlauf der CRP-Konzentration in den ersten zehn Tagen nach einem cerebroischämischen Ereignis gemessen. Vereinzelte Patienten aus der Gruppe A (günstigeres klinisches Outcome) zeigten dabei nach 24 Stunden erhöhte CRP-Werte, welche sich jedoch – im Gegensatz zu den Werten von den Patienten aus der Gruppe B (ungünstigeres klinisches Outcome) – im weiteren Verlauf normalisierten. Somit ist die von Di Napoli et al. aufgestellte Hypothese, daß neben dem absoluten CRP-Wert auch der relative Verlauf einen prognostischen Marker darstellt, in der vorliegenden Studie zu bestätigen. 67 e) Fibrinogen Bei beiden Untersuchungsgruppen lag der am Tag des Schlaganfalles gemessene Ausgangswert im Normbereich (Referenzbereich für Fibrinogen: 200-400 mg/dl). Beide Gruppen zeigten im weiteren Verlauf steigende Fibrinogenwerte, mit Maximum am 5. Untersuchungstag. Patienten mit ungünstigerem Verlauf verzeichneten jedoch einen stärkeren Anstieg, so daß der am 5. Tag gemessene Fibrinogenwert signifikant gegenüber dem Ausgangswert erhöht war (p=0,017). Fibrinogen ist ebenso wie das CRP ein Akute-Phase-Protein, dessen Synthese von IL-6 induziert wird. Aufgrund seiner relativ langen Reaktionszeit von ca. 48 Stunden ist ein Anstieg der Fibrinogenkonzentration erst 48 Stunden nach einem immunologischen Ereignis zu detektieren (vgl. Abschnitt 1.2.4.2). In diesem Zusammenhang sind vorliegende Ergebnisse als weiteres Indiz für eine postischämisch aktivierte Inflammationskaskade zu werten. Für Fibrinogen ist in der Literatur eine gering signifikante prognostische Wertigkeit für den Verlauf nach cerebroischämischen Ereignissen beschrieben (Di Napoli et al. 2001a). Die Ergebnisse sind jedoch nur mit dem Hintergrund über den Einfluss dieses Parameters auf das Gerinnungssystem zu interpretieren, denn unabhängig von der immunologischen Funktion kann Fibrinogen bei ischämischen Ereignissen eine hämostaseologische Relevanz einnehmen. Durch die prokoagulatorische Wirkung auf die Gerinnungskaskade könnte darin ein weiterer pathophysiologischer Mechanismus bestehen, der zur Verschlechterung der Versorgungssituation in der Penumbra führt (Toghi et al. 2000). 68 f) Fazit: Verschiedene Studien haben in den letzten Jahren Hinweise erbracht, daß ein ischämischer Hirninsult eine sekundäre lokale inflammatorische Reaktion bedingt, die ihrerseits Einfluß auf das Ausmaß der resultierenden Hirnschädigung und damit auf den klinischen Verlauf hat. Ein Zusammenhang zwischen der Stärke einer postischämischen Entzündungsreaktion und dem klinischen Verlauf in der postakuten Phase konnte auch in vorliegender Studie dokumentiert werden. Da in dieser Studie periphere Entzündungsparameter erhoben wurden, stellt sich die Frage, ob es sich hierbei um periphere Marker einer im ZNS lokalisierten postischämischen inflammatorischen Reaktion handelt, oder ob die beobachtete Entzündungsreaktion auf ein vom Hirninsult unabhängiges Ereignis zurückzuführen ist. Obwohl Patienten mit bekannten inflammatorischen Begleiterkrankungen (z.B. Harnwegsinfekt oder Pneumonie) zu Beginn oder im Verlauf aus der Studie ausgeschlossen wurden, läßt sich dieser Aspekt nicht mit absoluter Sicherheit ausschliessen, jedoch spricht der dokumentierte zeitliche Zusammenhang dafür, daß es sich hierbei um ein mit der Schlaganfallreaktion konkomitierendes inflammatorisches Geschehen handelt, und daß dieses Einfluß auf den Schweregrad der neurologischen Beeinträchtigung von Schlaganfallpatienten nimmt. Durch diese Tatsache wird die Wichtigkeit einer kontinuierlichen Überwachung und einer optimalen supportiven Therapie von Schlaganfallpatienten, wie sie in spezialisierten Zentren (Stroke Units) durchgeführt werden kann, unterstrichen. Neben frühzeitiger Rekanalisierung, kardiopulmonalem Monitoring, Durchführung von physio- und ergotherapeutischen sowie logopädischen Behandlungen sind antiinflammatorische Maßnahmen wie die Fiebersenkung ebenfalls relevant für den klinisch-neurologischen Verlauf von Schlaganfallpatienten. Somit erscheint die frühzeitige Gabe von ASS auch aus immunologischen Gesichtspunkten sinnvoll. Über den thrombozytenfunktionshemmenden Effekt hinaus, besitzt ASS auch antiinflammatorische und antipyretische Wirkungen, welche zur Eingrenzung der postischämischen Entzündungsreaktion beitragen (Aude 2002). Die Eigenschaft als Radikalfänger impliziert darüber hinaus einen antiapoptotischen Effekt, so daß die ASS mit ihren multimodalen Wirkungsansätzen weitere Argumente für ihre Stellung als Medikament der ersten Wahl in der Frühphase eines Schlaganfalles bietet (Fiorucci 2002, Hellwig 1999). 69 5. Zusammenfassung Die vorliegende Arbeit befasst sich mit immunologischen Reaktionen nach einem ischämischen Hirninsult, mit peripheren Markern dieser Reaktionen und mit der prognostischen Wertigkeit dieser Parameter bezogen auf den klinischen Verlauf von Schlaganfallpatienten in der subakuten Phase. Zu diesem Zweck wurden fünfzehn Patienten mit akutem ischämischen Mediainfarkt über zehn Tage klinisch-neurologisch und immunologisch-laborchemisch untersucht. Abhängig vom klinischen Verlauf, wurden die Patienten in zwei Gruppen aufgeteilt, und die erhobenen immunologischen Parameter anschliessend miteinander verglichen und auf statistische Signifikanz geprüft. Dabei wurden Apoptoseraten und Entzündungsparameter untersucht. Der Verlauf von Apoptoseraten peripherer Lymphozyten und Granulozyten wurde eigenständig mittels durchflußzytometrischer Verfahren erhoben. Der Verlauf inflammatorischer Parameter (IL-1β, IL-6 und ICAM-1) wurde eigenständig mittels Enzym-Immuno-Assay ermittelt. Der Verlauf zweier Akute-Phase-Proteine (CRP und Fibrinogen) wurden im Rahmen von klinischchemischen Routineuntersuchungen dokumentiert. Bezogen auf die Apoptoseraten war kein statistisch signifikanter Unterschied zwischen den Vergleichsgruppen zu erkennen. Lediglich eine leicht steigende Tendenz im dynamischen Verlauf der Apoptoserate bei Patienten mit einem ungünstigeren klinischen Verlauf konnte beobachtet werden, welche als Manifestation einer stärkeren postischämischen Apoptoseinduktion interpretiert werden kann. Tierexperimentell gewonnene Ergebnisse belegen, daß neben dem ischämisch bedingten nekrotischen Zelltod, ein nicht unerheblicher Anteil an Neuronen und Gliazellen einen induzierten apoptotischen Zelltod sterben. Der in vorliegender Studie unternommene Versuch, einen aussagekräftigen und für den klinischen Alltag praktikablen peripheren Marker der zentralnervösen Apoptosereaktion herauszustellen, erwies sich als verfrüht. Bezogen auf die Inflammationsparameter zeigten Patienten mit ungünstigerem klinischen Verlauf eine stärkere postischämische Entzündungsreaktion als Patienten mit günstigerem klinischen Verlauf. Der Vergleich von IL-6 und CRP erreichte dabei statistische Signifikanz, so daß die aufgestellte Hypothese von einer Beeinflussung des klinischen Verlaufs durch die postischämisch ablaufende Entzündungsreaktion angenommen werden konnte. Vorliegende Arbeit sollte einen Beitrag zur Erweiterung des pathophysiologischen Ischämiemodells liefern. Sowohl lokale, als auch systemische neuroimmunologische Aspekte nehmen Einfluß auf die Revitalisierung bzw. auf die Nekrosematuration der Penumbra. Weitere klinisch- als auch grundlagenorientierte wissenschaftliche Arbeiten sind notwendig, um die tierexperimentell gewonnenen Erkenntnisse in Zukunft in ein Humanmodell zu übertragen und dies für Patienten nutzbar zu machen. 70 6. Anhang Tab. 23: Die European Stroke Scale (nach Hantson 1994) 1. Level of Consiousness: Alert, keenly responsive Drowsy, but can be aroused by minor stimulation to obey, answer or respond Requires repeated stimulation to attend, or is lethargic or obtunded, requiring strong/painfull stimulation to make movements Cannot be roused by any stimulation, does react purposefull to painful stimuli Cannot be roused by any stimulation, does react with decerebration to painfull stimuli Cannot be roused by any stimulation, does not react to painfull stimuli 2. 10 8 6 4 2 0 Comprehension: Verbally give the patient the following commands: 1. Stick out your tongue 2. put your fingers on your nose 3. close your eyes 3. Speech: The examiner makes a conversation with the patient (how is the patient feeling, did he sleep well, for how long has the patient been in hospital...) patient performs 3 commands patient performs 2 or 1 commands patient does not perform any command 8 4 0 normal speech slight word-finding difficulties, conversation possible severe word-finding difficulties, conversation difficult only yes or no mute 8 normal deficit 8 0 6 4 2 0 4. Visual Fiel: The examiner compares the patients field of vision by advancing a moving finger from the periphery inwards. 5. Gaze: The examiner steadies the patients head and asks him to follow his finger. The examiner observes the resting eye position and subsequently the full range of movements by moving the indexfinger from the left to the right and vice versa. 6. Facial Movement: The examiner observes the patient as he talks and smiles, noting any asymmetrical elevation of one corner of mouth, flattening of nasolabial fold. Only the muscles in the lower half of the face are assessed. 7. normal median eye position, deviation to one side impossible lateral eye position, return to midline possible lateral eye position, return to midline impossible normal paresis paralysis Arm (maintain outstreched position): The examiner asks the patient to close the eyes and actively lifts the patient’s arms into position so that they are outstreched at 45 degreeswith both hands in midposition so that the palms face each other. The patient is asked to maintain this position for 5 sec. Only the affected side is evaluated. arm maintains position for 5 sec arm maintains position, but affected hand pronates arm drifts before 5 sec , and maintains a lower position arm can’t maintain position, attempts to oppose gravity arm falls 8 4 2 0 8 4 0 4 3 2 1 0 71 8. Arm (raising): The patients arm is rested next to the leg with the hand in mid-position. The examiner asks the patient to raise the arm outstreched to 90 degrees. 9. 4 3 2 1 0 normal straight arm, movement not full flexed arm trace movements no movement Extension of the Wrist: The patient is tested with the forearm supported and the hand unsupported, relaxed in pronation. The patient is asked to extend the hand. normal full isolated movement, reduced strength movement not isolated and/or full trace movements no movement 8 6 4 2 0 10. Fingers: The examiner asks the patient to form with both hands and as strongly as possible a pinch grip with the thumb and forefinger and to try to resist a weak pull. The examiner checks the strenght of this grip by pulling the pinch with one finger. 11. Leg (maintain position): The examiner actively lifts the patient’s affected leg into position so that the thigh forms an angle of 90 degrees with the bed, with the shin parallel with the bed. The examiner asks the patient to close the eyes and to maintain this position for 5 sec equal strength reduced strenght on affected side pinch grip impossible on affected side 8 4 0 leg maintains position for 5 sec leg drifts to intermediate position by the end of 5 sec leg drifts to bed within 5 sec, but not immediately leg falls to bed immediately 4 12. Leg (flexing): The patient is in supine position eith the legs outstreched. The examiner asks the patient to flex the hip knee. normal movement against resistance, strength mavement against gravity trace movements no movement 14. Gait: 1 0 4 reduced 13. Dorsiflexion of the Foot: The patient is tested with the leg outstreched. The examiner asks the patient to dorsiflex the foot. 2 normal leg outstreched, full movement, reduced strenght movement not full or knee flexed or foot in supination trace movements no movement normal gait has abnormal aspect and/or distance/speed limited patient can walk with aid patient can walk with the physical assistance of persons patient cannot walk, but can stand supported patient cannot walk nor stand 3 2 1 0 8 6 4 2 0 10 8 6 4 2 0 72 Tab. 24: Die National Institutes of Health Stroke Scale (nach Brott 1989) 1.b. LOC – Questions (actual month, age of the patient) alert drowsy stuporous coma answers both correctly answers one correctly incorrect 0 1 2 3 0 1 2 1.c. LOC – Commands (open, close eyes; make fist, let go) obeys both correctly obeyes one correctly incorrect 0 1 2 both reactive one reactive neither reactive normal partial gaze palsy forced deviation no visual loss partial hemianopsia complete hemianopsia normal minor partial complete no drift drift can`t resist gravity no effort against gravity no drift drift can`t resist gravity no effort against gravity normal equivocal extensor bilateral extensor absent present in upper or lower present in both normal partial loss dense loss no neglect partial neglect complete neglect normal articulation mild to moderate dysarthria near unintelligible or worse no aphasia mild to moderate aphasia severe aphasia mute 0 1 2 0 1 2 0 1 2 0 1 2 3 0 1 2 3 0 1 2 3 0 1 2 3 0 1 2 0 1 2 0 1 2 0 1 2 0 1 2 3 1.a. Level of Consciousness (LOC) 2. Pupillary Response 3. Best Gaze 4. Best Visual 5. Facial Palsy 6. Best Motor Arm 7. Best Motor Leg 8. Plantar reflex 9. Limb Ataxia 10. Sensory 11. Neglect 12. 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Maike Rieks danke ich für die Anleitung in die Durchflusszytometrie und für die stets freundliche Betreuung im neuroimmunologischen Labor. Meinen Eltern, meiner Schwester Maria, Nektarios, Petros und Annabella danke ich für Motivation und Unterstützung, womit sie zur Fertigstellung dieser Arbeit entscheidend beigetragen haben. 89 Lebenslauf 17. Januar 1974 Geboren in Wissen an der Sieg 1979 – 1982 Griechische Grundschule 1982 – 1985 Grundschule und Orientierungsstufe in Betzdorf 1985 – 1993 Freiherr-von-Stein-Gymnasium Betzdorf Juni 1993 Allgemeine Hochschulreife Oktober 1993 Beginn des Studiums der Humanmedizin an der Ruhr-Universität Bochum Mai – Juli 1999 Ausbildung im Institute of Acupuncture, Kalubowila University Hospital, Colombo, Sri Lanka 1999 – 2000 Praktisches Jahr in der Chirurgischen und Medizinischen Klinik im American-Hellenic-Educational-Progressive-AssociationHospital der Aristoteles Universität Thessaloniki, Hellas Mai – Sept. 2000 Praktisches Jahr in der Neurologischen Universitätsklinik der Ruhr-Universität im St. Josef Hospital Bochum November 2000 Dritter Abschnitt der Ärztlichen Prüfung Dezember 2000 Beginn der Tätigkeit als Arzt im Praktikum in der Neurologischen Klinik der Ruhr-Universität im St.Josef-Hospital Bochum September 2002 Approbation als Arzt Seit Sept. 2002 Assistenzarzt in der Neurologischen Klinik der Ruhr-Universität im St. Josef-Hospital Bochum