Œnologie - Union des oenologues de France
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Œnologie L’azote assimilable dans le moût de raisin : quelles méthodes pour déterminer sa teneur ? méthodes de dosage de l’azote assimilable dans le moût de raisin. Pour cela, nous avons testé ces différentes méthodes sur 10 échantillons de moûts. Dans un premier temps, nous avons validé comme méthode de référence la mesure de l’azote assimilé par les levures selon la méthode Kjeldahl. Ensuite, nous avons comparé les résultats de dosage selon différentes méthodes avec celui obtenu par la méthode de référence. Les résultats montrent que la méthode combinant le dosage des acides aminés par analyseur automatique à la mesure de l’azote ammoniacal par kit enzymatique est la technique la plus fiable. Mais le dosage des acides aminés nécessite un investissement élevé et prend du temps. La méthode par spectroscopie infra rouge à transformée de Fourier (IRTF) apparaît également fiable. De plus, étant rapide, et non destructrice de l’échantillon, elle semble adaptée à une utilisation en routine. La formol-titration et, à un degré moindre, la combinaison de la méthode NOPA avec le dosage de l’azote ammoniacal par kit enzymatique sous-estiment l’azote assimilable dans les moûts de raisin. Mots-clefs : Azote assimilable, moût de raisin, levure, fermentation alcoolique Abstract: The objective of this study was to compare the main determination methods of assimilable nitrogen in grape musts. The study was carried out on 10 musts. We first validated the measurement of actual assimilated nitrogen according to the Kjeldahl method as a reference method. Then, the results of assimilable nitrogen obtained by Fourier Transformed Infra Red Spectroscopy (FTIR), formoltitration, [orthophtaldehyde (NOPA) + ammoniacal] nitrogen and [amino acids (automatic analyser) + ammoniacal] nitrogen were compared with reference method values. Results showed that the measurement of [amino acids (automatic analyser) + ammoniacal] nitrogen is the most reliable way to measure assimilable nitrogen in grape musts. But the determination of amino acids is quite expensive and remains time consuming. FTIR is also a reliable method for the measurement of assimilable nitrogen. Moreover, being fast convenient and not sample destructive, it appears as a fitted way of assimilable nitrogen measurement on a routine basis. Formoltitration and to a lesser extent, [NOPA + ammoniacal] nitrogen underestimate assimilable nitrogen in grape musts. Keywords: assimlilable nitrogen, grape must, yeast, alcoholic fermentation Introduction Dans le moût de raisin, l’azote assimilable par les levures au cours de la fermentation alcoolique est composé principalement des acides aminés, de l’azote ammoniacal et probablement de quelques peptides. Il joue un rôle essentiel en œnologie, car c’est un facteur nutritionnel important pour les levures au cours de la fermentation alcoolique, compte tenu de son rôle dans la synthèse des protéines des levures R E V U E F R A N Ç A I S E D ’ Œ N O L O G I E et dans leur croissance. En dessous de la valeur seuil d’environ 140 mg N L-1, la croissance des cellules levuriennes est limitée et la cinétique de fermentation est lente (Bely et al, 1990). D’autre part, l’azote assimilable est nécessaire pour la synthèse des marqueurs de qualité du vin comme les alcools supérieurs et les esters (Cheynier et al, 2010). De ce fait, disposer d’une méthode de détermination fiable et rapide de l’azote assimilable dans les moûts de raisin est très important pour le contrôle de la fermentation alcoolique. La teneur en acides aminés peut être mesurée en utilisant un analyseur automatique (Benson, 1972). Cette méthode est très fiable mais elle demande un gros investissement en équipement et le temps d’analyse est important. Les acides aminés peuvent aussi être dosés par la méthode NOPA (Dukes and Butzke, 1998). Seuls les acides aminés primaires réagissent. Ainsi, la proline et l’hydroxyproline ne sont pas dosés (Weeks & Henschke, 1999). Crowell et al (1985) ont développé une méthode basée sur la réaction entre les groupes α-aminés primaires et l’acide trinitrobenzène sulfonique (TNBS). Cette méthode a tendance à sous-estimer l’azote assimilable compte tenu du fait qu’un des acides aminés les plus importants du moût, l’arginine n’est pas dosée. L’ammonium est généralement dosé par méthode enzymatique (Bergmeyer and Beutler, 1985) en utilisant la spectrophotométrie UV. Cette technique est rapide et très fiable. Ces méthodes que l’on peut qualifier de mono méthodes mesurent uniquement une partie de l’azote assimilable. Pour obtenir la teneur de l’ensemble de azote assimilable, e.g. acides aminés et ammonium, il est nécessaire d’associer 2 méthodes différentes, ce qui prend du temps. Il existe seulement 2 méthodes qui déterminent directement l’azote assimilable dans le moût de raisin : > la formol-titration (Sorensen, 1907, Aerny, 1996). La proline et l’hydroxyproline qui ne sont pas assimilés par les levures durant la fermentation ne sont pas dosés par cette méthode (Dukes & Butzke, 1998). Le règlement européen REACH (2006) a pour principaux objectifs d’assurer un niveau élevé de protection de la santé humaine et l’environnement contre les risques des produits chimiques. De ce fait, la toxicité du formaldéhyde représente un inconvénient important dans l’utilisation de cette méthode. De plus, la mesure de l’azote assimilable par cette méthode est pH dépendante et le résultat est peut être sous estimé lorsqu’il est comparé à l’azote assimilé par les levures (Blateyron & Sablayrolles, 2001) ; > l’IRTF. C’est une méthode alternative qui peut être utilisée en routine pour mesurer l’azote assimilable (Dubernet et al, 2000). Cette technique est rapide, économe en réactifs et non consommatrice d’échantillon. Il existe quelques travaux sur la comparaison des différentes méthodes de dosage de l’azote assimilable (Dubernet et al, 2001 ; Bely, 1990 ; Shively & Henick-Kling, 2001 ; Gump et al, 2002 ; FilipeRibeiro & Mendes-Faia , 2007). Cependant, selon les données de la bibliographie, il n’y a pas à ce jour d’étude exhaustive sur la comparaison des différentes méthodes de dosage de l’azote assimilable. Dans ce travail, nous avons, dans un premier temps, validé une méthode de référence basée sur la mesure de l’azote réellement assimilé par les levures au cours de la fermentation alcoolique. Ensuite, nous avons comparé les principales méthodes de dosage de l’azote assimilable sur différent moûts de raisin avec la méthode de référence. 13 J U I N / J U I L L E T 2 0 1 1 N ° 2 4 7 C A H I E R Résumé : L’objectif de cette étude a consisté à comparer les principales T E C H N I Q U E par Erick Casalta, Jean-Marie Sablayrolles, Jean-Michel Salmon INRA, UMR1083, 2, place Viala - 34060 Montpellier Œnologie C A H I E R T E C H N I Q U E Figure 1 : Comparaison de la mesure de l’azote assimilé par Kjeldahl ( ) avec la mesure l’azote assimilé associant le dosage des acides aminés par analyseur et le dosage des sels d’ammonium par kit enzymatique ( ). Tableau 1 : Comparaison des différentes méthodes de détermination de l’azote assimilable dans les moûts de raisin 1. Matériel et méthodes 1.1. Moûts Détermination de l’azote assimilé Dix moûts du Languedoc-Roussillon provenant de 6 variétés de raisins ont été utilisés, 8 blancs et 2 rouges obtenus par flash-détente (merlot et syrah). Après leur obtention, ils ont été pasteurisés (72° C, 20 s) et conservés à 2°C jusqu’à leur utilisation. Les acides aminés libres sont dosés par chromatographie liquide à échange d’ions, selon la méthode de Benson et al (1967) à l’aide d’un analyseur automatique (Biochrom 30, Biochrom Ltd, Cambridge, UK). La teneur en acides aminés est également mesurée par la méthode NOPA (Dukes and Butzke, 1998). La proline et l’hydroxyproline ne sont pas mesurés par cette méthode (Weeks & Henschke, 1999). L’azote assimilé est déterminé de 2 façons : > par méthode Kjeldahl en calculant la différence entre la teneur initiale du moût en azote total et celle du moût à 80 % de la fermentation, soit N Assimilé Kjeldahl = [NT moût – NT à 80 % de la fermentation], > en combinant le dosage des acides aminés par l’analyseur automatique et le dosage des sels d’ammonium par le kit enzymatique et en calculant la différence entre la teneur initiale du moût et celle du moût à 80 % de la fermentation, soit N assimilé aa + NH4 = [N Assimilable aa + NH4 moût –N Assimilable aa + NH4 80 % de la fermentation]. Les fermentations ont été conduites dans des fermenteurs cylindriques en verre d’un volume de 1,2 L, à température constante (24° C) sous agitation continue. Les moûts ont été inoculés avec la souche œnologique commerciale Saccharomyces cerevisiae K1 (ICV-INRA, Lallemand, Montreal, Canada). Tous les résultats sont exprimés en mg N L-1. Dosage de l’azote total 2. Résultats et discussion L’azote total (NT) est déterminé selon la méthode Kjeldahl (Kjeldahl, 1883). 2.1. Validation de la méthode de détermination de l’azote assimilé au cours de la fermentation alcoolique Dosage de l’azote assimilable La teneur en azote assimilé mesurée par la méthode Kjeldhal (N Assimilé Kjeldahl) est très proche de celle déterminée par addition des acides aminés et des sels d’ammonium (N Assimilé aa + NH4), pour l’ensemble des échantillons (Cf. Figure 1). La moyenne des différences entre les méthodes est de 12,1 mg N L-1 et le coefficient concordance de 97 % (Cf. Tableau 1). De plus, N Assimilé Kjeldahl est très fortement corrélé à la vitesse maximale de fermentation (dCO2 dt-1)max [r = + 0,95]. Compte tenu de ces résultats concordants et cohérents, nous avons considéré la mesure de l’azote assimilé par la méthode Kjeldahl comme la méthode de référence pour comparer les méthodes de dosage de l’azote assimilable, en se plaçant dans la situation où la totalité de l’azote assimilable est consommée par les levures. 1.2 Méthodes de dosage Dosage de l’azote ammoniacal L’azote ammoniacal est mesuré par méthode enzymatique (Enzytec, DiasSys Diagnostic Systems GmbH, Germany). Dosage des acides aminés L’azote assimilable est mesuré par formol titration (N Assimilable Formol) (Sorensen, 1907) et par IRTF (N Assimilable IRTF) (Dubernet et al, 2000). Par ailleurs, cette fraction peut également être indirectement calculée : > en ajoutant les acides aminés mesurés par l’analyseur automatique et les sels d’ammonium (N Assimilable aa + NH4). La proline et l’hydroxyproline ont été retranchés du total des acides aminés du fait qu’ils ne sont pas assimilés par la levure durant la fermentation (Salmon & Barre, 1998). > en faisant la somme des acides aminés mesurés par la méthode NOPA et des sels d’ammonium mesurés par le kit enzymatique (N Assimilable NOPA + NH4). R E V U E F R A N Ç A I S E D ’ Œ N O L O G I E 14 J U I N / J U I L L E T 2 0 1 1 N ° 2 4 7 Œnologie Figure 3 : Comparaison de la mesure de l’azote assimilable mesuré par spectroscopie infra-rouge à transformé de Fourier ( avec l’azote assimilé déterminé par Kjeldahl ( ) Figure 4 : Comparaison de la mesure de l’azote assimilable associant la mesure des acides aminés par NOPA ( et la détermination des sels d’ammonium par kit enzymatique avec l’azote assimilé déterminé par Kjeldahl ( Comparaison entre N Assimilable Formol et N Assimilé Kjeldahl : N Assimilable Formol est toujours inférieur à N Assimilé Kjeldahl quel que soit le moût (Cf. Figure 2). La moyenne des différences entre les 2 méthodes est de 54,2 mg N/L et le coefficient de concordance de 63 % (Tableau 2). La méthode par formol-titration sous estime de façon importante la teneur en azote assimilable du moût. Comparaison entre N Assimilable IRTF et N Assimilé Kjeldahl : N Assimilable FTIR est proche des valeurs de la méthode de référence avec une différence inférieure à 20 mg N L-1 pour 6 échantillons sur 10 (Cf. Figure 3). L’écart le plus élevé est celui du moût merlot (+ 90 mg N L-1). La moyenne des différences est faible (24,5 mg N/L) et le coefficient de concordance élevé (84 %). Ces résultats montrent que la technique IRTF est fiable. L’écart important obtenu sur le merlot pourrait provenir d’un effet matrice. Il conviendrait donc d’intégrer dans l’étalonnage de l’appareil des moûts atypiques comme le merlot qui ont préalablement subi un traitement de flash détente. R E V U E F R A N Ç A I S E D ’ Œ N O L O G I E ) ) supérieure à N Assimilé Kjeldahl (171,3 mg N L-1), ce qui confirme que ce moût a un comportement atypique. La moyenne des différences est de 37,6 mg N/L et le coefficient de concordance de 72 %. Cette méthode sous-estime l’azote assimilable du moût, excepté pour certains échantillons comme le merlot. Mais la sous-estimation est moins importante que dans le cas de la formol-titration. 2.2. Comparaison des méthodes de dosage Comparaison entre N Assimilable NOPA + NH4 et N Assimilé Kjeldahl : N Assimilable NOPA + NH4 est inférieur à N Assimilé Kjeldahl pour 9 échantillons sur 10 (Cf. Figure 4). Le moût merlot est le seul qui présente une valeur de N Assimilable NOPA + NH4 (222,5 mg N L-1) ) Comparaison entre N Assimilable aa + NH4 et N Assimilé Kjeldahl : N Assimilable aa + NH4 est très proche de N Assimilé Kjeldahl pour la plupart des échantillons testés (Cf. Figure 5). L’écart le plus important concerne le viognier (a) (- 38,3 mg N L-1). La moyenne des différences est 10,3 mg N/L et le coefficient de concordance de 97 %. Cette méthode apparaît comme fiable pour déterminer la teneur en azote assimilable. Conclusion Dans cette étude, différentes méthodes de détermination de l’azote assimilable dans le moût de raisin ont été comparées. L’originalité de l’étude repose sur le fait d’avoir choisi comme méthode de référence l’azote réellement assimilé par les levures, déterminé par la méthode Kjeldahl. Les résultats montrent que i) la méthode la plus fiable est la combinaison de la détermination des acides aminés par l’analyseur automatique et de la détermination de l’azote ammoniacal par le 15 J U I N / J U I L L E T 2 0 1 1 N ° 2 4 7 T E C H N I Q U E ) C A H I E R Figure 2 : Comparaison de la mesure de l’azote assimilable mesuré par formol-titration ( avec l’azote assimilé déterminé par Kjeldahl ( ) Œnologie C A H I E R T E C H N I Q U E Figure 5 : Comparaison de la mesure de l’azote assimilable associant le dosage des acides aminés par analyseur et la détermination des sels d’ammonium par kit enzymatique ( ) avec l’azote assimilé déterminé par Kjeldahl ( ) kit enzymatique. Mais cette méthodologie est longue et exige un investissement important ; ii) la technique IRTF présente le meilleur compromis entre praticité et fiabilité. Elle paraît être la méthode adaptée à un usage en routine du fait de sa rapidité et de sa faible consommation en échantillon ; iii) la technique par formol-titration et, à un degré moindre, la méthode combinant NOPA et le dosage de l’azote ammoniacal par kit enzymatique sous-estiment l’azote assimilable dans les moûts de raisin. La cause possible de la sousestimation par formol-titration et par NOPA peut s’expliquer par le fait que seul 1 atome d’azote sur les 4 que contient l’arginine est dosé par ces méthodes alors que 3 sont assimilés par la levure. Dans le cas de NOPA, le dosage séparé de l’arginine par la méthode ARGOPA (Butzke et Austin, 1999) permet d’obtenir un dosage plus fiable mais rend la technique plus longue. Remerciements Les auteurs remercient Evelyne Aguera, Philippe Lienard (INRA Pech-Rouge) et Christian Picou (INRA Montpellier) pour leur appui technique, Marc Perez et Martine Pradal pour l’analyse des acides aminés, Marie-Anne Robin (INRA Pech-Rouge), Mary Kelly (Université Montpellier 1), Isabelle Falleri (Laboratoire d’Analyses Inter-Rhône) pour leur participation aux analyses et Isabelle Sanchez (INRA Montpellier) pour le traitement statistique des données. Références bibliographiques J. Aerny, 1996. Composés azotés des moûts et des vins. Revue Suisse de Viticulture d’Arboriculture et d’Horticulture, 28, 161-165 M. Bely, 1990 Détection automatique et correction des carences en azote assimilable des fermentations alcooliques en conditions œnologiques : étude cinétique et approche physiologique. Université Montpellier II, Montpellier, 98 p M. Bely, J. M. Sablayrolles, P. Barre, 1990. Automatic control of assimilable nitrogen deficencies during alcoholic fermentation in enological conditions. Journal of Fermentation and Bioengineering, 70, 246-252 J. V. Benson, M. J. Gordon, J. A. Patterson, 1967. Accelerated chromatographic analysis of amino acids in physiological fluids containing glutamine and asparagine. Analytical Biochemistry, 18, 228-240 J. V. Benson, 1972. Multipurpose resins for analysis of amino acids and ninhydrin-positive compounds in hydrolysates and physiological fluids. Analytical Biochemistry, 50,477-493 H. U. Bergmeyer, H. O. Beutle, 1985. Method of enzymatic analysis, metabolites, Ammonia. In H.U.Bergmeyer (ed.), pp. 454-461. Deerfield Beach. VCH Weinheim L. Blateyron, J. M. Sablayrolles, 2001. Stuck and slow fermentations in enology: statistical study of causes and effectivness of combined additions of oxygen and diammonium phosphate. Journal of Bioscience and Bioengineering, 91, 184-189 C.E. Butzke, K.T. Austin, 1999. Concentration of arginine in grape juice: ARGOPA procedure. R E V U E F R A N Ç A I S E D ’ Œ N O L O G I E 16 University of California Davis Corporative Extension. http://wineserver.ucdavis.edu/oldsite/argopa99.pdf. V. Cheynier, R. Schneider, J. M. Salmon, H. Fulcrand, 2010. Chemistry of wine. In Comprehensive Natural Products Chemistry II. Volume 3: Development and modification of bioactivity, (pp. 1119-1172), L. Mander and H. W. Lui (Eds). Oxford, UK, Elsevier E. A. Crowell, C. S. Ough, A. Bakalinski, 1985. Determination of alpha-amino nitrogen in musts and wines by TNBS method. American Journal of Enology and Viticulture, 36, 175-177 V. Dubernet, I. Traineau, M. Lerch, M. Dubernet, S. Coulomb, 2000. Analyse objective de la qualité des vendanges par spectrométrie infrarouge à transformée de Fourier (FTIR) et réseau de neurones. Revue Française d’Œnologie, 185, 18-21 M. Dubernet, F. Grasset, A. Garcia, 2001. Analyse de l’azote assimilable dans les moûts par Interférométrie Infrarouge à Transformée de Fourier. Revue Française d’Œnologie, 187, 9-13 B. C. Dukes, C. E. Butzke, 1998. Rapid determination of primary amino-acids in grape juice using an o-Phthaldialdehyde/N-Acetyl-L-Cysteine spectrophotometric assay. American Journal of Enology and Viticulture, 49, 125-134 L. Filipe-Ribeiro, A. Mendes-Faia, 2007. Validation and comparison of analytical methods used to evaluate the nitrogen status of grape juice. Food Chemistry, 100, 1272–1277 B. H. Gump, B. W. Zoecklei, K. C. Fugelsang, R. S. Whinton, 2002. Comparison of analytical methods for prediction of prefermentation nutritional status of grape juice American Journal of Enology and Viticulture, 53, 325-329 J. Kjeldahl, 1883. A new method for the determination of nitrogen in organic matter. Zeitschrift für Analytische Chemie, 22, 366 Regulation (EC) N° 1907/2006 of the European Parliament and of the Council of 18 december 2006 concerning the Registration, Evaluation, Autorisation and Restriction of Chemicals (REACH), establishing a European Chemicals Agency, amending Directive 1999/45/EC and repealing Council Regulation (EEC) N°793/93 and Commission Regulation (EEC) N° 1488/94 as well as Council Directive 73/769/EEC and Commission Directives 91/155/EEC, 93/67/EEC, 93/105/EC and 2000/21/EC. Official Journal of the European Union, L 396, 30 12 2006, 1-349 J. M. Salmon, P. Barre, 1998. Improvement of nitrogen assimilation and fermentation kinetics in enological conditions by derepression of alternative nitrogenassimilatory pathways in an industrial Saccharomyces cerevisiae strain. Applied and Environmental Microbiology, 64, 3831-3837 C. EShively, T. Henick-Kling, 2001. Comparison of two procedures for assay of free amino nitrogen. American Journal of Enology and Viticulture, 52, 400-401 S. P. L. Sorensen, 1907. Enzymstudien I: Über die quantitative Messung proteolytischer Spaltungen, Die formoltitrierung. Biochemische Zeitschrift, 7, 45 S. Weeks, P.Henschke, 1999. Yeast assimilable nitrogen. Australian and New Zealand Wine Industrial Journal, 14, 53–54 J U I N / J U I L L E T 2 0 1 1 N ° 2 4 7