Dosage DRI® Paracétamol Sérum Tox - Fisher Scientific
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Dosage DRI® Paracétamol Sérum Tox - Fisher Scientific
Dosage DRI® Paracétamol Sérum Tox Pour usage diagnostique in vitro 1086 (Coffret de 25 mL, 8 mL) 1091 (1 x 5 mL, 5 x 2 mL) Application Le dosage DRI® Paracétamol Sérum Tox est destiné à la détermination quantitative du paracétamol dans du plasma ou du sérum humain. Résumé et description du test Le paracétamol est un analgésique ayant également un effet antipyrétique chez l’homme. C’est l’un des analgésiques les plus populaires parmi ceux disponibles auprès du public sans prescription. Les effets secondaires toxiques associés au paracétamol comprennent nausées, somnolence et vomissements. Les traitements chroniques par paracétamol ou l’ingestion de grandes quantités du médicament accidentellement ou lors de tentatives de suicide peuvent provoquer une hépatotoxicité.1 On a démontré une corrélation certaine entre les concentrations sériques en paracétamol et les lésions hépatiques ultérieures.2 La prise en charge correcte des surdosages en paracétamol nécessite une surveillance précoce des concentrations sériques en paracétamol afin de prévenir une nécrose hépatique, dont les signes cliniques apparaissent au moins 12 heures après l’ingestion.3,4 La détermination du paracétamol sérique est l’indicateur le plus fiable pour le pronostic et même plus important pour l’administration d’antidotes.4,5 Il existe de nombreuses techniques pour déterminer la concentration sérique en paracétamol. Ces méthodes comprennent la CG, la CLHP, le dosage immunoenzymatique, la spectrophotométrie UV et le dosage par immunofluorescence. Le dosage DRI® Paracétamol Sérum Tox est un dosage immunoenzymatique en phase homogène6 utilisant des réactifs liquides prêts à l’emploi. Le dosage est basé sur la compétition entre le médicament dans l’échantillon de sérum et le médicament marqué à l’aide d’une enzyme, la glucose-6-phosphate déshydrogénase (G6PDH) au niveau d’une quantité déterminée de sites de liaison de l’anticorps spécifique du médicament. Si l’échantillon ne contient pas le médicament, le conjugué médicament-G6PDH est lié par l’anticorps spécifique ce qui inhibe l’enzyme. Ce phénomène engendre une réaction directe entre la concentration du médicament présent dans l’échantillon et l’activité enzymatique. L’activité de l’enzyme G6PDH est déterminée par spectrophotométrie à 340 nm en mesurant sa capacité à convertir le nicotinamide adénine dinucléotide (NAD) en NADH. Réactifs Réactif anticorps/substrat. Contient un anticorps monoclonal anti-paracétamol, du glucose-6phosphate (G6P) et du nicotinamide adénine dinucléotide (NAD) dans un tampon Tris avec de l’azide de sodium comme conservateur. Réactif conjugué enzymatique. Contient du paracétamol marqué à l’aide de glucose‑6phosphate déshydrogénase (G6PDH) dans un tampon Tris avec de l’azide de sodium comme conservateur. Matériel supplémentaire requis (vendu individuellement) : 1091 Description du coffret Coffret de calibrateurs de paracétamol. Contient 5 mL de calibrateur négatif et 2 mL de chacun des calibrateurs de paracétamol à 10 µg/mL, 25 µg/mL, 50 µg/mL, 100 µg/mL et 200 µg/mL dans un tampon Tris avec de l’azide de sodium comme conservateur. Mises en garde et avertissement Les réactifs sont nocifs par ingestion. Les réactifs utilisés dans ce dosage contiennent de <0,09% l’azide de sodium. Éviter tout contact avec la peau et les muqueuses. En cas de contact, rincer à grande eau. Consulter immédiatement un médecin en cas d’ingestion des réactifs ou de contact avec les yeux. L’azide de sodium peut réagir dans les conduites de plomb ou de cuivre et former des azides métalliques potentiellement explosifs. Lors de l’élimination des réactifs, toujours rincer à grande eau pour éviter l’accumulation d’azides. Nettoyer les surfaces métalliques exposées avec une solution d’hydroxyde de sodium à 10 %. Ne pas utiliser les réactifs au-delà de leur date de péremption. Préparation et conservation des réactifs Les réactifs sont prêts à l’emploi. Ils ne nécessitent aucune préparation. Tous les composants du dosage restent stables jusqu’à la date de péremption indiquée sur l’étiquette s’ils sont conservés convenablement entre 2 et 8 °C. Prélèvement et manipulation des échantillons On peut utiliser ce dosage sur du sérum ou du plasma. Les anticoagulants, tels que l’héparine, les citrates, les oxalates et l’EDTA n’ont montré aucune interférence avec ce dosage. On peut utiliser des échantillons plasmatiques recueillis sur ces anticoagulants, mais un échantillon sérique frais est préférable. Conserver l’échantillon au réfrigérateur. Les échantillons prélevés à la pipette ne doivent pas contenir de gros débris. Manipuler tous les échantillons de sérum comme s’ils étaient potentiellement infectieux. Procédure du dosage Pour réaliser ce dosage immunoenzymatique en phase homogène, utiliser un analyseur qui soit capable de maintenir une température constante, de prélever des échantillons à la pipette, de mélanger les réactifs, de mesurer les taux enzymatiques à 340 nm et de minuter la réaction avec précision. Avant de procéder au dosage, consulter la fiche technique spécifique de l’analyseur indiquant les paramètres et/ou des directives complémentaires. Contrôle qualité et calibration Les bonnes pratiques de laboratoire recommandent d’utiliser des échantillons de contrôle pour garantir des performances correctes du dosage. Il existe plusieurs contrôles en vente libre permettant le contrôle qualité de ce dosage. Vérifier que les résultats des contrôles se situent dans la plage de valeurs établie par le laboratoire. Utiliser tous les calibrateurs pour calibrer le dosage. Recommencer la calibration de l’appareil pour chaque nouveau lot de réactifs utilisé. Toutes les exigences de contrôle qualité doivent être appliquées conformément aux règlements locaux, régionaux et nationaux ou aux conditions d’agrément. Résultats et valeurs attendues Les analyseurs de chimie clinique déterminent de façon automatisée la concentration en paracétamol dans le sérum ou le plasma. Aucune autre manipulation des données n’est nécessaire. L’administration de doses allant de 325 à 650 mg de paracétamol toutes les trois à quatre heures pour l’analgésie des adultes n’entraîne pas d’effet secondaire. Normalement, la concentration sérique nécessaire pour obtenir une réponse analgésique est comprise entre 5 et 20 µg/ mL.7 L’ingestion de quantités plus importantes du médicament peut toutefois entraîner une hépatotoxicité. On a démontré une corrélation certaine entre les concentrations sériques en paracétamol et des lésions hépatiques ultérieures.2 Les patients présentant une concentration inférieure à 120 µg/mL quatre heures après l’ingestion ne développent pas d’insuffisance hépatique. Cinquante pourcent de ceux qui présentent une concentration comprise entre 120 µg/mL et 300 µg/mL, développent une nécrose hépatique, alors que les concentrations supérieures à 300 µg/mL sont systématiquement associées à une nécrose hépatique. La demi-vie sérique du paracétamol constitue probablement le meilleur guide sur l’ampleur de la lésion hépatique. Il a été montré qu’une nécrose hépatique survenait lorsque la demi-vie est supérieure à quatre heures et que le coma est très probable lorsque la demi-vie dépasse 12 heures.2,5,8 Limitations 1. Le test a été conçu pour être utilisé uniquement avec le sérum ou le plasma humain, pas avec le sang total. 2. Diluer dans le calibrateur négatif les échantillons patients dont la concentration en paracétamol dépasse 200 µg/mL et recommencer le dosage. Multiplier le résultat du dosage par le facteur de dilution pour obtenir la concentration correcte en paracétamol. Performance caractéristique Les données caractéristiques suivantes ont été générées avec un analyseur de chimie clinique Hitachi 717. Précision Les précisions intra-série et inter-série ont été évaluées en utilisant trois échantillons de sérum qui ont donné les résultats suivants : Précision intra-série (n=20) Précision inter-série (n=12) Sample Mean ± SD (μg/mL) % CV Mean ± SD (μg/mL) % CV 01 23 + 1,5 6,5 26 + 2,1 8,1 02 52 + 4,3 8,3 59 + 3,8 6,4 03 116 + 6,2 5,3 123 + 7,4 6,0 Sensibilité La sensibilité, définie comme la plus faible concentration qui puisse être différenciée de 0 µg/mL avec un intervalle de confiance à 95 % est de 2,5 µg/mL. Exactitude et corrélation Quatre-vingt échantillons cliniques de sérum ont été soumis au dosage DRI Paracétamol Sérum Tox (y) et à une méthode commercialisée de dosage du paracétamol (x). On a obtenu une corrélation avec une équation de régression linéaire de y = 0,91 (x) + 3,5 et un coefficient de corrélation (r) de 0,99. La concentration moyenne en paracétamol de l’échantillon pour le dosage DRI a été de 35,9 µg/mL, avec des valeurs comprises entre 0 µg/mL et 139,1 µg/mL. La concentration moyenne en paracétamol de l’échantillon pour le dosage commercialisé a été de 35,5 µg/mL, avec des valeurs comprises entre 0 µg/mL et 138,5 µg/mL. Bibliographie Spécificité Des composés dont la structure s’apparente à celle du paracétamol et des médicaments susceptibles d’être administrés en même temps que le paracétamol ont été analysés pour rechercher toute réactivité croisée éventuelle au niveau du dosage. Le tableau suivant présente la concentration des composés analysés ayant donné un résultat de réactivité croisée inférieur à la limite de détection du dosage. Composé (µg/mL) Paracétamol glucuronide 1.000 N-acétylcystéine 1.000 Amitriptyline Acide benzoïque Butalbital Caféine 20 1.000 30 100 Chlorphéniramine 1.000 Chlorzoxazone 1.000 Codéine 2 Cystéamine 1.000 D-cystéine 1.000 Dextrométhorphane 5 Diazépam 20 Diflunisal 1.000 Éphédrine 1.000 Fénoprofène 1.000 Acide gentisique 1.000 Éther glycéryle de guaiacol 1.000 Homatropine 1.000 Ibuprofène 1.000 Indométhacine 1.000 Méthionine 1.000 Naproxène 1.000 Phénacétine 30 Phénobarbital 1.000 Phénylbutazone 1.000 Phényléphrine 1.000 Propoxyphène Pyrilamine Acide salicylique 1. Barker JD, deCarle DJ and S Anuras: Chronic Excessive Acetaminophen Use and Liver Damage. Ann Intern Med, 87:299 (1977). 2. Prescott LF, Roscoe P, Wright N and SS Brown: Plasma-Paracetamol Half-Life and Hepatic Necrosis in Patients with Paracetamol Overdosage. Lancet, 1:519 (1971). 3. Meredith TJ and R Goulding: Paracetamol. Postgrad Med, 56:459 (1980). 4. Atwood SJ: The Laboratory in the Diagnosis and Management of Acetaminophen and Salicylate Intoxication. Pediatr Clin North Am, 27:871 (1980). 5. American Academy of Pediatrics. Committee on Drugs: Commentary on Acetaminophen. Pediatr, 61:108 (1978). 6. Rubenstein KE, Schneider RS and EF Ullman: Homogeneous Enzyme Immunoassay: a New Immunochemical Technique. Biochem Biophys Res Commun, 47:846 (1972). 7. Koch-Weser J: Acetaminophen. N J Med, 295:1297 (1976). 8. Rumack BH and H Matthew: Acetaminophen Poisoning and Toxicity. Pediatrics for the Clinician, 55:871 (1975). 2 1.000 300 Salicylamide 1.000 Sécobarbital 3 Aucune interférence n’a été observée avec les échantillons hémolysés, lipémiques ou ictériques et des concentrations en hémoglobine, cholestérol et bilirubine aussi élevées que 800 mg/dL, 400 mg/dL et 30 mg/dL respectivement. Microgenics Corporation 46360 Fremont Blvd. Fremont, CA 94538-6406 États-Unis Soutien technique et à la clientèle, États-Unis : 1-800-232-3342 Pour des mises à jour de la notice, consulter: www.thermoscientific.com Autres pays: Contacter le représentant local Thermo Fisher Scientific. 1090-3 2010 12 2 Microgenics GmbH Spitalhofstrasse 94 D-94032 Passau Germany Tel: +49 (0) 851-88 68 90 Fax: +49 (0) 851-88 68 910