Article complet - Revue de Médecine Vétérinaire
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FERTILITÉ DES CHÈVRES SAHÉLIENNES À L’ŒSTRUS INDUIT AU SÉNÉGAL 163 Efficacité d’un traitement combiné à base d’acétate de fluorogestone- cloprosténol-eCG sur l’induction de l’œstrus et la fertilité des chèvres sahéliennes J. KOUAMO1*, J.P. MPATSWENUMUGABO2, A. SOW2, M. KALANDI2, G.J. SAWADOGO2 Ecole des Sciences et de Médecine Vétérinaire, Université de Ngaoundéré. BP 454, Ngaoundéré, CAMEROUN. EISMV - Service de physique et chimie biologiques et médicales. Laboratoire d’endocrinologie et de radio-immunologie, BP 5077, Dakar, SÉNÉGAL. 1 2 * Auteur chargé de la correspondance : [email protected] RESUME Cette étude avait pour principal objectif d’étudier l’efficacité du traitement combiné à base d’acétate de fluorogestone-cloprosténol-eCG sur l’induction de l’œstrus et la fertilité des chèvres sahéliennes au Sénégal. Ainsi, 272 chèvres sahéliennes ont été sélectionnées parmi 371 sur les critères suivants: chèvre multipare, non gravide, ne présentant aucun antécédent pathologique (avortements et dystocies), avec un bon état corporel (≥2) et une bonne conformation générale. Le protocole d’induction de l’œstrus a consisté à la pose du dispositif intravaginal contenant 45mg d’acétate de fluorogestone (FGA) laissé en place pendant 11 jours. Une injection par la voie IM de 50 µg de cloprosténol et de 500UI d’eCG (Gonadotropine sérique équine) a été effectuée au jour 9 avant le retrait de l’éponge. Toutes les chèvres ont été inséminées 45 ± 3 heures avec des semences importées de chèvres de race Alpine. Les taux d’induction d’œstrus et de gravidité ont été de 83,46% et 65,2% respectivement. Les facteurs tels que le nombre de jours post-partum (JPP), l’intervalle retrait d’éponge et insémination, le poids, l’intervalle pose et retrait d’éponge et le bouc inséminateur ont une influence significative sur la fertilité des chèvres sahéliennes à l’œstrus induit (p<0,05), avec des intensités de relation variant de 12,7 à 52,6%. Mots-clés : FGA, cloprosténol, insémination artificielle, œstrus, fertilité, chèvre du sahel, Sénégal. Introduction Dans l’optique de diversification des ressources génétiques animales, le gouvernement du Sénégal en partenariat avec la région Poitou Charentes en France a lancé un programme d’insémination artificielle caprine dans la région de Fatick avec pour objectif prioritaire de lutter contre la pauvreté notamment en milieu rural [16, 24, 36, 49]. Les animaux domestiques et particulièrement la chèvre sont au centre des dynamiques d’enrichissement et d’appauvrissement du monde rural. L’importance économique des caprins en Afrique et notamment pour les populations les plus défavorisées est souvent sous estimée. Plusieurs raisons peuvent expliquer cette méconnaissance. En effet, les chèvres sont difficiles à compter car, dans les élevages traditionnels qui constituent l’énorme majorité en Afrique, elles sont laissées en liberté et leur commerce se fait le plus souvent à l’intérieur de circuits informels. En plus de constituer un produit susceptible d’être échangé ou vendu, elles constituent en effet un précieux Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 SUMMARY Efficacy of combined treatment based on fluorogestone acetate cloprostenol - eCG on estrus response and fertility of sahelian goats This study aimed to evaluate the efficacy of combined treatment containing fluorogestone acetate - cloprostenol-eCG on estrus response and fertility of sahelian goats. Thus, 272 sahelian goats were selected on the criteria based on multiparity, nonpregnant stage, no pathological status (especially abortions and dystocy), with a good BCS (≥2) and a good general conformation. The protocol of estrus induction consisted of installation of the Cronolone device intravaginal containing 45mg acetate of fluorogestone (FGA) left in place during 11 days. An IM injection of 50 μg of cloprostenol, and 500IU of eCG (equine chorionic gonadotropin) were carried out at day 9 before the sponge removal. All the goats were inseminated 45 ± 3 hours with imported semen of Alpine goats. The estrus response rate and pregnancy rate were 83.46% and 65.2% respectively. Factors such as number of days post partum, interval withdrawal of sponge and insemination, hour of AI, proximity, weight, interval application and withdrawal of sponge and buck has a significant influence on the fertility of the sahelian goats induced in estrus (p<0.05). The intensities of relation between factors vary from 12.7 to 52.6%. Keywords: FGA, cloprostenol, AI, estrus, fertility, sahelian goats, Senegal. capital productif. La chèvre constitue en milieu rural une carte de crédit qui sert à faire face à un certain nombre de besoin quotidien, et bon nombre des familles vivent des revenus liés à leur élevage. Une augmentation de la productivité des caprins s’avère donc nécessaire, ceci à travers l’amélioration de leurs performances de reproduction [47] par l’utilisation des biotechniques comme la synchronisation de l’œstrus et l’insémination artificielle (IA). Plusieurs méthodes de synchronisation et d’induction de l’œstrus ont été testées chez la chèvre. La plus utilisée est le traitement à base d’acétate de fluorogestone pendant 9-11 jours combinée à l’injection de prostaglandine [7, 25]. Malgré les avantages sanitaires, génétiques et économiques pour les élevages caprins spécialisés en production de lait, de viande, cette technique reste encore peu pratiquée en Afrique et au Sénégal où les conditions d’élevage sont souvent difficiles et l’encadrement technique est trop sommaire. L’analyse des résultats de l’insémination artificielle depuis le début de cette campagne en 2005 a montré une faiblesse des 164 taux de fertilité (31%) [13]. Outre les variations importantes du disponible fourrager existant ainsi que l’inexpérience dans l’organisation des campagnes d’IA caprine, plusieurs facteurs peuvent expliquer ce faible taux. C’est dans ce contexte que s’est déroulée cette étude avec pour objectif général d’étudier l’efficacité du traitement combiné à base d’acétate de fluorogestone - cloprosténol-eCG sur l’induction de l’œstrus et la fertilité des chèvres sahéliennes dans la région de Fatick. De façon spécifique, il s’agira de déterminer le taux d’induction de l’œstrus, le taux de gestation et d’identifier les facteurs de variations de la fertilité. KOUAMO (J.) AND COLLABORATORS et de 500IU d’eCG (gonadotropine sérique équine) lyophilisée a été effectuée 2 jours avant le retrait de l’éponge. Toutes les chèvres ont été inséminées 45 ± 3 heures après le début des chaleurs avec des semences de race Alpine à haut potentiel génétique importées de France. Matériel et méthodes CADRE DE L’ETUDE ET SELECTION DES ANIMAUX L’étude s’est déroulée dans la région de Fatick limitée par la région de Kaolack à l’Est, la région de Thiès au Nord-Ouest, l’océan atlantique à l’Ouest, la République de Gambie au Sud et les régions de Thiès, Diourbel et de Louga au Nord et NordOuest. Elle comprend 3 départements : Fatick, chef-lieu de la région, Foundiougne et Gossas. Les critères de sélection des chèvres étaient: chèvre multipare, non gravide, ne présentant aucun antécédent pathologique (surtout les avortements et les dystocies), avec un bon état corporel (≥2) et une bonne conformation générale. Les animaux retenus pour l’étude étaient de race sahélienne, âgés de 3,4 ans en moyenne avec un poids moyen de 20,8 kg et une NEC de 2,2. Au total, sur un groupe de 371 chèvres présélectionnées, seules 272 ont été sélectionnées pour le programme d’IA caprine. CONDUITE DES ANIMAUX Les chèvres sélectionnées ont été réparties en 14 chèvreries (Figure 1) sur l’ensemble de la région ; département de Fatick : Yenguele II (25), Ngoyere (24), Mbafaye (28), Ndiop (26), Thialle (14), Ndoffane (12), Maroneme (20) ; Département de Gossas : Ndiene Lagane (12), Colobane (18) ; Département de Foundiougne: Mbam (19), Sap (27), Djilor I (14), Djilor II (12), Fayil (21). Les chèvreries ont été gérées par les coopératives organisées d’éleveurs, constituées uniquement des femmes. Les animaux étaient conduits aux pâturages très tôt le matin, puis revenaient dans les chèvreries vers 11h-13h pour retourner aux pâtures l’après-midi jusque dans la soirée. Pendant leur stabulation, elles recevaient de la paille de brousse, de la paille de niébé, paille de maïs, de la fane d’arachide plus de l’aliment bétail (NMA SANDERS). PROTOCOLE DE SYNCHRONISATION DE L’OESTRUS ET D’INSEMINATION ARTIFICIELLE Un mois avant le début des traitements d’induction de l’œstrus, toutes les chèvres sélectionnées ont été déparasitées (ivermectine) et vaccinées contre la pasteurellose (Pastovax). Le protocole d’induction de l’œstrus a consisté à la pose du dispositif intravaginal contenant 45mg d’acétate de fluorogestone (FGA, Cronolone) laissé en place pendant 11 jours. Une injection IM de 50 µg de cloprosténol (Estrumate) Figure 1 : Carte des chèvreries sélectionnées pour la campagne d’IA dans la région de Fatick DIAGNOSTIC DE GESTATION Un diagnostic de gestation a été effectué par échographie transabdominale 60 jours après l’IA à l’aide d’un échographe portable de type Agroscan avec une sonde sectorielle 3,5 Mhz [26]. COLLECTE DES DONNEES ET ANALYSES STATISTIQUES Pendant tout le programme, des données intrinsèques à l’animal inséminé (jour post-partum, âge, NEC, poids) et extrinsèques (département, localité, date et heure de la pose d’éponge, date et heure de retrait d’éponge, date et heure d’IA, note d’IA (lieu de dépôt de la semence), semence) ont été collectées à partir de fiche d’enquête. Ce qui a permis d’apprécier leurs effets sur la fertilité. Toutes les données collectées ont été saisies dans le tableur Excel 2007 de Microsoft et analysées avec le logiciel SPSS 10.0 pour Windows. Le test de Gamma a permis de mesurer l’intensité d’association ou de liaison entre les variables ordinales. La mesure était basée sur le test de Khi deux située entre -1 et +1. Les valeurs proches d’une valeur absolue de 1 indiquaient une forte liaison entre les deux variables alors que celles proches de zéro indiquaient une relation faible ou inexistante. Le test V de Cramer a été utilisé pour mesurer l’intensité d’association ou de liaison entre les variables nominales. La mesure de l’intensité variait de 0 à 1. Le seuil de signification « p » choisi était fixé à 5%. L’effet obtenu était significatif si p < 0,05; hautement significatif si p < 0,001; non significatif si p > 0,05. Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 FERTILITÉ DES CHÈVRES SAHÉLIENNES À L’ŒSTRUS INDUIT AU SÉNÉGAL 165 Résultats Discussion INDUCTION DE L’ŒSTRUS INDUCTION DE L’ŒSTRUS Sur les 272 chèvres synchronisées, 227 ont répondu au traitement d’induction de l’œstrus à base de Cronolone, soit un taux d’induction de 83,46%. 16,54% étaient soit absentes (11,6%) au moment du retrait de l’éponge et/ou de l’IA, soit écartées pour perte d’éponge (4,94%). La synchronisation de l’œstrus est l’élément clé pour tout protocole de technique de reproduction assistée chez les animaux domestiques et plus particulièrement chez la chèvre où le cycle œstral et l’œstrus sont très variables [7, 23, 30, 39]. Le taux d’induction observé de 83,46 % est comparable ou supérieur à différentes données de la littérature [6, 13, 14, 19, 28, 34, 42]. L’efficacité de ce traitement est due au fait que le FGA prévient la formation d’un nouveau corps jaune [48, 50] tandis que le cloprosténol assure la lutéolyse et l’eCG améliore la synchronisation en facilitant la maturation folliculaire et l’ovulation. L’utilisation de 40mg de FGA avec ou sans eCG (500IU) durant l’anoestrus a montré que le FGA combiné à l’eCG améliorait la fertilité des brebis Rahmani [3]. Le taux d’induction obtenu aurait même pu être amélioré si 11,6% des chèvres n’avaient pas été absentes au moment du retrait de l’éponge. En milieu traditionnel, la chèvre joue le rôle de tirelire que ne pourraient remplir en aucun cas les bovins, représentant un capital bien trop élevé. Ainsi, malgré le programme d’IA, elles sont très souvent vendues pour renforcer la stabilité économique des ménages en temps de défaillances des cultures et des fluctuations monétaires [21, 31]. TAUX DE GESTATION Suite au diagnostic échographique 60 jours après l’IA, 148/227 chèvres étaient gravides, soit un taux de gestation de 65,2%. Mais cette fertilité variait suivant plusieurs facteurs d’ordre intrinsèques et extrinsèques. FACTEURS DE VARIATIONS DE LA FERTILITÉ Facteurs intrinsèques Le tableau I présente les variations de la fertilité des chèvres sahéliennes inséminées en fonction de l’âge, la note d’état corporel (NEC), l’intervalle mise bas-pose des éponges ou nombre de jours post-partum (JPP), et le poids. Facteurs extrinsèques Le tableau II présente les variations de la fertilité des chèvres sahéliennes inséminées en fonction de la semence, la note d’IA, la localité, le département, l’intervalle pose et retrait des éponges, l’intervalle retrait des éponges et IA et heure d’IA. Facteurs intrinsèques Valeurs Taux de gestation (%) 2 82 (76) 2,25 71 a (94) 2,5 77 (57) TAUX DE GESTATION Chez la chèvre, l’échographie transabdominale est la plus utilisée en pratique. En effet, elle offre le meilleur compromis, à partir de 40 jours de gestation, entre précocité, sûreté, rapidité et exactitude et permet, outre le diagnostic Intensité de la relation V de Cramer NEC au jour de l’IA Intervalle mise bas[1-3] pose de l’éponge (mois) [4-6] Age (année) Poids (kg) a.b.c Pie value (p) 0,0001 0,997 0,127 0,040* 0,076 0,62 0,268 0,024* a 68,75 c (41) 84 b (82) [7-9] 100 (67) ≥10 100 a (37) [1-2,5] 75,61 a (51) [3-4,5] 73,39 a (133) ≥5 82,76 a (43) [15-17,5] 67,86 b (46) [18-20,5] 66,67 b (50) [21-23,5] 75,71 b (51) [24-26,5] 98,29 (42) ≥27 85 a (38) a a les lettres différentes indiquent que la différence est significative dans la même colonne. * : p< 0,05 ** : p< 0,01 *** : p<0,001 Tableau I : effet des facteurs intrinsèques sur le taux de gestation des chèvres sahéliennes à l’œstrus induit. Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 Test de Gamma a 166 KOUAMO (J.) AND COLLABORATORS Facteurs extrinsèques Type de semence Valeurs Taux de gestation (%) J124 80 (26) M181 78,57 b (17) N155 41,67 c (19) N551 83,33 b (23) R198 70 b (22) S166 33,33 c (18) T155 73,68 (26) T166 75 b (21) U107 88 a (24) U520 95 a (31) Note IA (lieu dépôt de semence) 1 (intracervicale) 76,85 a (67) 2 (cervicale) 73,49 a (82) 3 (extracervicale) 66,67 (78) Localités Maroneme 30 d (17) Ndoffane 50 c (12) Sap 52 c (22) Djilor I 100 a (13) Djilor II 100 a (11) Mbam 55 c (16) Mbafaye 88 b (20) Ngoyere 71 (18) Yenguele II 53 c (19) Colobane 55 c (17) Ndiene Lagane 33 d (13) Fayil 52 c (17) Ndiop 91 a (19) Thialle 93 a (13) Fatick 71,55 a (118) Gossas 45 c (30) Foundiougne 61,54 (79) Intervalle pose– retrait éponge (jours) 11 77,27 a (179) 12 55,56 b (48) Intervalle retrait éponge-IA (h) [42-43] 60,47 c (57) [44-45] 78,32 b (72) [46-47] 100 (98) [9-10] 68,81 b (83) [11-12] 81,48 a (101) [13-14] 87,10 (43) Département Heure IA (h) Intensité de la relation V de Cramer Test de Gamma Pie value (p) b 0,254 0,0135* b -0,098 0,55 a 0,526 0,0007*** 0,178 0,046* b b -0,462 0,042* 0,479 0,006** 0,349 0,019*** a a a.b.c,d les lettres différentes indiquent que la différence est significative dans la même colonne. * : p< 0,05 ** : p< 0,01 *** : p<0,001 Tableau II : effet des facteurs extrinsèques sur la fertilité des chèvres sahéliennes à l’œstrus induit. de gestation, le dénombrement et le contrôle de la viabilité des fœtus mais surtout la détection des pseudogestations [9, 26]. Le taux de femelles gravides obtenu par échographie est comparable à celui observé chez la chèvre Boer [32], Mashona [30], Nubian [42], Damacus [53]. Il est inférieur à celui chez les chèvres Boer [8], Alpines [10] et les croisés Akkaraman [6], mais supérieur à celui observé chez la chèvre sahélienne [13, 35]. Ces différences pourraient s’expliquer par plusieurs facteurs notamment la saison [38], la race, l’âge [37], l’exposition au mâles [37, 41] et également Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 FERTILITÉ DES CHÈVRES SAHÉLIENNES À L’ŒSTRUS INDUIT AU SÉNÉGAL l’expérience acquise depuis les premières campagnes d’IA caprine. AL-MERESTANI et al. [2] obtiennent de meilleurs résultats chez la chèvre Damascus en utilisant 45 mg de FGA pendant 14 jours en combinaison avec 500IU eCG le jour du retrait et AKOZ et al. [1] recommandent l’utilisation de 30, 40mg de FGA avec 700IU d’eCG pour améliorer la fertilité. Bien que ce protocole à base de FGA ait conduit à 65% de gravidité, plusieurs auteurs proposent d’y associer l’effet bouc pour améliorer la fertilité [4, 27, 33, 51, 52]. FACTEURS DE VARIATIONS DE LA FERTILITÉ Facteurs intrinsèques Les chèvres ayant un nombre de jours post partum≥10mois et un poids ≥24kg présentent une meilleure fertilité. Le traitement appliqué a eu un effet positif chez les chèvres en anoestrus prolongé et plusieurs études ont montré que plus le JPP est long, plus la probabilité de réussite de l’insémination est élevée [5, 22]. La fertilité augmente avec le poids. En effet, le poids de l’animal définit son état corporel et sa masse musculaire. ROCHE [40] rapporte qu’il existe une relation négative significative entre la perte de poids depuis la mise bas précédente et la réussite de l’IA. Les animaux les plus légers au moment de la mise en place du traitement répondent moins bien au traitement à base de FGA. Selon GRIMARD et al. [22], une augmentation de 1 point de la note d’état corporel est accompagnée d’une augmentation de 13 % du taux de gestation. Une perte de plus de 0,5 point de note d’état corporel entre la mise bas et le traitement diminue le taux de gestation. Dans cette étude une NEC comprise entre 2 et 2,5 semble être optimale chez les chèvres sahéliennes. Facteurs extrinsèques Le département de Fatick ainsi que la plupart de ces localités notamment celles de Thialle, Ndiop, Mbafaye, Ngoyere ont enregistré les meilleurs taux de fertilité. Les différences observées seraient dues à la proximité des chèvreries du département de Fatick par rapport au centre ville et à l’inséminateur [29]. Ainsi, les animaux ont pu être suivis facilement contrairement à Gossas qui est très éloigné et d’accès difficile. Les localités de Djilor I et II qui bénéficient également de la proximité avec le centre ville ont enregistré les meilleurs taux du fait d’une meilleure conduite des animaux [20] car ces derniers étaient régulièrement complémentés avec de l’aliment bétail à leur retour des pâturages. Le bouc inséminateur joue un rôle important dans la réussite de l’insémination. La semence des boucs (U107, U520) ayant enregistrés les meilleurs taux de fertilité aurait présenté une valeur génétique additive plus élevée que les autres ou alors elle aurait été mieux préparée et/ou conservée. En effet, il existe une relation entre le pouvoir fécondant du sperme congelé et la réussite de l’IA [15, 17, 18, 45]. La fertilité de ces meilleurs boucs devrait être encore testée et confirmée avant leur vulgarisation à grande échelle tout en Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 167 évitant leur utilisation abusive pour éviter tout problème de consanguinité. Les études ont montré que le meilleur taux est observé si les éponges restent 11 jours dans l’appareil génital et que l’injection d’eCG est réalisée 9 jours après la pose d’éponge [12]. Ce qui corrobore nos résultats. L’intervalle retrait des éponges et IA détermine le moment du pic ovulatoire de LH. L’insémination doit être pratiquée en tenant compte de la durée de vie des spermatozoïdes (24h) dans les voies génitales et le moment de l’ovulation (16-36 h après le début des chaleurs). L’intervalle 46-47h a été recommandé par plusieurs auteurs [11]. En principe, les inséminations doivent être réalisées tôt le matin ou tard le soir pour avoir un meilleur taux de réussite. Dans cette étude, les meilleurs taux ont été enregistrés sur des inséminations effectuées entre 11h et 14h. La campagne s’est déroulée pendant la période la plus fraîche de l’année (Novembre-Février) où le climat était doux et frais toute la journée. Ce qui pourrait expliquer les résultats obtenus. En conclusion, le protocole combiné à base de Cronolonecloprosténol-eCG permet d’induire efficacement l’œstrus et d’obtenir une bonne fertilité chez la chèvre sahélienne. Les facteurs tels que le nombre de jours post partum, le poids, le type de semence, la proximité inséminateur-chèvrerie, l’intervalle pose éponge – retrait éponge, l’intervalle retrait éponge-IA et l’heure d’IA doivent être pris en compte pour améliorer la fertilité lors des prochaines campagnes. Remerciements Les auteurs remercient la région Poitou-Charentes pour avoir initiée et soutenue ce programme, le ministère de l’élevage du Sénégal, le conseil régional de Fatick, l’Ancar, le Prolait, le Fresyca et Mathieu Gloria, technicien caprin. Bibliographie 1. - AKÖZ M., BÜLBÜL B., ATAMAN M.B., DERE S.: Induction of Multiple Births in Akkaraman CrossBred Sheep Synchronized with Short Duration and Different Doses of Progesterone Treatment Combined with PMSG Outside the Breeding Season. Bull. Vet. Inst. Pulawy, 2006, 50, 97-100. 2. - AL-MERESTANI M., ZARKAWI M., WARDEH M.: Improving the reproductive efficiency, pregnancy diagnosis and monitoring the resumption of luteal activity in indigenous Damascus goats. Reprod. Domest. Anim., 2003, 38, 36–40. 3. - AMER H.A. HAZZAA A.M.: The effect of different progesterone protocols on the reproductive efficiency of ewes during the non-breeding season. Veterinarski Arhiv, 2009, 79, 19-30. 4. - AMOAH E.A., GELAYE S.: Superovulation, synchronization and breeding of does. Small Rumin. Res., 1990, 3, 63–72. 168 5. - ANEL L., ALVAREZ M., MARTINEZ-PASTOR F., GARCIA-MACIAS V., ANEL E.: Improvement strategies in ovine artificial insemination. Reprod. Dom. Anim., 2006, 41, 30-42. 6. - ATAMAN M.B., AKÖZ M., AKMAN O.: Induction of synchronized oestrus in akkaraman cross-bred ewes during breeding and anestrus seasons: the use of shortterm and long-term progesterone treatments. Revue Méd. Vét., 2006, 157, 257-260. 7. - BALDASSARRE H., KARATZAS C.N.: Advanced assisted reproduction technologies (ART) in goats. Anim. Reprod. Sci., 2004, 82-83, 255-266. 8. - BOCQUIER F., LEBOEUF B., ROUEL J., CHILLIAR Y. : Effet du niveau alimentaire et du protocole d’IA sur les performances de reproductions de chevrettes Alpines. In: 7ème rencontres Recherches Ruminants- Paris, les 6 et 7 décembre 2000.-Paris INRA-IGA; Institut de l’élevage, 221-225. 9. - BRETZLAFF K.N., ROMANO J.E.: Advanced reproductive techniques in goats. Vet. Clin. North Am. (Food Anim. Pract.), 2001, 17, 421-434. 10. - BRICE G., LEBOEUF B., CHEMINEAU P.: Reproduction Caprine : Contraintes pour les éleveurs ayant la démarche « Qualité » (A.O.C) et agriculture Biologique : Solution envisageables). In : 7ème Rencontres Recherches Ruminants- Paris ; les 6 et 7 décembre 2000.-Paris INRA-IGA ; Institut de l’élevage, 288-291. 11. - CORTEEL J.M., LEBŒUF B., BROQUA B.: Identification de facteurs favorables à la fertilité des chevrettes inséminées au cours d’un œstrus induit par voie hormonale. In : Colloque production Caprine, Niort, 6 mai 1993, pE1-E10. 12. - DAVID I., DRUART X., LAGRIFFOUL G., MANFREDI E., ROBERT-GRANIÉ C.: Genetic and environmental factors affecting semen traits in Lacaune and Manech tête rousse AI rams. Genet. Sel. Evol., 2007, 39, 405-419. 13. - DJAKBA A. : Evaluation des paramètres de reproduction chez la chèvre du sahel inséminée artificiellement et de la croissance des chevreaux dans la région de Fatick au Sénégal. Thèse Méd. Vét., Dakar, 2007, 39. 14. - DOGAN I., NUR Z.: Different estrous induction methods during the non-breeding season in Kivircik ewes. Vet. Med., 2006, 51, 133-138. 15. - DONOVAN A., HANRAHAN J.P., KUMMEN E., DUFFY P., BOLAND M.P.: Fertility in the ewe following cervical insemination with fresh or frozen-thawed semen at a natural or synchronised oestrus. Anim. Rep. Sci., 2004, 84, 359-368. 16. - FAYE B. : Le rôle de l’élevage dans la lutte contre la pauvreté. Revue Elev. Méd. Vet. Pays trop., 2001, 54, 231238. 17. - FERNANDEZ-ABELLA D., PREVE M.O., VILLEGAS N.: Insemination time and dilution rate of cooled and chilled ram semen affects fertility. Theriogenology, 2003, 60, 21-26. 18. - FINDLATER R.C., HARESIGN W., CURNOCK R.M., BECK N.F.G.: Evaluation of intrauterine insemination of KOUAMO (J.) AND COLLABORATORS sheep with frozen semen: effects of time of insemination and semen dose on conception rates. Anim. Prod., 1991, 53, 89-96. 19. - FITZGERALD J.A., RUGLESS A.J., STELIflUG J.N., HANSEL W.: A seven-day synchronization method for ewes using medroxiprogesterone acetate (MAP) and prostaglandin F2. J. Anim. Sci., 1985, 61, 465-469. 20. - GARCIA-ISPIERTO I.: Factors affecting the fertility of high producing dairy herds in northeastern Spain. Theriogenology, 2007, 67, 632-638. 21. - GEOFF P., WILSON R.T.: Sheep and goats for diverse products and profits. In: Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rural Infrastructure and Agro-Industries Division. Diversification booklet, 2009, 9, 42 pages. 22. - GRIMARD B., FRERET S., CHEVALLIER A., PINTO A., PONSART C.: Genetic and environmental factors influencing first service conception rate and late embryonic/foetal mortality in low fertility dairy herds. Anim. Reprod. Sci., 2006, 91, 31-44. 23. - HASHEMI M., SAFDARIAN M., KAFI M.: Estrous response to synchronization of estrus using different progesterone treatments outside the natural breeding season in ewes. Small Rumin. Res., 2006, 65, 279-283. 24. - ILRI.: “ Livestock, a pathway out of poverty: ILRI’s strategy to 2010”, Nairobi, 2002, 24 pages. 25. - KARACA F., ATAMAN M.B., COYAN K.: Synchronization of estrus with short- and long-term progestagen treatments and the use of GnRH prior to short-term progestagen treatment in ewes. Small Rumin. Res., 2009, 81, 185–188. 26. - KAREN A., SZABADOS K., REICZIGEL J., BECKERS J.F., SZENCI O.: Accuracy of transrectal ultrasonography for determination of pregnancy in sheep: effect of fasting and handling of the animals. Theriogenology, 2004, 61, 1291-1298. 27. - KOJIMA F.N., SALFEN B.E., BADER J.F.,. RICKE W.A, LUCY M.C., SMITH M.F., PATTERSON D.J.: Development of an estrus synchronization protocol for beef cattle with short-term feeding of melengestrol acetate: 7–11 Synch. J. Anim. Sci., 2000, 78, 2186–2191. 28. - KOR N.M., KHANGHAH M.K., ALI A.: Efficiency of short time protocols based on combined FGA, PGF2α, GnRH and eCG treatments on oestrus synchronization and reproductive performance of kermani ewes during the breeding season. Int. J. Biol. Med. Res., 2012, 3, 19661970. 29. - KOUAMO J., SAWADOGO G.J.: Synchronization rate and factors affecting pregnancy rate after synchronization of estrus cycle and insemination of Gobra zebu (Bos indicus) in traditional area in Senegal. Livestock Research for Rural Development, 2012, 24, http://www.lrrd.org/lrrd24/11/koua24200.htm consulté le 9 Avril 2015. 30. - KUSINA N.T.F., TARWIREI H., HAMUDIKUWANDA G., AGUMBA, J., MUKWENA.: A comparison of the effects of progesterone sponges and ear implants, PGF2α, and their combination of efficacy of estrus Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 FERTILITÉ DES CHÈVRES SAHÉLIENNES À L’ŒSTRUS INDUIT AU SÉNÉGAL synchronization and fertility of Mashona goat does. Theriogenology, 2000, 53, 1567–1580. 31. - LEBBIE S.H.B.: Goats under household conditions. Small Ruminant Research, 2004, 51, 131–136. 32. - LEBOEUF B., BENELAS D., BERSON Y.: Effet de la race de la chèvre laitière et du bouc sur la fertilité après IA. In: 7eme Rencontres Recherches Ruminants- Paris, les 6 et 7 décembre 2000.-Paris : INRA-IGA, Institut de l’élevage, pp.235. 33. - LUCY M.C., BILLINGS H. J., BUTLER W. R., EHNIS L.R., FIELDS M.J., KESLER D.J., KINDERS J.E., MATTOS R. C., SHORT R. E., THATCHER W.W., WETTEMANN R.P., YELICH J.V., HAFS H.D.: Efficacy of an intravaginal progesterone insert and an injection of PGF2α for synchronizaing estrus and shortening the inteval to preganancy in postpartum beef cows, peripubertal beef heifers, and dairy heifers. J. Anim. Sci., 2001, 79, 982–995. 34. - MARTEMUCCI G., MANCHISI A., TOTEDA F., GAMBACORTA M., BELLITTI E.: Manifestazioni dell’estro in pecore trattate con prostaglandina F2α naturale o progestageno (FGA) e PMSG. Alcune osservazioni sulle performances riproduttive dopo inseminazione artificiale (Occurrence of oestrus in ewes treated with prostaglandin F2α or progestagen (FGA) and PMSG. Some observations on lambing performance after artificial insemination). Zoot. Nutr. Anim., 1987, 13, 39-49. 35. - MBAIDINGATOLOUM F.M. : Essai d’un protocole d’insémination artificielle chez les chèvres sahéliennes en milieu réel : résultats préliminaires. Mémoire DEA : Productions animales, Dakar (EISMV), 2003, 30 pages. 36. - MBAYE A.A., ROLAND-HOST D., OTTE J.: Agriculture, élevage et pauvreté en Afrique de l’Ouest. Initiative pour des politiques d’élevage en faveur des pauvres.- Dakar : FAO, CREA, 2007, 207 pages. 37. - MELLADO M., OLIVAS R., RUIZ F.: Effect of buck stimulus on mature and pre-pubertal norgestomettreated goats. Small Rumin. Res., 2000, 36, 269–274. 38. - PIERSON J.T., BALDASSARRE H., KEEFER C.L., DOWNEY B.R.: Influence of GnRH administration on timing of the LH surge and ovulation in dwarf goats. Theriogenology, 2003, 60, 397–406. 39. - RAHMAN A.N.M.A., ABDULLAH R.B., WANKHADIJAH W.E.: Estrus Synchronization and Superovulation in Goats: A Review. J. Biological Sciences, 2008, 8, 1129-1137. 40. - ROCHE J.R.: Associations among body condition score, body weight, and reproductive performance in seasonalcalving dairy cattle. J. Dairy Sci., 2007, 90, 376-391. Revue Méd. Vét., 2015, 166, 5-6, 163-169 169 41. - ROMANO J.E.: Does in proestrus-estrus hasten estrus onset in does estrous synchronized during the breeding season. App. Anim. Behav. Sci., 2002, 77, 329–344. 42. - ROMANO J.E.: Effect of two doses of cloprostenol in two schemes for estrous synchronization in Nubian does. Small Rumin. Res., 1998, 28, 171–176. 43. - RUBIANES E., MENCHACA A.: The pattern and manipulation of ovarian follicular growth in goats. Anim. Reprod. Sci., 2003, 78, 271-287. 44. - RWAKAZINA O. : Evaluation de la productivité en milieu réel et en station de la chèvre Boer au Rwanda. Thèse Méd. Vét., Dakar, 2005, 38. 45. - SALAMON S., MAXWELL W.M.C.: Storage of ram semen. Anim. Reprod. Sci., 2000, 62: 77-111. 46. - SIMONETTI L., BLANCO M.R, GARDOÂN J.C.: Estrus synchronization in ewes treated with sponges impregnated with different doses of medroxyprogesterone acetate. Small Ruminant Research, 2000, 38, 243-247. 47. - THIMONIER J., CHEMINEAU P., GAUTHIER D.: Increase fertility of ruminants in tropical areas: a reality (399-418). In : P. Chemineau, D. Gauthier, J. Thimonier (eds), Reproduction des ruminants en zone tropicale.Paris 1984, INRA. 48. - UNGERFELD R., RUBIANES E.: Effectiveness of short term progestogen primings for the induction of fertile oestrus with eCG in ewes during late seasonal anoestrus. Anim. Sci., 1999, 68, 349-353. 49. - UPTON M.: The role of livestock in economic development and poverty reduction: Oro-poor livestock policy initiative (PPLPI), Rome: FAO., 2004, 66 pages (Working paper, 10). 50. - WILDEUS S.: Current concepts in synchronization of estrus: sheep and goats. J. Anim. Sci., 2000, 77, 1-14. 51. - WILDEUS S.: Current concepts in synchronization of estrus: Sheep and goats. Proc. Am.Soc.Anim. Sci.,1999,available:http://www.asas.org/JAS/symposia/ proceedings/0016.pdf. accessed July 10, 2013. 52. - WOOD S.L., LUCY M.C., SMITH M.F., PATTERSON D.J.: Improved synchrony of estrus and ovulation with the addition of GnRH to a melengestrol acetateprostaglandin F2α synchronization treatment in beef heifer. J. Anim. Sci., 2001, 79, 2210–2216. 53. - ZARKAWI M., AL-MERESTANI M.R., WARDEH M.F.: 1999. Induction of synchronized oestrous in indigenous Damascus goats outside the breeding season. Small Rumin. Res., 1999, 33, 193–197.