Principaux insectes prédateurs

LES ARTHROPODES
AUXILIAIRES
DES CULTURES
Morphologie, biologie,
intérêts et limites
Serge KREITER
Montpellier, septembre 2008
I - INTRODUCTION
« Régulateurs naturels » des pullulations de
ravageurs (plus communément des densités)
Activité et efficacité liées à des potentialités
biologiques intrinsèques et des facteurs abiotiques
Coïncidences auxiliaire/ ravageur
 potentialités biologiques intrinsèques :
fréquence, pouvoir de multiplication, de
dispersion
 facteurs abiotiques : climat (température,
humidité, insolation et photopériode, vent),
les ressources trophiques (nature et nombre
de proies ou d’hôtes), plante-hôte, impact de
la protection phytosanitaire, environnement
Connaissances biologiques et écologiques dans le
complexe « arthropodes auxiliaires - arthropodes
ravageurs – milieu » déterminantes à la mise en
place de la Lutte biologique.
II - Techniques d ’observation
et de conservation
2.1 - Récolte des auxiliaires
ou
-
Battage de rameaux : bâton + cadre en toile blanche
parapluie japonais ;
Filet fauchoir;
aspirateur motorisé type D-Vac;
capture directe sur organes végétaux (larves).
2.2 - Observations
- au champ : loupe de poche (X10, X20) : contrôle
visuel des organes végétaux ;
- au laboratoire : loupe binoculaire et microscope
(petits spécimens et genitalia)
2.3 - Récupération et conservation
- récupération avec aspirateur à bouche ou pinceau ou
pinces souples puis tuer les insectes aux vapeurs
d’éthyl - acétate dans un flacon en verre (pour
conservation en sec) ou tuer les bêtes directement
dans l ’alcool 70% (10% pour les Thrips) Fioles
étiquetées (Lieu, date, plante-hôte)
- conservation :
* alcool 70% (ou 10% : Thrips) + qqs gouttes de
glycérine
* en sec : insectes épinglés ou collés sur paillettes.
* lame (microscopie) : inclusion en milieu permanent
type résine (Baume du Canada, Euparal)
Collections de référence à valeur scientifique
III - Les principaux groupes
d’arthropodes utiles
3.1 - Deux catégories d’arthropodes auxiliaires
Prédateurs :
- un groupe pléthorique : insectes (prédateurs) +
Arachnides (araignées + acariens = 22-23000
sp. mondiales) = 220 000 sp. prédatrices
connues dans le monde
- polyphagie fréquente = « généralistes » ;
- prédation s ’exerçant :
* au niveau de la famille entière : toutes
les espèces sont prédatrices chez les
punaises Nabidae, Anthocoridae, les
Neuroptères Chrysopidae, Hemerobiidae et
Coniopterygidae.
* au niveau du taxon, soit uniquement au
stade larvaire chez les Diptères
Cecidomyiidae et Syrphidae, soit à la fois
au stade adulte et larvaire tels que
Coléoptères Coccinellidae, Dermaptères
Forficulidae, toutes les punaises, les
Neuroptères en partie.
- prise alimentaire très élevée = auxiliaires
« haute densité » voracité des larves surtout
à l ’approche du dernier stade larvaire (besoins
énergétiques )
- prédation de tous les stades de
développement des ravageurs (œuf, larve,
nymphe, adulte).
Parasitoïdes
- = 9% des insectes connus soit 81 000 sp. dont
la moitié représentée par des Hyménoptères ;
- développement de la larve aux dépens d ’un
hôte (= parasitisme protélien) ;
- 2 types de parasites
* ectoparasites (= parasites idiobiontes) l’hôte est d’abord tué puis les œufs sont
déposés SUR le cadavre ; parasitoïdes
souvent polyphages et peu spécifiques Hyménoptères Chalcidiens, certains Diptères
Tachinidae ;
* endoparasites (= parasites koïnobiontes)
ponte DANS l ’hôte encore en vie ; la
mort intervient peu avant l ’émergence du
parasitoïde Hyménoptères Ichneumonidae
et Braconidae, certains Diptères Tachinidae
Principaux insectes prédateurs des cultures
Famille
Genre espèce
Stade
prédateur
Proies
Principales
COLEOPTERA
Coccinellidae
Adalia bipunctata (L.)
Chilocorus bipustulatus L.
Coccinella septempunctata (L.)
Exochomus quadripustulatus (L.)
Harmonia spp
Propylea quatuordecempunctata (L.)
Scymnus subvillosus (Goeze)
Stethorus punctillum Weiss
Adulte,
larve
Pucerons
Cochenilles diaspines
Pucerons
Cochenilles
Pucerons
Pucerons, acariens
Pucerons
Acariens
Carabidae
Demetrias atricapillus L.
Dromius quadrimaculatus L..
Adulte,
larve
Polyphages : jeunes
chenilles, pucerons,
charençons, etc
Cantharidae
Cantharis spp.
Adulte,
larve
Polyphages : chenilles,
pucerons, autres petits
arthropodes
Staphylinidae
Oligota flavicornis Boisduval
Adulte,
larve
Acariens en priorité ;
thrips, aleurodes, œufs
de pucerons.
Anthocoris spp
Adulte,
larve
Polyphages, très
efficace sur psylles
Orius spp
Adulte,
larve
HETEROPTERA
Anthocoridae
Deraeocoris spp.
Phytocoris spp
Malacocoris chlorizans (Panzer)
Heterotoma meriopterum (Scopoli)
Miridae
Pilophorus perplexus (Douglas &
Scott)
Atractotomus mali (Fieber)
Adulte,
larve
Polyphages, très
efficaces sur acariens ;
certaines espèces
efficaces sur thrips
Polyphages
Polyphages
Acarien rouge
Acariens, pucerons,
psylles
Acariens, pucerons
Carpocapse, hyponomeute, acariens,
puceron lanigère
Principaux insectes prédateurs des cultures
(suite)
Famille
Genre espèce
Stade
prédateur
Proies
Principales
HETEROPTERA (suite)
Nabidae
Himacerus apterus (F.)
Nabis spp
Adulte,
larve
Pucerons mais
grande
polyphagie
NEUROPTERA
Chrysopa formosa Bauer
Chrysopa perla Linné
Adulte,
larve
Chrysoperla carnea (Stephens)
Larve
Hemerobiidae
Hemerobius humulinus Linné
Micromus angulatus (Stephens)
Adulte,
larve
Pucerons
Coniopterygidae
Conwentzia spp.
Adulte,
larve
Acariens
tétranyques
Adulte,
larve
Œufs d’hyponomeute, psylles,
pucerons
Adulte,
larve
Thrips
Chrysopidae
Pucerons mais
grande
polyphagie
DERMAPTERA
Forficulidae
Forficula spp.
THYSANOPTERA
Aeolothripidae
Aeolothrips intermedius Bagnall
DIPTERA
Cecidomyiidae
Aphidoletes aphidimyza (Rondani)
Feltiella acarisuga (Vallot)
Larve
Coccidomyia spp.
Syrphidae
Episyrphus spp
Syrphus spp.
Sphaerophoria spp.
Metasyrphus spp.
Scaeva spp.
Pucerons
Acariens
Cochenilles
Larve
Pucerons
Principaux insectes parasitoïdes des cultures
Famille
Genre espèce
Stade
parasitoïde
Hôtes
DIPTERA
Tachinidae
Pales spp., Elodia spp., Phryxe spp.
,etc. Nombreuses espèces parasites.
Larve
chenilles
Lépidoptères,
Coléoptères.
HYMENOPTERA
Ichneumonoidea
Ephialtes spp.
Ichneumonidae
Braconidae
Nymphe de
carpocapse, chenilles
Larve
Glypta spp., Itoplectis spp., Lyssonata
spp., Pimpla spp., Pristomerus spp.,
etc
Apanteles spp.,
Ascogaster spp.
Macrocentrus spp.,
Meteorus spp.
Chenilles
Larve
Pucerons
Aphidius spp., Trioxys spp., Ephedrus
spp., Praon spp., etc.
Encyrtidae
Pteromalidae
Chalcidoidea (= « Chalcidiens »)
Encyrtus spp.
larve
Ageniaspis spp., Litomastix spp.
Apterencyrtus spp.
Eupteromalus spp, Dibrachys spp.
Asaphes spp.
larve
Habrocytus
Etc…
Tetrastichus spp.
Chrysocharis, Cirrospilus, Eulophus
Colpoclypeus florus
Etc…
Aphelinus spp
Encarsia spp.
Aphelinidae
Aphytis spp., Aspidiotophagus spp.,
Prospaltella perniciosi,
Etc…
Trichogrammatidae Trichogramma spp.
Eulophidae
Chenilles tordeuses
Œufs de tordeuses
Œufs de tordeuses
Chenilles tordeuses
Larve
Larve
larve
Œufs de lépidoptères
Chenilles
Cochenilles
Chenilles
Pucerons
Larves d’anthonome
et chenilles mineuses
Chenilles mineuses et
nymphe hyponomeute
Chenilles mineuses
Chenilles tordeuses
Pucerons
Aleurodes,
Cochenilles
Cochenilles
Œufs de lépidoptères
Période d’activité des principaux
groupes d’auxiliaires
Efficacité potentielle connue des
principaux auxiliaires
RAVAGEURS
ARTHROPODES
AUXILIAIRES
Acariens
Psylles
Pucerons
Coccinelles 2 points
++
Coccinelles Scymnus
++
Tordeuses
Cochenilles
Coccinelles Chilocorus
++
Coccinelles Exochomus
++
Coccinelles Stethorus
Arpenteuses
Noctuelles
+
+
+
+
+
+
+
+
+
++
+
++
++
++
Syrphes
++
+
Cécidomyies
+
++
+
+
Chrysopes-Hémérobes
++
++
+
+
Punaises Anthocorides
++
+
++
Staphylinides
+
+
Acariens prédateurs
++
+
+
Hyménoptères parasitoïdes
+
++
Tachinaires
Légende
Mineuses
++
++
+
+
Efficacité potentielle importante : l'auxiliaire seul peut limiter voire maîtriser
la pullulationduravageur
+
Efficacité potentielle réduite : l'auxiliaire seul ne peut limiter la pullulation
duravageur
Efficacité potentielle très faible, nulle ou encore inconnue à l'égardduravageur
LES COLEOPTERES
PREDATEURS
Clé simplifiée des Coléoptères
Coccinellidae (adultes et larves)
QUELQUES EXEMPLES DE
COCCINELLES ADULTES
Coccinella 7-punctata
Propylea 14punctata
Stethorus
punctillum
Adalia 2-punctata
Harmonia
axyridis et
ses formes
Cryptolaemus
montrouzieri, larve (avec
expansions cireuses) et
adulte sur cochenilles
Larve campodéiforme
de Harmonia axyridis
Larves :
Forme campodéiforme ou plus petite et trapue;
corps avec des tubercules sétigères ou avec
des expansions cireuses blanches.
Larve de Stethorus
punctillum au sein d’une
colonie de tétranyques
Larve de Chilocorus
sp. avec ses épines,
prédatrice de
cochenilles
LES PUNAISES
PREDATRICES
LES PUNAISES
PREDATRICES
Insertion des antennes non visible dorsalement,
écusson long................................Autres Hétéroptères
Insertion des antennes visible dorsalement,
écusson court.
pas de cuneus distinct sur l’hémélytre ;
rostre de 4articles, arqué à la base, ne
s’appliquant pas au repos contre la face
ventrale de la tête.....................................Nabides
cuneus nettement séparé du reste de
l’hémélytre ; rostre venant se plaquer au repos
contre la face ventrale de la tête
ocelles absentes, rostre de 4 articles,
membrane hémélytrale avec 1 ou 2 cellules
à la base................................................Mirides
ocelles présentes, rostre à 3 articles,
membrane sans cellule............Anthocorides
MORPHOLOGIE GÉNÉRALE DE
L’ADULTE : AILES ANTÉRIEURES
Hémélytre d’Anthocoride
Hémélytre de Miride
Clé simplifiée des Punaises
entomophages (adultes et larves)
ASPECT GENERAL DES ADULTES
D’ANTHOCORIDES
1
2
Orius et genitalia mâles. 1paramère d'Orius majusculus;
2 - paramère d'Orius
laevigatus.
Anthocoris nemorum
Orius vicinus
ASPECT GENERAL ADULTES
DE MIRIDAE
Deraeocoris ruber
Macrolophus melanotoma (= caliginosus)
ASPECT GENERAL D’UN ADULTE DE
NABIDAE
Nabis sp. attaquant une chenille
ASPECT GENERAL D’UN ADULTE DE
REDUVIIDAE
Reconnaissance des larves
d’Anthocorides
Larves d’Orius: forme ovale ;
2,5 mm maximum.
Larve d’Anthocoris sp.: jamais en
forme ovale ; taille plus grande ; 5
stades larvaires
LES NEUROPTERES
PREDATEURS
NEVROPTERES
Chez les larves
- Mandibule et maxille
coaptées (digestion extra-orale)
md
- Pas de connection entre
intestin moyen et postérieur
mx
Production de soie, avant métamorphose,
par les tubes de Malpighi pour
confectionner le cocon de nymphose
(filière anale)
Ailes en général
avec de
nombreuses
nervures
longitudinales et
transversales
Holométaboles primitifs
ca
NEVROPTERES - ADULTE
Type broyeur
CONIOPTERYGIDAE
Neosemidalis sp.
Aleuropteryx juniperi
Coniopteryx sp.
Ubiquistes
Nervation réduite
Vivent sur les végétaux
Pruinosité
(parfois associé à 1 espèce végétale)
Semidalis aleyrodiformis
Adultes prédateurs (acariens...)
+ nectar
Larves prédatrices
surtout acariens
et petites insectes
larves
(lutte biologique)
Ponte
Semidalis aleyrodiformis
3 stades larvaires
Coniopteryx sp.
ponte
Durée du cycle:
plusieurs
générations par an
à 2 ans
Hemerobius humulinus
HEMEROBIIDAE
Psectra diptera
Drepanopteryx
phalaenoides
Ubiquistes
Sur végétation
Hemerobius pini
Drepanopteryx phalaenoides
Prédateurs (pucerons
+ cochenilles, psylles) Lutte biologique
1 à plusieurs
générations par an
3 stades larvaires
Drepanopteryx phalaenoides
Micromus variegatus
Hemerobius humulinus
HEMEROBIIDAE
Xesmaelius malladai
Psychobiella sp.
CHRYSOPIDAE
Ubiquistes
Nineta flava
Sur la végétation
Nineta carinthiaca
Adultes prédateurs et/ou
phytophages (pollen)
Chrysopa pallens
Larves prédatrices de
pucerons, aleyrodes...
(lutte biologique)
Nineta sp.
3 stades larvaires
1 à plusieurs générations par an
camouflage
Dichochrysa inornata
Hypochrysa elegans
Nineta vittata
CHRYSOPIDAE
Chrysopa septempunctata
Italochrysa italica
Chrysoperla mutata
Notochrysa capitata
Clé simplifiée des Neuroptères
(adultes et larves)
Les adultes Neuroptères
aspect général et morphologie de l’aile
Chrysopide
Hémérobiide
Les larves Neuroptères
Hémérobiide
tubercules
peu
développés
Chrysopide avec
tubercules développés
LES DIPTERES
PREDATEURS
LES MOUCHES OU
DIPTÈRES
2 Sous-ordres : nématocères et brachycères
identification des sous-ordres
•Antenne filiforme composée de 6 à 16 articles
(segments) parfois beaucoup plus ; le dernier
article ne porte jamais d’arista ou de style ; palpe
de 4 ou 5 articles, ......................NÉMATOCÈRES
Fam. Cecidomyiidae
•Antennes avec moins de 5 articles généralement
3, le 3ème article parfois annelé avec un style ou
une arista ; palpe avec au plus 3 articles, le plus
souvent 2………………………………………….BRACHYCÈRES
Fam. Syrphidae, Tachinidae
Tête typique de Diptère Brachycère
antenne
arista
Profil de la tête d’un Diptère
Nématocère (Cecidomyiidae)
Morphologie de l’aile
Diptère Brachycère : Aile de
Syrphidae
Diptère Nématocère : Aile de
Cecidomyiidae
Clé simplifiée des Diptères Brachycères
prédateurs (adultes)
Adultes Diptères
Brachycères
Adulte Scaeva
pyrasti
Adulte
Tachina fera
Adultes Diptères
Nématocères
Adulte (haut) et cycle (bas)
d’Aphidoletes aphidimyza
Morphologie des
formes immatures de
Diptères
Larve de syrphe : fusiforme, apode,
aveugle ; présence d’un siphon
respiratoire ; épines dorsales au niveau
des segments.
A gauche, pupe de syrphe en forme de
tonnelet ; à droite pupe en forme de
gouttelette accrochée à une feuille
Morphologie des formes
immatures de Diptères
Larve de Feltiella acarisuga vidant un
acarien tétranyque
Larve d’Aphidoletes aphidimyza
au sein de colonies de pucerons
Occurrence and Abundance of Parasites
Order
Species
Neuroptera
190
Coleoptera
3400
Strepsiptera
500
Trichoptera
1
Lepidoptera
300
Diptera
15,000
Hymenoptera
64,000
Total approximately 85,000 to 102,000
species of parasites
Parasitoids belong to 6
different orders of insects
• But mostly to Hymenoptera and
Diptera
Hymenoptera
Diptera
Coleoptera
Strepsiptera
Neuroptera
Lepidoptera
64000
15000
3400
1
190
500
300
• Only a small part of the species are
described
Strepsiptera
Strepsiptera (500 sp.) are
obligate parasites of
insects, hosts = 7 orders and
34 families.
Mengenillidae show primitive
biology characteristics
and parasitize Thysanura
(Lepismatidae).
Extreme sexual
dimorphism. Males are
winged, free-living.
Females are apterous
and endoparasite.
Parasite of Mantodea,
Blattidae, Diptera,
Hemiptera Vespidae…
Staphylinidae
Coleoptera
Aleochara
Parasitic Coleoptera belong
to few families (Meloidae,
Staphylinidae, Carabidae,
Rhipiphoridae)
Meloidae and Rhipiphoridae
are parasitoids of bees and
wasps.
Parasitoid biology evolve
several times independently.
Carabidae (Brachynus,
bombarders) are parasitoid
of aquatic beetles.
Aleochara parasite Diptera
Brachynus
Rhipiphoridae
Diptera Tachinidae
About 20 families of
Diptera
are parasitoid.
Parasitoid biology evolve
several times
independently.
Extremely varied biology
(parasitoid of
Lepidoptera, Hemiptera,
Hymenoptera etc…
Mostly endoparasitoid
Bombyliidae
Pipunculidae
Conopidae
Phoridae
Phorids are small flies,
commonly called
humpback flies
Some phorid species
Pseudacteon parasitizing
are attracted to
Solenopsis ants
decaying organic
matter, others attack
mushrooms, and a
few, the Pseudacteon,
decapitate ants.
The female lands on
a worker ant and lays
an egg. The larva
burrows into the head
and consumes the
contents. To emerge as
an adult fly, it releases
a chemical and the fire
ant's head falls off.
LES
HYMENOPTERES
PARASITOÏDES
Hymenoptera
Braconidae and
Ichneumonidae
represent nearly
half of the parasitic
Hymenoptera
Ichneumonoidea
35000
19000
Chalcidoidea
9800
11300
Ichneumonoidea
Chalcidoidea
Other Parasitica
Aculeata
Chrysidoidea
Cynipoidea
Hymenoptera Ichneumonoidea
Ichneumonoidea = huge
group (# 100,000
estimated species
worldwide). Nearly all
parasitoid of insects. Two
families Braconidae &
Ichneumonidae. Known
from late Cretaceous. A
few taxa are secondarily
phytophagous, and several
groups that attack egg
masses or food provisions
of other arthropods are
difficult to classify as
either "parasitic",
predaceous or parasitoid
Braconidae
Ichneumonidae
Hymen. Chalcidoidea
The super-family
Chalcidoidea (21 families) is
one of the largest groups of
parasitoid wasps (20000
described species and 60100 000 estimated). The
species are usually very
small and have reduced wing
venation. Most species are
parasitoid of various
arthropods, and all the
developmental stages, few
are phytophagous (fig
wasps, seed-wasps). Huge
importance in biological
control.
Leucospidae
Chalcididae
Encyrtidae
Torymidae
Clé simplifiée des Hyménoptères
parasitoïdes adultes
Quelques exemples
d’hyménoptères Ichneumonoidea
Aphidius ervi (Braconidae) sur puceron
Aphidius colemani (Braconidae) :
reconnaissance, oviposition, momie
Quelques exemples
d’hyménoptères Chalcidiens
Aphelinus mali (Aphelinidae) sur Eriosoma
lanigera (Puceron lanigère du pommier)
Encarsia formosa (Aphelinidae) sur
Aleurode
Auxiliaires prédateurs actuellement utilisés
ou envisagés en cultures maraîchères
Ravageur
ALEURODES
PUCERONS
ACARIENS
(Tétranyques,
Acariose
bronzée,
Tarsonèmes
Auxiliaire
Culture et observations
Macrolophus melanotoma (Costa) (= M.
caliginosus Wagner) (Hémiptère Miridae)
Aubergine
Tomate
(Encarsia formosa peut être
apporté en complémentarité
; intérêt aussi des
Macrolophus naturels)
Aphidoletes aphidimyza (Rondani)
(Diptère Cecidomyiidae) sur Myzus persicae
(Sulzer) et A. gossypii Glover
Concombre
Melon
Poivron
Chrysopa lucasina Lacroix (Neuroptère
Chrysopidae) sur Aphis fabae Scopoli
Artichaut
Phytoseiulus persimilis Athias-Henriot
(Acari Phytoseiidae) sur Tetranychus urticae
Koch
Aubergine
Concombre
Fraisier
Melon
Poivron
Peu utilisé sur Tomate
Orius spp. (Hémiptère Anthocoridae)
THRIPS
Amblyseius cucumeris
(Acarien Phytoseiidae)
Poivron
Aubergine
Fraisier (?)
Insuffisance sur
Frankliniella occidentalis
(Pergande)
Oudemans
Concombre
Iphiseius (= Amblyseius) degenerans
(Acari Phytoseiidae)
PUNAISES
Limitation de l'installation
(Nezara viridula, Macrolophus melanotoma (Costa) (= M.
des punaises phytophages
Nesidiocoris
caliginosus Wagner)(Hémiptère Miridae)
dans les cultures sous abri
tenuis)
Aleochara bilineata Gyllenhal.
MOUCHE DU (Coléoptère Staphylinidae)
Chou, Chou-fleur : (lâchers
probables de A. bilineata
CHOU (Delia
dans un futur proche)
radicum L)
Aleochara bipustulata (Linné)
(Coléoptère Staphylinidae )
Cryptolaemus montrouzieri Mulsant
(Coléoptère
Coccinellidae)
sur
Tomate
COCHENILLES
Pseudococcus viburni (Signoret) (évaluation
en cours)
Principales introductions d'insectes
pour la lutte biologique en France
contre les insectes ravageurs en
arboriculture depuis un siècle
Agent auxiliaire
Date
finXIXème Rhizobiusventralis
1912
Rodoliacardinalis
1918
Encarsiaberlesi
1919
Cryptolaemusmontrouzieri
1920-1926 Aphelinusmali
1920-22, 1959 Psyttaliaconcolor
1950-1960 Lindoruslophantae
Leptomastixdactylopii
1953
1959
Encarsiaperniciosi
1966
Aphytismelinus
1969, 1972-73 Metaphycushelvolus
1971
Calesnoaki
1972-75
Diversinervuselegans
1973
Encarsialahorensis
1973
Lysiphlebustestaceipes
1973
Aphytislepidosaphes
1973
Aneristusceroplastae
1975
Amitusspiniferus
1977
Metaphycusswirskii
1977-78
Metaphycusbartletti
Metaphycuslounsburyi
1977-78
1984
Aphytisyanonensis
1984
Coccobiusfulvus
1986
Rhyzobiusforestieri
1986
Srangiumparcesetosum
1996
Aphytisholoxanthus
1996
Neodryinusthyphlocybae
Famille
Coléopt. Coccinellidae
Coléopt. Coccinellidae
Hyménopt. Aphelinidae
Coléopt. Coccinellidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Braconidae
Coléopt. Coccinellidae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Braconidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Platygasteridae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Encyrtidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Aphelinidae
Coléopt. Coccinellidae
Coléopt. Coccinellidae
Hyménopt. Aphelinidae
Hyménopt. Dryinidae
Ravageur
Pseudaulacaspispentagona
Iceryapurchasi
Pseudaulacaspispentagona
Famille
CochenilleDiaspididae
CochenilleMargarodidae
CochenilleDiaspididae
CochenillePseudococcidae
Eriosomalanigerum
Aphididae
Bactroceraoleae
DiptèreTephritidae
Hémipt. Diaspididae
Planococcuscitri
Hémipt. Pseudococcidae
Quadraspidiotusperniciosus Hémipt. Diaspididae
Chrysomphalusdictyospermi Hémipt. Diaspididae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Aleurothrixusfloccosus
Hémipt. Aleyrodidae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Dialeurodescitri
Hémipt. Aleyrodidae
Aphiscitricola
Hémipt. Aphididae
Lepidosaphesbeckii
Hémipt. Diaspididae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Aleurothrixusfloccosus
Hémipt. Aleyrodidae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Unaspisyanonensis
Hémipt. Diaspididae
Unaspisyanonensis
Hémipt. Diaspididae
Saissetiaoleae
Hémipt. Coccidae
Dialeurodescitri
Hémipt. Aleyrodidae
Chrysomphalusaonidum
Hémipt. Diaspididae
Metcalfapruinosa
Hémipt. Flatidae
LES ENNEMIS NATURELS DES INSECTES
1. Micro-organismes entomopathogènes :
Virus : Baculoviridae polyédroses
granuloses
Bactéries : divers Bacillus
Rikettsies
Champignons :
Siphomycètes
(entomophtorales)
Septomycètes (Beauveria)
Protozoaires
LES ENNEMIS NATURELS DES
INSECTES
2. Nématodes entomoparasites :
Parasites obligatoires :
Mermithides
Parasites facultatifs :
Steinernematidae,
Heterorhabditidae
3. Arthropodes entomophages :
Prédateurs : généralistes
spécialistes
Parasites : insectes parasitoïdes
Les prédateurs
Les araignées
Thomisidae
Linyphiidae
Et de nombreux autres …
Groupe vaste et méconnu …
Lycosidae