Mécanismes photochimiques d`intérêts biologique et
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Mécanismes photochimiques d`intérêts biologique et
ATELIER DE BIOPHOTONIQUE 2010 Mécanismes photochimiques d’intérêts biologique et médical Daniel Brault Directeur de Recherche au CNRS EVRY, France INTRODUCTION Réactions photochimiques Au cœ cœur de la vie et sources d’applications trè très nombreuses Les ré réactions photochimiques sont d’ d’une importance fondamentale dans l'origine et la pré préservation de la vie Photobiologie ¾Photosynthèse Hydrates de carbone ¾ Vision ¾ Phototropisme ……. ¾ Couche d’ozone stratosphérique (filtre UV) hν (UV) O2 → 2 O° O3 O° + O2 → Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 1 Applications des ré réactions photochimiques ¾ Chimie 9 Synthèse organique « fine » 9 Réactions en chaînes initiées par la lumière: 9Photo-halogénation, photo-polymérisation 9Photographie 9Photo-lithographie (imprimerie offset, production de circuit imprimés, …) ¾ Biologie moléculaire ¾ Médecine Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 1ère Partie Absorption de lumiè lumière 9Etats excité excités électroniques 9Réactivité activité photochimique Loi fondamentale Loi de Grotthus-Draper : seule une radiation lumineuse absorbée par un système peut initier une réaction photochimique Energie Domaine efficace de longueur d’onde Cependant, une réaction chimique impliquant des ruptures et/ou des réorganisations de liaisons, l’énergie doit être suffisante Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 2 Excitation d’ nergie d’une molé molécule par la lumiè lumière: Diagramme d’é d’énergie Absorption Etat triplet 10 ns Phosphorescence Fluorescence Energie Etats singulets 1-100 µs Photochimie Etat fondamental Diagramme de Jablonski Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Peuplement des états excité excités de diffé différentes multiplicité multiplicité Etat excité singulet S1 Etat excité triplet T1 Le peuplement direct de l’état triplet est interdit Il n’est possible qu’à partir d’un état excité singulet à condition ce dernier et l’état triplet possèdent la même énergie pour une géométrie semblable et si un mécanisme favorise un découplage des spins (notamment par couplage spin-orbite) Croisement intersystème Phosphorescence Energie Fluorescence La désactivation de l’état triplet vers l’état fondamental est également interdite La durée de vie de l’état triplet est plus longue L’émission de phosphorescence est généralement faible Etat fondamental S0 Coordonnées moléculaires Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Le JABLONJABLON-SKI Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 3 Mécanismes de photosensibilisation Type I : Transfert d’é lectron d’électron Réduction Biomolécule Biomolécule° - (ou molécule exogène) Seuil d’ionisation Photosensibilisateur° + 0 I* Paire de radicaux libres Energie Etat excité I Etat fondamental ΔE Le transfert d’électron du photosensibilisateur excité vers son partenaire (biomolécule ou molécule exogène) est facilité d’une énergie ΔE correspondant à l’énergie de l’état triplet Photosensibilisateur Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes de photosensibilisation Type I : Transfert d’é lectron d’électron Oxydation Biomolécule (ou molécule exogène) Biomolécule° + Seuil d’ionisation 0 A Energie A* Etat excité Paire de radicaux libres Etat fondamental ΔE Photosensibilisateur° - Photosensibilisateur Les propriétés d'oxydo-réduction d'une molécule à l'état excité sont Le gain d’énergie lors du transfert d’électron d’une biomolécule (ou molécule exogène) vers le photosensibilisateur excité est accru d’une énergie ΔE correspondant à l’énergie de l’état triplet exaltées par rapport à celles présentées à l'état fondamental Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Pouvoir oxydant de photosensibilisateurs à l’état ’état excité excité : Potentiels redox Pour oxyder un partenaire le photosensibilisateur doit avoir un potentiel redox (P/P°-) supérieur à celui-ci Potentiels d’oxydation pH 7 (vs NHE) Histidine, 1.17 V Tryptophane, 1.03 V Tyrosine, 0.93 V Propofol, 0.93 V Potentiel E (*3P/P°-) E (P/P°-) + ET Energie triplet (ET) TPP ~ 1.46 eV TPC ~ 1.45 eV TPB ~ 1.22 eV Trolox, 0.48 V *TPP ~ 0.62 V *TPC ~ 0.57 V *TPB ~ 0.36 V TPP - 0.84 V E (P/P°-) TPP: tetraphenylporphyrin TPC: tetraphenylchlorin TPB: tetraphenylbacteriochlorin TPC - 0.88 V TPB - 0.86 V Atelier de Biophotonique 2010 Genopole 4 Un partenaire : l’l’oxygè oxygène Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes de photosensibilisation : Type I Rôle de l’l’oxygè oxygène Formation d’ion superoxide P* + O2 → P°+ + O2°B°- ou P°- + O2 → O2°- + P ou B Formation d’oxyradicaux B° + O2 → BO2 ° Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Oxygè Oxygène : Une molé molécule aux proprié propriétés trè très particuliè particulières 2pσ* 2pπ* 2p 2p 2pπ 2pσ 2sσ* 2s 2s A l’état fondamental l’oxygène moléculaire existe sous la forme d’un état triplet 2sσ 1s 1sσ* 1s 1sσ O (8 électrons) O2 O (8 électrons) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 5 Mécanismes de photosensibilisation : Type II Production d’oxygène singulet Fluorescence Etat triplet Etat singulet phosphorescence Energie Etat singulet le plus bas Minimum: environ 140 kJ/mole λ < 850 nm 94 kJ/mole λ: 1,27 microns Luminescence Etat fondamental Etat fondamental : Etat triplet Photosensibilisateur Oxygène Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photosensibilisateurs : Principales familles Spectres d’ d’absorption Porphyrines et dérivés réduits N Porphyrine N H H N N H H Chlorine Absorbance N N N N Porphyrine N Bactériochlorine Chlorine N H H N N 300 Bactériochlorine 400 500 600 700 800 900 Longueur d'onde PP mTHPC mTHPBC Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes de photosensibilisation : Photoaddition Psoralène Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 6 Processus de photosensibilisation: Rayon d’ d’action Distance entre le photosensibilisateur et sa cible ¾ Type I, transfert d’électron : contact ou très proche ¾ Photoaddition: contact ¾ Type II, Oxygène singulet Estimation: Temps de vie en milieu biologique ~ 0.1 µs ( Diffusion ~ 20 nm Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mesures quantitatives en photophysique et photochimie ¾ Photolyse impulsionnelle par éclair laser 9 Analyse temporelle ¾ Irradiation continue 9 Analyse des produits formé formés Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Méthodes d’é tudes des états transitoires d’études Photolyse par éclair laser - nanoseconde Détecteur Germanium Luminescence infra-rouge (1.27 µ) Oxygène singulet Photomultiplicateur Filtres Monochromateur Cuve optique Lumière d’analyse Phé Phénomè nomènes photoinduits Echelle de temps 10-8 - 1 s Solution Monochromateur Joulemètre Montage « classique » de spectrophotométrie Filtres Oscilloscope 532, 355, 410-680 nm Ordinateur LASER Nd/YAG/OPO Pulse 5 ns Synchronisation Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 7 Notion de rendement en photophysique et en photochimie Rendement : Nombre de molécules produites dans un état donné (ou nombre d’évenements)/ Nombre de photons absorbé absorbés Phosphorescence Absorption Etat triplet Fluorescence Energie Etats singulets Etat fondamental Photochimie Rendement de : fluorescence, φF formation de l’état triplet, φT formation d’oxygène singulet, φΔ formation de radicaux, φX Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mesure de rendements quantiques : Calcul du nombre de photons absorbé absorbés Flux (W) Irradiance (W m-2) « Calorimètre » Surface noire absorbant la lumière ↓ échauffement Mesure de la différence de température entre la surface absorbante et le corps du calorimètre → Flux (W) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Calcul du nombre de photons incidents Lumiè Lumière monochromatique, λ (nm) Flux (Watt) Energie/unité de temps (Joule/seconde) Flux de photons ? Energie d’ d’un photon Ephoton : h ν = h c /λ /λ (loi d’ d’Einstein)* h : constante de Planck = 6.626 x 10-34 Joule x seconde ν : fréquence de la lumière de longueur d’onde λ c : vitesse de la lumière = 2.998 x 108 mètre/seconde * Exemple : à 400 nm, l’énergie d’un photon est : 6.626 x 10-34 x 2.998 x 108 / (400 x 10-9) = 4.97 x 10-19 J Nombre de photons par seconde : Flux (Watt) / Ephoton (Joule) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 8 Loi de Beer Lambert : Intensité Intensité lumineuse absorbé absorbée Intensité absorbée dIal = k Itl C dl k facteur de proportionalité dépendant de la longueur d’onde considérée dItl = -k Itl C dl ou dItl / Itl = - k C dl En intégrant sur le parcours l ln It = - k C l + Constante Pour l = 0, Constante = ln Io ln ( Io / It ) = k C l ou log ( Io / It ) = k C l/ 2,3 ε = coefficient d’extinction molaire = k/2,3 Absorbance = Abs = log ( Io / It ) = ε C l It = Io e - 2.3 εCl It = Io e - 2.3 Abs Ia = Io - It = Io ( 1 – e - 2.3 Abs) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Loi de Beer Lambert : Intensité Intensité lumineuse absorbé absorbée Relation générale ( une seule espèce absorbante) Ia = Io ( 1 – e – 2,3 Abs) Cas particulier : solutions diluées Absorbance faible ( 1 - e – 2,3 Abs) ≈ 2,3 Abs (l’expression ex → 1+ x quand x→ 0) Ia = 2.3 Io Abs Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Rendement de production d’ d’oxygè oxygène singulet Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 9 Luminescence infrarouge: une signature spécifique de l’oxygène singulet aisément détectable Ordonnée à l ’origine (V) Signal de luminescence à 1.27 μ (mV) Détermination du rendement quantique de production d’oxygè oxygène singulet (ΦΔ) par photolyse par éclair LASER 25 20 15 10 5 0 0.01 0.008 0.006 0.004 0.002 0 0 200 400 600 800 1000 0 5 10 15 20 25 Énergie LASER (u.a.) Temps (µs) Le rendement est calculé par rapport à un standard Porphyrine dans du méthanol deutéré (CD3OD) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Oxygè Oxygène singulet - rendement de formation : Capteurs chimiques 1O 2 + DPBF 1O 2 → 3O2 → DPBFox Φ DPBFox kr DPBF O kd 1/ΦDPBFox = 1/ΦΔ + (1/ΦΔ) x (kd/kr) x 1/[DPBF] 1/ΦΔ 1,3-diphenylisobenzofuran (λmax = 414 nm) Détermination du nombre de photons absorbés par le photosensibilisateur ( Rendement quantique absolu - kr/kd Rendement de production d’oxygène singulet par des azaphthalocyanines Atelier de Biophotonique 2010 Genopole Rendements quantiques Classe de photosensibilisateur Rendement triplet (ΦT) Rendement oxygène singulet (ΦΔ) Porhyrine 0.7 – 0.85 0.55 – 0.75 Chlorine 0.7 – 0.85 0.55 – 0.75 Bactériochlorine 0.3 – 0.75 0.3 – 0.5 Phtalocyanine 0.5 – 0.4 0.3 – 0.4 Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 10 Réactivité activité des états excité excités et cibles biochimiques des espè espèces activé activées de l’oxygè è ne oxyg Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Réactions de l’l’oxygè oxygène singulet avec les diè diènes H HOO + 1 + 1 + 1 réaction « ene » O2 X X O2 O + O O2 O Formation de dioxétane O Cycloaddition Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Exemples de ré réactions de l’l’oxygè oxygène singulet avec des biomolé biomolécules Acides aminés Bases nucléiques Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 11 Peroxydation des acides gras H 1 O O O2 Diènes conjugués λ = 233 nm; ε = 27000 H R°, RO2° H° O ° O H L° ° Ion métalliques Radicaux (R°) O2 °O O Mécanisme de peroxydation en chaîne O2 RO2° O O° Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes de photosensibilisation Cholesté Cholestérol Oxygène singulet (Type II) Hydroperoxide 5α-OOH Cholestérol Radicaux libres (Type I) Le cholesterol constitue un « marqueur interne » renseignant sur les mécanismes de photosensibilisation Hydroperoxide 7β-OOH Hydroperoxide 7α-OOH Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Réactivité activité de l’l’oxygè oxygène singulet Techniques d’ d’irradiation pulsé pulsée Modification du déclin en fonction de la concentration de la molécule X ( Constantes de vitesse (kr + kp) & kd Signal de luminescence à 1.27 μ (mV) 25 kr 20 1O 2 15 Déclin monoexponentiel 10 kd 5 + X Produit(s) kp 3O 2 + X 3O 2 0 0 200 400 600 800 1000 Temps (µs) Atelier de Biophotonique 2010 Genopole 12 Réactivité activité de l’l’oxygè oxygène singulet 12 kQ : Désactivation physique + Réaction chimique kQ(M-1 s-1) x 104 10 Constante de vitesse de « quenching » ( kQ) de l’oxygène singulet par des acides gras insaturés 8 6 4 2 0 0 1 2 3 4 Nombre de double liaison 100 kcal/mole 50 kcal/mole 75 kcal/mole CH3–(CH2)2–CH2–CH2–CH=CH–CH2–CH=CH–CH2– (CH2)6–COOH Acide linoléique Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Constantes de vitesse de « quenching » de l’l’oxygè oxygène singulet par des biomolé biomolécules MOLECULE CONSTANTE DE VITESSE (M-1 s-1) ACIDES GRAS INSATURES Cibles biologiques Photosensibilisateur ( Photodégradation (5 - 10) x 104 CHOLESTEROL 5.7 x 104 HISTIDINE 4.4 x 107 TRYPTOPHANE 5.6 x 107 CYSTEINE 8.9 x 106 METHIONINE 1.4 x 107 PORPHYRINES VINYLIQUES ≈ 1 - 3 x 107 PORPHYRINES NON-VINYLIQUES ≈ 1 x 106 Atelier de Biophotonique 2010 genopole® AutoAuto-dégradation (photobleaching (photobleaching)) ou autoauto-transformation de photosensibilisateurs R Exemple de photo-transformation d’une porphyrine vinylique NH N N HN COOH COOH Porphyrine OO Oxygène Lumière ( 1 O2 ) N OH O R NH N N HN COOH COOH Chlorine Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 13 Mécanismes de photosensibilisation Les rendements quantiques de formation d’état triplet et d’oxygène singulet déterminent en premier lieu les qualités d’un photosensibilisateur Phosphorescence Absorption Etat triplet Fluorescence Energie Etats singulets Etat fondamental Photochimie Intrinséquement, l’énergie des photons absorbés n’a pas d’importance (dans la limite des processus considérés) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 2ème partie Applications des processus photochimiques Nouvelles techniques en biologie molé moléculaire Applications mé médicales Photothé Photothérapies Photochimiothé Photochimiothérapies Thé Thérapie photodynamique (PDT) 14 Oxygè Oxygène singulet : Une sonde des interactions entre biomolé biomolécules Technique AlphaScreenTM (Packard BioScience). Oxygène singulet B A Les biomolécules sont conjuguées avec des perles (beads) contenant d’une part un photosensibilisateur (donneur conjugué à la biomolécule A) et, d’autre part, à un réactif de l’oxygène singulet (accepteur conjugué à la biomolécule B) qui émet un signal de fluorescence. Cette fluorescence est la signature de l’interaction entre les biomolécules. L’oxygène singulet agit ici comme « indicateur de proximité ». Atelier de Biophotonique 2010 genopole® PhotoPhoto-pontage Caracté Caractérisation des interactions entre biomolé biomolécules Irradiation lumineuse (ultraviolet) Excitation directe des biomolécules (bases nucléiques, ….) ( Formation de liaison chimique entre biomolécules en contact Analyse par électrophorèse, spectrométrie de masse, … Atelier de Biophotonique 2010 genopole® La photomé photomédecine Mise en oeuvre de processus bénéfiques initiés grâce à l ’absorption de lumière par un chromophore Chromophore exogène Chromophore endogène Photochimiothérapie Photothérapie PVA thérapie du psoriasis (psoralène) PDT des tumeurs, ... (Porphyrines) Ictère du nouveau né (Bilirubine) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 15 Photochimiothé Photochimiothérapie : Une vieille histoire encore d’ d’actualité actualité Psoralen is one of the oldest known chemotheraputic drugs--the use of a psoralen containing Nile weed to treat skin ailments was described in Ebers papyrus, an early Egyptian medical text published around 1550 BC (the front page is reproduced here). The drug photocrosslinks DNA and is shown in this figure to induce the formation of a four-stranded junction. (Eichman, et al., J. Mol. Biol., 2001, 308: 15-26). Atelier de Biophotonique 2010 genopole® La photomé photomédecine Photothérapie de l’ictère du nouveau-né PVA thérapie du psoriasis Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Action biologique de la lumiè lumière Effet photodynamique Effet photodynamique : Inactivation de systèmes vivants Paramécies, colorant : acridine 1900 - 1904 Oscard Rabb, Hermann von Tappeiner (Munich) ¾ Lumière ¾ Photosensibilisateur ¾ Oxygène Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 16 Photochimiothé Photochimiothérapie antitumorale Historique 1942 – 1948 Auler & Banzer; Banzer; Figge et al. Observations de rétention de porphyrines par des tumeurs ou des tissus prolifératifs et possibilités de traitement 1955, 1960 – 1967 Schwartz; Lipson et al. Préparation de l’hématoporphyrine dérivée (HpD) présentant une rétention marquée par les tumeurs (observée par fluorescence) 1960 - 1993 Lipson; Lipson; Gregoire; Profio; Profio; .. Travaux privilégiant le photodiagnostic grâce à la fluorescence des porphyrines puis le développement de l’endoscopie 19721972- 1977 Diamond; Diamond; Dougherty; Dougherty; Kelly Intérêt de la photochimiothérapie des tumeurs démontré sur l’animal (hematoporphyrine, HpD) 1978 Dougherty Première étude clinique importante en photochimiothérapie des tumeurs (HpD) ¾ ¾ ¾ ¾ ¾ Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photochimiothé Photochimiothérapie antitumorale Tumeur Rétention préférentielle du Photosensibilisateur Délai (1-72 h) Photofrin® (QLT &Axcan Pharma, Canada) • FDA, USA (1995, 1998) Bronches, œsophage (tumeurs obstructives puis petites tumeurs) • AMM, France (1996) Bronches, oesophage • FDA, USA (2003) Dysplasie oesophage de Barrett Photosensibilisateur Fibre optique Laser 630 nm (rouge) 1ère génération Espèces toxiques à très brève durée de vie " Necrose tumorale Photosensibilisateurs Foscan ® (Scotia, UK & Biolitec ) • AMM, UE (2001) cancers de la tête et du cou 2ème génération Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes d’ d’action en photochimiothé photochimiothérapie antitumorale Vascularisation Effets cellulaires ( mort cellulaire par nécrose ou/et apoptose Réactions immunologiques Tumeur Artère Veine Irradiation lumineuse Déplétion d ’oxygène Capillaire 3 2 Cellules Milieu interstitiel 1 ps m Te Effets vasculaires ( anoxie de la tumeur Injection du photosensibilisateur Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 17 Photochimiothé Photochimiothérapie antitumorale Traitement endoscopique Intérêt majeur des lasers : Efficacité de couplage à une fibre optique Hopital Foch, Suresnes Traitement de tumeur bronchique Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photochimiothé Photochimiothérapie antitumorale Laser à diode _____________ S P E C I F I C A T I O N S _____________ Laser Type InGaAlP Laser Diode, CW Wavelength 630nm ± 3 nm Delivery fiber OPTIGUIDE* fiber optic delivery system Power 2000mW maximum calibrated power output to fiber tip Cooling Forced air Power Supply 115 VAC ±10% , 60 Hz < 10A, single phase Dimensions 485 mm (h) x 220 mm (w) x 405 mm (d) nominal - not including cuvette Weight 19.5kg (43lbs) nominal Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Applications en photochimiothé photochimiothérapie Affections cutané cutanées ¾ Systèmes d’illumination « conventionnels » Lampes ou réseaux de diodes luminescentes Aktilite® CL16 By Photocure ASA The Aktilite CL16 lamp emits red light and is intended for use in topical photodynamic therapy (PDT) of skin lesions in combination with Metvix® cream. The lamp illuminates areas up to 40 x 50 mm. Performance Irradiance of approximately 50 mW/cm² at 50 mm distance and an average wavelenght of approx. 630 nm. The full width at half maximum (FWHM) of emission spectrum is about 18 nm. Maximum irradiance variation over the target area is ± 10%. Dosage can be set manually, but the default is 37 J/cm² Normal illumination time 8 – 10 minutes ¾http://www.photocure.com/ Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 18 Applications en photochimiothé photochimiothérapie Dégénérescence Maculaire Lié Liée à l ’Age (DMLA) Rétine Macula Visudine® (QLT & Novartis) AMM, niveau mondial (2000) DMLA « humide » Dégénérescence maculaire (Prolifération vasculaire) Remboursement en France Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photochimiothé Photochimiothérapies: rapies: autres applications ¾ Décontamination virale et bactérienne d’élements sanguins (plaquettes, approuvé par l’UE, Cerus/Baxter, USA) 1 2 ¾ Traitement de plasma par le bleu de méthylène (Belgique) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photochimiothé Photochimiothérapies: rapies: autres applications potentielles Photoangioplastie laser Plaque athéromateuse marquée par le photosensibilisateur Artère ¾ Photoangioplastie: traitement d’athérome ou de resténose (essais cliniques phase 1, Pharmacyclics, USA) Fibre optique Diffusant la lumière Fibre diffusante souple Cardiofocus, USA Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 19 Photosensibilisateurs Structure et propriétés Exigences en photochimiothérapie Paramè Paramètre fondamental en photochimiothé photochimiothérapie Transmission de la lumiè lumière TISSU Absorption Seule la lumiè lumière absorbé absorbée par le photosensibilisateur est efficace Lumière incidente Réflexion Réfraction Diffusion Particule diffusante Chromophore endogène Absorption Photosensibilisateur Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Paramè Paramètre fondamental en photochimiothé photochimiothérapie Transmission de la lumiè lumière arrière Lumière Incidente avant Fibre optique coté Muscle Irradiance (unité arbitraire) 106 avant coté arrière 105 104 103 102 101 λ : 633 nm 100 0 5 10 15 20 25 30 Distance par rapport à l’extrémité de la fibre (mm) Dougherty, 1984 Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 20 Transmission de la lumiè lumière par les tissus : Le rouge est mieux transmis Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Transmission de la lumiè lumière par les tissus : Fenêtre optimale Transmission optimale Fenêtre optimale d’excitation de photosensibilisateurs : 620 à 800 nm 9 Transmission de la lumière par les tissus 9 Energie minimale pour produire de l’oxygène singulet ou des radicaux Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photosensibilisateurs : 1ère génération (AMM) HO HO CH 3 OH OH N HN NH N Hématoporphyrine CH 3 dérivée (HpD) Acétylation Hydrolyse HN N COOH COOH Hématoporphyrine COOH Photofrin® NH N QLT, AXCAN O N N HN HN COOH Hématoporphyrine HVD Protoporphyrine OH Photofrin® HO Classe : Porphyrine N NH Fractionnement NH N Dimères et oligomères COOH COOH COOH COOH Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 21 Transmission de la lumiè lumière par les tissus Choix de la longueur d’ d’onde d’ d’excitation des photosensibilisateurs En photochimiothérapie on excite le photosensibilisateur dans sa bande d’absorption située vers le rouge afin de bénéficier d’une meilleure pénétration de la lumière dans les tissus Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Familles de photosensibilisateurs Fenètre optimale Porphyrine N N N H N H Phtalocyanine H N N N Absorbance H N Chlorine Porphyrine Bactériochlorine Chlorine N N N N N H H N N H N N H N N Bactériochlorine N Phtalocyanine 300 400 500 600 700 800 900 Longueur d'onde Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photosensibilisateurs : 2ème génération (AMM) CH3 H O O O H O H3C N H O N H N O H O N H N N O O O N H N O O CH3 Visudyne® (BPD-MA) H Foscan® (mTHPC) QLT CIBA Scottia QuantaNova, Biolitec Classe : Chlorine Classe : Chlorine Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 22 Photosensibilisateurs : 2ème génération Bactériochlorophylle de Palladium Tookad (Steba Biotech) Motexafin Lutenium® (Lu-Texaphyrine) (Pharmacyclics) H3C O H CH3 H H3C H O CH3 N CH3 N N Pd H3C N H N N H3C N O N O O Lu++ H3C O O O N CH3 O O CH3 CH3 - H H HOOC O O COOCH3 O CH3 H3C C 2 O H Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photosensibilisateurs : Macrocycles étendus Composés synthétiques N Absorption dans le rouge lointain N N H N N H N N N Phtalocyanine λ ~ 680 nm N N H N N H N N N N H N N N N Naphtalocyanine N λ ~ 770 nm Texaphyrine λ ~ 740 nm Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Photochimiothé Photochimiothérapie : Action sé sélective Affinité Cible Photosensibilisateur Génération d’espèces transitoires très réactives Lumière Sélectivité basée sur & Le contrôle de la zone illuminée > production locale d’espèces actives & Affinité du photosensibilisateur pour la cible Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 23 Dosimé Dosimétrie Irradiance Temps Dose = f (ελ, Ct, Et, ΦΔ, t ) Coefficient d’extinction molaire Concentration du photosensibilisateur Rendement en espèces actives E = irradiance : puissance par unité de surface (Watt/cm2) E x t = Fluence : énergie par unité de surface (Joule/cm2) Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Pharmacociné Pharmacocinétique Mécanismes de sé sélectivité lectivité tumorale Activation par la lumière Médicament photoactivable Dommages irréversibles Médicament traditionnel Effets réversibles Activité biologique Concentration au niveau de la cible Médicaments photoactivables : Importance de la pharmacociné pharmacocinétique Temps Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 24 Déterminants physicochimiques de l’l’incorporation et de la distribution cellulaire de photosensibilisateurs Photosensibilisateur : Injection Dimérisation, Agrégation Apoprotéine B100 Phospholipide DISTRIBUTION Ester de cholestérol autres transporteurs libre en solution Cholestérol HDL LDL HSA Diffusion passive Endocytose fluide ou adsorptive HSA : Albumine humaine HDL : lipoprotéine de haute densité LDL : lipoprotéine de basse densité Cellule Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Mécanismes de ré rétention de photosensibilisateurs par les cellules tumorales Vaisseaux sanguins Capillaire 3 Cellules 2 Milieu interstitiel 1 Tumeur Artère Photosensibilisateur Veine Propriétés vasculaires Propriétés tissulaires Perméabilité des néovaisseaux Effets physico-chimiques Bas pH du liquide interstitiel 6,9 < pH < 7,5 Tumeur Normal Propriétés cellulaires Nombre accru de récepteurs aux LDL Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Porphyrines dicarboxyliques : Effet du pH sur les interactions avec les membranes Sortie Phase aqueuse pH ~ 7,4 Traversée Groupes neutralisables à bas pH : Transfert accéléré (x 100) Phase aqueuse pH ~ 6,5 Sortie Incorporation Biochemistry, 1994, 1995 Biochim. Biophys. Acta, 1998, 1999, 2004 Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 25 Les lipoproté lipoprotéines de basse densité densité (LDL) assure l’l’apport de cholesté cholestérol aux cellules Apoprotéine B100 (4536 résidus) et sont de bons véhicules de photosensibilisateurs hydrophobes Esters de cholestérol Cholestérol (500) Phospholipides (800) LDL Puits recouverts Récepteur de LDL LDL Recyclage du récepteur clathrine Récepteur complexe Libération de clathrine Lysosome primaire endosome Libération de cholestérol dans le plasma régulations enzymatiques Lysosome secondaire Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Incorporation et localisation subcellulaire Vésicule d ’endocytose Endosome Lysosome Noyau Endocytose Lipoprotéines Diffusion passive Membrane plasmique Appareil de Golgi Mitochondrie Reticulum endoplasmique Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Dynamique d’ d’interactions de photosensibilisateurs avec des membranes ( localisation subsub-cellulaire + + + + Affinité pour les membranes modèles Affinité pour les LDL Cinétique d’interactions avec les LDL Transfert à travers les bicouches lipidiques + + + - AlPcS2 + LDL DP + LDL Fibroblastes HS68 AlPcS2 Lyso-tracker green Colocalisation Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 26 Photosensibilisateurs : Générations futures ? Objectif : Augmenter la sé sélectivité lectivité des photosensibilisateurs envers les tumeurs en utilisant certaines de leurs caracté caractéristiques Surexpression de récepteurs par les cellules tumorales 9 Acide folique 9 Œstrogène 9 Sucres Couplage de photosensibilisateurs à des molé molécules ciblé ciblées vers ces ré récepteurs Surexpression de protéases par les tumeurs ou de certaines macromolécules (ARNm) Systè Systèmes dont les proprié propriétés photosensibilisatrices sont « révélées » par l’action de ces proté protéases ou par l’l’interaction avec les macomolé macomolécules Transport et vectorisation de photosensibilisateurs par des nanoparticules Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Développement de photosensibilisateurs Une association de proprié propriétés Structure Chimique Photophysique : Absorption Fluorescence Rendement triplet Formulation Pharmacocinétique Localisation cellulaire Rapport hydrophile /hydrophobe Propriétés en solution Interaction avec biomolécules Photochimie : Photosensibilisation Photoblanchiment Photoproduits Atelier de Biophotonique 2010 genopole® Conclusion Spectroscopies optiques Moyens d’analyse sensibles adaptés aux études statiques et dynamiques ¾ Lumière peut induire des processus photochimiques Sources de nombreuses applications (mais aussi d’artéfacts) ¾ Atelier de Biophotonique 2010 genopole® 27