Etape pre post analytique HEMATO [Mode de compatibilité]

Transcription

Etape pre post analytique HEMATO [Mode de compatibilité]
Ministère de la Santé et de la Prévention
Réseau National des Laboratoires
Etapes pré et post analytique
des analyses biologiques en
HEMATOLOGIE
Pr. Awa O. Touré
PLAN
Etapes pré analytique
1.
2.
3.
4.
Bulletin d’analyse
Accueil
Enregistrement
Conditions de prélèvement
5.
6.
7.
8.
Locaux
Patient
Matériel
Technique
Conservation et transport
Identification et étiquetage
Pré traitement
Analyses
Etapes post analytique
1.
2.
3.
4.
5.
Validation technique
Validation biologique
Expression des résultats
Transmission des résultats
Archivage
ETAPES PREPRE-ANALYTIQUE
HEMOSTASE
Le bulletin d’analyse
– Informations sur l‘origine de la demande
– Hôpital, centre de santé, cabinet privé, Service etc.
– Date et signature du prescripteur
– Préleveur, date et heure de prélèvement
– Informations sur le patient:
– Etat civil: nom, prénom, date de naissance (ou âge), ethnie, sexe
– Titre : externe/ interne
– Informations sur la maladie
– Diagnostic
– Traitement en cours
– Informations sur les analyses demandées
L’ accueil du patient
Le patient devra être informé sur:
• le type de prélèvement
• le prix de l’analyse
• les conditions de prélèvement
• le délai de délivrance des résultats
Ces informations détaillées peuvent être orales
et/ou écrites.
L’enregistrement du patient
• Où? à l’accueil
• Comment?
– Numéro d’enregistrement ou code identifiant
– Pour les laboratoires qui disposent de SIGL
(Système Informatisé de Gestion des données):
numéro unique
– Dans tous les cas: numéro/code reporté sur tous
les prélèvements du patient.
Les conditions de prélèvements (1)
• Locaux:
– salle propre, aérée, ayant une bonne luminosité,
– Salle différente des salles de manipulation
• Patient :
– à jeun (sauf en cas d’urgence),
– au repos depuis au moins 15 minutes,
– sans prise de salicylés et/ou de AINS (depuis au
moins 8 jours)
Les conditions de prélèvements (2)
• La plateau de prélèvement:
– Matériel d’asepsie
– tube contenant du citrate trisodique (3,8% ou
0,129M, (bleu),
– Matériel à usage unique
Les conditions de prélèvements (3)
• Technique de prélèvement
•
•
•
•
Sans garrot ou garrot moins d’une minute
Ponction veineuse franche
Prélèvement sous vide de préférence
Éliminer les premières gouttes ou prélever en
deuxième position
• Prélèvement de sang à raison de 9 volumes de sang
pour 1 volume d’anticoagulant
• Homogénéiser par dix retournements
NB: si prélèvement difficile, changer de veine
Transport et conservation
- Mode de transport :
container (glacière) ou plateau ou panier
- Délais : dans l’heure qui suit le prélèvement
NB: le prélèvement non transporté dans ce délai
ne peut être accepté
Identification au labo
- Qui ?: système de tri géré par les techniciens de labo
- Comment?: vérification de la conformité
• tube apporté ou prélevé doit comporter: nom,
prénom, service, numéro d’identification du
laboratoire
• Étude physique: absence de caillot, respect du rapport
anticoagulant/sang (1/9)
Prétraitement
• Transport dans l’heure qui suit le prélèvement
• Conservation: température du labo (20° à 25° C)
• Centrifugation
• dans les 2 – 4 heures qui suivent le prélèvement
• centrifugeuse réfrigérée
• 2500 tours/min pendant 15 min
• Si la manipulation n’est pas immédiate,
aliquoter le plasma et le conserver à – 25° C
Analyses
• Tests pouvant être effectués avec ce type de
prélèvement:
– Hémostase de routine: TP (TQ), TCA, TT, dosage du
fibrinogène
– Dosage des facteurs de la coagulation (facteurs
VIII et IX), facteur von Willebrnd (Rco)
– Bilan de thrombophilie: protéine S, prot C,
anticorps antiphospholipides (double
centrifugation)
– D-Dimères, PDF
CYTOLOGIE
Enregistrement
• Où? à l’accueil
• Comment?
– Numéro d’enregistrement ou code identifiant
– Pour les laboratoires qui disposent de SIGL
(Système Informatisé de Gestion des données):
numéro unique
– Dans tous les cas: numéro/code reporté sur tous
les prélèvements du patient.
Conditions de prélèvements (1)
• Locaux:
– salle propre, aérée ayant une bonne luminosité,
– Salle différente des salles de manipulation
• Patient :
– à jeun (sauf en cas d’urgence)
– au repos depuis au moins 15 minutes
– toujours indiquer le traitement pris.
Conditions de prélèvements (2)
• Plateau de prélèvement:
– Matériel d’asepsie
– Matériel à usage unique: tube EDTA (violet) ou
tube citrate 4NC (noir)
• Technique de prélèvement :
– Prélèvement sous vide de préférence
– Ponction veineuse franche
– Homogénéiser par dix retournements
NB: si prélèvement difficile, changer de veine
Transport et conservation
- Mode de transport :
- container (glacière)
- plateau ou panier
- Délai : ≤ 4 heures
NB: le prélèvement non transporté dans ce délai
peut être conservé à 4° pendant 24 heures
Identification au labo
- Qui ?: système de tri géré par les techniciens
de labo
- Comment?: vérification de la conformité
– tube apporté ou prélevé doit comporter: nom,
prénom, service, numéro d’identification du
laboratoire
– Étude physique: absence de caillot, respect du
rapport anticoagulant/sang
Analyses
– Hémogramme
– Vitesse de sédimentation (tube citraté 4NC ou
EDTA)
– Test d’Emmel
– Taux de réticulocytes
– Électrophorèse de l’hémoglobine
IMMUNO--HEMATOLOGIE
IMMUNO
Enregistrement
• Où? à l’accueil
• Comment?
– Numéro d’enregistrement ou code identifiant
– Pour les laboratoires qui disposent de SIGL
(Système Informatisé de Gestion des données):
numéro unique
– Dans tous les cas: numéro/code reporté sur tous
les prélèvements du patient.
Conditions de prélèvements
• Locaux:
– salle propre, aéré, ayant une bonne luminosité,
– Salle différente des salles de manipulation
• Patient : pas de condition particulière
• Plateau de prélèvement
– Matériel d’asepsie
– Matériel à usage unique: tube sec et tube
contenant un anticoagulant
Conditions de prélèvements
• Technique de prélèvement
– Prélèvement sous vide de préférence
– Ponction veineuse franche
– Homogénéiser par dix retournements (les tubes
contenant de l’anticoagulant)
NB: si prélèvement difficile, changer de veine
Transport et conservation
- Mode de transport : container (glacière) ou
plateau ou panier
- Délais :≤ 4 heures
NB: le prélèvement non transporté dans ces
délais ne peut être conservé
Identification au labo
- Qui ?: système de tri géré par les techniciens
de labo
- Comment?: vérification de la conformité
tube apporté ou prélevé doit comporter: nom,
prénom, service, numéro d’identification du
laboratoire
ETAPES POST ANALYTIQUE
Validation (1)
• Validation technique ou analytique
– Qui: Celui qui effectue l’analyse (technicien ou
biologiste)
– Comment? Après contrôle interne de l’appareil et
de la technicité par des échantillons de contrôle
• Transmission des résultats sur cahiers de
paillasse et/ou par l’informatique
Validation (2)
• Validation biologique
– Qui: Biologiste
– Comment?
• Vérification du contrôle qualité
• Contrôle d’identité
• Vérification de la conformité entre l’analyse effectuée et
l’analyse demandée
• Confirmation du diagnostic évoqué => validation du résultat
• Infirmation du diagnostic => commentaire avant validation
• si nécessaire, demander un prélèvement de contrôle
• Ou discuter avec le prescripteur
Validation (3)
• Expression des résultats
Doivent être mentionnés:
– Les valeurs de référence avec des unités du système
international (SI)
– La méthode d’analyse et/ou les réactifs utilisés
– Le papier à en-tête du laboratoire comportant les
mentions fixées réglementairement
– La signature télématique et/ou signature manuscrite
de la personne qui a validé les résultats.
Validation (4)
• Transmission des résultats
– Respect du secret professionnel.
– Résultats d’analyses remis au patient ou au
médecin prescripteur en toute confidentialité
– Pronostic vital en jeu: rendre les résultats en toute
urgence au prescripteur
Archivage
• Assurer la traçabilité des résultats et des contrôles
par un enregistrement manuel et/ou informatique.
• Conserver les échantillons
• Cytologie et immuno-hématologie: au frais pendant 24 h
• Hémostase spécialisée: Faire des aliquotes et conserver le
plasma à – 25° C pendant un mois ou à – 80° C à vie.
Bibliographie
• Hématologie: S.Choquet, Ellipses, Normandie 2007
• Hématologie et Immunologie: Techniques, Anne
Afonso Christiane JOFFIN
• Biologie Technique: 2000 Paris
• Hématologie: A. Victor Hoffbrand, De Boeck Diffusion
Paris 2003
• Hémostase et Thrombose, MF Aillaud, Lasimarre,
France 1996