system - Laboratoire de biologie médicale du Quai Vallière
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fr AFP system 7K67 48-9397/R3 B7K6S2 Faire attention aux modifications Révision de novembre 2009 AFP Service Clients : Retrouvez le contact de votre Service Clients Abbott sur www.abbottdiagnostics.com Suivre scrupuleusement les instructions de cette notice. La fiabilité des résultats du dosage ne peut pas être garantie si ces instructions ne sont pas strictement respectées. Légende des symboles utilisés Référence Numéro de contrôle Dispositif médical de diagnostic in vitro Lot de réactifs Numéro de lot Cupules réactionnelles Date d'expiration Septum Conserver entre 2 et 8 °C Godets-échantillons Attention Bouchons de remplacement Numéro de série Consulter les instructions d'utilisation Fabricant L'explication complète des symboles utilisés pour la dénomination des composants se trouve à la partie REACTIFS. 1 Des taux élevés d'AFP sérique ont été relevés dans plus de 70 % des cancers hépatocellulaires primaires.5,6,15 Des taux élevés d'AFP apparaissent occasionnellement en association avec des cancers du tube digestif, avec ou sans métastases hépatiques16 et rarement dans d'autres affections malignes.5,6 On rencontre des taux élevés d'AFP sérique pendant la grossesse, dans les maladies telles que l'ataxie télangiectasique, la tyrosinémie héréditaire, le tératocarcinome et dans des affections hépatiques bénignes, telles que l'hépatite virale aiguë, l'hépatite chronique active et la cirrhose du foie.6,15,17 L'augmentation des taux sériques d'AFP dans les affections hépatiques bénignes est habituellement passagère.5 Le dosage de l'AFP n'est pas conseillé comme test de dépistage du cancer dans l'ensemble de la population. MISE EN GARDE : La concentration en AFP d'un échantillon donné, déterminée à l'aide des méthodes commercialisées par différents fabricants, peut varier en raison des différences dans les procédés de dosage et la spécificité des réactifs. Les résultats communiqués par le laboratoire au médecin devront indiquer la méthode de dosage AFP utilisée. Les valeurs obtenues par différentes méthodes d'analyse ne sont pas interchangeables. Si la méthode utilisée pour déterminer les taux d'AFP périodiquement est changée au cours du suivi du traitement d'un patient, une série supplémentaire de dosages devra être effectuée. Avant de changer la méthode de dosage, le laboratoire DOIT : 1. Pour la surveillance d'un cancer : confirmer les valeurs de base pour les malades contrôlés périodiquement. 2. Pour les examens prénatals : établir une plage de valeurs normales avec la nouvelle méthode à partir de sérum, de plasma et de liquide amniotique normaux, prélevés sur des femmes enceintes dont le stade de la grossesse est confirmé. Examen prénatal De nombreuses études ont confirmé l'utilité de l'AFP pour la détection précoce de détection des anomalies fœtales de fermeture du tube neural (AFTN).18-20 Aux Etats-Unis, les AFTN, principalement l'anencéphalie et le spina bifida, apparaissent dans 1 à 2 naissances sur 1000 et comptent parmi les malformations congénitales majeures les plus courantes.21 La fréquence des AFTN varie d'une région à l'autre et en fonction des groupes raciaux.22-26 L'anencéphalie est une malformation congénitale fatale et représente un tiers, voire la moitié des AFTN. La gravité du spina bifida aperta (ouvert) peut présenter des variations importantes. Des rapports publiés dans les ouvrages scientifiques suggèrent que d'autres facteurs doivent être pris en considération pour évaluer le risque de la présence d'AFTN.22-28 L'un des facteurs est le poids de la mère. Il a été observé que le volume du sang maternel, lié au poids de la mère, affecte la concentration d'AFP du sérum maternel (MSAFP) dans le système circulatoire de la mère ; plus le poids de celle-ci est élevé, plus la concentration en MSAFP est faible.26,29 Un autre facteur à prendre en compte est la présence de diabète chez la mère. Il a été indiqué que les femmes diabétiques insulino-dépendantes présentent des concentrations de MSAFP significativement plus faibles que les femmes non diabétiques et, de ce fait, une incidence plus élevée d'AFTN.27,28,30 Les concentrations de MSAFP dans le sérum maternel au sein de la populatigon noire sont environ 10 % plus élevées que celles des autres populations. Dans la littérature, il a été suggéré d'utiliser un facteur d'ajustement ou une table de correspondance appropriée.25,26 La concentration en AFP du liquide amniotique (AFAFP) atteint son maximum au bout de 13 semaines de grossesse environ, puis elle diminue rapidement approximativement jusqu'à la 22ème semaine de grossesse, pour continuer à diminuer progressivement jusqu'à la naissance. Le passage de l'AFP dans le système circulatoire de la mère s'effectue surtout par diffusion à travers le placenta.31 Lorsque le fœtus présente une anomalie de fermeture du tube neural, l'AFP semble passer directement dans le liquide amniotique, provoquant une élévation inattendue des concentrations de AFAFP. Par la suite, le AFAFP rejoint le système circulatoire de la mère, produisant ainsi des concentrations de MSAFP anormalement élevées. Certaines anomalies du fœtus, telles que les affections rénales congénitales et l'atrésie de l'œsophage, entraînent également une élévation des concentrations de AFAFP.32,33 D'autres conditions de détresse fœtale telles que l'hernie ombilicale ou le gastroschisis, le dysfonctionnement rénal, les risques d'avortement, la prématurité et parfois la mort fœtale34-37 peuvent être la cause de concentrations de MSAFP anormalement élevées. Des taux de MSAFP élevés sont également constatés dans des grossesses multiples 38 et dans des grossesses uniques normales pour lesquelles l'âge du fœtus a été sous-estimé. Des taux de MSAFP faibles ont été associés à une grossesse molaire, une fausse-couche, une grossesse nerveuse, une surestimation de l'âge du fœtus et une trisomie 21 fœtale.39 Dans un rapport portant sur plus de 18 000 grossesses, le "U.K. Collaborative Study" a défini que les multiples de la médiane (MoM) constituent la meilleure façon d'exprimer les résultats d'AFP.18 La valeur médiane d'AFP pour chaque semaine de grossesse est d'abord déterminée ; ensuite, chaque concentration d'AFP est exprimée sous forme de multiples de cette valeur. Cette méthode facilite la comparaison des résultats du test de l'AFP pendant les semaines de grossesse et entre les différents laboratoires d'analyses. Le dosage de l'AFP pendant la grossesse est une méthode efficace conseillée pour déterminer quelles femmes peuvent présenter le risque de porter un fœtus atteint d'AFTN. Utilisées en association avec des méthodes de confirmation telles que l'échographie ou l'amniographie, les mesures d'AFP constituent un outil important pour le traitement et le suivi de ces patientes. DENOMINATION ARCHITECT AFP (alpha-fœtoprotéine) DOMAINE D'APPLICATION ARCHITECT AFP est un dosage immunologique microparticulaire par chimiluminescence (CMIA) pour la détermination quantitative de l'alphafœtoprotéine (AFP) dans : 1. Le sérum ou le plasma humain pour le suivi du traitement des patients présentant un cancer des testicules non-séminomateux. 2. Le sérum, le plasma et le liquide amniotique humains prélevés entre la 15ème et la 21ème semaine de grossesse, pour la détection des anomalies fœtales de fermeture du tube neural (AFTN). Les résultats du dosage, associés à ceux de l'échographie ou de l'amniographie, constituent une méthode sûre et efficace pour la détection de ces anomalies. RESUME ET EXPLICATION DU TEST En 1956, Bergstrand et Czar ont signalé pour la première fois la présence de l'alpha-fœtoprotéine (AFP) dans le sérum du fœtus.1 L'alpha-fœtoprotéine est une glycoprotéine d'un poids moléculaire d'environ 70 000 daltons, constituée d'une seule chaîne polypeptidique. Ses propriétés physico-chimiques et sa composition en acides aminés sont semblables à celles de l'albumine.2,3 La synthèse de l'AFP a lieu principalement dans le foie et le sac vitellin du fœtus. Elle est sécrétée dans le sérum fœtal et atteint une concentration maximale vers la 13ème semaine de grossesse pour diminuer progressivement par la suite. Des concentrations sériques élevées en AFP réapparaissent ensuite au cours de la grossesse et dans certaines maladies malignes. Surveillance d'un cancer L'alpha-fœtoprotéine (AFP) a été décrite pour la première fois en 1964 par Tatarinov comme étant une protéine humaine associée aux tumeurs.4 Depuis lors, il a été mis en évidence que l'augmentation des concentrations sériques en AFP au-delà de celles mesurées normalement chez l'individu sain, apparaît dans le cadre de plusieurs maladies malignes,5-8 notamment en cas de cancer des testicules non-séminomateux et de carcinome hépatocellulaire primaire. En cas de cancer des testicules non-séminomateux, on a constaté qu'il existait une relation directe entre l'apparition de taux élevés d'AFP et le stade de la maladie.9,10 Des concentrations élevées en AFP ont également été observées chez des patients présentant un séminome avec des éléments non-séminomateux, mais n'ont pas été décelées chez ceux présentant un séminome pur.7,9,11,12 La gonadotrophine chorionique humaine (hCG) et l'AFP constituent également des indicateurs importants pour le pronostic de survie des patients présentant des tumeurs avancées des cellules germinales testiculaires non-séminomateuses.13 L'utilité de la mesure de l'AFP dans le suivi des patients présentant un cancer des testicules non-séminomateux a été parfaitement démontrée.7,11,14 Chez les patients en rémission clinique suite à un traitement, les taux d'AFP diminuent généralement.11 Des valeurs d'AFP post-opératoires ne revenant pas à la normale laissent fortement présumer la présence d'une tumeur résiduelle.6,7,11 La récurrence de la tumeur se traduit souvent par une élévation des concentrations en AFP avant que l'évolution de la maladie ne soit cliniquement décelable.7,9 2 • PRINCIPES BIOLOGIQUES DE LA METHODE ARCHITECT AFP est un dosage immunologique en deux étapes pour déterminer la présence de l'AFP dans le sérum, le plasma ou le liquide amniotique humain, utilisant la technologie de dosage immunologique microparticulaire par chimiluminescence (CMIA) avec des protocoles de dosages flexibles, appelée Chemiflex. Dans un premier temps, l'échantillon, le diluant de dosage et les microparticules paramagnétiques recouvertes d'anticorps anti-AFP sont mis en présence. L'AFP présente dans l'échantillon se lie aux microparticules recouvertes d'anticorps anti-AFP. Après lavage, le conjugué d'anticorps anti-AFP marqué à l'acridinium est ajouté dans un deuxième temps. Les solutions de préactivation et d'activation sont ensuite ajoutées au mélange réactionnel. La réaction chimiluminescente qui en résulte est mesurée en unités relatives de lumière (URL). Il existe une relation directe entre la quantité d'AFP présente dans l'échantillon et les URL détectées par le système optique ARCHITECT i*. Pour de plus amples informations concernant l'analyseur et la technologie de dosage, se référer au Chapitre 3 du Manuel Technique ARCHITECT. * i = dosage immunologique • Pour les produits non classifiés comme dangereux par la Directive européenne 1999/45/EC (amendée), une fiche de données de sécurité est disponible pour les professionnels sur simple demande. Pour de plus amples informations sur les mesures de sécurité à appliquer lors du fonctionnement de l'analyseur, se référer au Chapitre 8 du Manuel Technique ARCHITECT. Précautions d'emploi • Ne pas utiliser les kits de réactifs au-delà de leur date d'expiration. • Ne pas mélanger les réactifs provenant de kits différents. • Avant de charger l'ARCHITECT AFP Reagent Kit sur le système pour la première fois, le flacon de microparticules doit être homogénéisé afin de remettre en suspension les microparticules qui se sont déposées pendant le transport. Pour de plus amples informations sur l'homogénéisation des microparticules, se référer au paragraphe Procédure du dosage de la partie PROCEDURE de cette notice. • Des septums DOIVENT être utilisés afin d'empêcher l'évaporation et la contamination des réactifs et d'assurer leur intégrité. La fiabilité des résultats du dosage ne peut pas être garantie si les septums ne sont pas utilisés conformément aux instructions de cette notice. • Afin d'éviter toute contamination, porter des gants propres lors de l'application d'un septum sur un flacon de réactif débouché. • Une fois qu'un septum a été placé sur un flacon de réactif ouvert, ne pas retourner le flacon afin d'éviter toute fuite de réactif et de ne pas fausser les résultats du dosage. • Avec le temps, il se peut que des liquides résiduels sèchent à la surface du septum. Il s'agit de sels secs qui n'ont aucune incidence sur la performance du dosage. • Pour de plus amples informations sur les précautions d'emploi lors du fonctionnement de l'analyseur, se référer au Chapitre 7 du Manuel Technique ARCHITECT. REACTIFS Kit de réactifs, 100 tests / 500 tests REMARQUE : Certains conditionnements ne sont pas disponibles dans tous les pays ou utilisables sur tous les analyseurs ARCHITECT i Systems. Contacter le distributeur local. ARCHITECT AFP Reagent Kit (7K67) • 1 ou 4 flacon(s) (6,6 ml pour le flacon de 100 tests / 27,0 ml pour le flacon de 500 tests) de microparticules recouvertes d'anticorps anti-AFP (souris, monoclonaux) dans du tampon MES, TRIS avec des stabilisants de protéines (bovines). Conservateurs : agents antimicrobiens. 1 ou 4 flacon(s) (5,9 ml pour le flacon de 100 tests / • 26,3 ml pour le flacon de 500 tests) de conjugué d'anticorps anti-AFP (souris, monoclonaux) marqué à l'acridinium dans du tampon MES avec des stabilisants de protéines (bovines). Concentration minimale : 20 ng/ml. Conservateurs : agents antimicrobiens. • 1 ou 4 flacon(s) (10,4 ml pour le flacon de 100 tests / 53,0 ml pour le flacon de 500 tests) d'AFP Assay Diluent contenant du tampon TRIS. Conservateurs : agents antimicrobiens. Conditions de conservation • • • Diluant de dosage ARCHITECT i Multi-Assay Manual Diluent (7D82-50) 1 flacon (100 ml) d'ARCHITECT i • Multi-Assay Manual Diluent contenant une solution saline tamponnée au phosphate. Conservateur : agent antimicrobien. • Autres réactifs ARCHITECT i Pre-Trigger Solution • Solution de préactivation contenant 1,32 % (m/v) d'eau oxygénée. ARCHITECT i Trigger Solution Solution d'activation contenant de l'hydroxyde • de sodium 0,35 N. ARCHITECT i Wash Buffer REMARQUE : La taille du flacon et le volume varient en fonction de la commande. • Tampon de lavage contenant une solution saline tamponnée au phosphate. Conservateurs : agents antimicrobiens. L'ARCHITECT AFP Reagent Kit doit être conservé entre 2 et 8 °C et peut être utilisé immédiatement après sa sortie du réfrigérateur (2 à 8 °C). Les réactifs sont stables jusqu'à leur date d'expiration s'ils sont conservés et manipulés selon les indications du fabricant. L'ARCHITECT AFP Reagent Kit peut être conservé à bord de l'ARCHITECT i System pendant 30 jours au maximum. Au-delà de ce délai, le kit de réactifs doit être jeté. Pour de plus amples informations sur le suivi de la stabilité des réactifs à bord de l'analyseur, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Les réactifs peuvent être conservés à l'intérieur ou à l'extérieur de l'ARCHITECT i System. Si les réactifs sont retirés de l'analyseur, les conserver entre 2 et 8 °C (munis de septums et de bouchons de remplacement) en position verticale. Pour les réactifs conservés à l'extérieur de l'analyseur, il est recommandé de les laisser dans leurs portoirs et emballages d'origine afin de les maintenir dans une position verticale. Si le flacon de microparticules (muni d'un septum) ne reste pas dans une position verticale pendant sa conservation au réfrigérateur à l'extérieur de l'analyseur, le kit de réactifs doit être jeté. Une fois que les réactifs ont été retirés du système, il convient d’effectuer un scan des codes-barres des réactifs afin d’actualiser leur temps de stabilité dans l’appareil. Indications d'altération des réactifs Un contrôle dont la valeur se situe en dehors des limites spécifiées peut indiquer une altération des réactifs ou des erreurs de technique. Les résultats des échantillons analysés dans la même série peuvent ne pas être valides et nécessiter une réanalyse. Une recalibration du dosage peut être nécessaire. Pour de plus amples informations sur le dépannage, se référer au Chapitre 10 du Manuel Technique ARCHITECT. MISES EN GARDE ET PRECAUTIONS • • Pour diagnostic in vitro Suivre scrupuleusement les instructions de cette notice. La fiabilité des résultats du dosage ne peut pas être garantie si ces instructions ne sont pas strictement respectées. FONCTIONNEMENT DE L'APPAREIL Mesures de sécurité • • ATTENTION : Ce produit nécessite la manipulation d'échantillons humains. Il est recommandé de considérer tous les produits d'origine humaine comme potentiellement infectieux et de les manipuler selon les règles "OSHA Standard on Bloodborne Pathogens".40 Les produits contenant ou susceptibles de contenir des agents infectieux doivent être manipulés selon les règles de biosécurité de niveau 241 ou autres règles de biosécurité en vigueur42,43. • • 3 Avant d'effectuer le dosage, l'ARCHITECT AFP assay file doit être installé sur l'ARCHITECT i System à partir de l'ARCHITECT i Assay CD-ROM version 24.0 ou supérieure. Pour de plus amples informations concernant l'installation du fichier de dosage, la visualisation et la modification des paramètres de dosage, se référer au Chapitre 2 du Manuel Technique ARCHITECT. Pour de plus amples informations sur l'impression des paramètres de dosage, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Pour une explication détaillée du fonctionnement de l'analyseur, se référer au Manuel Technique ARCHITECT. • • L’unité de résultat par défaut du dosage ARCHITECT AFP est le ng/ml. Il est possible de sélectionner l'unité de résultat alternative UI/ml pour le rendu des résultats en réglant le paramètre de dosage "Unités de concentration résultat" sur "IU/mL". Le facteur de conversion utilisé par le système est de 0,83. • PRELEVEMENT ET PREPARATION DES ECHANTILLONS POUR L'ANALYSE • • • • • • • • • • • • • Lorsqu'ils sont expédiés, ces échantillons doivent être conditionnés et étiquetés conformément à la législation régissant le transport des échantillons cliniques et des substances infectieuses. Les échantillons peuvent être expédiés sur de la glace ou de la carboglace. Avant l'expédition, il est recommandé de séparer les échantillons du caillot, du séparateur de sérum ou des globules rouges. Avant l'analyse, il faut homogénéiser les ARCHITECT AFP Calibrators et Controls en les retournant délicatement. PROCEDURE Le dosage ARCHITECT AFP peut être effectué sur du sérum humain (y compris le sérum prélevé sur des tubes séparateurs de sérum), du plasma prélevé dans des tubes en verre ou en plastique (sur héparinate de sodium, héparinate de lithium ou EDTA) ou sur des échantillons de liquide amniotique. Aucun autre anticoagulant n'a été validé pour l'utilisation avec le dosage ARCHITECT AFP. Suivre les instructions du fabricant de tubes relatives à l'utilisation des tubes de prélèvement de sérum ou de plasma. Lors de l'évaluation de séries d'échantillons, il est recommandé d'utiliser le même type d'échantillons pendant toute l'étude. Le liquide amniotique doit être recueilli de manière aseptique, avec les précautions appropriées concernant la sécurité de la mère et du fœtus, par un personnel correctement formé. Il faut rechercher la présence de cellules sanguines fœtales par la technique de Kleihauer-Betke et/ou d'hémoglobine fœtale par électrophorèse, immunoélectrophorèse ou d'autres techniques, au cas où l'échantillon serait visiblement contaminé par du sang. Les échantillons de liquide amniotique contaminés par du sang fœtal peuvent présenter des concentrations anormalement élevées en AFP, ce qui peut conduire à une mauvaise interprétation des résultats du test. L'ARCHITECT i System n'est pas configuré pour détecter le type d'échantillon utilisé pour le dosage. Il revient par conséquent à l'utilisateur de vérifier les types d'échantillons utilisés dans le dosage ARCHITECT AFP. Les échantillons de sérum ou de plasma doivent être recueillis de manière aseptique pour éviter l'hémolyse. Dans le cas d'une analyse de sérum ou de plasma maternel, il faut prélever l'échantillon de sang avant d'effectuer une amniocentèse. Il a été démontré que les taux d'AFP dans le sérum ou le plasma maternel pouvaient augmenter après une amniocentèse.44 Manipuler les échantillons de patients avec précaution afin d'éviter toute contamination croisée. Il est recommandé d'utiliser des pipettes ou des embouts de pipettes à usage unique. Ne pas utiliser d'échantillons fortement hémolysés. Pour obtenir des résultats optimaux, vérifier l'absence de bulles dans tous les échantillons. Si des bulles sont présentes, les éliminer à l'aide d'un bâtonnet avant l'analyse. Utiliser un bâtonnet neuf pour chaque échantillon afin d'éviter toute contamination croisée. Pour les échantillons de sérum, s'assurer que le caillot s'est complètement formé avant de les centrifuger. Certains échantillons, en particulier ceux provenant de patients sous traitement anticoagulant ou thrombolytique, peuvent présenter des temps de coagulation élevés. Si l'échantillon est centrifugé avant la formation complète du caillot, la présence de fibrine peut entraîner l'obtention de résultats erronés. Si le dosage est effectué plus de 24 heures après le prélèvement, séparer le sérum ou le plasma du caillot, du séparateur de sérum ou des globules rouges. Les échantillons peuvent être conservés au maximum pendant 7 jours entre 2 et 8 °C avant d'être analysés. 45 Si le dosage est effectué plus de 7 jours après le prélèvement, l'échantillon devra être conservé congelé à une température inférieure ou égale à -20 °C.50 Pour obtenir des résultats optimaux, les échantillons ne doivent pas contenir de fibrine, ni de globules rouges ou autres particules en suspension. Afin de garantir des résultats cohérents, il faut centrifuger les échantillons contenant de la fibrine, des globules rouges ou des particules en suspension avant leur emploi. Eviter les cycles de congélation / décongélation multiples. Après leur décongélation, les échantillons doivent être homogénéisés AVEC SOIN par passage au Vortex. Les échantillons décongelés contenant des globules rouges ou des particules en suspension ainsi que les échantillons d'apparence trouble doivent être centrifugés avant emploi afin de garantir des résultats cohérents. Ne pas utiliser d'échantillons présentant une contamination microbienne évidente. Matériel fourni : • 7K67 ARCHITECT AFP Reagent Kit Matériel nécessaire mais non fourni : • Analyseur ARCHITECT i System • ARCHITECT i Assay CD-ROM, version 24.0 ou supérieure • 7K67-02 ARCHITECT i AFP Calibrators • 7D82-50 ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • ARCHITECT i • Pipettes ou embouts de pipette (facultatif) pour la distribution des volumes spécifiés dans l'écran Demande de patient ou Demande de contrôle. • Pour de plus amples informations sur le matériel requis pour les procédures de maintenance, se référer au Chapitre 9 du Manuel Technique ARCHITECT. Matériel disponible mais non fourni : • 7K67-12 ARCHITECT AFP Controls Procédure du dosage • Avant de charger l'ARCHITECT AFP Reagent Kit sur l'analyseur pour la première fois, le flacon de microparticules doit être homogénéisé afin de remettre en suspension les microparticules qui se sont déposées pendant le transport : • Retourner le flacon de microparticules 30 fois. • Examiner le flacon pour s'assurer que les microparticules sont remises en suspension. Si des microparticules restent encore collées au flacon, continuer à retourner ce dernier jusqu'à ce qu'elles soient complètement remises en suspension. • Une fois les microparticules remises en suspension, retirer et jeter le bouchon. Retirer un septum de la pochette en portant des gants propres. Placer soigneusement le septum dans l'ouverture du flacon. • Si les microparticules ne sont pas remises en suspension, NE PAS LES UTILISER. Contacter le Service Clients Abbott. • Programmer les analyses. • Charger l'ARCHITECT AFP Reagent Kit sur l'ARCHITECT i System. Vérifier que tous les réactifs requis sont présents. S'assurer que chaque flacon de réactif est recouvert d'un septum. • Le volume minimum requis dans le godet-échantillon est calculé par le système et imprimé sur le rapport Liste des demandes. Ne pas prélever plus de 10 répliques à partir du même godet-échantillon. Afin de minimiser les pertes par évaporation, vérifier que le volume d'échantillon adéquat est présent dans le godet-échantillon avant d'effectuer le dosage. • Echantillon prioritaire : 100 μl pour le premier dosage ARCHITECT AFP, plus 50 μl pour chaque dosage AFP supplémentaire effectué sur le même godet-échantillon. • Echantillon analysé dans les 3 heures qui suivent le chargement dans l'appareil : 150 μl pour le premier dosage ARCHITECT AFP, plus 50 μl pour chaque dosage AFP supplémentaire effectué sur le même godet-échantillon. • Echantillon maintenu plus de 3 heures dans l'analyseur : un volume supplémentaire est requis. Pour de plus amples informations sur l'évaporation et les volumes des échantillons, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. • En cas d'utilisation de tubes primaires ou aliquots, utiliser la jauge échantillon afin de s'assurer que le volume d'échantillon patient est suffisant. 4 • • • • • • Pour obtenir les volumes requis des ARCHITECT AFP Calibrators et Controls, retourner les flacons, les tenir à la verticale et distribuer 4 gouttes de chacun des calibrateurs ou des contrôles dans les godets-échantillons respectifs. Charger les échantillons • Pour de plus amples informations sur le chargement des échantillons, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Appuyer sur la touche LANCER. L'ARCHITECT i System effectue les opérations suivantes : • Déplace le portoir échantillons au point d'aspiration • Charge une cupule réactionnelle (CR) dans la couronne réactionnelle • Aspire et distribue l'échantillon dans la CR • Déplace la CR d'une position et distribue les microparticules dans la CR • Homogénéise, incube et lave le mélange réactionnel • Ajoute le conjugué dans la CR • Homogénéise, incube et lave le mélange réactionnel • Ajoute les solutions de préactivation et d'activation • Mesure l'émission chimiluminescente pour déterminer la quantité d'AFP présente dans l'échantillon • Evacue le contenu de la CR dans la poubelle pour déchets liquides et décharge la CR dans la poubelle pour déchets solides • Calcule le résultat Pour de plus amples informations sur les demandes d'analyse des échantillons de patients, des calibrateurs et des contrôles, ainsi que sur les procédures générales de fonctionnement, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Pour obtenir une performance optimale de l'analyseur, il est important d'effectuer les procédures de maintenance de routine décrites au Chapitre 9 du Manuel Technique ARCHITECT. Si votre laboratoire requiert une maintenance plus fréquente, se conformer à ces exigences. • Lorsque la calibration du dosage ARCHITECT AFP a été acceptée et mémorisée, tous les échantillons qui suivent peuvent être analysés sans effectuer de nouvelle calibration, sauf si : • un kit de réactifs portant un nouveau numéro de lot est utilisé. • les valeurs des contrôles se situent hors des limites spécifiées Pour de plus amples informations sur la procédure de calibration d'un dosage, se référer au Chapitre 6 du Manuel Technique ARCHITECT. PROCEDURES DU CONTROLE DE QUALITE Le contrôle de qualité recommandé pour le dosage ARCHITECT AFP consiste à analyser un échantillon de chaque niveau de contrôles une fois toutes les 24 heures, chaque jour d'utilisation. Si les procédures du contrôle de qualité de votre laboratoire exigent une utilisation plus fréquente des contrôles pour vérifier les résultats d'analyse, se conformer à ces exigences. S'assurer que les valeurs des contrôles du dosage se situent dans les limites de concentration spécifiées dans la notice des contrôles. Vérification des performances du dosage Pour de plus amples informations sur les protocoles de vérification des performances du dosage mentionnées dans la notice, se référer à l'Annexe B du Manuel Technique ARCHITECT. Le dosage ARCHITECT AFP appartient au groupe 1. RESULTATS Le dosage ARCHITECT AFP utilise une méthode de traitement des données point par point pour créer une courbe de calibration. Autres unités de résultat • L’unité de résultat par défaut du dosage ARCHITECT AFP est le ng/ml. En cas de sélection de l'unité alternative UI/ml, le facteur de conversion utilisé par le système est de 0,83. • Formule de conversion : (Concentration en ng/ml) x (0,83) = UI/ml Annotations • La rubrique "Annotations" peut contenir des informations sur certains résultats. Une description des annotations qui peuvent apparaître dans cette rubrique est fournie au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Procédures de dilution des échantillons • Les échantillons dont la concentration en AFP est supérieure à 350 ng/ ml sont annotés “ > 350.00” et peuvent être dilués à l'aide du protocole de dilution automatique ou du protocole de dilution manuelle. • Lorsque le protocole de dilution automatique est choisi, le sérum ou le plasma DOIVENT ETRE UNIQUEMENT DILUES AU 1/16,7 et le liquide amniotique DOIT ETRE UNIQUEMENT DILUE AU 1/166,7. Le système calcule automatiquement la concentration de l'échantillon avant la dilution et enregistre le résultat. • Les dilutions autres que les dilutions automatiques au 1/16,7 du sérum/plasma ou du liquide amniotique au 1/166,7 doivent être effectuées manuellement. • Pour une dilution au 1/20, ajouter 50 μl d'échantillon de patient à 950 μl d'ARCHITECT i Multi-Assay Manual Diluent (7D82-50). • REMARQUE : Les dilutions manuelles doivent se faire à l'aide de l'ARCHITECT i Multi-Assay Manual Diluent (7D82-50) L'ARCHITECT AFP Manual Diluent ne peut pas être utilisé avec ce dosage. • Pour une dilution au 1/101, ajouter 10 μl d'échantillon de patient à 1 ml d'ARCHITECT i Multi-Assay Manual Diluent. • Saisir le facteur de dilution dans l'écran Demande de patient ou Demande de contrôle. Tous les dosages sélectionnés pour cette demande seront dilués. Le système utilisera ce facteur de dilution afin de calculer automatiquement la concentration de l'échantillon avant la dilution et d'enregistrer le résultat. Le résultat (avant l'application du facteur de dilution) doit être supérieur à 15 ng/ml. • Pour de plus amples informations sur les demandes de dilution, se référer au Chapitre 5 du Manuel Technique ARCHITECT. Plage de mesure • La plage de mesure analytique du dosage ARCHITECT AFP est comprise entre 0,4 et 350 ng/ml. Pour les échantillons de patients dont la valeur du dosage AFP est supérieure à 350 ng/ml, se référer au paragraphe Procédures de dilution des échantillons de cette notice. LIMITES DE LA PROCEDURE • • • Calibration • Pour effectuer une calibration ARCHITECT AFP, analyser les calibrateurs 1 et 2 en double. Un seul échantillon de chacun des niveaux des AFP controls doit être analysé pour évaluer la calibration du dosage. S'assurer que les valeurs des contrôles du dosage se situent dans les limites de concentration spécifiées dans la notice des contrôles. Les calibrateurs doivent être chargés en position prioritaire. • Plage de calibration : 0 à 350 ng/ml. 5 Les échantillons provenant de patients auxquels ont été administrées des préparations d'anticorps monoclonaux de souris à des fins diagnostiques ou thérapeutiques peuvent contenir des anticorps humains anti-souris (HAMA). De tels échantillons peuvent donner des résultats faussement élevés ou abaissés lorsqu'ils sont analysés avec des kits de dosage qui utilisent des anticorps monoclonaux de souris.46,47 Les ARCHITECT AFP reagents contiennent un composant qui réduit l'effet des échantillons réactifs aux HAMA. Des informations cliniques ou diagnostiques supplémentaires peuvent être requises pour déterminer l'état du patient. Des anticorps hétérophiles présents dans le sérum humain peuvent réagir avec les immunoglobulines des réactifs, interférant avec les dosages immunologiques in vitro.48 Les patients exposés de façon routinière aux animaux ou à des produits contenant du sérum d'animaux peuvent être sujets à cette interférence et fournir de ce fait des valeurs anormales. Pour établir un diagnostic, de plus amples informations peuvent être nécessaires. Le dosage ARCHITECT AFP apporte une aide précieuse dans le suivi du traitement des patients présentant un cancer des testicules nonséminomateux, lorsqu'il est utilisé en complément des informations cliniques et des autres méthodes de diagnostic. Une augmentation des concentrations sériques d'AFP a également été observée dans l'ataxie télangiectasique, la tyrosinémie héréditaire, le cancer hépatocellulaire primaire, le tératocarcinome, les cancers du tube digestif avec ou sans métastases hépatiques et dans les affections hépatiques bénignes, telles que l'hépatite virale aiguë, l'hépatite chronique active et la cirrhose. • • • • Les mesures de l'AFP dans le sérum ou le plasma maternel NE PEUVENT PAS être valides après l'amniocentèse ; pour cette raison, les échantillons de sérum ou de plasma maternel DEVRONT être prélevés AVANT l'amniocentèse. Se référer à la partie PRELEVEMENT ET PREPARATION DES ECHANTILLONS POUR L'ANALYSE de cette notice pour de plus amples informations. La fiabilité de l'évaluation des concentrations de MSAFP lors des analyses prénatales dépend de la détermination exacte de l'âge du fœtus. Une surestimation de l'âge du fœtus peut conduire à une mauvaise interprétation des valeurs de MSAFP trouvées et de ce fait à une sous-estimation des risques d'AFTN. Une sous-estimation de cet âge peut également conduire à une mauvaise interprétation de ces valeurs, c'est-à-dire à une surestimation des risques d'AFTN qui peut mener à pratiquer d'autres analyses inutiles. Lorsque l'âge du fœtus n'est pas certain, un examen fiable par échographie est important. Bien que des taux élevés de MSAFP indiquent un risque accru d'AFTN, ils ne constituent pas un diagnostic. Une augmentation des concentrations en AFP sérique a été observée dans certains cancers et dans certaines affections non-malignes décrites plus haut et, de ce fait, peut être un indicateur de l'état de la mère. D'autres affections comprenant les malformations du placenta et l'anomalie de fermeture du tube neural du fœtus, telles que l'hernie ombilicale, le gastroschisis (défauts de la paroi ventrale), les anomalies rénales, les risques d'avortement ou l'avortement imminent et la mort du fœtus, sont associées à des concentrations de MSAFP élevées ; ces concentrations élevées ont également été associées à des naissances prématurées, des poids faibles à la naissance et ont été observées dans des cas de naissances multiples. Il arrive rarement que des grossesses uniques, viables et normales conduisent à des concentrations élevées en MSAFP. Les analyses de confirmation, telles que l'amniocentèse pour l'évaluation des teneurs d'AFAFP, l'échographie de haute résolution ou l'amniographie sont les procédés de base dans le cadre des analyses de l'AFP. Le dosage ARCHITECT AFP ne doit pas être utilisé comme méthode de dépistage du cancer. Valeurs d'AFP dans le sérum maternel et le liquide amniotique Il est important que chaque laboratoire définisse ses propres plages de référence pour les concentrations d'AFP dans le sérum maternel et le liquide amniotique. Du fait des écarts pouvant exister dans les résultats d'analyse entre les différents laboratoires, il a été démontré qu'il était utile d'exprimer les concentrations en AFP par rapport à la valeur médiane ou aux multiples de la médiane (MoM)*, pour chaque semaine de grossesse. Chaque laboratoire devrait essayer de rassembler au moins 100 résultats pour chaque semaine de grossesse afin de déterminer des valeurs médianes et utiliser ensuite une valeur seuil (MoM) qui satisfasse au mieux aux exigences de sensibilité et de spécificité du laboratoire en question. *MoM = Valeurs d'AFP dans le sérum maternel Les concentrations d'AFP dans le sérum maternel lors de 749 grossesses uniques normales, exprimées sous forme de valeurs médianes régressées et multiples des médianes régressées (MoM), trouvées dans les périodes de grossesse comprises entre 15 et 21 semaines, sont indiquées dans le tableau ci-après. En raison de variations dues aux différences locales de population, il est important que chaque laboratoire définisse ses propres plages de référence. Concentrations d'AFP dans le sérum maternel trouvées par le dosage ARCHITECT AFP Résultats des évaluations cliniques Multiples des Semaine Médianes de Nombre régressées* médianes régressées (ng/ml) grossesse d'échantillons (ng/ml) 2,0 2,5 3,0 15 135 35,5 71,1 88,8 106,6 16 165 40,3 80,6 100,8 120,9 17 104 45,7 91,4 114,3 137,2 18 83 51,9 103,7 129,7 155,6 19 93 58,8 117,7 147,1 176,5 20 94 66,7 133,5 166,8 200,2 21 75 75,7 151,4 189,3 227,1 VALEURS ATTENDUES La distribution des valeurs du dosage ARCHITECT AFP déterminées pour 805 échantillons provenant de sujets sains et de patients atteints d'affections non-malignes ou malignes est représentée dans le tableau ci-dessous. Groupe/ Catégorie Sujets sains Distribution des valeurs ARCHITECT AFP Distribution des valeurs (%) Nombre 0 >8,04 >15 >20 >100 de - 8,04 - 15,00 - 20 - 100 - 350 > 350 sujets (ng/ml) (ng/ml) (ng/ml) (ng/ml) (ng/ml) (ng/ml) 400 97,3 2,5 0,3 0,0 0,0 0,0 Affections non malignes Cirrhose 87 92,0 Hépatite 55 87,3 Pancréatite 28 100,0 Affection 23 91,3 génito-urinaire Affections malignes Gastro82 intestinales Hépato49 cellulaires primaires Pancréatiques 24 testiculaires : Séminomateux 27 testiculaires : Non 30 séminomateux 5,7 12,7 0,0 8,7 0,0 0,0 0,0 0,0 2,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 91,5 7,3 0,0 0,0 0,0 1,2 34,7 10,2 2,0 8,2 10,2 34,7 91,7 0,0 0,0 4,2 0,0 4,2 92,6 3,7 0,0 0,0 0,0 3,7 50,0 10,0 3,3 13,3 10,0 13,3 Concentration des échantillons en AFP Concentration médiane en AFP pour la semaine de grossesse correspondante Valeurs d'AFP dans le liquide amniotique Les concentrations d'AFP dans le liquide amniotique lors de 707 grossesses uniques normales, exprimées par rapport aux valeurs médianes régressées et multiples des médianes régressées (MoM), trouvées dans les périodes de grossesse comprises entre 15 et 21 semaines, sont indiquées dans le tableau ci-après. Ces résultats peuvent servir de guide jusqu'à ce que le laboratoire ait rassemblé un nombre suffisant de données par lui-même. Concentrations d'AFP dans le liquide amniotique trouvées par le dosage ARCHITECT AFP Résultats des évaluations cliniques Multiples des Semaine Médianes de Nombre régressées* médianes régressées (μg/ml) grossesse d'échantillons (μg/ml) 2,0 2,5 3,0 15 75 18,7 37,5 46,8 56,2 16 185 15,7 31,3 39,1 47,0 17 179 13,1 26,1 32,7 39,2 18 122 10,9 21,8 27,3 32,8 19 54 9,1 18,2 22,8 27,4 20 49 7,6 15,2 19,0 22,9 21 43 6,4 12,7 15,9 19,1 Les valeurs d'alpha-fœtoprotéine ont été définies en fonction des semaines de grossesse COMPLETES. Par exemple, un échantillon prélevé au 132ème jour gestationnel (6ème jour de la 18ème semaine) appartient à la 18ème semaine car la durée de la grossesse est de 18 semaines, plus 6 jours. * Les valeurs de la médiane régressée ont été déterminées à l'aide d'une analyse de régression logarithmique linéaire pondérée.18 Lors de cette étude portant sur des sujets sains, 95 % des 400 sujets sains présentaient des valeurs comprises entre 1,09 et 8,04 ng/ml. Il est recommandé à chaque laboratoire d'établir sa propre plage de référence pour les différentes populations dont il s'occupe. 6 CARACTERISTIQUES SPECIFIQUES Situations cliniques potentiellement interférentes Le dosage ARCHITECT AFP a été conçu de manière à minimiser l'interférence des anticorps HAMA. Une étude interne a été menée en surchargeant des échantillons contenant 169,56 ng/ml d'AFP et présentant une interférence < 6 % de 25 μg/ml d'anticorps humains anti-souris purifiés (HAMA-PUR) fabriqués par Bioreclamation, Inc. (Hicksville, NY). Reproductibilité Le dosage ARCHITECT AFP a été conçu de manière à fournir une reproductibilité ≤ 10 % (CV total). La reproductibilité du dosage a été déterminée selon la méthode décrite dans le protocole EP5-A249 du Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). 7 échantillons consistant en 4 panels à base de sérum et en 3 AFP Controls ont été analysés 2 fois par jour pendant 20 jours (n=320). Les échantillons ont été analysés en double, sur 2 analyseurs, à l'aide de 2 lots de réactifs et une seule calibration pour chaque lot de réactifs et une combinaison d'analyseurs. Les résultats de cette étude sont résumés dans le tableau suivant. Contamination Aucune contamination décelable (inférieure à 5 PPM) n'a été observée lors de l'analyse d'un échantillon contenant 91 080 ng/ml d'AFP. Dans le cas où les dosages AFP sont réalisés sur le même module comme un nombre important de dosages ARCHITECT B12, la contamination de l'analyte peut se produire, provoquant l'obtention de résultats faussement élevés. Remarque : Pour maintenir une performance optimale du système et réduire le potentiel de contamination résultant de la formation de protéines sur l'aiguille de pipetage de l'échantillon, il est important de suivre les procédures de maintenance de routine définies au Chapitre 9 du Manuel Technique ARCHITECT ; pour de plus amples informations relatives au dépannage, se référer au Chapitre 10 du Manuel Technique ARCHITECT. Reproductibilité (20 jours CLSI) Reproductibilité globale Contrôles de IntraInterInterreproducsérie séries jours Totala tibilité/ Nb. Moyenne Echantillons total globale CV CV CV CV de panel Rép. (ng/ml) E.T. (%) E.T. (%) E.T. (%) E.T. (%) Contrôle 320 20,09 0,561 2,8 0,301 1,5 0,344 1,7 0,724 3,6 bas Contrôle 320 79,22 2,259 2,9 1,113 1,4 1,004 1,3 2,711 3,4 moyen Contrôle 320 174,20 5,012 2,9 1,634 0,9 3,528 2,0 6,343 3,6 haut Panel 1 320 13,21 0,252 1,9 0,155 1,2 0,078 0,6 0,306 2,3 Panel 2 320 61,28 1,872 3,1 0,000 0,0 0,826 1,3 2,046 3,3 Panel 3 320 120,13 4,686 3,9 1,090 0,9 3,125 2,6 5,737 4,8 Panel 4 320 196,26 7,009 3,6 1,682 0,9 5,307 2,7 8,951 4,6 a La variabilité totale inclut les composantes de la variance intra-série, inter-séries et inter-jours. Des données indicatives de la performance du dosage sont indiquées. Les résultats obtenus peuvent varier d'un laboratoire à l'autre. Effet crochet L'effet crochet est un phénomène par lequel des échantillons de très haute concentration peuvent avoir des résultats compris dans le domaine de mesure du dosage. Pour le dosage ARCHITECT AFP, aucun effet crochet n'a été observé lors de l'analyse d'échantillons contenant jusqu'à 1 900 000 ng/ml d'AFP. Récupération OMS Le dosage ARCHITECT AFP a été conçu de manière à présenter une plage de récupération comprise entre 90 et 110 % aux concentrations cibles des contrôles à l'aide du Premier Standard International 72/225 de l'Organisation Mondiale de la Santé (OMS) pour l'AFP. Le Premier Standard International 72/225 de l'Organisation Mondiale de la Santé (OMS) pour l'AFP a été préparé dans du sérum masculin normal à 3 niveaux cibles de l'échantillon OMS (20 ng/ml, 80 ng/ml et 175 ng/ml) à l'aide du facteur de conversion de 0,83 Unités Internationales par nanogramme d'AFP et analysés sur 4 analyseurs différents. Le pourcentage de récupération moyenne pour chaque concentration cible ainsi que le pourcentage de récupération moyenne global parmi toutes les concentrations en AFP OMS de cette étude figurent dans le tableau suivant : Sensibilité analytique La sensibilité du dosage ARCHITECT AFP a été déterminée comme étant inférieure à 0,4 ng/ml. La sensibilité est définie comme étant égale à la concentration à 2 écarts-types au-dessus de la valeur URL moyenne du ARCHITECT AFP Calibrator 1 (0 ng/ml), ce qui représente la plus faible concentration mesurable en AFP pouvant être distinguée de zéro. Spécificité La spécificité du dosage ARCHITECT AFP a été conçue de manière à ce que la réactivité croisée soit ≤ 10 % lors de l'analyse avec les composés interférants énumérés dans le tableau ci-après. La spécificité du dosage ARCHITECT AFP a été déterminée en analysant des échantillons de sérum contenant les composés indiqués ci-dessous. Ces composés ont montré moins de 10 % d'interférence dans le dosage ARCHITECT AFP aux concentrations indiquées. Composé analysé Bilirubine Hémoglobine Protéines totales Triglycérides Paracétamol Albumine Alpha-1-glycoprotéine acide Concentration analysée 22 mg/dl 550 mg/dl 1,7 à 12,4 g/dl 3 960 mg/dl 6,5 mg/ml 160 mg/ml 2,0 mg/ml Alpha-1-antitrypsine Alpha-globulines Aspirine Bléomycine Céruloplasmine Cisplatine Gonadotrophine chorionique humaine Lactogène placentaire Prolactine Transferrine Vinblastine Vitamines maternelles 5 mg/ml 32 mg/ml 1 mg/ml 1 000 μU/ml 2,5 mg/ml 1 000 μg/ml 1 000 UI/ml Récupération OMS du dosage ARCHITECT AFP Echantillon présentant de faibles concentrations (20 ng/ml) Echantillon présentant des concentrations moyennes (80 ng/ml) Echantillon présentant des concentrations élevées (175 ng/ml) Récupération moyenne (%) 104,04 % 101,02 % 100,94 % Récupération globale (%) 102,00 % BIBLIOGRAPHIE 1. Bergstrand CG, Czar B. Demonstration of a New Protein Fraction in Serum from the Human Fetus. Scand J Clin Lab Invest 1956;8:174. 2. Ruoslahti E, Engvall E, Kessler MJ. 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