Prévention des infections sur cathéter veineux central Table des

Prévention des infections
sur
cathéter veineux central
Forum avril 2008
C. Petignat, CDC
I. Federli, Inf. HPCI
Table des matières
•
•
•
•
•
•
Risque infectieux
Choix du cathéter
Pose du cathéter
Changement du cathéter
Entretien du site d’insertion
Gestion des solutés et des lignes
1
Risque infectieux
Infections sur cathéter
• Bactériémie sur cathéter
– Bactériémie primaire (sans foyer clinique décelable) associée à la
mise en évidence du même microorganisme au niveau de
l’extrémité du cathéter.
– Septicémie sur cathéter si hémoculture prélevée par le cathéter
présente une concentration de microorganismes 5 à 10x supérieure
par rapport à une hémoculture prélevée en périphérie.
• Infection de cathéter
– Signes d’inflammation locale avec douleur, rougeur et chaleur au
site d’insertion, éventuellement présence de pus.
– L’extrémité du cathéter présente un nombre de microorganismes
supérieur à un seuil défini.
• Thrombophlébite septique
– Bactériémie primaire avec mise en évidence d’une thrombose.
2
Infections sur cathéter
• Autres infections
– Cathéter tunnelisé: infection du tunnel
– Cathéter implanté: infection du site d’implantation
• Complications de la bactériémie
– Endocardite
– Infection métastatique
• Abcès pulmonaire, abcès cérébral, ostéomyélite, endophtalmie
Bactériémies sur cathéter
• Incidence
–
–
–
–
Type de cathéter.
Fréquence des manipulations sur le cathéter.
Maladie sous-jacente.
Soins intensifs (bactériémies primaires 15%)
• Pose en urgence, nombre de jours cathéter, patients colonisés
par des germes hospitaliers, manipulations multiples du
cathéter
– Administration de solutés, médicaments, produits
sanguins.
– Mesures hémodynamiques, prélèvements.
– Hémodialyse
• Cathéter comme facteur de risque principal de bactériémie: 7x
/ fistule artério-veineuse
3
Conséquences des bactériémies
• Soins intensifs USA
– Journées cathéter
• 15 millions
– Bactériémies sur cathéter
• 5.3 / 1000 journées cathéter
• 80.000 / année
– Coût par infection
• 35.000 à 56.000 dollars US
– Coût annuel
• 296 millions à 2.3 billions dollars US
– Augmentation de la mortalité
• 0 à 35% selon les études
– Augmentation de la durée de séjour
• 5 à 20 jours selon les études
Episodes noso sur cathéter aux SI
CHUV
2003
2004
2005
2006
2007
Episodes /
1000
admissions
11.3
8.8
11.7
10.2
9.7
Episodes /
1000 jours
hospit.
2.8
2.2
2.8
2.4
2.2
Episodes /
1000 jours
cathéter
3.2
2.3
3.1
2.6
2.3
4
Agents infectieux
1986 – 1989
%
1992 – 1999
%
Staphylocoques coagulase-négatifs
27
37
Staphylococcus aureus
16
13
Enterococcus spp
8
13
Bacilles gram-négatifs
19
14
Escherichia coli
6
2
Enterobacter
5
5
Klebsiella pneumoniae
4
3
Pseudomonas aeruginosa
4
4
Candida spp
8
8
Agents infectieux
• Staphylocoques coagulase négatifs
– Adhèrent aux surfaces en polymère
• Staphylococcus aureus
– Adhère aux protéines de l’hôte présentes sur les cathéters
• ex: fibronectin
5
Question 1: pathogenèse
1. La migration de la flore cutanée du site d’insertion
vers l’extrémité distale du cathéter par voie
extraluminale est extrêmement rare.
2. La contamination de l’extrémité proximale du
cathéter contribue substantiellement à la
colonisation intraluminale des cathéters de longue
durée.
3. La colonisation des cathéters par voie hématogène à
partir d’un site infecté est extrêmement fréquente.
4. La contamination des solutés est une cause
importante de bactériémie.
Pathogenèse
• Migration de la flore cutanée du site d’insertion vers l’extrémité
distale du cathéter par voie extraluminale.
– Cathéter de courte durée.
• Contamination de l’extrémité proximale du cathéter avec
colonisation intraluminale fortement favorisée par les
manipulations itératives (Sitges-Serra, Linares, Raad)
– Cathéter de longue durée.
• Colonisation par voie hématogène
– Occasionnelle: 5 – 10% des infections de cathéter.
• Bactériémie sur contamination du soluté infusé
– Rare.
6
Réponse 1: pathogenèse
1. La migration de la flore cutanée du site d’insertion
vers l’extrémité distale du cathéter par voie
extraluminale est extrêmement rare.
2. La contamination de l’extrémité proximale du
cathéter contribue substantiellement à la
colonisation intraluminale des cathéters de longue
durée.
3. La colonisation des cathéters par voie hématogène à
partir d’un site infecté est extrêmement fréquente.
4. La contamination des solutés est une cause
importante de bactériémie.
Choix du cathéter
7
Types de cathéter
• Durée de vie
– Permanent, temporaire.
• Trajet
– Tunnelisé, non-tunnelisé.
• Autres caractéristiques
–
–
–
–
Présence ou absence de cuff (manchon).
Imprégné ou non imprégné d’héparine.
Imprégné ou non imprégné d’antibiotique ou d’antiseptique.
1 lumières, plusieurs lumières.
Question 2: choix du cathéter
1. L’utilisation de cathéters imprégnés d’antibiotiques
(minocycline-rifampicine) génère des résistances
bactériennes.
2. L’utilisation généralisée de cathéters imprégnés
d’antiseptiques (chlorhexidine-sulfadiazine) serait
trop coûteux.
3. Les cathéters imprégnés d’argent ont une faible
activité antimicrobienne.
4. Les cathéters imprégnés d’anticoagulant préviennent
efficacement les bactériémies.
8
Cathéters imprégnés
• Antibiotiques, antiseptiques
– Chlorhexidine / Sulfadiazine d’argent
• 1ère génération*: imprégnation extraluminale
– 2 méta-analyses (Mermel, Veenstra)
» Taux de bactériémies sur cathéter ↓
» Bénéfice au cours des 14 premiers jours (Maki)
• 2ème génération*: imprégnation intra et extraluminale
– 1 étude préliminaire (Bassetti)
» Activité anti-infectieuse prolongée
» Anaphylaxie rare
» Résistance?
• Coût ↑: cost effective aux SI, brûlés, patients neutropéniques
Cathéters imprégnés
• Antibiotiques, antiseptiques
– Minocycline / Rifampicine
• Imprégnation intra et extraluminale
– 1 étude multicentrique randomisée (Darouiche)
» Taux de bactériémies sur cathéter ↓ par rapport à *
» Bénéfice à partir du 6ème jour
» Pas d’évaluation après 30 jours
» Risque de résistances (staphylocoques?)
» Pas de comparaison avec *
» Effet lié à l’agent anti-infectieux ou à l’imprégnation
intra et extraluminale?
– Platinum / Argent
• Importante activité antimicrobienne des métaux ioniques.
• Pas d’étude.
9
Cathéters imprégnés
• Antibiotiques, antiseptiques
– Ions Ag
• Large spectre antimicrobien.
– In vitro, prolongation de l’activité anti-adhésive et anticolonisation pdt 1 mois.
– Première étude in vivo, réduction de la colonisation de 23
à 14% et les infections de 18,3 à 5.1%.
• Anticoagulants
– Chlorure de benzalkonium
• Activité anti-thrombotique et antibactérienne (Mermel, Pierce)
– Diminution de la colonisation sans démonstration d’une
efficacité clinique.
Cathéters imprégnés
• Conclusion
– Utilisation de cathéters imprégnés dans les unités avec taux
élevés d’infections de cathéter et de bactériémies sur
cathéter.
– Pas d’utilisation de cathéters imprégnés si cathéter de
longue durée.
10
Réponse 2: choix du cathéter
1. L’utilisation de cathéters imprégnés d’antibiotiques
(minocycline-rifampicine) génère des résistances
bactériennes.
2. L’utilisation généralisée de cathéters imprégnés
d’antiseptiques (chlorhexidine-sulfadiazine) serait
trop coûteux.
3. Les cathéters imprégnés d’argent ont une faible
activité antimicrobienne.
4. Les cathéters imprégnés d’anticoagulant préviennent
efficacement les bactériémies.
Cathéters imprégnés
• Avenir?
– Incorporation covalente d’héparine dans la matière du
cathéter
• Diminution du biofilm.
– Incorporation d’argent et de benzalkonium dans le
polyuréthane
• Action plus durable (25 j vs 14 j).
– Incorporation d’argent de platine et de micro-particules de
carbone sous la surface de polyuréthane
• Flux constant de ions Ag (iontophorèse oligodynamique) à
proximité du cathéter.
• Action prolongée (9 mois).
11
Cathéters imprégnés
• Avenir?
– Utilisation de courant positif à faible voltage
• Empêche la fixation des micro-organismes porteurs de charges
négatives.
– Développement de messagers (biologie moléculaire)
• Susceptibles de s’opposer à la formation du biofilm, comme par
exemple des anticorps bloquants l’adhésine du Staphylocoque.
Pose du cathéter
12
Question 3: pose du cathéter
1. La pose d’un cathéter central doit se faire strictement
au bloc opératoire.
2. Une dose de vancomycine administrée dans l’heure
qui précède la pose du cathéter prévient efficacement
l’apparition de bactériémies précoces.
3. Le site sous-clavier présente moins de risques
d’infections que le site jugulaire ou fémoral.
4. La Bétadine® solution standardisée est l’antiseptique
de choix pour l’antisepsie de la peau avant la pose et
lors de la réfection du pansement.
Asepsie
• Respect d’une asepsie de type chirurgicale
– Si possible dans salle séparée.
– Porte et fenêtres fermées, rideaux tirés, pas de mouvements
de personnes inutiles.
– Bonnet, casaque stérile, masque chirurgical, gants stériles,
champ large stérile.
• 2 études (Mermel, Raad)
– Réduit substantiellement le taux de bactériémies sur
cathéter.
13
Prophylaxie antibiotique
• Antibioprophylaxie orale ou systémique
– 3 études (McKee, Ranson, Ljungmann)
• Chez l’adulte: pas de réduction des bactériémies sur cathéter.
– 2 études (Kacica, Spafford)
• Chez les prématurés: Vancomycine permet de réduire
l’incidence des bactériémies sur cathéter mais pas la mortalité.
• Vancomycine comme facteur de risque pour l’acquisition de
VRE (entérocoque résistant à la vancomycine).
• Antibioprophylaxie nasale
– 1 étude en hémodialyse (Von Eiff)
• Portage nasal de S.aureus ↑ risque de colonisation du cathéter
Site
• Préférer la voie sous-clavière
– Avis d’expert.
– 1 étude randomisée (Merrer)
• Compare les risques infectieux entre le site sous-clavier et le
site fémoral
– Colonisation du cathéter: 4.5% versus 19.8%
– Bactériémies: 1.5% versus 4.4%
– Risque de thromboses: 1.9% versus 21.5%
– Thrombose complète: 0% versus 6%
– Autre étude (Timsit)
• Risque de thrombose
– 4x supérieur si site jugulaire / site sous-clavier
– Risque de thrombose et d’infection inférieur si site sousclavier / site jugulaire ou fémoral non tunnelisés
14
Site
• En hémodialyse, préférer la voie jugulaire ou
fémorale.
– Sous-clavière = risque de sténose.
• Tunnelliser les cathéters centraux jugulaires ou
fémoraux de longue durée.
Antisepsie de la peau
• Aux USA
– Pendant longtemps: povidone iodine 10%.
– Actuellement: teinture à base de chlorhexidine 2%.
• Pas d’étude sur l’efficacité des teintures à base de chlorhexidine 2% ni
1%.
• 2 études (Maki, Sheehan)
– Solution aqueuse à base de chlorhexidine 2% versus Povidone
iodine 10% ou alcool 70%
• Diminution significative du taux de bactériémies sur cathéter.
• 1 étude prospective randomisée chez l’adulte (Humar)
– Teinture à base de chlorhexidine 0.5% versus Povidone iodine 10%
• Pas plus efficace pour prévenir les bactériémies sur cathéter.
15
Antisepsie de la peau
Auteurs
Pts (N)
PVPI 10%
aqueuse
Chlorhex
aqueuse 2%
Maki
441
9.3%
2.3%**
Sheehan
346
7%
2%**
Legras
246
17%
--
12%
Mimoz
315
3.1%
--
1.2%**
Humar
242
4.6%
--
3.4%
1:*
2:**
Chlorhex
alcool.*1
Chlorhexidine alcoolique 0.25% ou 0.5%
Réduction significative
Pose du cathéter
• Conclusion
– Respecter des conditions d’asepsie de type chirurgicale.
– Ne pas administrer d’antibioprophylaxie avant l’insertion ou
pendant le temps de portage d’un cathéter intravasculaire
(sauf hémodialyse).
– Privilégier le site sous-clavier si cathéter non tunnelisé (sauf
hémodialyse).
– Théoriquement, préférer une solution aqueuse ou alcoolique
à base de chlorhexidine 2% pour l’antisepsie de la peau et
laisser sécher. Pas disponible en Suisse. Alternatives:
• Teinture à base de chlorhexidine >0.5%, teinture ou solution
aqueuse à base d’iode, alcool 70%.
16
Réponse 3: pose du cathéter
1. La pose d’un cathéter central doit se faire
strictement au bloc opératoire.
2. Une dose de vancomycine administrée dans l’heure
qui précède la pose du cathéter prévient
efficacement l’apparition de bactériémies précoces.
3. Le site sous-clavier présente moins de risques
d’infections que le site jugulaire ou fémoral.
4. La Bétadine® solution standardisée est
l’antiseptique de choix pour l’antisepsie de la peau
avant la pose et lors de la réfection du pansement.
Surveillance
• Relever l’identité de l’opérateur, la date et l’heure de la pose et
du retrait ainsi que la date de réfection du pansement.
• Contrôler quotidiennement le site d’accès vasculaire
visuellement ou par palpation à travers le pansement intacte
– En cas de douleur locale, fièvre ou autre manifestation suggérant
un problème local ou une bactériémie, retirer le pansement.
• Encourager le patient à signaler tout inconfort au niveau du site
d’insertion.
• Retirer au plus vite tout cathéter intravasculaire qui n’est plus
essentiel pour la prise en charge du patient.
• Procéder à une surveillance des bactériémies, principalement
aux soins intensifs.
17
Changement du cathéter
18
Question 4: chgt du cathéter
1. Remplacer le cathéter aux 7 jours afin de limiter
l’apparition de bactériémies liées à la colonisation
endoluminale.
2. Remplacer le cathéter à l’apparition d’un écoulement
purulent au site d’insertion.
3. Après retrait, cultiver systématiquement l’extrémité
distale du cathéter.
Changement du cathéter
• Ne pas remplacer les cathéters centraux de routine
– 2 études (Eyer, Uldall): changement du cathéter aux 7 jours
versus lorsque nécessaire
• SI: CVC, cath. artériel pulmonaire, cath. artériel périphérique
• Hémodialyse: cath. sous-clavier
– Pas de différence dans le taux d’incidence.
• Ne pas sytématiquement remplacer le cathéter chez
les patients avec bactériémie ou fongémie si la
source de l’infection n’est possiblement pas le
cathéter.
19
Changement du cathéter
• Remplacer tout cathéter veineux central temporaire si
écoulement purulent au niveau du site d’insertion.
• Remplacer tout cathéter veineux central si le patient
est hémodynamiquement instable et si une
bactériémie sur cathéter est suspectée.
• Ne pas utiliser de mandrin pour le remplacement d’un
cathéter veineux central de courte durée lorsque l’on
suspecte une infection sur cathéter.
– La source de l’infection est habituellement la migration de la
flore cutanée du site d’insertion vers l’extrémité distale du
cathéter par voie extraluminale.
Réponse 4: chgt du cathéter
1. Remplacer le cathéter aux 7 jours afin de limiter
l’apparition de bactériémies liées à la colonisation
endoluminale.
2. Remplacer le cathéter à l’apparition d’un écoulement
purulent au site d’insertion.
3. Après retrait, cultiver systématiquement l’extrémité
distale du cathéter.
20
Hémocultures
• Technique
– Utilisation solution alcoolique à base d’iode ou de
chlorhexidine
• Diminution du taux de contamination.
• Diminution du coût direct
– Analyse bactériologique.
• Diminution du coût indirect
– Antibiothérapie, durée d’hospitalisation.
– Mode prélèvement
• Au moins 1 paire en périphérie
Contamination des hémocultures
Auteurs
Pts (N)
PVPI 10%
aqueuse
Alcool iodé
2%
8467
6.25%
3.7%
497134
2.6%
2.1%
Little
3851
3.8%
2.4%
Mimoz
2041
3.3
--
Stand
Shiffmann
Chlor alcool.
1.4
21
Entretien du site d’insertion
Question 5: pansement
1. L’application d’onguent à base de povidone-iodine sur
le point de ponction du cathéter central est
recommandée de façon systématique.
2. L’utilisation d’éponges imprégnées de chlorhexidine
(Biopatch®) permet de réduire efficacement le taux
de bactériémies.
3. L’application d’un pansement transparent semiperméable équivaut à l’application de compresses.
4. Quel que soit le type de pansement appliqué, il doit
être changé 1x/semaine.
22
Onguent antibiotique / antiseptique
• Povidone-iodine
– 1 étude randomisée en hémodialyse (Levin)
• Onguent versus pas d’onguent
– Réduction de l’incidence des infections du site d’accès.
– Réduction de l’incidence de la colonisation du cathéter.
– Réduction des bactériémies.
• Mupirocine
– Plusieurs études
• Efficacité dans la prévention des bactériémies sur cathéter
– Diminution du risque.
– Résistance à la mupirocine (idem si application intranasale).
– Risque de colonisation par Candida spp.
– Atteinte à l’intégrité des cathéters en polyuréthane.
Biopatch®
• 1 étude multicentrique (Maki)
– Eponge imprégnée de chlorhexidine (Biopatch) placée sur le
site d’insertion d’un cathéter artériel transitoire ou d’un
cathéter veineux central
• Réduction du risque de colonisation du cathéter.
• Réduction du risque de bactériémie sur cathéter.
23
Pansement
• Pansement transparent semi-perméable en
polyuréthane
– Utilisé le plus fréquemment
•
•
•
•
Favorise l’immobilisation du cathéter.
Permet un contrôle visuel continu du point d’insertion.
Permet au patient de se laver sans risquer d’imbiber le pst.
Requiert un changement moins fréquent.
Pansement
• 1 étude contrôlée (Maki)
– Effets de l’utilisation d’un pst transparent versus des
compresses en présence de cathéters périphériques
• Pansement transparent: taux de colonisation des cathéter 5.7%.
• Compresses: taux de colonisation des cathéters 4.6%.
• Pas de différence clinique: taux de colonisation du site d’insertion
ou phlébites identiques.
• 1 méta-analyse (Hoffmann)
– Risque de bactériémie dans les groupes avec pansement
transparent versus les groupes avec compresses
• Risque identique entre les 2 groupes.
24
Pansement
• Conclusion
– Application d’onguent
• Onguent antiseptique sur cathéter d’hémodialyse uniquement.
• Pas d’onguent antibiotique.
• Pas de recommandations pour Biopatch®.
– Type de pansement
• Compresses ou pst transparent semi-perméable.
• Compresses si diaphorèse, saignement, suintement.
• Pas de pansement si cathéter tunnelisé cicatrisé.
– Fréquence de changement
•
•
•
•
Compresses: 48 – 72 heures
Pst transparent semi-perméable: 6 à 7 jours
Si humide, décollé, souillé.
Pédiatrie: risque de déloger le cathéter.
Réponse 5: pansement
1. L’application d’onguent à base de povidone-iodine
sur le point de ponction du cathéter central est
recommandée de façon systématique.
2. L’utilisation d’éponges imprégnées de chlorhexidine
(Biopatch) permet de réduire efficacement le taux
de bactériémies.
3. L’application d’un pansement transparent semiperméable équivaut à l’application de compresses.
4. Quel que soit le type de pansement appliqué, il doit
être changé 1x/semaine.
25
Entretien des lignes et gestion des solutés
Question 6: lignes et solutés
1. De façon générale, les lignes ne devraient pas être
changées plus souvent qu’aux 72 heures.
2. Les filtres on-line permettent de prévenir les
bactériémies liées à la contamination des solutions
perfusées.
3. A condition d’être réfrigéré, le résidu des ampoules
mono-doses peut être stocké pour une prochaine
utilisation.
26
Gestion des lignes
• Remplacer les lignes pas plus souvent qu’aux 72 heures
– Solutions isotoniques.
– Dextrose, acides aminés.
• Remplacer les lignes aux 24 heures
– Sang, dérivés sanguins, émulsions lipidiques mélangées ou non à
des acides aminés (milieux favorables à la croissance bactérienne).
• Remplacer les lignes toutes les 6 à 12 heures
– Propofol (milieu favorable à la croissance bactérienne et altération
des lignes).
Gestion des sites d’injection
• Si nécessaire, protéger les sites d’injection au moyen
de bouchons.
• Désinfecter les sites d’injection à chaque accès
– Alcool 70% ou teinture x.
• N’utiliser que du matériel stérile.
27
Gestion des lignes
• Filtres on-line
– Réduction de l’incidence des phlébites sur perfusion
(Yamamoto, Maddox).
– Pas de données concernant la prévention des infections.
– Bactériémies liées à la contamination de la solution infusée
rares.
– Risque que le filtre se bouche avec certaines solutions
(dextrose, lipides, mannitol) → manipulations.
– Pas de recommandation documentée pour l’utilisation de
filtres dans un perspective de prévention des bactériémies.
Préparation des solutés
• Contrôler la date de péremption, l’intégrité des
contenants et la limpidité des solutions parentérales.
• Privilégier les injectables en ampoules mono-doses et
éliminer le résidu des ampoules.
• Si utilisation d’ampoules multi-doses
– Réfrigérer les ampoules multi-doses entamées selon les
recommandations du fabriquant.
– Désinfecter le diaphragme avec alcool 70% ou teinture x.
– S’assurer de la stérilité du matériel utilisé pour ponctionner
les ampoules.
– Eliminer les ampoules multi-doses en cas d’erreur d’asepsie.
28
Administration des solutés
• Administrer les solutions contenant des lipides dans
un intervalle de 24 heures max.
• Administrer les émulsions lipidiques dans un
intervalle de 12 heures (max. 24 heures).
• Administrer le sang et les dérivés sanguins dans un
intervalle de 4 heures max.
• Pas de recommendation pour les autres solutions
parentérales.
Réponse 6: lignes et solutés
1. De façon générale, les lignes ne devraient pas être
changées plus souvent qu’aux 72 heures.
2. Les filtres on-line permettent de prévenir les
bactériémies liées à la contamination des solutions
perfusées.
3. A condition d’être réfrigéré, le résidu des ampoules
mono-doses peut être stocké pour une prochaine
utilisation.
29
Critères CDC
Critères CDC
•
IA
– Critère fortement recommandé pour la mise en œuvre et basé sur de fortes
preuves par des enquêtes expérimentales, cliniques ou épidémiologiques
bien conduites.
•
IB
– Critère fortement recommandé pour la mise en œuvre et basé sur de fortes
preuves par quelques enquêtes expérimentales, cliniques ou
épidémiologiques et des bases théoriques fortes.
•
IC
– Critère recommandé par des avis ou des règles ou des « standard » des
états ou des régions (recommandations professionnelles ou textes
réglementaires).
•
II
– Critère suggéré pour la mise en œuvre et basé sur des études évocatrices
cliniques ou épidémiologiques ou des bases théoriques.
•
UI
– Avis non confirmé pour lequel la preuve est insuffisante ou qu’il n’y a pas de
consensus sur l’efficacité de la mesure.
30
Critères CDC
•
IA
– Strongly recommended and strongly supported by well-designed
experimental, clinical, or epidemiological studies
•
IB
– Strongly recommended and supported by some experimental, clinical, or
epidemiological studies, and a strong theoretical rationale
•
IC
•
II
– Required by state or federal regulations, rules, or standards
– Suggested and supported by suggestive clinical or epidemiological studies
or theoretical rationale
•
UI
– Represents an unresolved issue for which evidence is insufficient or no
consensus regarding efficacy exists
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Formation des soignants
IA
Indication, pose et entretien
Traçabilité standardisée
II
Opérateur, date + heure pose / retrait / pst
Surveillance des infections
Cathéter et bactériémies
IA
Aux SI, éventuellement dans d’autres services
Hygiène des mains avant et après
IA
Palpation du site, pose, remplacement, accès, pst
31
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Pose du cathéter
Asepsie: bonnet, masque, blouse et gants stériles,
champ stérile large
Pas de prophylaxie ATB intranasale ou systémique
IA
IA
Cathéter imprégné d’ATB ou antiseptique
si > 5j et taux d’infection élevé dans l’institution
Site sous-clavier si cathéter non tunnelisé
Site jugulaire ou fémoral si cathéter de dialyse
Antisepsie cutanée
Solution à base de chlorhexidine 2%
Solution alcoolique à base d’iode, iodophore, alcool 70%
Pas de solvant organique sur la peau (acétone, éther)
IB
IA
IA
IA
IA
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Changement du cathéter
Pas de changement de routine
Si écoulement purulent au site d’insertion
Pas de chgt sur guide si suspicion d’infection sur cath.
Pas de culture systématique du cathéter
Retrait du cathéter
IB
IB
IB
IA
IA
Immédiatement lorsque plus essentiel pour la prise en
charge
Verrou antibiotique
II
Pas de routine
32
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Surveillance du site d’insertion
IB
Régulièrement, visuellement ou par palpation
Type de pansement
IA
Pst transparent semi perméable
Compresses si diaphorère, saignement, suintement
Pas de pansement: cathéter tunnelisé cicatrisé
II
II
Réfection du pansement
Pst transparent semi-perméable aux 7 jours
Compresses aux 48 heures
Si humide, défait, souillé
Pas d’onguent ou crème antibiotique
Gants propres ou stériles
IB
IB
IB
IA
IC
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Changement des tubulures
Solutions isotoniques: aux 72 heures
Sang, dérivés sanguins, émulsions lipidiques: aux 24
heures
Dextrose, acides aminés seuls: aux 72 heures
Propofol: aux 6 à 12 heures
IA
IB
II
IA
Filtres on line
Pas d’utilisation systématique
IA
Sites d’injection
Alcool 70% ou iodophore
Bouchons sur robinets non utilisés
IA
IB
33
Critères CDC
CATEGORIE
CDC
Injectables mono-doses
Pas de stockage résidu
IA
Injectables multi-doses
Désinfection site de prélèvement à l’alcool 70%
Utilisation matériel stérile
Jeter si stérilité compromise
Réfrigérer si recommandation du fabriquant
IA
IA
IA
II
Littérature
• CDC, MMWR, Guidelines for the Prevention of Intravascular
Catheter-Related Infections, August 9, 2002 / Vol. 51 / N°. RR10
• Bulletin épidémiologique hebdomadaire, 18/2000, pp75-77
Surveillance des bactériémies nosocomiales à partir du
laboratoire…
• Bulletin épidémiologique hebdomadaire, 16/2001, Première
surveillance multicentrique des bactériémies en région centre
• Am J Infect control, 1988;16:128-140, Garner J.S, CDC
definition for nosocomial infections
• Pittet D., Nosocomial Bloodstream Infection, Wenzel, 1997, pp
711
• www.cclinouest.com Les surveillances C.CLIN-Ouest
• www.chuv.ch/swiss-noso Bactériémies nosocomiales , 1998
• www.hpci.ch Surveillance des bactériémies
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