PROGRAMME D`EPIDEMIOSURVEILLANCE DES

Transcription

LABORATOIRE DE LA RAGE
ET DE LA FAUNE SAUVAGE DE NANCY
Malzéville, le 09 juin 2011
PROGRAMME D’EPIDEMIOSURVEILLANCE
DES INFECTIONS A LYSSAVIRUS
CHEZ LES CHIROPTERES
du
1er
Résultats et analyses
janvier au 31 décembre 2010
Auteurs :
Evelyne Picard-Meyer & Florence Cliquet
Responsable technique du diagnostic de rage :
A. Servat
Participa
Participants
nts au programme d’épidémiosurveillance :
J. Ambert, V. Brogat, P. Grosgeorge, S. Kempff, E. Litaize, M. Biarnais & N. Stroucken
Responsable de la réalisation des cartes
cartes :
Emmanuelle Robardet
Anses-Nancy,
Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy
Technopole Agricole et Vétérinaire, BP 40009
54220 MALZEVILLE Cedex
Tél : 03.83.29.89.50
Fax : 03.83.29.89.58.
[email protected]
I. Introduction
Depuis août 2000, le programme d’épidémiosurveillance sur les infections à Lyssavirus des
chiroptères en France a été renforcé à la demande de la Direction Générale de l’Alimentation.
Du 1er janvier 2001 au 31 décembre 2010, 1581 chauves-souris autochtones ont été analysées
à l’aide des techniques de référence de diagnostic de rage sur un total de 2056 adressées pour
recherche de Lyssavirose à l’Anses
l’AnsesAnses-Nancy.
Nancy Sur ces 1581 chauves-souris analysées, 1551 ont été
diagnostiquées négatives et 30 sérotines communes ont été montrées porteuses du virus
EBLV-1 (également appelé European Bat Lyssavirus type 1) communément isolé chez les
chauves-souris françaises et européennes.
Au cours de la même période, 322 chauves-souris autochtones ont été analysées à l’Institut
Pasteur de Paris sur un total de 332 chauves-souris adressées. 310 chauves-souris ont été
diagnostiquées négatives et 12 sérotines communes ont été montrées infectées par le virus
EBLV-11.
En résumé,
1861 chauves-souris ont été diagnostiquées négatives du 1er janvier 2001 au 31 décembre 2010 en France,
et 42 ont été montrées infectées par un virus EBLV-1.
Nombre de chauves-souris étudiées
Figure 1 : Evolution en France de 1989 au 31 décembre 2010 du nombre de chauves-souris autochtones étudiées
pour lyssavirose au sein des deux laboratoires, Anses-Nancy et Institut Pasteur de Paris.
Au total, à ce jour (24 mai 2011) cinquante-trois cinq sérotines communes ont été diagnostiquées
positives à l’aide des techniques classiques de diagnostic de rage.
1
Source : Centre National de Référence de la Rage (Institut Pasteur Paris)
Programme d’épidémiosurveillance des infections a lyssavirus chez les chiroptères – Année 2010 - 2/20
II. Chauves-souris collectées et analysées à l’Anses-Nancy
Du 1er janvier au 31 décembre 2010, 202 chauves-souris autochtones ont été adressées à
l’Anses-Nancy pour recherche de Lyssavirus.
Sur les 202 chauves-souris autochtones collectées, 155 ont pu être analysées (47 n’ont pas pu
être analysées en raison de l’état avancé de putréfaction de l’échantillon, de leur état de
momification ou conservation du cadavre). Les animaux collectés proviennent de 18 régions
différentes (Figure 2a et b) et représentent 18 espèces différentes (Figure 3 et Tableau 2).
Figure 2a : Répartition régionale par expéditeur des chauves-souris autochtones adressées à l’Anses-Nancy pour
analyse de lyssavirose en 2010 (01/01/2010 au 31/12/2010)
Les 202 chauves-souris collectées sont repérées sur la figure 2a par leur commune de
découverte.
(n=202)
Figure 2b : Répartition par région des chauves-souris autochtones analysées à l’Anses-Nancy en 2010
(01/01/2010 au 31/12/2010)
Rappelons que sur les 202 chauves-souris autochtones adressées pour analyse de
lyssavirose, 47 chauves-souris n’ont pas pu être analysées avec les techniques de routine.
Les 155 chauves-souris analysées au moyen des techniques de routine sont repérées sur la
figure 2 par leur commune de découverte.
(n=155)
Figure 3 : Bilan des chauves-souris autochtones adressées pour analyse de lyssavirose à l’Anses-Nancy en 2010
par expéditeur et par espèce (01/01/2010 au 31/12/2010).
80
60
40
SFEPM
DDPP/LVD
20
0
Barbastelle
G. Murin
G. Rhinolophe
Indéterminée
M. Schreibers
Myotis sp
N. commune
N. de Leisler
Noctule sp.
O. gris
O. roux
P. Rhinolophe
P. commune
P. Kuhl
P. Nathusius
Pipistrelle sp.
S. bicolore
S. commune
V. Savi
V. moustaches
V. Brandt
V. Natterer
Nombre de chauves-souris collectées
100
Tableau 1 : Récapitulatif des espèces autochtones adressées à l’Anses-Nancy (du 01/01/2001 au 31/12/2010).
Espèces autochtones adressées à l'Ansesl'Anses-Nancy (2001 à 2010)
Famille
Espèce
Tadarida teniotis
Rhinolophus hipposideros
Rhinolophidae Rhinolophus ferrumequinum
Rhinolophus euryale
Pipistrellus pipistrellus
Eptesicus serotinus
Pipistrellus kuhli
Myotis myotis
Pipistrellus nathusii
Plecotus austriacus
Miniopterus schreibersi
Nyctalus leisleri
Myotis emarginatus
Plecotus auritus
Pipistrellus sp
Myotis daubentoni
Myotis mystacinus
Vespertilionidae Pipistrellus Pygmeus
Myotis nattereri
Myotis sp
Pipistrellus savii
Myotis bechsteini
Nyctalus noctula
Barbastella barbastellus
Eptesicus nilssoni
Plecotus sp
Myotis blythii
Myotis brandtii
Vespertilio murinus
Molossidae
Not identified
Chauves-souris
putréfiées
non
diagnostiquées
16
7
4
166
44
8
106
4
14
6
5
6
6
25
23
1
3
2
5
1
2
3
18
Nyctalus sp
475
Chauves-souris
diagnostiquées
Négatives
6
28
22
3
658
128
163
54
86
60
28
42
22
39
38
19
25
14
10
10
10
8
36
Positives
30
13
3
4
3
2
1
14
2
1551
30
Total
22
35
26
3
824
202
171
160
90
74
34
47
28
45
63
42
26
17
12
15
10
9
38
16
3
4
3
2
1
32
2
2056
Sont exclues du bilan (tableau n°1), une pipistrelle commune trouvée en 2003 au Maroc,
envoyée par les services vétérinaires et une pipistrelle sp d’Espagne reçue pour analyse en
2008, envoyée par le réseau SFEPM.
Rappelons que sur les 2056 chauves-souris reçues pour analyse depuis 2001 à l’AnsesNancy, 1551 ont été diagnostiquées négatives et 30 sérotines communes ont été
diagnostiquées positives. Les autres 475 chauves-souris n’ont pas pu être analysées.
1
1
Barbastelle d'Europe
Grand Murin
4
2
1
2
14
Oreillard gris
Oreillard roux
Petit Rhinolophe
Pipistrelle commune
41
155
Total général
39
2
6
1
1
Verspertilion de Brandt
Vespertilion de Natterer
116
2
4
3
20
2
3
5
53
2
3
3
8
5
2
Nb total
analysés
4
8
8
13
2
1
2
5
1
1
Nb total non
analysés
Vespertilion à moustaches
1
5
1
4
4
14
1
1
1
2
4
1
Nb total
analysés
réseau SFEPM
4
47
3
1
1
1
Nb total non
analysés
DDPP
DDPP/LVD
PP/LVD
Provenance
Vespère de Savi
25
8
Sérotine commune
2
Pipistrelle sp.
1
7
Pipistrelle de Nathusius
Serotine bicolore
9
67
2
Pipistrelle de Kuhl
11
1
Noctule sp.
4
8
4
Noctule de Leisler
1
Myotis sp.
2
1
Minioptère de Schreibers
5
2
1
Nb total de
cadavres
analysés
Noctule commune
5
Indéterminée
Grand Rhinolophe
Nb total de
cadavres
non
analysés
Espèces autochtones
adressées à l'Anses
l'Ansesnses-Nancy
en 2010
47
8
11
14
2
1
2
1
1
5
1
1
Impossible
149
2
1
4
4
19
1
2
7
9
67
2
4
4
1
8
2
4
5
2
1
négatif
6
6
positif
Test d’immunofluorescence (IF
(IF)
IF)
52
8
11
19
2
1
2
1
1
5
1
1
Impossible
144
2
1
4
4
19
1
2
7
9
62
2
4
4
1
8
2
4
5
2
1
négatif
6
6
positif
Test d’isolement viral sur
cellules (CC)
CC)
51
8
11
19
2
2
1
1
5
1
1
137
2
1
4
4
19
2
7
8
58
2
4
4
1
8
2
4
4
2
1
Impossible négatif
7
1
1
4
1
6
6
non
positif
interprétable
Amplification de l’ARN viral (RT(RT-PCR)
PCR)
Résultats des analyses des chauveschauves-souris
Tableau 2 : Analyses effectuées sur les chauves-souris à l’Anses-Nancy (01/01/2010 au 31/12/2010).
Figure 4 : Bilan des chauves-souris envoyées à l’Anses-Nancy pour analyse de rage en 2010.
100
80
60
diagnostic pos
40
diagnostic négatif
Impossible
20
Barbastelle
G. Murin
G. Rhinolophe
Indéterminée
M. Schreibers
Myotis sp
N. commune
N. de Leisler
Noctule sp.
O. gris
O. roux
P. Rhinolophe
P. commune
P. Kuhl
P. Nathusius
Pipistrelle sp.
S. bicolore
S. commune
V. Savi
V. moustaches
V. Brandt
V. Natterer
0
III. Chauves-souris collectées et analysées à l’Institut Pasteur de Paris en 2010²
Vingt cinq chauves-souris autochtones ont été adressées à l’Institut Pasteur de Paris du 1er
janvier au 31 décembre 2010.
2010 Sur les 25 cadavres analysés, tous ont été diagnostiqués négatifs.
La provenance des chauves-souris ainsi que le résultat de l’analyse sont résumés dans le tableau
ci-dessous :
Analyse des chauveschauves-souris
Nombre de cadavres
analysés
Région expéditrice
Résultat nég
négatif
3
3
Aquitaine
Bourgogne
Centre
2
Champagne Ardenne
2
2
2
3
Ile de France
Limousin
Midi-Pyrénées
2
Pays de Loire
2
4
Poitou-Charentes
Provence-Alpes-Côte d'Azur
Rhône-Alpes
Total général
4
3
1
2
1
2
25
1
3
2
3
1
2
25
En conclusion, du 1er janvier au 31 décembre 2010, 227 chauves-souris autochtones ont été
adressées à l’Anses-Nancy et l’Institut Pasteur de Paris pour analyse de lyssavirose. 174 ont été
diagnostiquées négatives, 47 n’ont pas pu être analysées.
Un total de 6 sérotines communes ont été montrées infectées en France en 2010 par les deux
isoformes a et b du Lyssavirus Européen communément isolé en France et en Europe : les virus
EBLV-1a (trois cas) et EBLV-1b (trois cas).
La figure 5 montre la répartition géographique des différents cas de septembre à ce jour (09 juin
2011).
Figure 5 : Répartition des cas de lyssavirose sur chauves-souris découverts en France de septembre 1989 au 09
juin 2011.
Au total, de septembre 1989 au 09 juin 2011, 53 sérotines communes ont été montrées infectées à l’aide
des tests de référence (test d’immunofluorescence et test d’inoculation aux cellules) par un Lyssavirus
Européen en France : toutes ont été montrées infectées par l’un des deux isoformes a ou b de EBLV-1
(European Bat Lyssavirus 1).
IV. Chauves-souris diagnostiquées positives en 2010 en France : chronologie
des évènements, enquêtes épidémiologiques et résultats des analyses effectuées
I. 24 août 2010
Le 24 août 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1a à l’AnsesNancy. Le paragraphe ci-dessous expose la chronologie des évènements de la découverte de la
chauve-souris au résultat des analyses, ainsi que les différentes analyses conduites sur le
cadavre à l’Anses-Nancy (du fait de l’absence de contamination humaine).
•
Le 17 août 2010, un particulier trouve une chauve-souris vivante en pleine journée dans
la commune de La Crèche (79) au sol puis la dépose sur un mur. Il emmène la chauve
souris deux jours plus tard à l’association Deux Sèvres Nature et Environnement.
L’animal meurt quelques heures plus tard. Le particulier précise au chiroptérologue que
lors de la manipulation de la chauve-souris, il n’y a pas eu de morsures.
•
Le 23 août: le cadavre est reçu à l’Anses-Nancy (enregistré 129051)
•
Le 24 août: le cadavre est analysé par test d’immunofluorescence et test d’isolement viral
sur cellules
•
Le 25 août : l’Anses-Nancy informe la Direction Générale de la Santé (DGS), l’INVS, le
Centre National de Référence de la Rage de l’Institut Pasteur, Paris, le Bureau Santé
Animale de la DGAL, la DDPP79 et la Direction Générale de l’Anses d’un résultat positif
de diagnostic de rage établi sur le cadavre de la sérotine commune.
•
Les tests de référence établis par test d’immunofluorescence et culture cellulaire ont
donné respectivement un résultat positif les 24 et 26 août 2010. En parallèle, une autre
analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 25 août 2010.
•
Le résultat du typage du virus isolé, effectué par séquençage d’une portion du gène de la
nucléoprotéine rabique a montré qu’il s’agissait d’un Lyssavirus de type génotype 5
(EBLV-1a). Ce virus est couramment isolé en France et en Europe chez les chauvessouris insectivores diagnostiquées positives.
II. 27 août 2010
Le 27 août 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1a à l’AnsesNancy. Le paragraphe ci-dessous expose la chronologie des évènements de la découverte de la
•
Le 24 août 2010, une chauve-souris est retrouvée vivante, sur le dos, dans la commune
de Rochefort sur Mer (17). Une demande d’analyse de rage est établie à la DDPP17 par
l’ONCFS17.
•
Le 25 août 2010, le cadavre de la chauve-souris est acheminé via le LASAT 17 à l’AnsesNancy pour analyse de rage. Elle est identifiée le 26 août au matin par l’Anses-Nancy
comme étant une sérotine commune (enregistrée 129055)
•
Le 27 août: le cadavre est analysé par test d’immunofluorescence et test d’isolement viral
sur cellules
•
Le 27 août : l’Anses-Nancy informe la Direction Générale de la Santé (DGS), l’INVS, le
Centre National de Référence de la Rage de l’Institut Pasteur, Paris, le Bureau Santé
Animale de la DGAL, la DDPP17 et la Direction Générale de l’Anses d’un résultat positif
de diagnostic de rage établi sur le cadavre de la sérotine commune.
•
donné respectivement un résultat positif les 27 et 30 août 2010. En parallèle, une autre
analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 31 août 2010.
•
(EBLV-1a). Ce virus est couramment isolé en France et en Europe chez les chauvessouris insectivores diagnostiquées positives.
III. 23 septembre 2010
Le 23 septembre 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1b à
l’Anses-Nancy. Le paragraphe ci-dessous expose la chronologie des évènements de la découverte
de la chauve-souris au résultat des analyses, ainsi que les différentes analyses conduites sur le
•
Le 10 septembre 2010, une chauve-souris est retrouvée vivante au sol par des
particuliers dans la commune de Recologne (25). Elle est déposée sur le rebord d’une
fenêtre. Deux jours plus tard, la chauve-souris qui n’a pas bougé est récupérée puis
emmenée à l’association CPEPESC qui l’identifie comme étant une sérotine commune. La
chauve-souris est envoyée à l’Anses-Nancy pour analyse de rage.
•
Le 23 septembre 2010, le cadavre de la chauve-souris est reçu à l’Anses-Nancy
(enregistré 129087).
•
Le 23 septembre 2010: le cadavre est analysé par test d’immunofluorescence.
•
Le 24 septembre 2010 : l’Anses-Nancy informe la Direction Générale de la Santé (DGS),
l’INVS, le Centre National de Référence de la Rage de l’Institut Pasteur, Paris, le Bureau
Santé Animale de la DGAL, la DDPP25 et la Direction Générale de l’Anses d’un résultat
positif de diagnostic de rage établi sur le cadavre de la sérotine commune.
•
donné respectivement un résultat positif les 23 et 27 septembre 2010. En parallèle, une
autre analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 24 septembre
2010.
•
(EBLV-1b). Ce virus est couramment isolé en France et en Europe chez les chauvessouris insectivores diagnostiquées positives.
IV. 30 septembre 2010
Le 30 septembre 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1b à
•
Une chauve-souris est retrouvée vivante par des particuliers dans la commune de
Champagne aux abords de la piscine de la maison (17). L’animal est confié à un
vétérinaire praticien et meurt dans la journée du 23 septembre 2010. Une demande
d’analyse de rage est établie par la DDPP17.
•
Le 24 septembre 2010, le cadavre de la chauve-souris est acheminé via le LASAT 17 à
l’Anses-Nancy pour analyse de rage. Elle est identifiée le 28 septembre par l’Anses-Nancy
comme étant une sérotine commune (enregistrée 129090).
•
Le 04 octobre 2010 : l’Anses-Nancy informe la Direction Générale de la Santé (DGS),
•
donné respectivement un résultat positif les 30 septembre et 04 octobre 2010. En
parallèle, une autre analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 05
octobre 2010.
•
V. 08 octobre 2010
Le 08 octobre 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1b à l’AnsesNancy. Le paragraphe ci-dessous expose la chronologie des évènements de la découverte de la
•
Le 25 septembre 2010, une chauve-souris est retrouvée vivante, mourante sur une
terrasse par des particuliers dans la commune de Sécheval (08). L’association SOS
chiroptérologue est contactée, puis la chauve-souris est envoyée dans le cadre du réseau
d’épidémiosurveillance à l’Anses-Nancy pour analyse de rage.
•
Le 06 octobre 2010, le cadavre de la chauve-souris est reçu à l’Anses-Nancy (enregistré
129116).
•
Le 07 octobre 2010: le cadavre est analysé par test d’immunofluorescence, qui montre
un résultat positif.
•
•
donné respectivement un résultat positif les 07 et 11 octobre 2010. En parallèle, une
autre analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 11 octobre 2010.
•
VI. 12 octobre 2010
VI. Le 08 octobre 2010, une sérotine commune est montrée infectée par un virus EBLV-1b à
•
Le 10 septembre 2010, une chauve-souris est retrouvée morte dans la commune de
Guinguamp (22). La chauve-souris est envoyée le 07 octobre par un chiroptérologue
dans le cadre du réseau d’épidémiosurveillance à l’Anses-Nancy pour analyse de rage.
•
Le 12 octobre 2010, le cadavre de la chauve-souris est reçu à l’Anses-Nancy (enregistré
129123).
•
Le 12 octobre 2010 : le cadavre est analysé par test d’immunofluorescence.
•
•
donné respectivement un résultat positif les 12 et 14 octobre 2010. En parallèle, une
autre analyse (hnRT-PCR) est effectuée et donne un résultat positif le 15 octobre 2010.
•
En résumé,
6 chauves-souris, toutes identifiées comme des sérotines communes ont été diagnostiquées positives du
1er janvier 2010 au 31 décembre 2010 en France.
V. Situation épidémiologique depuis 1989
Le premier cas de lyssavirose enregistré remonte au 13 septembre 1989. Le tableau 3 répertorie
l’ensemble des cas diagnostiqués depuis cette date jusqu’à ce jour (09 juin 2011).
Tableau 3 : Caractéristiques des 53 sérotines communes montrées infectées par un Lyssavirus EBLV-1 en France
de septembre 1989 au 09 juin 2011
N°
Date
d’isolement
Ville
53
52
51
50
49
48
47
46
45
44
43
42
24.05.2011
29.04.2011
12.10.2010
08.10.2010
04.10.2010
24.09.2010
27.08.2010
24.08.2010
23.10.2009
16.09.2009
31.07.2009
17.07.2009
Jouet sur l'Aubois
Monceaux le Comte
Guingamp
Sécheval
Champagne
Recologne
Rochefort sur Mer
La Crèche
Bourges
Dignac
Lure
Mars la Tour
Dép.
N° diagnostic
Laboratoire
diagnostic
IF
CC
IS
18
58
22
08
17
25
17
79
18
16
70
54
129290
129246
129123
129116
129090
129087
129055
129051
128827
2009/01098
127608
128683
Anses
Anses
AFSSA
AFSSA
AFSSA
AFSSA
AFSSA
AFSSA
AFSSA
IPP
AFSSA
AFSSA
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
EBLV-1b**
EBLV-1b**
EBLV-1b**
EBLV-1b**
EBLV-1a**
EBLV-1b**
EBLV-1a**
EBLV-1a**
+ EBLV-1b
EBLV-1a**
EBLV-1b
EBLV-1b
+
+
+
+
+
+
+
+
Typage du
virus
41
40
39
38
37
36
35
34
33
32
31
30
29
28
27
26
25
24
23
22
21
20
19
18
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13.07.2009
Ancy sur Moselle
07.07.2009
Ancy sur Moselle
01.07.2009
Idron
30.06.2009
Ancy sur Moselle
30.06.2009
Ancy sur Moselle
30.06.2009
Ancy sur Moselle
30.06.2009
Ancy sur Moselle
25.09.2008
Aillant sur Tholon
04.09.2008
Le Haillan
29.08.2008
Saint Médard en Jalles
17.01.2008
Fontenay le Comte
13.11.2007
Bourges
13.11.2007
Bourges
31.05.2007
Saint Melaine
12.07.2006
Crosses
08.06.2006
Bourges
16.05.2006
Ourches
27.10.2005
Arradon
30.06.2005
Bourges
09.06.2005
Signy l’Abbaye
17.05.2005 Souesmes (La Ferté Saint Cyr)
13.09.2004
Vaux sur Mer
10.09.2004
Bourges
19.08.2004
Guénin
29.06.2004
Guéret
22.10.2003
Carmaux
30.01.2003
Chemellier
06.09.2002
Lurcy Levis
26.08.2002
Guéret
28.09.2001
Vallon en Sully
10.10.2001
Plouguin
22.08.2001
Waville
13.12.2000
Joinville
25.09.2000
Fouesnant
27.03.2000
Plouneour-Menez
08.02.2000
Prémilhat
18.03.1998
Morlaix
14.03.1997
Champigneulles
16.10.1995
Bourges
04.10.1989
Bainville/Madon
13.09.1989
Briey
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EBLV-1b***
EBLV-1b***
ND: non déterminé ; NI : non interprétable, NE : non effectué
IF: Test d’immunofluorescence, CC: test d’inoculation aux cellules, IS : test d’inoculation aux souris
IPP : Institut Pasteur Paris
* typage par les anticorps monoclonaux ; ** typage par RT-PCR suivi du séquencage des produits PCR ; ***
typage par séquencage des produits PCR et par les anticorps monoclonaux
Date d’isolement : date de réception au laboratoire de l’animal
- Cas particulier : Roussette d’Egypte (Roussettus aegyptiacus) importée d’Afrique en 1999, diagnostiquée
enragée le 11 mai 1999 à Nimes et porteuse d’un Lyssavirus d’origine africaine (Lagos bat).
- Autre cas : Le 14 juin 2005, une chauve-souris momifiée (pipistrelle commune), a été montrée infectée
par de l’ARN viral (RT-PCR) à l’Institut Pasteur de Paris. Le résultat positif a été confirmé par un test
ELISA. Le typage d’une portion du gène de la nucléoprotéine rabique a montré qu’il s’agissait d’un virus de
type EBLV-1b.
VI. Publications scientifiques de l’Anses-Nancy : année 2010-2011
Tous ces articles sont à disposition pour les personnes qui souhaiteraient un exemplaire.
Articles publiés dans des revues scientifiques à comité de lecture
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Aubert D., Ajzenberg D., Richomme C., Gilot-Fromont E., Terrier M.E., de Gevigney C., Game Y., Maillard D., Gibert P.,
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171 n°3-4, pp 346-349.
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Hendrikx P., Gay E., Chazel M., Moutou F., Danan C., Richomme C., Boué F., Souillard R., Gauchard F. and Dufour B.OASIS: an assessment tool of epidemiological surveillance systems in animal health and food safety. Epidemiol. Infect.,
2011, (sous presse).
Moinet M., Fournier-Chambrillon C., André-Fontaine G., Aulagnier S., Mesplède A., Blanchard B., Descarsin V., Dumas
P., Dumas Y., Coïc C., Couzi L. and Fournier P.- Leptospirosis in free-ranging endangered European mink (Mustela
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Picard-Meyer E., Dubourg-Savage M.J., Arthur L., Barataud M., Bécu S.; Bracco S., Borel C., Larcher G., Meme-Lafond
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Sage M., Fourel I., Coeurdassier M., Barrat J., Berny P. and Giraudoux P.- Determination of bromadiolone in fox faeces
by LC/ESI-MS in relationship with toxicological data and clinical signs after repeated exposure. Environ. Res., 2010,
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Umhang G.; Woronoff-Rhen N.; Combes B. and Boué F.- Sedimentation and Counting Technique (SSCT): an adaptable
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Articles publiés dans des revues professionnelles
Boué F. et Umhang G.- Les hantavirus : virus à découvrir ou à redécouvrir. Bull. Epidémiol. Afssa, 2010, n°37, p 14.
Boué F., Combes B., Giraudoux P. et Umhang G.- Echinococcus multilocularis chez le renard et les carnivores
domestiques : vers une nouvelle donne épidémiologique ? Bull. Epidémiol. Hebd., 2010, n°hors série (14 septembre),
pp 21-23.
Boué F., Combes B., Giraudoux P. et Umhang G.- Echinococcus multilocularis chez le renard et les carnivores
domestiques : vers une nouvelle donne épidémiologique ? Bull. Epidémiol. Afssa, 2010, n°38 (spécial zoonoses), pp
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Bro E., Decors A., Millot F., Soyez D., Moinet M., Berny P. et Mastain O.- Intoxications des perdrix grises en nature.
Nouveau bilan de la surveillance « SAGIR ». Faune Sauv., 2010, n°289, pp 26-32.
Hars J., Richomme C. et Boschiroli M.L.- La tuberculose bovine dans la faune sauvage en France. Bull. Epidémiol. Hebd.,
2010, n°hors série (14 septembre), pp 25-27.
Hars J., Richomme C. et Boschiroli M.L.- La tuberculose bovine dans la faune sauvage en France. Bull. Epidémiol. Afssa,
2010, n°38 (n° spécial zoonoses), pp 28-31.
Hars J., Richomme C. et Boschiroli M.L.- La faune sauvage : réservoir de tuberculose bovine en France ? ¨Point Vét.,
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Hars J., Richomme C., Payne A. et Boschiroli M.L.- Réseau "SAGIR". Faune sauvage et tuberculose bovine en France.
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Moinet M.-Etude comparative de la leptospirose chez le vison d’Europe Mustela lutreola et les autres petits carnivores
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Moinet M., Rossi S., Hessemann M., Plaquin B., Clerc D., Bouilly C., Soulagnet J.M. et Mastain O.- Surveillance SAGIR.
Lettre SAGIR, 2010, n°165, pp 12-13.
Moinet M. et Marcin N.- Recrudescence de cas de FHSR : attention à la poussière ! Lettre SAGIR, 2010 n°167, p 7.
Picard-Meyer E., Borel C. et Cliquet F.- Découverte d’une colonie de sérotines communes infectées par le lyssavirus
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Ponçon N., Dacheux L., Picard E., Debaere O., Bronner A., Cliquet F. et Bourhy H.- La rage en France métropolitaine :
bilan de la situation actuelle. Bull. Epidémiol. Santé Anim. – Alimentation, 2010, n°39, pp 2-4.
Robardet E. and Cliquet F.- Third european workshop for rabies and implementation of EURL website. Rabies Bull.
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34 n°4, pp 8-11.
Rossi S., Gibert P., Bréard E., Moinet M., Hars J., Maillard D., Wanner M., Klein F., Mastain O., Mathevet P. et Bost F.Circulation et impact des virus de la fièvre catarrhale ovine (FCO) chez les ruminants sauvages en France. Bull.
Epidémiol. AFSSA, 2010, n°35 (hors série), pp 28-32.
Rossi S., Gibert P., Hars J., Wanner M., Moinet M., Maillard D., Klein F., Mastain O., Mathevet P. et Bost F.- Surveillance
de la fièvre catarrhale ovine (FCO) dans la faune sauvage, quoi de neuf docteur ? Lettre SAGIR, 2010, n°165, pp 11-12.
Moinet M.- Avez-vous pensé à la toxoplasmose chez les lièvres ? Lettre Sagir, 2011, n°169, p 4.
Rapport de stage
Cholet P.- Etude de la prévalence d’Echinococcus multilocularis sur l’agglomération nancéenne et d’Echinococcus
granulosus dans le Sud de la France et en Corse. Rapport de Stage DUT Génie Biologique, Option Analyse Biologique et
Biochimique, AFSSA LERRPAS, 2010, 85 p.
Autres Rapports
Cliquet F ; Freuling C ; Smreczak M ; van der Poel WHM ; Horton D ; Fooks AR ; Robardet E ; Picard-Meyer E and Muller
T.- Development of harmonised schemes for monitoring and reporting of rabies in animals in the European Union.
Scientific Report submitted to EFSA, 2010, 60 p.
Debaerre O., Bourhy H., Dacheux L., Brard C., Gellé R., Guaguère E., Larcher G., Combes B., Picard E. et Cliquet F.- La
rage en France : une menace permanente contre laquelle un niveau élevé de surveillance doit être maintenu.
Document non publié, 2010, pp 1-9.
Le Potier M.F., Pol F., Simon G., Garin-Bastuji B., Boschiroli M.F., Vallée I., Boireau P., Lacour S., Richomme C., Moinet
M., Payne A., Rossi S., Hars J. et Bronner A.- L’état sanitaire du sanglier (Sus scrofa sp.) en France. Rapport destiné au
Conseil de filière porcine, 2010, 9 p.
Picard-Meyer E., Cliquet F. et Servat A.- Programme d’épidémiosurveillance des infections à lyssavirus chez les
chiroptères. Résultats et analyses du 1er janvier au 31 décembre 2009. Rapport AFSSA Nancy, 16 mars 2010, 16 p.
Picard-Meyer E. and Cliquet F.- Preliminary analysis of nucleotide sequences on rabies isolates received from Latvia.
Technical Report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and
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Picard-Meyer, Robardet E. and Cliquet F.- Analysis of nucleotide sequences on rabies isolates received from Latvia.
Report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and wildlife, 19
January 2010, 8 p.
Picard-Meyer, Robardet E. and Cliquet F.- Analysis of nucleotide sequences on rabies isolates received from Bulgaria.
Report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and wildlife, 1
October 2010, 9 p.
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Robardet E. and Cliquet F.- Interlaboratory trial 2009 : RT-PCR. Report of the European Union Reference Laboratory
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Robardet E. and Cliquet F.- Interlaboratory test 2010: Fluorescent antibody test (FAT), Rapid tissue culture infection
test (RTCIT), Reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) . Report of the European Union Reference
Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and wildlife, 25 November 2010, 24 p.
Robardet E. and Cliquet F.- Interlaboratory Comparison 2010: Tetracycline determination in tooth samples from field
foxes Report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and wildlife,,
February 2011, 25 p.
Robardet E. and Cliquet F.- Evolution of rabies in raccoon dogs and red foxes in Baltic countries during the XXI
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Umhang G. et Boué F.- Programme d’étude d’Echinococcus granulosus dans le Sud de la France. Rapport Ansès,
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Umhang G. et Boué F.- Programme d’étude d’Echinococcus granulosus en Corse. Rapport de l'enquête 2009-2010,
Rapport Ansès - Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy, 2011, 15 p
Wasniewski M. and Cliquet F.- Rabies proficiency testing report. Intermediate report. Rapport Afssa Nancy, 8
February 2010, 56 p.
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European Commission). Rapport Afssa Nancy, 26th February 2010, 38 p.
Wasniewski M. and Cliquet F.- Technical report on several studies performed by Afssa Nancy on the BioPro rabies
Elisa Ab kit. Technical report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for
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Wasniewski M. and Cliquet F.- Rabies proficiency testing report – 1 participating laboratory – June 2010/September
2010. Rapport Anses Nancy, 6th September 2010.
Wasniewski M. and Cliquet F.- Rabies proficiency testing report - 59 participating laboratories - September
2010/January 2011; Rapport Ansès - Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy, 2011.
Wasniewski M. and Cliquet F.- European reference activities for rabies serology and virology Report of the European
Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies and wildlife,, 25 February 2011.
Wasniewski, M., Labadie, A., Andrieu, S., Cliquet, F.- Evaluation of the vaccinal titre of eight batches of SAG2 vaccine
baits. Technical report of the European Union Reference Laboratory for Rabies, Anses Nancy Laboratory for rabies
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Communications orales ou affichées à des réunions
Alban L., Pozio E., Boes J., Boireau P., Boué F., Claes M., Cook A.J.C., Dorny P., Enemark H.L., van der Giessen J., Hunt K.R.,
Howell M., Kirjusina M., Nöckler, Rossi P., Smith G.C., Snow L., Taylor M.A., Theodoropoulos G., Vallée I., Viera-Pinto
M.M. and Zimmer I.A.- Towards a standardised surveillance for Trichinella in the European Union. Trichinella
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Decors A.; Lesage C.; Mailles A.; Madani N.; Moinet M.; Mastain O.- Tularaemia in European brown hare (Lepus
europaeus) in France from 2003 to 2008 : temporal and spatial distribution, pathological aspects. 9th Biennial
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Barrat J., Brogat V., Picard-Meyer E., Arthur L., Gordet E., Pavisse R. et Lemaire M.- Rythme nocturne des entrées et
sorties dans une colonie de reproduction de sérotine commune. 13è Rencontre nationale “Chauve-souris” de la
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Barrat J.- Management of urban rabies. Congrès : BTSF - Epidemiological situation and control strategy of rabies, Kiev,
Ukraine, 6-8 juillet 2010.
Barrat J., Abdelatif E. ; Benhabylès N.; Hadjij C.; el Harrak M.; Bahloul C.; Zaghloul A.H. and Bourhy H.- Dog population
study and consequences in rabies control in Northern Africa. SEARG Meeting, Maputo (Mozambique) ; 25-28 January
2011.
Barrat J., Scott T. and Barrat A.- SEARG website future communication within the group. SEARG Meeting, Maputo
(Mozambique); 25-28 January 2011.
Borel C., CPEPESC Lorraine et Picard-Meyer E.- Découverte d’une colonie de sérotines communes infectées par EBL-1
à Ancy sur Moselle. 13è Rencontre nationale “Chauve-souris” de la SFEPM, Muséum d’Histoire Naturelle, Bourges, 2021 mars 2010.
Boué F.- Preventive health measures for control of Echinococcus multilocularis infection in dogs. Expert meeting on
the preparation of a Commission Delegated Act on preventive health measures for the control of Echinococcus
multilocularis in dogs, Brussels, 2 February 2011.
Cliquet F.- Rabies control in wildlife and in domestic animals. Workshop on stray dog population control and
protection of companion animals, Podgorica, Montenegro, 13-14 December 2010.
Cliquet F.- Oral vaccination of wildlife against rabies. Organisation, implementation, sample collection and analysis.
Role of stakeholders. Workshop on oral vaccination of foxes, Zagreb, Croatie, 25 January 2011.
Decors A., Berny P., Dunoyer C., Moinet M., Poulsen V. and Mastain O.- The SAGIR network in France: a 40-year
toxicovigilance scheme in the field. SETAC Europe 20th Annual meeting, Seville (Spain), 23-27 May 2010.
Decors A.; Berny P.; Moinet M.; Dunoyer C.; Mastain O.- The SAGIR network in France: a 40-year toxicovigilance
scheme in the field. 9th Biennial Conference of the European Wildlife Disease Association, Vlieland, The Netherlands,
13 to 16 September 2010.
Decors A.; Lesage C., Mailles A., Madani N., Maurin M., Moinet M., Mastain O.- Epidemiological aspects of tularemia in
France : human and brown hare (Lepus europaeus) cases from 2003 to 2008. 9th Biennial Conference of the
European Wildlife Disease Association, Vlieland, The Netherlands, 13 to 16 September 2010.
Dubourg-Savage M.J. et Picard-Meyer E.- Bilan de la surveillance active de la rage des chauves-souris en Midi-Pyrénées
(2008-2009). Rencontre nationale “Chauve-souris” de la SFEPM, Muséum d’Histoire Naturelle, Bourges, 20-21 mars
2010.
Hars J., Zanella G.; Richomme C.; Garin-Bastuji B.; Boschiroli M.L.- Bovine tuberculosis in wildlife in France: an update.
9th Biennial Conference of the European Wildlife Disease Association, Vlieland, The Netherlands, 13-16 September
2010.
Knapp J., Mouzon L., Umhang G., Grenouillet F., Raoul F., Giraudoux P; et Millon L.- Détection et quantification de l'ADN
du parasite Echinococcus multilocularis par PCR quantitative en temps réel dans l'environnement. Congrès Soc. Fr.
Mycol. Méd. - Soc. Fr. Parasitol. - Groupement Protistol. Fr., Strasbourg, 18-20 mai 2011.
Knapp J, Mouzon L, Umhang G, Grenouillet F, Raoul F, Giraudoux P, Boué F., Combes B. and Millon L.- Echinococcus
multilocularis quantitative real time PCR to assess the environmental contamination from fox stools. 24th
International congress of hydatidology, Urumqi (China), 2011, 1 p.
Moinet M.; Gibert P.; Gauthier D.; Reynaud G.; Game Y.; Bourgoin G.; Mastain O.- Cerebral coenurosis in mountain
ungulates in the French Alps: an interaction between domestic life and wildlife or an evidence of a sylvatic cycle? 9th
Biennial Conference of the European Wildlife Disease Association, Vlieland, The Netherlands, 13 to 16 September
2010.
Moutailler S., Umhang G. et Boué F.- Epidémiologie de l’encéphalite à tiques en Alsace : étude de la prévalence du virus
TBE chez les tiques de l’espèce Ixodes ricinus et les micromammifères sauvages dans les zones de «foyers » humains.
Réunion « Tiques et maladies à tiques », Montpellier, 18-19 novembre 2010.
Picard-Meyer E.- Surveillance nationale de la rage des chauves-souris en France. 13è Rencontre nationale “Chauvesouris” de la SFEPM, Muséum d’Histoire Naturelle, Bourges, 20-21 mars 2010.
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au Maroc. Situation, perspectives de lutte, faisabilité de la vaccination orale des chiens contre la rage Troisièmes
Rencontres du bureau des experts de la rage du continent africain (AfroREB). Casablanca (Maroc), 23-26 mai 2011
Remerciements
Tout particulièrement l'ensemble des chiroptérologues bénévoles, membres essentiels et
clés de voûte du réseau d’épidémiosurveillance des Chiroptères
La Direction Générale de l’Alimentation et le Ministère de l’Environnement pour leur
soutien à ce programme d’épidémiosurveillance, les Directions Départementales de la
Protection des Populations (anciennement DDSV, Directions des Services Vétérinaires),
les Laboratoires Vétérinaires Départementaux
Le Centre National de Référence de la Rage (Institut Pasteur Paris) pour ses données des
diagnostics de rage
Les praticiens vétérinaires pour leur contribution active
L’Anses et l’Anses-Nancy.

PROGRAMME D`EPIDEMIOSURVEILLANCE DES

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