THESE MALADIE COELIAQUE DE L`ADULTE FORMES
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THESE MALADIE COELIAQUE DE L`ADULTE FORMES
REPUBLIQUE ALGERIENNE DEMOCRATIQUE ET POPULAIRE MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE UNIVERSITE D’ALGER BENYOUCEF BENKHEDDA FACULTE DE MEDECINE D’ALGER DEPARTEMENT DE MEDECINE THESE Pour l’obtention du grade de Doctorat en Sciences médicales MALADIE COELIAQUE DE L’ADULTE FORMES ATYPIQUES ET EXTRA-INTESTINALES Spécialité : Hépato-gastroentérologie Président : Pr Laraba Abdenour Rapporteur : Pr Nakmouche M’hamed Membres du Jury : Pr Balamane Abdelmalek Pr Boucelma Malika Pr Ait Younes Sonia Présentée et soutenue publiquement par le Dr Amira Fatima Boutaleb épouse Mazouni, le 15-07-2015 . A Monsieur le Président du Jury, Monsieur le Professeur Laraba Abdenour pour son aide et sa disponibilité. A Monsieur le Professeur Nakmouche M’hamed, directeur de thèse, pour son encadrement et son aide précieuse dans la réalisation de ce travail. A Monsieur le Professeur Balamane Abdelmalek, Madame le Professeur Boucelma Malika, Madame le Professeur Ait Younes Sonia, Membres du Jury pour leurs remarques et suggestions qui ont contribué à l’amélioration de cette thèse. Je remercie également L’équipe médicale et paramédicale du service de gastroentérologie du CHU Bab El Oued, sans qui ce travail n’aurait pas pu être réalisé. Les personnels des services qui ont collaboré à notre travail : Services d’Anatomo-Pathologie, de Médecine Interne, de Rhumatologie, d’Endocrinologie, de Pédiatrie et de Radiologie du CHU Bab El Oued. Les Laboratoires du CHU Bab El Oued, du CHU Mustapha, du CHU Beni Messous, ainsi que l’institut Pasteur d’Alger. Sans oublier de remercier, le Dr Hamchaoui Farida du service d’épidémiologie CHU Bab El Oued, pour la réalisation de l’étude statistique de cette étude. Je dédie ce travail A mes parents, mon mari et à mes enfants. TABLE DES MATIERES INTRODUCTION ……………………………………………………..…………01 PREMIERE PARTIE : Rappel théorique sur la maladie cœliaque de l’adulte…………………....04 I-Introduction et définition……………………………………….……………05 II-Epidémiologie………………………………..……………………….……….06 III-Pathogénie et histoire naturelle……………………………………………08 III-1 Génétique…………………………………………………………………....08 III-2 Gluten………………………………………………………………………...10 III-3 Transglutaminase…………………………………………………...……..10 III-4 Facteurs environnementaux……………………………………..………10 III-5 Pathogénie……………………………………..……………………………11 III-6 Histoire naturelle………………………….………………………...……..13 IV-Manifestations cliniques…………….….……………………………….....13 V-Examen physique…………………………………………………………….15 VI- Biologie……..………………………………………………..………………16 VII- Sérologie……………………………………………………………….……16 VIII- Endoscopie digestive………………...……………………………….….19 VIII-1 Endoscopie digestive haute……………………………………………19 VIII-2 Autres examens endoscopique……………………………………….21 IX- Histologie….………………………………………………….……………..22 X-Examen radiologiques……………….……………………………………..30 XI- Diagnostic positif………….……………………………………………….30 XII- Manifestations extra-digestives révélatrices de la maladie cœliaque………………………...………………………………………………...31 XII-1 Manifestations hématologiques……………………………………...31 XII-2 Manifestations hépatiques…………………………………………….32 XII-3 Endocrinopathies…………………………………………….…………35 XII-4 Manifestations dermatologiques……….…………………...............38 XII-5 Manifestations neurologiques………………….……………..………39 XII-6 Manifestations gynécologiques et les troubles de la Procréation……………………………………………………………...41 XII-7 Manifestations rhumatologiques et osseuses…………………….41 XIII- Complications de la maladie cœliaque……………...……………....43 XIII-1 Sprue refractaire………………………………………………………...44 XIII-2 Jejunite ulcéreuse………………………………………………………46 XIII-3 Lymphomes………………………………………………………………46 XIII-4 Adénocarcinome du grêle……………………………………………..48 XIII-5 Autres carcinomes………………………………………………............49 XIV- Traitement…………………………………………………………………..50 XV- Follow-up des patients…………..………………………………………..56 XVI- Pronostic……………………………………………………………………58 XVII- Dépistage……...……………………………………………………….......58 XVIII- Conclusion ……..……………………………………………….………..59 DEUXIEME PARTIE : A-Problématique….………………..…………………………………………….61 B-Buts du travail…………………………………………………………………66 I- Objectifs principaux……………..…………………………………….……..67 II- Objectifs secondaires……………..………………………………….…......67 C-Matériels et méthodes………………….………………………..…………..68 I- Critères d’inclusion……………………………….……………………..……69 II- Critères de non inclusion…………………………………………………...69 III- Critères d’exclusion…………………………………………………….......69 IV- Déroulement de l’étude…………………………………………….………69 VI-1 Données sociodémographiques .……………..………........................70 VI-2 Antécédents……………………………………..………………………….70 VI-3 Examen clinique ………………………………………….……….….......70 IV-4 Exploration biologique …………………………….…….….….……….70 IV-5 Sérologie cœliaque …………………………..…….…………..………...71 IV-6 Endoscopie digestive haute………………….…....................………..71 IV-7 Histologie…..…………………………………………………..…....…….71 IV-8 Ostéodensitométrie (DMO)…………………………..…….……….......72 IV-9 Bilan de l’hépatopathie………………………..….…………..………….72 IV-10 Régime sans gluten et surveillance………………..............………..73 IV-11 Dépistage des maladies auto-immunes associées………………..75 V-Analyse statistique………………………..…………………..…….…........76 D- Résultats…..………………………………………………………………..…77 I-Caractéristiques démographiques de la population étudiée……………………………………………………...……..…….…...80 I-1 Âge de la population étudiée……………………..……………..….……..80 I-2 Répartition de la maladie selon le sexe………………………………….81 I-3 Formes cliniques……………….……………………………………………82 I-4 Comparaison moyennes d’âge, sexe et formes clinique……………..83 I-5 Situation familiale, conditions socio-économiques, mode de vie et tabagisme……………………………………..……….87 II- Antécédents personnels et familiaux ....................................................89 II-1 Antécédents personnels médicaux …………...………………..………89 II-2 Antécédents personnels de pathologies auto-immunes…………….90 II-3 Antécédents gynéco-obstétricaux et troubles de la procréation…………………………………………………………………..91 II-3 Antécédents personnels chirurgicaux………………………..………...94 II-4 Antécédents familiaux de maladies auto-immunes…………..………95 III- Délais diagnostiques ………………………………………………....…….97 IV- manifestations révélatrices………………………………………………101 IV-1 Manifestations digestives..…………………………………........….....101 IV-2 Manifestations extra-digestives……………..…………….………......103 IV-2-1 Les manifestations osseuses…………………………….……..……104 IV-2-2 Les manifestations neurologiques...……………………………….105 IV-3 Les signes généraux……………………………………..………………105 IV-4 Dépistage…………………………………………….…………....………106 V- L’examen physique………………….……..…….……………………......107 V-1 Données du BMI………………………………..…….…….…..….……...107 V-2 Données de l’examen physique………………………….….…………113 VI- Données de la biologie……………………………………….….….........114 VII- La sérologie……………………………………………………..……...….118 VII- Les résultats de l’endoscopie……….................................................120 IX- Résultats de l’histologie……………………………………..…………...124 X- Résultats de l’échographie…………………………………..……………128 XI- Les manifestations hépatiques……………………………..……..……129 XI-1 Les hypertransaminasémies cryptogénétiques……..…….……….129 XI-2 Les autres hépatopathies…………………………..……..…………….130 XI-3 Modes de révélation des hépatopathies…….…………..…………...132 XI-4 Bilan biologique au cours des hépatopathies…............…………...133 XI-5 Biopsie hépatique………………………………………………………...134 XII-Le régime sans gluten………………………...……………..……………136 XII-1 Facteurs qui influencent l’observance au RSG…….….….……….136 XII-2 Effets du RSG………………………………………….…….………......139 XII-3 Les résultats de l’endoscopie et de l’histologie de contrôle en fonction de la forme clinique………………………...142 XIII-Evolution des hépatopathies sous RSG………………….…………..145 XIV- Suivi des patients – Apparition des complications……..………....148 XIV-1 Durée du suivi………………………………………………....………..148 XIV-2 Pathologies apparues au cours du suivi………………..………….149 XIV-3 Complications malignes…………………………………..……………150 XV-Mortalité et Influence du RSG sur la morbi-mortalité….…………..152 E- DISCUSSION…………………….………………….………….…….……...154 I-Caractéristiques démographiques………………….…...........................156 II- Antécédents de la population cœliaque…………..……………….......158 III- Délai diagnostique…………………………………………………….......160 IV- Manifestation digestives révélatrices de la maladie cœliaque……………………………….…………………….…………161 V- BMI (body mass index)……………………………….…........................163 VI- L’anémie et les autres carences…………….……...………………….165 VII- les manifestations extra-digestives de la maladie cœliaque……..166 VIII- Les maladies cœliaques dépistées…………………………………….170 IX- La sérologie………………………………………….…………………......170 X- L’endoscopie digestive haute et histologie………………………......171 XI- L’échographie……………………………………….…………………......173 XII- Le régime sans gluten (RSG) ………………..……….…………….......174 XIII- Les maladies auto-immunes associées………………………………178 XIV- Evolution des hépatopathies……………………………...................181 XV- Durée du suivi……………………………….……..…………………….182 XVI- Complications malignes………………….…….…............................182 XVII-Mortalité……………………………………..…..………………………..183 F- Conclusion……………………………………………..……..…………….184 G- BIBLIOGRAPHIE H- ANNEXES I- Listes des tableaux et figures II- Fiche maladie cœliaque III-Régime sans gluten ABREVIATIONS -AGA : American Gastroenterological Association -Ac AGA : Anticorps anti gliadine -Ac END : Anticorps anti endomysium -Ac DPG : Anticorps anti gliadine déaminée -Ac TTG: Anticorps anti transglutaminase -AV : Atrophie villositaire -CBP : Cirrhose biliaire primitive -CSP : Cholangite sclérosante primitive -l’EATL: Enteropathy associated T-cell lymphoma -ESPGHAN : Europeen Society of Pediatry, Gastroenterology, Hepatolology and Nutrition. -HAI : Hépatite auto-immune -HLA : Human leucocyte antigen -Ig : Immunoglobuline -LIE : Lymphocyte intra-épithélial -MC: Maladie cœliaque -Mies AI : Maladies auto-immunes -NASH : Non-alcoholic steato-hepatitis -NAFLD : Non-alcoholic fatty liver disease -NICE : National Institute for health and clinical excellence -RSG: Régime sans gluten -RSP : Retard staturo-pondéral -RP : Retard pubertaire -SR : sprue refractaire -TTG : Transglutaminase : Introduction 1 La maladie cœliaque est une pathologie auto-immune qui survient chez des sujets prédisposés génétiquement (HLA QQ2 ou DQ8) qui consomment du gluten. Sa prévalence est de 1% environ dans les pays d’Europe et d’Amérique du nord. La prévalence dans les pays du Maghreb semble tout aussi élevée. En effet, une étude récente ayant fait l’objet d’une thèse (Dr Bensmina) réalisée dans une population d’écoliers de la wilaya d’Alger, a retrouvé un taux de 0,59% de cœliaques. La maladie cœliaque est une maladie protéiforme. Les manifestations cliniques sont très variées. La forme clinique la plus connue est la forme typique, elle est caractérisée par une diarrhée chronique avec un syndrome carentiel. La forme atypique est plus fréquente, les signes digestifs sont frustes associés à des symptômes extra-digestifs. Le diagnostic de la maladie cœliaque chez l’adulte repose sur la sérologie cœliaque et l’histologie intestinale. Le régime sans gluten (RSG) est à l’heure actuelle le seul traitement disponible de la maladie cœliaque. Ce traitement purement diététique permet la régression des symptômes, l’amélioration du statut nutritionnel et la cicatrisation de la muqueuse intestinale. Le régime sans gluten permet également la prévention de certaines complications comme l’ostéoporose. Le pronostic de la maladie cœliaque est excellent lorsque le traitement est institué précocement. La mortalité est essentiellement due aux complications malignes qui sont tout de même très rares (<1%). Dans notre étude, nous nous proposons d’évaluer la prévalence des formes atypiques de la maladie cœliaque au sein de notre population de patients coeliaques. Les différentes caractéristiques cliniques, biologiques et évolutives de cette forme clinique sont analysées et comparées à la forme typique. 2 Dans le but d’établir leur prévalence dans la population de malades cœliaques étudiée, les maladies auto-immunes sont recherchées systématiquement. Une évaluation des facteurs prédictifs d’observance au régime sans gluten est réalisée afin d’identifier les patients susceptibles de ne pas respecter le régime et ainsi, de mieux organiser leur suivi. Cette thèse est organisée ainsi : La première partie du travail est consacrée à une revue bibliographique sur la maladie coeliaque de l’adulte. Dans la deuxième partie de la thèse, nous présentons notre étude sur la maladie coeliaque dans sa forme atypique et extra-intestinale. Dans cette partie, nous exposons la problématique du sujet, les buts du travail, la méthodologie, les résultats de l’étude et les commentaires. Nous terminons par une conclusion. 3 MALADIE COELIAQUE DE L’ADULTE 4 I-Introduction et définition La maladie cœliaque est définie selon la Société Européenne de Pédiatrie, Gastroentérologie, Hépatologie, et Nutrition, comme une entéropathie auto-immune secondaire à l’ingestion de gluten, chez des sujets prédisposés génétiquement (HLA-DQ2 ou DQ8) [1]. Elle est caractérisée par une inflammation chronique du grêle aboutissant à une atrophie villositaire, ce qui entravera les fonctions de digestion et d’absorption intestinales. Les symptômes peuvent être digestifs, extra-digestifs, voire absents, ces deux dernières situations sont actuellement les plus fréquentes [2] rendant le diagnostic plus ardu. La sérologie de la maladie cœliaque permet le dépistage des formes frustes ou silencieuses et la sélection des patients qui doivent bénéficier d’une biopsie intestinale [1]. L’histologie couplée à la sérologie est le seul moyen fiable de faire le diagnostic de la maladie cœliaque chez l’adulte [1]. Le traitement repose sur le régime sans gluten, c’est-à-dire un régime diététique sans blé, ni orge, ni seigle (l’avoine est autorisée à petites doses) [3]. La grande majorité des patients répondent au régime sans gluten. Lorsque ce dernier est bien suivi ; il permet l’amendement des symptômes, le rétablissement du statut nutritionnel et selon de nombreux auteurs, protège des complications [4, 5, 6] et réduit le taux de mortalité [7,5]. 5 II- Epidémiologie II-1 Epidémiologie générale La prévalence de la maladie cœliaque est représentée sous la forme d’un iceberg, la partie immergée représente le nombre total de cas non diagnostiqués dans une population donnée, à un moment précis, tandis que celle apparente, le nombre de malades diagnostiqués [8]. Cf. schéma 1 page 6 « the celiac iceberg ». La carte épidémiologique de la maladie cœliaque a changé au fil du temps. En effet, considérée autrefois comme une maladie rare, elle est actuellement décrite partout dans le monde. On note aussi qu’au cours de ces 30-40 dernières années, il existe une augmentation des nouveaux cas diagnostiqués, sans que l’on puisse donner une véritable explication à cet état de fait [9]. La nouvelle épidémiologie de la maladie cœliaque est caractérisée par une augmentation des nouveaux cas dans les pays où la prévalence est la plus élevée (USA et nord de l’Europe). Elle est de plus en plus décrite dans des pays où elle était auparavant très peu rapportée (pays asiatiques) [9]. 6 Cette situation est probablement due à l’occidentalisation des sociétés asiatiques en matière d’alimentation (surtout chez les jeunes) et à l’essor de la sérologie cœliaque qui permet de dépister de plus en plus de cas. La prévalence de la maladie cœliaque est d’environ 1% en Europe, aux USA, et à la nouvelle Zélande [10,11, 12], elle est tout aussi élevée dans les pays du Moyen Orient et du nord de l’Afrique. Dans ces pays la prévalence est de 0,14 à 1,17 % dans la population générale et de 2,4 à 44 % dans la population à haut risque [13]. En Tunisie (pays représentatif de l’Afrique du Nord) la prévalence chez les donneurs de sang est de1/157 à 1/179 [14,15]. En Algérie dans une étude oranaise, le taux d’enfants cœliaques atteint les 16,4 % chez les enfants diabétiques [16]. La plus haute prévalence au monde a été décrite dans la population sahraouie (5,8%) [17]. En Inde la prévalence est de 1% [18]. La maladie cœliaque est rarement diagnostiquée chez les individus provenant de l’Afrique sub-saharienne. Elle est néanmoins décrite chez les Africains des Caraïbes et les AfroAméricains [19]. L’incidence en Europe est de 2-13/100000/an, en Afrique du Nord des incidences aussi élevées ont été rapportées aussi bien dans la population générale [17] que dans la population à risque [20, 21]. L’incidence de la maladie cœliaque est en nette augmentation, elle a été multipliée par 2 à 6 au cours de ces deux dernières décennies [22]. II-2 Fréquence selon le sexe Il existe une nette prédominance de la maladie cœliaque chez la femme, en particulier chez l’adulte jeune [23]. Cette prédominance féminine comme pour les autres maladies auto immunes n’a, à l’heure actuelle, aucune explication précise [24]. Certains auteurs expliquent en partie cette prédominance par le fait que la femme consulte plus pour sa santé que l’homme [25, 26]. Dans la plupart des études, la population féminine représente 60 à 70 % des cœliaques diagnostiqués [27, 28], le sex ratio : H/F est d’environ 1/3,5 [29]. 7 II-3 Fréquence selon l’âge La maladie cœliaque peut survenir à tout âge. Chez l’adulte, il existe un pic entre 30 et 50 ans (30) et 4,4 à 12,4% des patients sont diagnostiqués à 60 ans et plus [31, 32]. III-Pathogénie et histoire naturelle III-1- Génétique La susceptibilité génétique est suggérée par une concordance élevée chez les jumeaux homozygotes (75%) comparativement aux jumeaux dizygotes (11%) [33]. Le risque de survenue d’une maladie cœliaque chez les parents du premier degré est de 5 à 10%, lorsque le statut HLA est inconnu [34, 35]; de même les parents du premier degré ont un plus grand risque que la population contrôle de développer une maladie auto-immune autre que la maladie cœliaque [36]. Les gènes codant pour les molécules du complexe majeur d’histocompatibilité (molécules HLA pour human leucocyte antigen) de classe II, situés sur le bras court du chromosome 6 (6p21) sont les principaux responsables de cette susceptibilité génétique. En effet, environ 95 % des patients cœliaques expriment des allèles HLA DQA1*05/ DQB1*02 (hétéro dimères DQ2) et la grande majorité des patients qui n’expriment pas DQ2, porte la combinaison DR4-DQ8 ou un seul des deux allèles codant pour l’hétéro dimère DQ2 [37, 38]. Le risque de survenue d’une maladie cœliaque est plus important lorsque l’individu possède les deux allèles du DQ2 (DQA1 et DQB1) par rapport à celui qui n’en possède qu’un seul [39]. Dans la population générale, le HLA-DQ2 est retrouvé dans 0 à 40% et le HLA-DQ8 dans 0 à 20% selon les pays (40). Il semble exister une corrélation entre la distribution dans le monde du HLA DQ2 et la consommation de gluten [41]. En effet, dans les pays du nord de l’Afrique où la consommation de blé est importante, le HLADQ2 est fréquent : 39% 8 dans la population sahraouie [17], 34% en Lybie [42], 28,3% en Algérie [43], 23,4% en Tunisie [43], et 25% au Maroc [43]; tandis que dans les pays subsahariens où la consommation de blé est moindre, le HLA DQ2 est moins fréquent [43] comme la Tanzanie (13,5%), le Rouanda (15,5%), et le Cameroun (7%). Parmi La population porteuse du HLA DQ2/DQ8, seuls 4% ont une maladie cœliaque, ce qui suggère d’autres susceptibilités génétiques. En effet, le HLA a une influence dans la survenue de la maladie dans environ 50 %, les autres influences génétiques jusque-là reconnues interviennent dans 3 à 4% [44], ce qui laisse dire que la cartographie génétique de la maladie cœliaque est loin d’être entièrement connue. Il semble que le HLA-G (Human leukocyte antigen G) dont la fonction est essentiellement immuno modulatrice, jouerait un rôle dans la pathogénie de la maladie cœliaque [45]. D’autres gènes non HLA ont été identifiés, près de 39 loci avec 57 associations indépendantes de signal ont été reconnus. Ces gènes interviennent essentiellement dans le fonctionnement des lymphocytes B et T. Tous réunis, ces gènes n’interviennent que dans 14% dans la survenue de la maladie cœliaque [46]. Ce qui est intéressant à savoir, c’est que certains de ces loci sont également retrouvés dans d’autres maladies auto-immunes comme le diabète type 1, et la polyarthrite rhumatoïde [47, 48]. Les gènes non-HLA qui sont incriminés n’ont pas tous été identifiés, ils sont impliqués dans les différentes fonctions immunitaires (Régions IL2-IL21, RGS1, 3p21, IL12A et IL18RAP, SH2B3, TAGAP et LPP, FRMD4B) [49, 50]. Le typage HLA fait actuellement partie intégrante des moyens diagnostiques de la maladie cœliaque chez l’enfant (ESPGHAN). Il reste chez l’adulte moins utilisé en pratique courante même dans les pays développés, réservé aux formes douteuses de maladie cœliaque. En effet, la valeur prédictive négative du HLA-DQ2 et DQ8 dans le diagnostic de maladie cœliaque est proche de 100% [51], par contre sa valeur prédictive positive est médiocre. Il est à noter que dans moins de 1%, les patients cœliaques n’ont pas le HLA prédisposant [38]. 9 III-2 Gluten Le gluten est le terme utilisé pour décrire la fraction protéique extraite du blé, orge et seigle, responsable de la maladie cœliaque. Il s’agit d’une fraction protéique alcoolo-soluble (insoluble dans l’eau) de céréale qu’on appelle prolamine, constituée de 33 acides aminés riche en glutamine (environ 15%) et proline (environ 30%) et dont le nom varie selon l’origine de la céréale: Gliadine pour le blé, hordéine pour l’orge et sécaline pour le seigle [52]. En raison de sa richesse en glutamine et proline, cette fraction protéique n’est pas digérée par l’intestin humain, c'est-à-dire qu’elle n’est pas dégradée par les enzymes gastriques, pancréatiques ou de la bordure en brosse de l’intestin [53]. III-3 Transglutaminase tissulaire (TTG) La transglutaminase tissulaire (TTG) est une enzyme ubiquitaire qui joue un rôle important dans la réparation tissulaire, la signalisation, la prolifération, la motilité cellulaire et l’endocytose [54]. Elle est présente aussi bien dans le cytosol cellulaire humain que dans l’environnement extracellulaire [55]. Dans le cytosol elle se trouve sous la forme inactive (closed conformation) et en présence de calcium, elle devient active (open conformation) exerçant, ainsi sa fonction catalytique [56]. La transglutaminase tissulaire se localise dans l’intestin au niveau de la musculeuse muqueuse qu’on appelle aussi « endomysium ». Il en existe plusieurs iso formes: TTG 2: exprimée dans l’intestin, le foie, le rein, le poumon et les capsules articulaires, TTG 3: exprimée dans la peau (dermatite herpétiforme), TTG 6: dans le cerveau (ataxie au gluten). Cette répartition ubiquitaire dans tout le corps, explique probablement les manifestations très variées de la maladie cœliaque. III-4 Facteurs environnementaux Des facteurs environnementaux ont été évoqués pour expliquer la survenue de la maladie cœliaque mais la plupart ne sont pas prouvés. 10 L’allaitement maternel aurait un rôle protecteur, surtout s’il est combiné avec une introduction progressive du gluten chez le nourrisson entre 4 et 6 mois. Cette recommandation, longtemps conseillée aux mamans qui ont des risques d’avoir des enfants cœliaques, est basée sur les résultats des études suédoise [57] et américaine [58], stipulant que la fenêtre immunologique entre 4 et 6 mois réduirait le risque de maladie cœliaque chez la population à risque, en particulier lorsque l’allaitement maternel est maintenu durant cette période. Néanmoins d’autres études récentes [59, 60, 61] montrent qu’il n y a pas d’influence de la date d’introduction du gluten ou de l’allaitement dans la survenue de la maladie cœliaque. Les autres facteurs environnementaux tels que les infections virales dans l’enfance (stimulent la sécrétion d’interféron α) [62], le tabagisme [63], la prise d’anti sécrétoires au long cours [64] ont été incriminés mais cela reste à prouver. Finalement, le seul facteur important qui peut intervenir dans la survenue de la maladie cœliaque, est le génotype HLA [65]. III-5 Pathogénie La maladie cœliaque est due à une double réponse immune aberrante : La réponse immune innée qui semble la plus précoce et la réponse immune adaptative. L’interaction entre les deux réponses n’est pas bien connue. III-5-1 Réponse immune adaptative Il est admis qu’à la faveur d’une augmentation de la perméabilité intestinale, la gliadine traverse l’épithélium pour atteindre le chorion, elle subit alors l’action de la transglutaminase tissulaire. La gliadine ainsi désaminée devient chargée négativement ; cette transformation facilitera aux cellules présentatrices d’antigènes (macrophages et cellules dendritiques) porteuses du HLADQ2 (HLADQ8) leur captation [66, 67], car ces dernières possèdent des poches chargées positivement ayant une grande avidité pour les peptides chargés négativement. Cette captation se fait en position P4 P6 et P9 pour le HLA-DQ2 et P1 P4 et P9 pour le HLA-DQ8 [40]. La gliadine est 11 ensuite présentée aux lymphocytes CD4+ du chorion spécifiques au gluten. Ces derniers activés induiront la production de cytokines qui stimuleront les plasmocytes via les lymphocytes B et produiront ainsi des anticorps spécifiques et la sécrétion de cytokines pro inflammatoires (TNFα, IFN gamma).Il y a aussi recrutement de cellules inflammatoires dans le chorion, contribuant ainsi aux altérations entérocytaires retrouvées dans la maladie cœliaque. (Cf. schéma 2 page 12) III-5-2 Réponse immune innée Les lymphocytes intra épithéliaux constituent une large population cellulaire qui joue un rôle sentinelle protecteur de la barrière épithéliale. Leur activation chronique entraîne les lésions épithéliales de la maladie cœliaque, et pour certains le lymphome T [50]. La gliadine (en particulier la fraction 12 p31-43α) augmentera la sécrétion de l’IL15 par les entérocytes qui exprimeront à leur surface un antigène MHC classe I (MIC-A) exprimé en cas de stress. L’IL15 activera les lymphocytes intra épithéliaux (LIE) CD8 exprimant le NK-G2D qui à leur tour stimuleront les cellules T Killer qui ont pour cible les entérocytes ayant à leur surface le MIC-A [68, 69, 70]. L’apoptose accélérée des entérocytes entraînera l’atrophie villositaire [71]. III-6 Histoire naturelle La maladie cœliaque symptomatique en l’absence de traitement va aboutir aux complications qui peuvent être redoutables tels que les lymphomes et les autres cancers mais aussi à l’ostéoporose, l’infertilité, ou les pathologies auto-immunes [72]. L’histoire naturelle de la forme silencieuse est moins bien connue, il semble que l’évolution se fasse rarement vers les complications [73]. La forme latente ou potentielle de maladie cœliaque peut évoluer vers l’atrophie villositaire, c’est pourquoi ces patients sont à surveiller [74, 75]. IV-Manifestations cliniques La maladie cœliaque est une maladie protéiforme, elle peut être révélée par une multitude de situations allant de la forme silencieuse à la forme sévère et des signes extra- intestinaux peuvent être associés [76]. Les manifestations gastro-intestinales les plus communément rapportées sont : la diarrhée, la douleur abdominale, la constipation, le ballonnement, la nausée et les vomissements. Lo et al [77] a noté la baisse importante des maladies cœliaques avec diarrhée, de 73% avant 1993 à 43% dans les années 2000. La modification du phénotype de la maladie cœliaque est confirmée par une large étude de cohorte américaine [78]. Dans les pays du Moyen- Orient, les résultats des études sont variables. Une étude récente iranienne [79] a montré que la diarrhée est moins fréquente que la dyspepsie qui est le symptôme prédominant. 13 Par contre dans une série pakistanaise, le symptôme le plus fréquemment rapporté est la diarrhée (dans environ 50%) [80]. Dans deux études libyennes le taux de diarrhée est de 53% [81] et 59% [82]. Par ailleurs, de nombreux patients cœliaques sont considérés initialement comme porteurs du syndrome de l’intestin irritable, comme le rapporte Green et al [28] dans son étude, où 36% des cœliaques sont considérés comme des syndromes de l’intestin irritable, de même en Iran 12% des syndromes de l’intestin irritables sont des cœliaques [83]. Devant cette grande hétérogénéité de la symptomatologie clinique, il était important de classer les formes cliniques de maladie cœliaque, afin d’unifier le langage des auteurs. Dès 2006, l’AGA a publié sur Gastroenterology [84] les différentes formes cliniques de la maladie cœliaque. La classification européenne d’Oslo, publiée en 2013 [85] est venue renforcée ces données, classant ainsi les maladies cœliaque en : • Forme classique, typique ou majeure : cette forme est caractérisée par une diarrhée chronique pouvant évoluer par poussées, liquide sans éléments anormaux, associée à une stéatorrhée, des douleurs abdominales, un ballonnement, une perte de poids et des signes carentiels évidents. • Forme atypique ou non classique : elle est caractérisée par des signes digestifs non spécifiques tels que : une dyspepsie, un RGO, une constipation, un syndrome de l’intestin irritable dans sa forme diarrhéique ou alternance diarrhée-constipation ou des douleurs abdominales vagues persistantes. Ces signes digestifs peuvent être associés ou pas à des symptômes extra digestifs souvent déroutants car souvent prédominants par rapport aux signes digestifs comme : L’anémie, l’ostéoporose, les troubles des règles, les avortements répétés, l’infertilité, la petite taille, les troubles hépatiques, les manifestations neurologiques et dermatologiques, l’aphtose buccale à répétition, l’hypoplasie de l’émail. 14 • Forme silencieuse, fruste ou oligosymptomatique : Dans cette forme, les signes cliniques sont très discrets ou absents et le diagnostic de maladie cœliaque est souvent fait fortuitement grâce à la sérologie dans la population à risque. Un interrogatoire minutieux peut révéler des signes tels qu’une baisse du bien- être psychophysique, une fatigue chronique ou une dépression (en rapport avec une hypoferritinémie) qui régressent après institution du régime sans gluten (RSG). • Forme latente ou potentielle : Il s’agit soit d’une maladie cœliaque déjà diagnostiquée auparavant et qui a bien répondu au régime sans gluten, avec normalisation de la muqueuse intestinale ou persistance d’une simple hyper lymphocytose épithéliale. Ou bien, il s’agit de patients ayant une sérologie positive sans anomalies de la muqueuse intestinale. Ces sujets sont à surveiller car il y a un risque de développement de l’atrophie intestinale, en particulier s’ils ont le HLA prédisposant. • Forme réfractaire : il s’agit une authentique maladie cœliaque, mais qui ne répond pas au RSG. La sprue réfractaire est de mauvais pronostic car il est possible qu’elle évolue vers les complications type jéjunite ulcéreuse ou lymphome T intestinal. V- Examen physique Il permet d’évaluer l’état nutritionnel, et cela en recherchant les signes carentiels cutanéo-muqueux, le retard staturo-pondéral et pubertaire ainsi que le calcul du BMI (body mass index). L’examen physique recherche aussi les signes de complications (masse, ascite) mais aussi les pathologies associées (hépatopathies, manifestations cutanées). 15 VI- Biologie Le bilan biologique standard évaluera le statut nutritionnel du patient : FNS, bilan du fer, folate, vitamine B12, vitamine D, calcémie ; phosphorémie, taux de protides, albuminémie, bilan lipidique, taux de prothrombine, ionogramme sanguin, glycémie [86]. En cas d’élévation des transaminases, celle-ci doivent être monitorées sous traitement [87]. Une élévation des phosphatases alcalines peut se voir en cas d’ostéomalacie [88]. VII- Sérologie de la maladie cœliaque Excellent outil diagnostique non invasif, la sérologie cœliaque est beaucoup plus précise que celle utilisée dans les autres maladies autoimmunes, elle permet de dépister les patients à risque et de mieux sélectionner les malades qui nécessitent une fibroscopie digestive haute avec biopsies intestinales [7]. Elle permet aussi le follow-up des patients traités [89]. Les premiers anticorps mis au point sont les anticorps anti Gliadine type IgA et IgG, mais en raison de leur moindre sensibilité IgA (80 à 90 %) IgG (75 à 85 %) et spécificité IgA (85 à 90%) IgG (75 à 90 %) par rapport aux anticorps de dernière génération [90], ils ne gardent encore leur place que chez l’enfant de moins de 18 mois (ce sont les premiers anticorps qui apparaissent dans la vie). Récemment des anticorps anti Gliadine désaminée DPG (deaminated gliadin peptid) ont été mis au point et semblent plus performants que les anticorps anti Gliadine conventionnels [91, 92]. Les anticorps les plus largement utilisés sont les anticorps anti Endomysium (Ac END) et les anticorps antiTransglutaminases (Ac TTG). 16 Les anticorps anti Endomysium sont obtenus par immunofluorescence indirecte. Le substrat utilisé est difficile à obtenir car il provient du tissu endomysial de l’œsophage de singe ou du tissu ombilical humain. De même, la technique est longue et plutôt laborieuse. Les résultats sont qualitatifs ou semi quantitatifs, et dépendent de l’expérience de l’opérateur [93]. Les anticorps anti Transglutaminases sont obtenus par tests Elisa, ils sont moins opérateurs dépendants, plus quantitatifs, ils durent moins longtemps et sont moins chers. L’utilisation de substrats autres que le porc de Guinée (Tranglutaminase humaine ou globules rouges humains) rend l’examen plus performant [93, 94, 95] (cf. tableau 1 page 18 résume la sensibilité et la spécificité des différents anticorps utilisés pour la maladie cœliaque). Une nouvelle génération d’AC TTG appelés O-TTG (Open conformation) par rapport aux AC TTG conventionnels (C-TTG pour Closed ou undefined conformation) serait plus sensible surtout pour le suivi des patients sous régime sans gluten [96]. Globalement, les Ac END ont une moindre sensibilité que les Ac TTG mais une meilleure spécificité avec une bonne valeur prédictive négative [97]. Les Ac DPG viennent en deuxième position en matière de sensibilité [97] après les Ac TTG, c’est pourquoi ces derniers sont utilisés pour le dépistage. Les tests rapides sont destinés surtout au dépistage dans la population pédiatrique, ils ont semble-t-il, une bonne corrélation avec ceux du sang total [98]. Les tests salivaires, pour le dépistage de la maladie cœliaque grâce aux Ac TTG par une méthode d’immunoassay, sont prometteurs (sensibilité de 97,4% et spécificité de 100%) [99]. En cas de déficit en IgA, situation associée à la maladie cœliaque 10 à 15 fois plus que dans la population générale [100], on dosera les IgG anti Gliadine déaminée, les IgG1 anti Endomysium et les IgG anti transglutaminase [97,101, 102]. 17 Sur le plan pratique, une sérologie combinée d’emblée faite d’Ac IgA TTG2 et Ac IgG DPG permet de ne pas négliger les cas de déficit en IgA [103]. Une sérologie positive seule est insuffisante pour poser le diagnostic de maladie cœliaque chez l’adulte, d’autant plus qu’il existe des situations de faux positifs (infections intestinales, défaillance cardiaque, hépatopathies chroniques, hypergammaglobulinémie) [104]. Il est donc nécessaire de compléter la sérologie par une endoscopie digestive haute avec biopsies intestinales, bien que l’on sache qu’il existe une bonne corrélation entre la sérologie et l’histologie, en effet, les taux importants d’anticorps sont observés lorsque l’atrophie est sévère [105, 106, 107]. Les véritables formes séronégatives (sans déficit immunitaire) sont rares, dans un centre de référence américain, parmi 72 atrophies villositaires séronégatives, seuls 28% étaient des maladies cœliaques [108]. Tableau 1 : Sensibilité et spécificité des anticorps 18 VIII- Endoscopie digestive VIII-1 Endoscopie digestive haute L’endoscopie digestive haute avec biopsies intestinales, constituent encore le pivot du diagnostic de la maladie cœliaque de l’adulte, le contrôle endoscopique sous RSG n’est pas indispensable au diagnostic mais utile pour le suivi des patients [109]. Des aspects caractéristiques peuvent s’observer en endoscopie dans le duodénum mais aussi dans le bulbe. Ces anomalies morphologiques du grêle peuvent avoir une distribution hétérogène (formes patchy) [110]. Des formes ultra courtes confinées au bulbe ont été aussi décrites (9 à 13 % des nouveaux cas de maladie cœliaque) [111] et plus rarement des formes étendues à l’iléon [112]. Cependant un aspect normal du duodénum n’élimine pas une maladie cœliaque [113]. Les aspects endoscopiques évocateurs mais non spécifiques de la maladie cœliaque sont : l’aspect en mosaïque, les nodules, les fissures des valvules conniventes, le scalopping (ou aspect hachuré), la perte partielle ou totale des valvules conniventes, la visibilité des vaisseaux sous muqueux et les érosions du duodénum [114, 115, 116]. Cf. image 1 page 20 : aspects endoscopiques de la maladie cœliaque. Les études qui ont évalué la valeur prédictive de ces différents aspects endoscopiques sont contradictoires. Leur spécificité est de 83 à 100 % et leur sensibilité est de 6 à 95% [115, 117, 118], ce qui explique la nécessité de faire des biopsies. Depuis 2006, les recommandations de l’AGA préconisent, pour le diagnostic de la maladie cœliaque, de faire les biopsies dans le duodénum distal à des sites différents, ainsi que deux biopsies supplémentaires au niveau du bulbe à 9 heures et 12 heures afin d’améliorer le rendement diagnostique [89, 119,120]. Les fragments duodénaux et bulbaires doivent 19 être mis dans des flacons séparés et il semble que prélever un fragment par biopsie augmente leur qualité [121]. La fixation est faite dans du formol à 10% de préférence (12 à 24 heures au maximum). Une congélation dans l’azote liquide d’une ou de plusieurs biopsies, est nécessaire en cas de suspicion de complication lymphomateuse afin de rechercher une population monoclonale T en biologie moléculaire et compléter l’étude immuno-histochimique. Les endoscopes à haute résolution avec magnification [122] et les nouvelles techniques d’endoscopie comme le NBI (Narrow-band imaging) [123] ont été utilisés, afin de permettre une meilleure distinction du détail de la muqueuse, d’améliorer la qualité de l’image et de mieux cibler les biopsies. De même l’endomicroscopie confocale [124] et l’OCT (optical coherence tommography) [125] ont montré une très bonne concordance entre l’aspect endoscopique et l’histologie. Ces nouvelles techniques endoscopiques sont néanmoins onéreuses et non disponibles dans tous les centres. La chromoendoscopie à l’indigo Carmen ou au bleu de methylene [126, 127] est peu coûteuse mais peut être fastidieuse pour l’endoscopiste. La technique du « water-immersion » est une technique facile et rapide, elle permet une meilleure visualisation des lésions patchy et du bulbe [128, 129]. Image : 1 20 VIII-2 Les autres examens endoscopiques VIII-2-1-La vidéo-capsule Sa sensibilité pour le diagnostic de la maladie cœliaque est de 89% et sa spécificité de 95% [130]. Elle ne peut pour le moment remplacer l’endoscopie digestive haute en raison de l’impossibilité d’avoir le statut histologique du patient [131], pour le moment, elle est réservée aux patients qui ne peuvent pas avaler le fibroscope ou en cas d’histologie duodénale normale avec sérologie positive à la recherche d’une atteinte plus distale [132]. Une étude par vidéo capsule a permis d’évaluer la distribution de l’atrophie villositaire le long de l’intestin [133] ; ainsi, l’atteinte duodénale continue et isolée est retrouvée dans 32%. L’atteinte duodénale continue, associée à une localisation jéjunale en patchy est la plus fréquente (59%), tandis que dans 3%, le jéjunum est atteint de façon isolée. La vidéo-capsule semble intéressante dans l’évaluation de la sprue réfractaire et lorsque l’on suspecte une complication maligne, elle précède alors l’entéroscopie au double ballonnet. VIII-2- 2 L’entéroscopie au double ballonnet ou l’entéroscopie poussée Ces examens ne sont pas utilisés en cas de maladie cœliaque ordinaire. Ils sont réservés aux formes distales et patchy de la maladie ou en cas de suspicion de complications 21 IX- Histologie IX-1 Rappel histologique La muqueuse intestinale siège des phénomènes d’absorption, est formée d’une multitude de replis qui servent à augmenter la surface absorbante. Sur le plan macroscopique ces replis sont representés par les valvules conniventes ; ce sont des évaginations de la sous muqueuse de l’ordre du cm, les villosités correspondent à des soulèvements du chorion de l’ordre du mm. Sur le plan microscopique, les microvillosités au pôle apical des enterocytes de l’odre du micron, constituent le plateau strié. La muqueuse intestinale est organisée en deux couches : la couche des villosités et la couche des glandes. IX-1-1 Les villosités : Elles sont tapissées par un revêtement cylindrique simple, reposant sur une membrane basale. La villosité comporte quatre types cellulaires (cf image 2 page 23) : • Les enterocytes : sont les cellules les plus nombreuses. Elles sont cylindriques et font 25 microns de haut. La cohésion cellulaire est assurée par les interdigitations des desmosomes et au pôle apical par des complexes de jonctions assurant l’obturation de l’espace inter cellulaire. Le noyau ovoïde et les organites classiques occupent le tiers basal. • Les cellules caliciformes : sont des cellules à mucus, elles ont la forme d’un calice évasé en haut. • Les cellules M : sont les cellules présentatrices d’antigènes, elles sont en contact avec les cellules immunocompétentes. • Les cellules endocrines. • Les lymphocytes intra epithéliaux (LIE) : dans l’épithélium normal, ils sont en nombre de 20 LIE pour 100 enterocytes, on parle de lymphocytose epithéliale lorsque leur taux est supérieur à 25 LIE/ 100 enterocytes. Il existe trois populations de LIE, le phénotype prédominant (75%) est le phénotype CD3+ TCRαβ+ CD8. 22 Tous les LIE expriment αEβ7 CD103+ (HML1), dont le ligand est la E-cadhérine présente sur les cellules épithéliales [134]. Le chorion de la villosité est un tissu conjonctif lâche, il renferme des vaisseaux sanguins et des fibres nerveuses. L’axe central de la villosité est occupé par un chylifère. Les cellules du chorion sont nombreuses: des macrophages, des polynucléaires, des plasmocytes à IgA, des lymphocytes (CD3+ CD4+) et des éosinophiles. IX-1-2 Les glandes de Liberkühn : ce sont des glandes tubuleuses simples qui s’ouvrent à la base des villosités. Une vingtaine de glandes débouchent autour d’une villosité. L’épithélium des glandes est constitué de cinq types cellulaires : • Les cellules indifférenciées à la jonction de la villosité-épithélium glandulaire • Les cellules caliciformes • Les enterocytes, moins nombreux que dans la villosité • Les cellules APUD, responsables de différentes sécrétions hormonales • Les cellules de Paneth, situées au fond des cryptes, sont des cellules sécrétrices exocrines. 23 IX-2 Histologie au cours de la maladie cœliaque Etape capitale dans le diagnostic de la maladie cœliaque chez l’adulte [89, 130], l’étude anatomopathologique, pour être optimale, doit apporter le maximum de renseignements. En effet, le nombre, le site (duodénum, bulbe) et l’orientation des biopsies doivent être mentionnés [135, 136], mais aussi, l’architecture villositaire (normale, atrophie et son degré), l’aspect de la lamina propria (présence de lymphocytes, plasmocytes, éosinophiles et parfois neutrophiles), la présence ou pas de glandes de Brunner, l’analyse des cryptes avec le calcul du rapport crypte/villosité [137] et enfin le comptage des lymphocytes intra épithéliaux (LIE). Le nombre des LIE est obtenu soit en comptant le nombre de lymphocytes pour 20 entérocytes au sommet de 5 villosités [138, 139] ou bien pour 50 entérocytes sur 2 villosités et faire la somme [137,140]. Une étude immuno histochimique doit être réalisée en cas de suspicion d’anomalies [141]. Les lésions intestinales caractéristiques de maladie cœliaque sont : • L’atrophie villositaire totale ou subtotale. • Les altérations épithéliales faites d’une double composante, des entérocytes aplatis cuboïdes, pluristratifiés, voire desquamés et une hyper lymphocytose intra épithéliale. • Une hypertrophie des cryptes • Une hypercellularité de la lamina propria, faite de lymphocytes, plasmocytes, et polynucléaires éosinophiles [142]. Pour une bonne interprétation de l’atrophie villositaire, la présence d’au moins trois axes crypte/villosité est nécessaire [143]. En réalité dans la maladie cœliaque les lésions intestinales peuvent être de gravité variable d’où la classification originale de Marsh publiée en 1992 [144] qui a classé les atteintes histologiques selon leur sévérité en 3 stades. La classification originale de Marsch a été modifiée par Oberhuber en 1999 [142] et c’est celle qui est la plus largement utilisée actuellement. Plus 24 récemment une nouvelle classification histologique est apparue, ayant pour but de simplifier et de standardiser la classification histologique de la maladie cœliaque, il s’agit de la classification de Corazza et Villanacci [145]. Dans cette dernière classification, il n’existe que 2 stades : le stade A pré atrophique qui correspond au type 1 et 2 de Marsh modifié et le stade B atrophique qui correspond aux type 3 de Marsh modifié (cf. tableau 2 page 26 : classifications histologiques de la maladie cœliaque et image 2 page 26: aspects histologiques des différents types de la classification de Marsh modifiée) [89]. La classification de Corazza et Villanacci ne fait pas encore l’unanimité mais semble plus pratique et offre une bonne reproductibilité inter observationnelle [146]. Les deux lésions les plus caractéristiques de la maladie cœliaque sont l’atrophie villositaire totale avec le ratio villosité/crypte inférieur ou égal à 1 et l’augmentation de la population lymphocytaire intra épithéliale qui est la lésion la plus précoce [147]; supérieure à 40 lymphocytes/ 100 entèrocytes dans la classification de Marsh Oberhuber ou supérieur à 25 pour Corazza et Villanacci [145]. Les études immuno histochimiques ou par cytométrie de flux permettent de mieux visualiser les lymphocytes intra épithéliaux et de determiner leur phénotype [141]. L’atrophie villositaire prédomine dans le duodénum, elle peut s’étendre au-delà du jéjunum de façon uniforme ou non. Sous RSG, la réparation intestinale semble prendre le chemin inverse [133]. Le degré de l’atrophie n’influence ni la nature ni la sévérité des symptômes [84, 148] ; par contre, l’étendue des lésions le long de l’intestin semble influencer la sévérité des manifestations cliniques [147, 149]. En somme, l’atrophie villositaire est un signe important de la maladie cœliaque, mais insuffisant lorsque considéré seul pour poser le diagnostic. Cf. algorithme décisionnel proposé par Pallav et al devant une atrophie villositaire, page 28 [150]. 25 Tableau 2 : Classifications histologiques de la maladie coeliaque 26 Les lésions histologiques associées en dehors de l’intestin La gastrite lymphocytaire Elle est définie par une augmentation des LIE en surface et au niveau de l’épithélium favéolaire > 25% des cellules épithéliales (N<10%). Sa prévalence est de 10 à 45 % dans la maladie cœliaque [151, 152, 153,154], elle est de siège antral et s’associe aux formes sévères de maladie cœliaque (symptomatique, syndrome carentiel, atrophie sévère) [155]. La colite lymphocytaire Elle est associée à la maladie cœliaque dans 2 à 20% [156]. Elle est suspectée devant la présence d’une diarrhée hydrique en dépit d’un RSG bien conduit. Elle évolue en général à son propre compte même sous RSG et elle est traitée par les corticoïdes, les immunosuppresseurs ou les antiTNF [156]. 27 Image 3 : Aspects histologiques (Marsh modifié) 28 29 X- Examens radiologiques L’échographie, l’entéro scanner, et l’entéro IRM ne sont réalisés qu’en cas de suspicion de complication [157, 158, 159]. L’ostéodensitométrie est réalisée systématiquement chez tous les patients cœliaques afin d’évaluer la densité osseuse [160, 161]. Si celle-ci est pathologique, elle doit être contrôlée après un an de RSG car il y a une possible amélioration des anomalies osseuses [162]. XI- Diagnostic positif Il repose, chez l’adulte sur l’association des trois critères suivants : (1) Des modifications caractéristiques de la muqueuse intestinale chez un patient qui consomme du gluten, (2) la présence d’anticorps spécifiques et leurs disparition sous régime sans gluten et (3) une rémission clinique complète sous régime sans gluten. La réparation histologique n’est pas exigée pour le diagnostic [84, 89, 163]. Le diagnostic positif est facile lorsque les trois critères sont réunis. Il peut être difficile dans certaines situations notamment en cas de sérologie négative (déficit en IgA), ou il faut alors doser les anticorps type IgG [164] ou encore, plus rarement, au cours des formes séronégatives vraies [165] qui se voient en particulier en cas de lésions intestinales non atrophiques. Dans ce cas, si le diagnostic est fortement suspecté, le HLA peut être utile [166]. Il est important d’associer à l’atrophie villositaire la sérologie car, bien que très évocatrice de maladie cœliaque, elle n’est pas pathognomonique, elle peut se voir associée ou non à une hyper lymphocytose épithéliale dans de nombreuses pathologies dont les allergies alimentaires, la pullulation bactérienne, les parasitoses (giardia), la sprue tropicale, l’entérite virale, la prise d’ AINS, la chimiothérapie, l’immunodéficience, la maladie de Crohn, la duodénite associée à l’helicobacter pylori et le lymphome [167]. 30 XII- Manifestations extra-digestives révélatrices de la maladie cœliaque Devant le grand polymorphisme clinique, il est important de connaître les modes révélateurs extra-digestifs de la maladie cœliaque car leur méconnaissance peut faire retarder le diagnostic. XII-1 Manifestations hématologiques XII-1-1 Anémie Le signe extra digestif le plus fréquemment révélateur de la maladie cœliaque est l’anémie [168]. Celle-ci peut soit s’intégrer dans un tableau de syndrome carentiel de gravité variable soit se présenter de façon isolée [169, 170], réfractaire au traitement martial oral [171]. Elle est présente dans 12 à 69 % lors du diagnostic de maladie cœliaque [168]. La cause de l’anémie dans la maladie cœliaque est multifactorielle [172, 173], la plus fréquente est le déficit en fer par malabsorption [168], (le fer est absorbé dans le duodénum). La carence martiale se traduit au début par une hypoferritinémie isolée, responsable de fatigue et de syndrome dépressif précédant l’installation d’une anémie microcytaire. L’anémie peut être aussi d’origine inflammatoire (la production de cytokines pro inflammatoires inhibe directement l’érythropoïèse et interfère dans l’homéostasie du fer) [174] ou due à une malabsorption des folates [168] (absorbés dans le jéjunum), ou de la vitamine B12 (la cause dans ce cas n’est pas très bien connue: diminution de l’acidité gastrique, pullulation microbienne, gastrite auto-immune, atrophie iléale, ou dysmotilité intestinale?) [168, 175]. Si le déficit en folate et vitamine B12 est profond, cela peut entraîner une pan cytopénie (anémie, thrombopénie, et leucopénie) [168], l’homocystéine est alors souvent élevée [176]. 31 XII-1-2 Autres manifestations hématologiques Elles sont plus rares, tel l’hyposplénisme, décrit surtout dans les formes sévères avec cavitations ganglionnaires, jéjunite ulcéreuse ou pathologie auto-immune associée [177]. Sa prévalence est très variée. Selon des études anciennes, l’hyposplénisme se voit chez 21 à 70 % des cœliaques [178, 179, 180]. L’hyposplénime est évoqué lorsqu’à l’hémogramme, il existe des corps de Howell- Jolly, des acanthocytes et une hyperplaquetose, mais ces signes peuvent être absents dans les formes modérées [179]. Le diagnostic est fait grâce à la scintigraphie au Technicium 99 et la mesure de la clearance des globules rouges [179,181]. L’hyposplénisme expose aux infections (comme pour la splénectomie) et justifie les vaccinations contre la grippe, le pneumocoque et la méningite [182]. Les accidents thrombo emboliques et coagulopathies : Il existe une association positive entre les accidents thromboemboliques et la maladie cœliaque [183], l’hyperhomocystéinémie en est la cause principale, son taux est directement corrélé au degré d’atteinte muqueuse [176]. Les déficits en protéines S et C ont été rapportés dans la maladie cœliaque, cependant les accidents hémorragiques sont rares [184]. XII-2 Manifestations hépatiques associées à la maladie cœliaque peuvent révéler l’entéropathie qui passe alors souvent au second plan. Elles sont de 2 types : les atteintes cryptogénétiques représentées par la cytolyse chronique, l’hépatite chronique, la fibrose sévère et la cirrhose cryptogénétique en opposition aux affections auto-immunes (la cirrhose biliaire primitive, l’hépatite auto-immune, et la cholangite sclérosante primitive) [185]. 32 XII-2-1 Hypertransaminasémie Elle se voit chez prés de la moitié des cœliaques non traités [186]. A l’inverse la prévalence de la maladie cœliaque chez les patients qui ont une hypertransaminémie inexpliquée est d’environ 9 % dans les séries anciennes [187, 188] et de 1% dans une étude récente iranienne [189]. Les taux de transaminases sont souvent modérés (1,5 à 6 fois la normale) et prédominent pour les ALAT [190]. La cause n’est pas encore élucidée, il y’aurait un passage important de toxines et d’antigènes dans la circulation porte en raison de l’augmentation de la perméabilité intestinale observée dans la maladie cœliaque active, entraînant ainsi une cytolyse [191]. Sur le plan histologique, les lésions ne sont pas spécifiques ; il s’agit d’une inflammation portale et lobulaire modérée, avec une hyperplasie des cellules de Kuppfer et une infiltration mononuclée [185]. Cette « hépatite cœliaque » régresse en général sous RSG [190,192]. XII-2-2 Atteintes hépatiques cryptogénétiques plus sévères Dans une étude américaine récente, la maladie cœliaque est retrouvée dans 2,5 % des cirrhoses cryptogénétiques, ce qui représente 2 fois plus que la population générale [193]. Une étude indienne de la même année, rapporte le taux de 10% de cœliaques chez les patients atteints d’hypertension portale intra hépatiques idiopathiques [194]. Les causes de ces pathologies plus sévères associées à la maladie cœliaque ne sont pas connues, mais le gluten a été incriminé, devant l’amélioration voire la régression de ces anomalies hépatiques sous régime sans gluten [195,196]. 33 XII-2-3 Hépatopathies auto-immunes XII-2-3-a Cirrhose biliaire primitive (CBP) La fréquence de la maladie cœliaque chez les patients porteurs de CBP est estimée de 0 à 11 % [199]. Tandis que la fréquence de la CBP chez les cœliaques est de 6 % [197, 198]. Les symptômes tels que l’amaigrissement, la malabsorption et l’ostéoporose sont communs aux deux pathologies, si bien que si l’on diagnostique l’une d’elles, l’autre risque de passer inaperçue, d’où l’intérêt du dépistage commun [186]. Contrairement à l’hypertransaminasémie cryptogénétique, le RSG ne semble pas améliorer le statut hépatique au cours de la CBP [186, 199, 200]. XII-2-3-b Hépatite auto-immune(HAI) Dans une étude hollandaise récente, la prévalence de la maladie cœliaque est estimée à 2,8% chez les malades porteurs de HAI [201]. Des études plus anciennes ont rapporté des taux plus élevé : 4% pour Volta et al (étude sérologique) [202] et de 6,4% dans une autre [203]. Par ailleurs, Novacek et al rapporte le taux de 1,6% d’HAI (série de 178 patients cœliaques) [204]. Cette association est en partie expliquée par une susceptibilité HLA similaire [205]. XII-2-3-c Cholangite sclérosante primitive (CSP) L’association maladie cœliaque et CSP n’est pas aussi bien documentée que celle de la CBP ou de l’HAI, néanmoins elle semble être due à une susceptibilité génétique commune [206]. Les études sont peu nombreuses, anciennes, et d’effectif réduit. Volta et al a retrouvé une prévalence de 1,6% de maladie cœliaque dans une population de CSP [198]. Dans une série suédoise de cœliaques la prévalence de la CSP est de 4,4% ce qui représente un taux 4 à 8 fois plus élevé que dans la population générale [207]. Quand à l’effet du régime sans gluten sur la CSP, 34 la plupart des études ne se sont pas prononcées, ou ont des résultats contradictoires [208, 209]. Le dépistage de ces hépatopathies dyimmunitaires est recommandé au cours de la maladie cœliaque [210], il est alors préférable d’utiliser les Ac END, car les Ac TTG peuvent donner des résultats faussement positifs dans cette situation [210]. XII-2-4 Autres pathologies hépatiques non dysimmunitaires Telles que la NASH et /ou la NAFLD sont très prévalentes dans la population générale, et la plupart des auteurs pensent que l’association à la maladie cœliaque n’est que pure coïncidence [211]. XII-2-5 Syndrome de Budd Chiari Il s’agit d’une pathologie rare, il a été particulièrement décrit associé à la maladie cœliaque dans la population nord- africaine [212, 213, 214, 215]. On ne sait pas si cela est du à des facteurs génétiques ou environnementaux. Des déficits en protéine C et antithrombine III ont été détectés [216], de même la malabsorption de la vitamine K a été incriminéé dans l’origine du déficit transitoire en protéine C et S [216]. XII-3 Endocrinopathies Les endocrinopathies dysimmunitaires tels que le diabète type 1, la thyroïdite d’Hashimoto, ou la maladie d’Addison peuvent être associées à la maladie cœliaque. Il existe aussi d’autres situations révélatrices de la maladie cœliaque, plus vue en endocrinologie qu’en gastroentérologie comme le retard staturo-pondéral ou le retard pubertaire [217]. 35 XII-3-1 Diabète type 1 L’association diabète type 1 et maladie cœliaque est probablement due à la même prédisposition génétique, en effet 70% des diabétiques type 1 ont l’hétéro dimère DQA1*05 DQB1*0201 porté par 90% des cœliaques [218,219]. La prévalence de la maladie cœliaque dans le diabète type 1 est supérieure à 16% [220, 221]. Dans une étude algérienne, elle est de16,4 % chez les enfants diabétiques [16]. Il semble que le diabète survient plus précocement dans la vie lorsqu’il est associé à la maladie cœliaque [222]. Les pathologies auto-immunes sont d’autant plus associées quand le diabète est accompagné de maladie cœliaque [223]. Les symptômes cliniques qui orientent vers une maladie cœliaque chez un diabétique sont la perte de poids inexpliquée, les vomissements et les hypoglycémies inexpliquées, mais ces symptômes peuvent aussi exister chez le diabétique sans entéropathie; d’où la nécessité de dépister systématiquement la maladie cœliaque chez le diabétique [224]. Ce dépistage est important car l’association entre les deux maladies augmenterait la morbidité du diabète [225]. Le traitement est plus difficile à assumer par les patients, car en plus de l’insulinothérapie, ils doivent suivre un double régime [226]. Les résultats des études qui ont évalué l’effet du régime sans gluten sur le diabète sont contradictoires [226,227, 229]. Selon une étude récente [230] les cœliaques ont moins de risque de développer un diabète type 2 ou un syndrome dysmétabolique et cela indépendamment du BMI. Il est à savoir que lors du diagnostic, les cœliaques peuvent être en surpoids ou obèses [231, 232] et la mise en route du régime sans gluten peut augmenter encore le BMI, d’où l’intérêt d’une bonne prise en charge diététique [233]. 36 XII-3-2 Thyroïdite auto-immune (thyroïdite d’Hashimoto et maladie de Grave) Elle est associée à la maladie cœliaque 10 fois plus que dans la population générale [234], alors que le diabète survient en général dans l’enfance, les thyroïdites apparaissent plus tard à l’âge adulte (4ème décade) [235, 236]. L’institution précoce du régime sans gluten ne semble pas prévenir de la survenue des thyroïdites [236,237, 238], mais certains auteurs pensent que le risque de survenue de pathologies auto-immunes diminue avec la durée de l’exposition au gluten [237, 238, 239]. XII-3-3 Maladie d’Addison ou insuffisance surrénalienne primitive autoimmune Il s’agit d’une maladie rare, les séries qui ont estimé la prévalence élevée de la maladie cœliaque dans cette pathologie sont de petit effectif [240, 241]. Dans une grande série suédoise de cœliaques, un taux de 0,25% soit 11 fois plus élevé que celui des contrôles a été retrouvé [242]. XII-3-4 Petite taille idiopathique En cas de retard de croissance, la maladie cœliaque est plus prévalente que le déficit en hormone de croissance [243, 244]. La prévalence de la maladie cœliaque chez les enfants de petite taille est de 2 à 8 % [245, 246, 247]. Ce retard de croissance peut être isolé sans aucun signe digestif associé [248, 249, 250]. Chez le cœliaque diagnostiqué à l’âge adulte, la petite taille est plus fréquente chez l’homme que chez la femme [251]. 37 XII-4 Manifestations dermatologiques La dermatite herpétiforme est la manifestation cutanée par excellence de la maladie cœliaque [252]. Il s’agit d’une authentique maladie autoimmune liée au gluten [253] où il existe les même prédispositions génétiques que la maladie cœliaque et les mêmes auto anticorps [254, 255]. Contrairement à la maladie cœliaque son incidence semble diminuer [256] et 80 % des dermatites herpétiformes ont une maladie cœliaque associée [257], par contre seuls 25 % des cœliaques ont une dermatite herpétiforme [257]. Il s’agit d’une éruption papulo-vésiculaire, en général symétrique au niveau des coudes, genoux, fesses, et dos [255]. L’atteinte se voit surtout chez l’homme (M/F : 2) [258]. La biopsie cutanée montre des micros abcès, avec des neutrophiles et des éosinophiles ainsi qu’une infiltration lymphocytaire [259]. L’étude par immunofluorescence directe de la peau saine peut retrouver au niveau des papilles dermiques des dépôts d’IgA de type TTG3 ; signe pathognomonique de la dermatite herpétiforme [260]. Le traitement repose sur le RSG seul ou associé à un traitement médical (dapsone) jusqu'à ce que l’effet du RSG se fasse ressentir [261]. D’autres manifestations cutanées ont été décrites de façon moins fréquente; telles que l’urticaire et les dermatites atopiques [262], l’œdème angioneurotique héréditaire [263], la vascularite cutanée [264], l’érythème nécrolytique migrant [265], l’érythème noueux [266], le psoriasis [267], le vitiligo [268], et l’alopécie [269]. 38 XII-5 Manifestations neurologiques Les plus décrites associées à la maladie cœliaque sont : l’ataxie au gluten, la neuropathie périphérique, et l’épilepsie idiopathique. XII-5-1 Ataxie au gluten Il s’agit d’une maladie auto-immune caractérisée par des altérations du cervelet [253]. De nombreuses études ont retrouvé une prévalence élevée du taux d’anticorps anti gliadine chez ces patients (23 %) [270]. La pathogénie est liée à une antigénicité croisée entre les épitopes antigéniques des cellules de Purkinje et le gluten [271], des anticorps anti TTG 6 ont été identifiés chez ces patients [272]. Sur le plan clinique, il s’agit d’une ataxie pure ou associée à des myoclonies. Le début est souvent progressif autour de la cinquantaine [253]. Moins de 10 % des patients ont des symptômes gastro-intestinaux associés et environ le tiers a une entéropathie à la biopsie intestinale [253]. L’IRM peut montrer une atrophie cérébelleuse. Le traitement repose sur le RSG qu'il y ait ou pas une maladie cœliaque associée. Le suivi régulier permettra de constater la négativation des anticorps et la disparition progressive des symptômes au bout de 6 à 12 mois. Plus le RSG est institué précocement, meilleurs seront les résultats [253]. 39 XII-5-2 Neuropathie périphérique La maladie cœliaque associée est souvent asymptomatique. Les hypothèses etiopathogéniques évoquées sont : les anticorps anti gangliosides retrouvés dans 60 % [273], les déficits en vitamines B6, B12, et E [274], les anticorps anti transglutaminase [275, 276] et l’action toxique directe du gluten. Les symptômes décrits sont des brûlures, des picotements, et un engourdissement des membres, avec à l’examen une baisse de la sensibilité. L’EMG est normal ou montre des anomalies minimes. Certains auteurs ont décrit l’effet bénéfique du régime sans gluten, mais d’autres non [277]. XII-5-3 Epilepsie idiopathique Elle est associée à la maladie cœliaque dans 0,78 à 9,1% des cas [278, 279, 280], l’origine est probablement multifactorielle (nutritionnelle, immunologique, neuroendocrine et environnementale), d’autres études n’ont pas retrouvé cette association [282]. Plus rarement ont été décrits des calcifications occipitales associées à l’épilepsie et la maladie cœliaque. Ces cas sont rapportés essentiellement par les Italiens, les Argentins et les Espagnols [282], l’épilepsie est le plus souvent occipitale, réfractaire au traitement médical, et répond bien au RSG [283]. XII-5-4 Manifestations psychiatriques La dépression, l’anxiété, l’apathie, l’irritabilité réfractaires au traitement médical [284, 285, 286] ou plus gravement les démences et les psychoses ont été décrites associés à la maladie cœliaque. Les causes sont difficiles à établir; a été évoqué le déficit en tryptophane qui entraîne une perturbation des fonctions centrales sérotoninergiques [287], mais aussi des déficits en vitamines B6, B12 et acide folique [288]. 40 Ces manifestations peuvent être influencées par le régime sans gluten [291, 289], alors que d’autres études ne retrouvent pas ce bénéfice [290]. XII-6-Manifestations gynécologiques et troubles de la reproduction Les études qui ont recherché l’association maladie cœliaque et stérilité ont des résultats contradictoires. En effet, dans certaines études la prévalence de la maladie cœliaque est élevée chez les femmes infertiles [291, 292, 293, 294]. Une méta-analyse récente [295] a trouvé que la maladie cœliaque non diagnostiquée représentait un facteur de risque de stérilité, alors que lorsque les patientes sont connues cœliaques et sous régime, le risque rejoignait celui de la population générale. Dans une autre méta-analyse encore plus récente, la prévalence de la maladie cœliaque au cours de la stérilité inexpliquée est de 3,2% [296]. Par déduction, certains auteurs expliquent la baisse de procréation chez la femme cœliaque, par le fait qu’il existe un raccourcissement de la période d’activité génitale (ménarchie tardive et ménopause précoce) [297]. D’autres études ne confirment pas cette association [298, 299, 300]. Les complications de la grossesse (avortements à répétition, petit poids de naissance) ont également été décrits dans la maladie cœliaque non traitée [301, 302, 303, 304, 305]. Ces anomalies sont dues à la malabsorption de l’acide folique, du zinc, et du sélénium [306, 307, 308], ainsi qu’à une déficicience en ghreline et leptine [309], mais aussi à une dysrégulation du système immunitaire [310]. XII-7 Manifestations rhumatologiques et osseuses Lors du diagnostic de maladie cœliaque, le tiers des patients a une ostéoporose, le tiers une ostéopénie et le tiers restant une ostéodensitométrie (DMO) normale [311, 312, 313]. Par ailleurs, la prévalence de la maladie cœliaque chez l’ostéoporotique est élevée pour certains [314, 315], et identique à la population générale pour d’autres [316,317]. Les anomalies osseuses au cours de la maladie cœliaque sont 41 d’une part dues à la malabsorption du calcium et de la vitamine D [318] et d’autre part dues à l’inflammation chronique de l’intestin (libération de cytokines pro inflammatoires telles que l’IFNα, IL1, IL6) [319, 320]. Le régime sans gluten normalise la masse osseuse mais pas chez tous les patients [321]. Il semble que la réparation osseuse soit d’autant plus importante que le régime est institué avant la survenue du pic de formation osseuse [322, 323, 324, 325]. De nombreux facteurs interviennent dans la reconstitution de la masse osseuse ce sont : l’âge, le degré d’ostéopénie lors du diagnostic, la compliance au régime sans gluten, la ménarchie, la ménopause, le BMI, la consommation de calcium, l’activité physique, et l’utilisation de corticoïdes [312, 325,326, 327]. Quant au risque fracturaire chez les cœliaques, il a été évalué par de nombreuses études mais leur interprétation est difficile en raison de la grande hétérogénéité de ces études et des méthodologies différentes utilisées [328] ; néanmoins, la plupart des auteurs suggèrent une élévation du risque fracturaire chez le cœliaque [329, 330, 331]. Ce risque de fracture chez les cœliaque est de 43% plus élevé que la population témoin [332]. Dans l’étude de population d’Olmsted County, les cœliaques ont deux fois plus de risque de fractures que les contrôles, et ce risque persiste en dépit du régime sans gluten [333]. Les mêmes résultats sont obtenus dans l’étude récente de Lebwohl et al, reliant la persistance du risque fracturaire à la persistance de l’atrophie villositaire [334]. L’ostéomalacie : symptomatique a rarement été décrite dans la maladie cœliaque, le plus souvent il s’agit de cas cliniques publiés [335]. Elle est due à une malabsorption sévère et prolongée de la vitamine D, pouvant entraîner en cas de diagnostic tardif, des déformations osseuses irréversibles [336]. Les cas cliniques rapportés sont en général des maladies cœliaques sans signes digestifs [337]. Les arthropathies associées à la maladie cœliaque sont séronégatives, non érosives, non déformantes, périphériques ou axiales avec ou non spondyloarthropathie ou saroiléïte. Leur prévalence est de 0 à 26% [338, 339, 340, 341]. 42 Une étude plus récente les a estimés à 37%, avec une réponse clinique pour certains des patients au régime sans gluten [342]. Le syndrome de Sjogren-Gougerot est la manifestation rhumatologique la plus fréquemment associée à la maladie cœliaque [343, 344], 56% des patients porteurs du syndrome de Sjogren-Gougerot ont l’haplotype HLADQ2 [345]. Plus rarement des manifestations cardiaques type cardiomyopathies ont été rapportées associées à la maladie cœliaque [346, 347, 348, 349, 350], ou des manifestations plus discrètes mais parfois invalidantes telles que l’hypoplasie de l’email [351, 352] ou l’aphtose buccale récidivante [353, 354]. Enfin la maladie cœliaque peut être associée à des désordres génétiques tels que le syndrome de Turner (2,2 à 6%) [355, 356, 357] ou la trisomie 21 dont la prévalence la plus élevée a été retrouvée dans une population suédoise de trisomiques (16,9%) [358, 359, 360, 361]. XIII- Complications de la maladie cœliaque Elles peuvent être soit d’ordre nutritionnelles suite à la malabsorption sévère et prolongée pouvant être à l’origine des différentes manifestations extra- intestinales dont certaines ont été citées plus haut (ostéopénie, fracture, infertilité, petite taille). Il peut s’agir également de complications beaucoup plus sévères, connues comme responsables de la mortalité chez le cœliaque [362] mais heureusement plus rares (<1%) [363, 364, 365] telles que, la sprue réfractaire, la jéjunite ulcéreuse, le lymphome T ou EATL (les plus fréquents), le carcinome du grêle, et le lymphome B abdominal [366]. Ces complications peuvent soit survenir immédiatement après le diagnostic de la maladie cœliaque (situation la plus fréquente) soit apparaitre longtemps après le diagnostic de l’entéropathie (situation de meilleur pronostic) [366]. 43 Des facteurs de risque de complications ont été identifiés; ce sont la mauvaise compliance au régime sans gluten, la forme clinique majeure ou typique [85], le délai diagnostic et l’âge au moment du diagnostic [367] ainsi que l’homozygotie pour le HLA DQ2 [368], ce qui a fait ressortir un score pronostic (Proconsul score) [367], basé sur le délai diagnostic et la forme clinique. Etabli dés le diagnostic de la maladie cœliaque, ce score permet ainsi de sélectionner précocement les patients à risque de malignité. XIII-1 Sprue refractaire Elle est définie par la reprise ou la persistance des symptômes cliniques et la présence d’une atrophie villositaire en dépit d’un régime sans gluten bien conduit de 6 à 12 mois [369, 370, 371]. La sprue réfractaire est classée en type 1 (SR1) lorsque le phénotype des lymphocytes intra-épithéliaux est normal et de type 2 (SR2) si la majorité des lymphocytes intra-épithéliaux a un phénotype aberrant (372,373), cette dernière a un risque accrue de se transformer en lymphome T (EATL) [374]. La sprue réfractaire est une entité rare, les séries publiées proviennent surtout de centres référents de maladie cœliaque [375, 376]. Elle représente seulement 10 à 18% des patients envoyés aux centres référents pour maladie cœliaque réfractaire [377, 378]. Dans les études de population, elle est estimée à 0,7% [364]. L’incidence exacte n’est pas bien connue [379], aux USA, elle est de 0,006/100000 personnes/an [380]. Elle est plus fréquente chez la femme et rarement développée avant 30 ans, elle se voit le plus souvent aux alentours de 50 ans [375, 381, 382]. Les symptômes cliniques sont essentiellement la diarrhée, les douleurs abdominales, l’amaigrissement important (383) et le syndrome carentiel sévère [373, 375,382, 383]. Les maladies auto-immunes lui sont souvent associées [383]. Chez la majorité des patients, la sérologie cœliaque est négative témoignant d’une bonne observance au régime sans gluten [375, 381, 382]. 44 Sur le plan endoscopique, en plus des signes d’atrophie [381, 382], une jéjunite ulcéreuse peut être retrouvée avec des ulcérations pouvant dépasser un centimètre (en particulier pour la SR2) [381, 382]. Des adénopathies sont présentes dans plus de 50% des cas [382]. Le syndrome de cavitation ganglionnaire mésentérique, caractérisé par une transformation kystique des ganglions mésentériques, associé ou pas à une atrophie splénique est une entité très rare, il est souvent associé à la SR2 [382, 384). Le diagnostic positif de la sprue refractaire est un diagnostic d’exclusion, il repose sur l’approche diagnostique suivante : • La première étape consiste à s’assurer qu’il s’agit bien d’une maladie cœliaque et éliminer les autres causes d’atrophie villositaire [373]. • Une fois la maladie cœliaque confirmée, il faut éliminer les causes de non réponse au régime sans gluten, la plus fréquente étant la mauvaise observance au régime (36 à 51%) [377, 378] ; viennent ensuite la colite microscopique, la pullulation microbienne, le déficit en lactase, l’insuffisance pancréatique et le syndrome de l’intestin irritable [373, 377, 378, 385]. • Enfin à la dernière étape les complications malignes doivent être éliminées surtout devant des signes évocateurs comme la fièvre inexpliquée, l’amaigrissement important, le saignement digestif, ou l’obstruction intestinale [386, 387, 288]. Le diagnostic de sprue réfractaire établi, il faut classer la sprue en SR1 ou SR2 grâce à l’étude des lymphocytes intra-épithéliaux. Ainsi la SR2 est caractérisée par des LIE de phénotype aberrant (perte des marqueurs de surface CD3, CD4, CD8 et persistance en intra cytoplasmique du CD3) dans > 50% lorsque l’étude se fait par immuno histochimie ou dans 20 à 25 % par cytométrie de flux [389, 390, 391]. Cette classification a un intérêt pronostic; en effet, la SR1 est de meilleur pronostic puisque la survie à 5 ans est de 80 à 96% alors que celle de la SR2 est de 40 à 58% [365, 386]. Le risque de lymphome en cas de SR2 est 45 de 60 à 80% à 5 ans du diagnostic [382, 383], par contre ce risque est plus faible en cas de SR1 [382, 383]. En plus du type histologiques, d’autres facteurs influencent péjorativement le pronostic de la sprue réfractaire ; ce sont : l’âge avancé lors du diagnostic (> ou = à 65 ans), l’hypo albuminémie, l’anémie < 11g/dl, et l’atrophie villositaire totale [382]. XIII-2 Jéjunite ulcéreuse Les ulcérations siègent surtout au niveau du jéjunum parfois dans l’iléon rarement dans le côlon [392]. Elles sont de taille et de profondeur variables. La cause est inconnue, mais surviennent surtout dans les formes compliquée de maladie cœliaque (sprue réfractaire, cavitation ganglionnaire, lymphome). Le tableau clinique est fortement évocateur de complication: diarrhée, douleur abdominale, fièvre, anorexie. L’étude anatomopathologique doit être minutieuse, avec immuno histochimie qui doit étudier la population monoclonale lymphocytaire intra épithéliale [393]. L’évolution peut se faire vers les complications: hémorragie, perforation, obstruction [394]. La jejunite ulcéreuse peut coexister avec un lymphome de même que l’évolution vers un lymphome est possible [392, 394]. XIII-3 Lymphomes Les lymphomes compliquant la maladie cœliaque sont de type T ou B. Dans une série suédoise de cœliaques suivis sur plus de 20 ans, le risque de lymphome est de 0,48% [395] avec une prédominance du lymphome non T. Le risque relatif de lymphome est 3 à 6 fois plus élevé chez le cœliaque non traité et le risque rejoint celui de la population générale après plus de 5 ans de régime sans gluten [395]. Néanmoins la protection du régime sans gluten des complications est controversée [396]. La plupart des lymphomes siègent dans le jéjunum [397] bien que les localisations iléale, colique, ou gastrique ait été décrites [397]. 46 Parmi les lymphomes T, celui qui est le plus lié à la maladie cœliaque est l’EATL (enteropathy associated T-cell lymphoma), Il en existe deux types [398, 399]: le type 1 associé à la maladie cœliaque prédominant dans les pays anglo saxons, et le type 2 décrit en Asie non associé à la maladie cœliaque. Les mécanismes de la lymphomagénèse sont probablement multifactoriels. Le passage de la maladie cœliaque vers le lymphome se fait par l’intermédiaire d’un état pré néoplasique qui est la sprue réfractaire. En effet, les lymphocytes intra épithéliaux aberrants stimulés par l’incontrôlable hyper expression de IL-15 produite par les entérocytes des patients qui ont une SR2, permettant ainsi l’émergence de cellules T clonale et l’apparition du lymphome [400]. Il n’existe aucun traitement qui puisse prévenir ce passage de la SR au lymphome [370, 372]. Néanmoins, des cas de lymphome sans passage par la SR ont été décrits [372]. L’âge moyen de survenu de l’EATL est de 60 ans, et il n y a pas de prédominance de sexe [401]. Le diagnostic est évoqué devant des symptômes [386, 402] tels que, la diarrhée, les douleurs abdominales, l’amaigrissement inexpliqué, la fièvre, les sueurs nocturnes, une hyperéosinophylie [403] ou bien au cours de situations d’urgence lors d’une laparotomie pour occlusion, hémorragie ou perforation. Le lymphome est le plus souvent uni focal de siège grêlique proximal, rarement multifocal colique ou rectal [404]. Le diagnostic de l’EATL est évoqué grâce aux examens morphologiques du grêle qui sont la vidéo capsule [405], l’entéroscopie au double ballonnet [406, 407], le PET scan [408] et l’entéro IRM [409]. Comme pour toute tumeur, l’étude anatomopathologique est cruciale pour faire la preuve du lymphome et le classer. L’EATL type1 est à l’immuno histochimie : CD3+, CD4-, DC8-, CD7+, CD5-, CD103+, CD56-, TCRβ+/-, et la plupart sont CD30+ ( 410). Le phénotype cytotoxique de l’EATL type1 est : perforine+, grazyme B+, et TIA-1+, reflétant le développement de la tumeur à partir des lymphocytes intra épithéliaux cytotoxiques [411]. 47 L’association au lymphome B est moins bien documentée. Elle est due probablement à l’inflammation chronique et le caractère auto-immun de la maladie [381, 412]; ce dernier aurait un meilleur pronostic que le lymphome T associé à la maladie cœliaque [413, 414]. XIII-4 Adénocarcinomes du grêle L’adénocarcinome du grêle est une tumeur digestive rare (<5% des cancers gastro-intestinaux) [415]. Dans une ancienne cohorte de 395 cœliaques, la prévalence de l’adénocarcinome du grêle est de 8% [416]. Dans une autre étude, la prévalence de la maladie cœliaque en cas d’adénocarcinome du grêle est de 13% [412]. D’après des données suédoises, le risque relatif d’adénocarcinome intestinal est 10 fois plus élevé en cas de maladie cœliaque [4]. Le mécanisme de la carcinogenèse dans la maladie cœliaque est inconnu, les hypothèses évoquées sont : la clearance importante de carcinogènes environnementaux en raison de l’augmentation de la perméabilité intestinale, l’inflammation chronique, la stimulation antigénique chronique, la sécrétion de cytokines pro-inflammatoires, l’auto-immunité, les déficiences nutritionnelles (en particulier les déficits en vitamines A et E) [417, 418] et les multiples mutations génétiques [419]. De même, la mauvaise compliance au régime sans gluten semble jouer un rôle non négligeable dans la survenue de l’adénocarcinome [412], bien qu’une étude ait montré que le régime n’était pas protecteur [420]. Les symptômes cliniques non spécifiques mais évocateurs de complication tels que, les douleurs abdominales, l’anémie, le saignement, les signes obstructifs, la perforation et l’amaigrissement important [421], doivent motiver les explorations adéquates. Bien qu’il n’existe pas de standardisation des examens morphologiques qui permettent le diagnostic, ce dernier reposera sur les moyens existant dans chaque centre. L’entéro scanner et l’entéro IRM sont des moyens non invasifs [422] mais peuvent être limités par l’irradiation pour le premier et l’insuffisance de distension grêlique pour le 48 second. La vidéo capsule endoscopique serait un bon moyen diagnostic ; elle aurait une meilleure spécificité que la radiologie [422], mais ne permet en général pas de déterminer le siège exact de la tumeur qui est le plus souvent proximale dans le grêle [412] et ne donne pas la preuve histologique ; sans compter le risque d’incarcération [422]. L’entéroscopie au double ballonnet paraît alors une alternative de choix. Le pronostic de l’adénocarcinome est mauvais, la survie à 5 ans est de 14 à 33% [423, 424, 425] mais si la résection chirurgicale est complète, le pronostic est meilleur que celui du lymphome [412]. XIII-6 Autres carcinomes Des études européennes ont retrouvé un sur- risque de carcinomes œsophagiens et du pharynx chez le cœliaque [397, 412] mais cela n’a pas été décrit dans les études américaines [426]. Dans une étude de population, le risque de cancer colorectal semble légèrement plus élevé chez le cœliaque (en particulier au niveau des côlons ascendant et transverse) [4], mais dans une étude plus récente le risque d’adénomes colorectaux n’était pas plus important [427]. 49 XIV- Traitement Le traitement de la maladie cœliaque est essentiellement diététique, il repose sur le régime sans gluten à vie [428]. Instauré pour la première fois au début des années cinquante, par un pédiatre Hollandais W Dicke [429]. Son efficacité est indiscutable et reste unanime après tant d’années. Il consiste à l’exclusion complète et définitive du gluten de l’alimentation [430]; autrement dit, la suppression du blé, de l‘orge, et du seigle. L’avoine est considérée comme non toxique [431, 432] mais, peut être contaminée par le gluten [433, 434]. Ces céréales sont substituées par le riz, le maïs, et la pomme de terre. Le but du régime est de corriger les troubles hydro- électrolytiques, de faire disparaître les symptômes cliniques, d’améliorer l’état nutritionnel et la qualité de vie, il permet aussi la prévention de certaines complications comme l’ostéoporose [435] et le lymphome [6]. La mise en route du régime, ne consiste pas seulement à donner la feuille de régime, mais elle nécessite une éducation du patient et de son entourage [436]. L’aide d’un diététicien connaisseur de la maladie est fondamentale [3] et cela en raison de la grande difficulté qu’ont les patients à le suivre en pratique, ainsi que du possible déficit en vitamine, fibres et calcium [437, 438] que peut entraîner un régime mal équilibré. De surcroît, les nombreuses sources cachées de gluten ; utilisé largement dans l’industrie agro alimentaire pour des raisons de texture et de stabilité [439] sans pour autant que sa présence ne soit mentionnée, peuvent induire de nombreuses erreurs diététiques [440]. Le gluten peut se retrouver aussi dans certains produits cosmétiques [441] et dans certains médicaments [442]. Le patient a la possibilité de consommer des produits sans gluten [443], qui, au cours de ces dernières années, se sont nettement améliorés tant sur la valeur nutritionnelle que sur le goût des produits et leur aspect [444]. 50 Mais ces derniers ne sont malheureusement, chez nous, pas toujours disponibles et onéreux. La quantité tolérée par l’individu cœliaque est inférieure à 10mg/jour [445]; cependant cela dépend des individus, c’est pourquoi, certaines études donnent une fourchette de 10 à 100 mg/jour pour la quantité non toxique [446]. Depuis 2012, les produits sont considérés sans gluten par « Codex Alimentarius » lorsqu’ils contiennent une quantité inférieure ou égale à 20mg/Kg de gluten pour un produit naturel et moins de 100 mg/ Kg pour un produit industriel. (Informations prises du site : http://www.codexalimentarius.net/web/index_en.jsp). Enfin les associations de malades cœliaques peuvent apporter soutien moral, informations diverses, et encouragements au patient dans l’observance au régime; il est donc recommandé au cœliaque d’y adhérer [447]. Grâce au régime sans gluten, la qualité de vie des malades est nettement améliorée pour ceux qui arrivent à le suivre sans difficultés [448] et cela, aussi bien pour les patients symptomatiques que chez ceux qui sont diagnostiqués par dépistage [449]. Le régime sans gluten peut cependant engendrer des effets indésirables, ainsi une constipation peut survenir si le patient ne prend pas assez de légumes et fruits [450]. Il peut également avoir des effets néfastes sur la vie sociale des patients, du fait des restrictions alimentaires [451, 452] mais aussi en raison de l’impossibilité d’avoir une vie sociale normale. Des comportements dépressifs peuvent aussi se voir, en raison du caractère chronique de la maladie [452], accentués s’il existe des pathologies autoimmunes associées [453]. Ainsi, une étude a montré que les patients cœliaques vivent très mal leur traitement, et cela plus sévèrement que ceux qui font des dialyses pour IRC ou des injections d’insuline pour diabète [454]. En pratique clinique, 20 à 80% des patients suivent le régime de façon imparfaite, particulièrement ceux dépistés et donc pauci symptomatiques 51 [455]. L’observance au régime est particulièrement mauvaise chez les adolescents [455]. Les facteurs qui semblent le plus influencer l’observance au régime sans gluten sont l’âge au moment du diagnostic [456], les conditions socio-économiques (en raison du coût élevé des produits sans gluten) [457, 458, 459] et culturelles [460] et pour certains, la forme clinique de la maladie [461]. Le régime sans gluten est indiqué dans les formes symptomatiques de maladie cœliaque (typique et atypique) mais aussi, à titre préventif, dans les formes silencieuses de maladie cœliaque [462]. Une supplémentation en fer, folates, vitamine B12, calcium, vitamine D, ou magnésium est parfois nécessaire lorsque les déficits sont importants. En effet, en cas d’ostéomalacie, il est conseillé de supplémenter en calcium et vitamine D. L’ostéopénie est traitée selon sa sévérité, une valeur inférieure à 2,5 standard déviations à l’ostéodensitométrie, est considérée comme la limite pathologique chez le sujet jeune. Chez la femme ménopausée, les biophosphonates peuvent être prescrits [160]. En raison des nombreux inconvénients du régime sans gluten (déjà sus cités), la majorité des patients préféreraient prendre une médication au lieu de la solution diététique [463]. Les grandes avancées dans la biologie moléculaire, et une meilleure connaissance des mécanismes physiopathologiques qui sous-tendent la maladie cœliaque à l’échelle moléculaire, a ouvert la voie à des stratégies médicales nouvelles (464). Ces différentes voies thérapeutiques encore expérimentales, dépendent du site et du mécanisme d’action (cf. tableau 3 page 54 : les nouvelles thérapeutiques et mécanisme d’action) [465, 466]. Il s’agit soit de modifications génétiques du blé [467] et de détoxification du gluten, soit d’une réduction de la perméabilité intestinale en agissant sur les jonctions serrées [468]. Une action sur l’immunité adaptative est aussi en cours d’évaluation en inhibant la transglutaminase tissulaire [469], de même une inhibition de l’inflammation chronique est envisagée grâce à des cytokines anti inflammatoires ou une inhibition du recrutement des lymphocytes par des 52 bloqueurs des molécules d’adhésion [470]. Une réactivation auto-immune par la vaccination est également en cours d’étude [471]. Le modèle thérapeutique qui semble le plus prometteur est celui du peptide analogue au gluten qui se liera aux cellules présentatrices d’antigène, empêchant ainsi le gluten toxique d’entraîner la réaction auto-immune. Cette nouvelle option thérapeutique permet une réduction progressive des anticorps et une normalisation de la surface villositaire [472]. Ces traitements n’ont pas l’ambition de remplacer le régime sans gluten, mais permettront aux patients de faire des écarts sans conséquences [473]. 53 54 Traitement des complications Il n’existe pas de standardisation du traitement de la sprue réfractaire, le régime sans gluten doit être poursuivi dans tous les cas, l’alimentation parentérale est nécessaire dans 28 à 60% des cas en raison de la dénutrition sévère [381, 382, 474]. La prednisone (0,5 à 1 mg/Kg/Jour), le Budésonide (9mg/jour), l’Azathioprine (2mg/Kg/jour) en association à la prednisone, sont des thérapeutiques efficaces tant sur le plan clinique qu’histologique dans la SR1 [381, 383,475,476] mais pour la SR2, les corticoïdes ne sont efficaces que sur les symptômes (taux d’efficacité : 75%), l’action sur la muqueuse est peu fréquente, de même que la progression vers l’EATL ne peut être prévenue [381, 382]. Des traitements plus agressifs sont utilisés dans la SR2, comme la cyclosporine à 5 mg/Kg/jour [477], l’infliximab à 5mg/Kg/jour [478], l’alemtuzumab à 30 mg 2 fois par semaine pendant 12 semaines [ 479] et une petite série a utilisé sans sucés l’interleukine-10 en sous-cutané à 8mcg/Kg 3 fois par semaine pendant 3mois [480]. Le traitement des autres complications malignes (lymphomes, adénocarcinome du grêle) rejoint celui des situations en absence de maladie cœliaque. 55 XV- Follow-up des patients Le suivi est clinique, biologique et histologique, mais il n’existe pas de consensus concernant le contrôle du patient et le rythme avec lequel les examens doivent être pratiqués pour le suivi. Les experts de la société britannique de gastroentérologie recommandent un suivi annuel du patient sur le plan clinique (symptômes, et état nutritionnel) et sérologique [163]. Le contrôle endoscopique pose par contre un véritable problème consensuel [163]; en effet, le contrôle histologique n’est recommandé (guidelines britanniques) que si le patient ne répond pas au régime sans gluten (Grade C) et il n’est pas recommandé si le patient est asymptomatique sous régime et ne présente aucun signe qui pourrait faire suspecter une complication (Grade C). Cependant il est suggéré que le contrôle histologique est un bon moyen pour identifier les sujets à risque de lymphome (Grade B). Les mêmes recommandations sont proposées par les Américains [89]. Cette controverse concernant le contrôle histologique est due probablement au fait que l’endoscopie est un examen coûteux et invasif et qu’il existe de nombreuses inconnues concernant les résultats de cette endoscopie de contrôle. En effet, chez l’adulte le délai de la réparation villositaire est très variable [481, 482, 483] et la cicatrisation est d’ailleurs souvent incomplète (l’atrophie villositaire persiste chez 62 à 79% des cœliaques) [481, 484]. L’étude récente de Lebwohl et al [485] a montré qu’il n’existe pas de corrélation entre la cicatrisation muqueuse et la mortalité chez le cœliaque, ceci conforte encore plus les adeptes du non contrôle histologique. Le contrôle endoscopique reste cependant le gold standard pour s’assurer de la réponse au régime sans gluten, puisque ni la symptomatologie clinique [486, 487, 488, 489], ni la sérologie [490, 492, 493, 494] ne peuvent attester de la réparation histologique et par conséquent du suivi strict du régime. De même, certains proposent le contrôle histologique à 1 an afin de mieux sélectionner les patients qui nécessitent une surveillance 56 plus étroite (les patients qui ont une persistance de l’atrophie villositaire) [495] et pour d’autres un contrôle endoscopique devrait être réalisé avant la transition du pédiatre vers le gastroentérologue adulte [496]. Le suivi doit être adapté aux facteurs pronostic [367], qui sont : la mauvaise observance au régime sans gluten, l’âge avancé au moment du diagnostic, le délai entre les symptômes et le diagnostic, la forme clinique (typique), et l’homozygotie pour le HLA DQ2. Comme cela a été rapporté plus haut, un score pronostic établi depuis peu par une équipe européenne [367] et qui nécessite une validation, permet la sélection des patients à risque de complication, il est établi dès le diagnostic, rendant le suivi de ces patients à risque plus « invasif » que les autres. Le PROCONSUL score se base, pour son calcul, sur la forme clinique (PCP : pattern of clinical presentation) et le délai diagnostique (DD : diagnostic delay). Score=3xPCP-2xDD. Le risque de complication est dit élevé lorsque le score est supérieur ou égal à 3, il est dit intermédiaire s’il est compris entre 0 et 1 et le risque est faible si le score est inférieur à 0. Les patients à haut risque de complication, devraient avoir un contrôle endoscopique, tandis que ceux à risque faible seraient suivis cliniquement et sérologiquement [367]. 57 XVI- Pronostic La maladie cœliaque est une pathologie bénigne dont le pronostic est excellent. Les complications malignes heureusement rares (moins de 1%) et de pronostic catastrophique sont la cause principale de mortalité [497]. Il est tout de même à noter qu’une étude britannique récente [498] a montré que le taux de mortalité du cœliaque était identique à celui de la population générale avec moins de décès par pathologies cardio-vasculaires. Un diagnostic précoce avec institution rapide du régime sans gluten permet d’obtenir une mortalité identique à la population générale [499, 500, 501, 502]. Alors qu’une autre étude a montré que le diagnostic tardif (âge supérieur ou égal à 50 ans) de la maladie cœliaque n’augmente pas le taux de mortalité, mais les patients ont une prévalence élevée d’ostéoporose, d’hypoferritinémie et de dysthyroidie [503]. Ces patients sont le plus souvent asymptomatiques, ceci est expliqué par le fait qu’il existe probablement, une tolérance tard dans la vie [504]. XVII- Dépistage Le dépistage de masse de la maladie cœliaque a été débattu il y a une dizaine d’années [505, 506] et en dépit du fait que la maladie cœliaque soit une pathologie dont les symptômes peuvent être mineurs ou absents, que des moyens de dépistage simple, non invasifs, et fiables existent (sérologie) et qu’un traitement efficace et sans effets secondaires soit disponible (RSG), le dépistage systématique dans la population générale semble avoir un bénéfice limité, et cela pour de nombreuses raisons. La morbi-mortalité chez les indivividus asymptomatiques n’est pas plus élevée, et ces derniers de toute façon, s’ils sont diagnostiqués, ne font pas de régime strict [455]. A l’heure actuelle, on ne sait pas si le risque de 58 complication est nettement plus bas chez les sujets diagnostiqués par rapport aux individus non diagnostiqués [163]. Le dépistage est donc réservé à la population à risque [85,89], à savoir, les individus qui ont des symptômes évocateurs de maladie cœliaque (diarrhée chronique avec syndrome de malabsorption, douleurs abdominale chronique, vomissement chroniques) et des situations moins équivoques telles que, le syndrome de l’intestin irritable [507], l’anémie ferriprive [508], l’hypertransaminasémie idiopathique [206], l’ostéoporose inexpliquée [330], le syndrome de Down [511], les parents du premier degré de patients cœliaques [512, 513], mais aussi certaines maladies auto-immunes souvent associées à la maladie cœliaque ( le diabète type1,la thyroïdite autoimmune, la dermatite herpétiforme, les hépatopathies dysimmunitaires, le déficit en IgA) [514, 515, 516, 517, 518,519 520]. Cf. tableau 4 page 60 : Recommandations de NICE pour le dépistage de la maladie cœliaque [521]. XVIII- Conclusion En dépit du fait que la maladie cœliaque soit une pathologie génétique des plus communes et que son incidence soit proche de celle du diabète; les connaissances la concernant restent limitées parmi les praticiens. Cela a entraîné de nombreux diagnostics manqués et une tendance aux formes atypiques. Une meilleure connaissance de la maladie est nécessaire afin de diminuer le délai diagnostique qui reste élevé même dans les pays développés. Le traitement à l’heure actuelle reste diététique. Les nouvelles thérapeutiques même si elles aboutissent ne pourront pas remplacer le RSG, mais permettront au patient de faire quelques écarts sans conséquences. 59 60 Problématique 61 La maladie cœliaque a une prévalence proche de celle du diabète (environ 1 %) [10, 11, 12], pourtant, il s’agit d’une maladie sous diagnostiquée même dans les pays développés. Aux USA, seul un patient sur huit est diagnostiqué [522]. Cette situation est probablement due au changement du profil épidémiologique de la maladie. En effet, la forme typique de la maladie cœliaque, définie par un tableau, connue de tous, fait de diarrhée avec syndrome de malabsorption et perte de poids, n’est plus la forme clinique prédominante [523]. Les études qui se sont intéressées à l’évolution du profil phénotypique de la maladie cœliaque, ont conclu à une augmentation de la prévalence de la forme atypique, forme fruste où les signes extra-digestifs peuvent dominer le tableau clinique [29]. Cette résurgence des formes non classiques s’observe dans les pays anglosaxons [29, 77], alors que dans les pays du Maghreb (Lybie) [81, 82] et d’Asie de l’ouest (Pakistan) [80], la forme typique semble être toujours la forme prédominante. En Algérie, la prévalence de la maladie cœliaque, dans la population générale n’est pas connue. L’introduction de la sérologie spécifique de la maladie cœliaque dans les principaux hôpitaux d’Alger a rendu le dépistage et le diagnostic de la maladie plus aisé pour les praticiens algérois, quoique leur disponibilité reste irrégulière, et nous avons souvent recours aux laboratoires de ville. Le problème reste tout entier à l’intérieur du pays, où le diagnostic est encore posé sur les données histologiques seulement. Le diagnostic de la maladie cœliaque est certes facile lorsque les trois critères diagnostiques sont réunis (sérologie positive, histologie évocatrice et réponse complète au traitement) [1]. La situation est plus ardue lorsque l’un des critères manque, à savoir, une sérologie négative en cas de déficit en IgA ou bien une histologie non équivoque (stades précoces de Marsh). Dans ces cas difficiles, le diagnostic de la maladie cœliaque nécessite des outils qui sont le plus souvent non disponibles dans nos centres hospitaliers ; nous faisons, ici, allusion aux anticorps type IgG [97, 101, 102] et au typage HLA [51]. 62 Ces cas heureusement peu fréquents, sont quasi impossibles à diagnostiquer chez nous à moins que le patient ne débourse de grosses sommes pour les réaliser dans le secteur privé. Dans notre étude, nous nous proposons d’évaluer la prévalence des formes atypiques dans la population de malades cœliaques diagnostiquées dans notre service de gastroentérologie du CHU de Bab- El- Oued hôpital Lamine Debaghine. Ceci nous permettra de connaitre le profil phénotypique de la maladie cœliaque, et les caractéristiques cliniques, sérologiques, histopathologiques et évolutives des formes atypiques en les comparant aux formes typiques. Une meilleure connaissance par le clinicien de ces formes atypiques appelées aussi subcliniques ou mineures, augmentera probablement le nombre de patients diagnostiqués. Le diagnostic précoce est important car, même si comme leur nom l’indique, il s’agit souvent de formes oligosymptomatiques, le statut nutritionnel des patients est souvent altéré et le risque de complications est le même [72]. La maladie cœliaque est une maladie auto- immune, des associations à des maladies auto- immunes sont donc possibles. Il est impératif de dépister systématiquement les pathologies dysimmunitaires les plus fréquemment associées (diabète, thyroïdite d’Hashimoto et hépatopathies dysimmunitaires) [197, 202, 222, 234]. Le dépistage doit continuer tout au long du suivi du patient cœliaque, en particulier chez le patient non observant au régime sans gluten. Ce dépistage va nous permettre de connaître la fréquence de ces pathologies associées, dans notre population de patients cœliaques. . L’association à une pathologie auto- immune se voit souvent dans les formes atypiques, les manifestations extra-digestives (hépatiques) peuvent dominer le tableau clinique occultant la maladie cœliaque et la reléguant au second plan [185]. La prise en charge est rendue plus lourde, en particulier lorsque la maladie cœliaque est associée au diabète [225]; les symptômes cliniques peuvent être intriqués, sans que l’on puisse savoir s’ils appartiennent à l’une 63 ou l’autre des pathologies [224]. Le traitement devient encore plus compliqué pour le patient puisqu’il suivra deux régimes diététiques [226]. Cette prise en charge doit être pluridisciplinaire, et une attention plus marquée doit être consacrée à ces patients (par rapport à ceux qui n’ont pas de maladie autoimmune associée) qui souvent ont du mal à suivre leur traitement. Le traitement de la maladie cœliaque repose à l’heure actuelle sur le Régime Sans Gluten (RSG) [428]. Ce régime, sur le plan théorique, parait simple puisqu’il consiste en l’éviction de l’alimentation des trois céréales [430] : blé, orge et seigle (l’avoine est permise mais à l’état pur) [431, 432]. Dans la vraie vie, la plupart de nos patients ont des difficultés importantes à suivre ce régime et cela tant pour des raisons socioculturelles qu’économiques. Dans les études européennes et américaines, le taux d’observance est variable [455]. Il est intéressant de connaître le taux de compliance au régime sans gluten chez nos malades ainsi que les différents facteurs pouvant intervenir positivement ou négativement. Des facteurs de mauvaise observance au régime sans gluten ont été décrits dans la littérature ; il s’agit en particulier de l’âge au moment du diagnostic, de la forme clinique, des conditions socio-économiques et du niveau cognitif des patients [458, 457, 4458, 459, 460]. Il est intéressant de rechercher ces facteurs dans notre population de cœliaques, qui a ses propres spécificités, afin de mieux organiser la prise en charge des patients. Bien que difficile à suivre, le régime sans gluten à vie reste la seule thérapeutique que l’on puisse proposer aux patients cœliaques. Les études ont montré qu’il permet d’augmenter la qualité de vie des patients [448]. En effet, il a pour but immédiat de faire disparaître les symptômes imputés à la maladie et d’améliorer le statut nutritionnel des patients. Sous régime sans gluten, la sérologie cœliaque diminuera progressivement pour devenir négative et la muqueuse va d’une façon encore plus lente se cicatriser. 64 Chez l’adulte cette cicatrisation de la muqueuse a été évaluée par de nombreuses études et il semble que souvent, la muqueuse de l’adulte cœliaque cicatrise incomplètement ou pas du tout après plusieurs années de régime bien conduit ([524, 525, 526, 527]. Il est important de connaître le taux de réparation de la muqueuse chez nos patients, car d’après les guidelines de la société britannique de gastroentérologie, les patients qui ont une atrophie villositaire persistante ont plus de risques de développer un lymphome(163). Cependant, une étude récente a montré que la mortalité chez le cœliaque n’est pas corrélée à la persistance de l’atrophie villositaire [485]. 65 Buts du travail 66 I-Objectifs principaux 1- Evaluer la prévalence des formes atypiques et silencieuses de maladie cœliaque, dans la population de malades cœliaques. 2- Etudier les caractères cliniques, morphologiques, et évolutifs de la forme atypique et les comparer à la forme typique. II-Objectifs secondaires 1- Etablir le taux d’observance au régime sans gluten chez nos patients cœliaques et identifier les facteurs qui influencent positivement ou négativement sur le régime sans gluten. 2- Identifier les maladies auto-immunes associées à la maladie cœliaque et évaluer leur fréquence. . 67 Matériels et méthodes 68 Notre étude est transversale observationnelle et prospective. Le recrutement des patients cœliaques s’est effectué de janvier 2009 à janvier 2014. Il est essentiellement fait au niveau de la consultation du service de gastroentérologie du CHU Bab- El- Oued. Certains patients proviennent des autres services du CHU de Bab- El- Oued avec lesquels nous avons collaboré, ce sont les services de médecine interne, rhumatologie, endocrinologie, et pédiatrie (individus de plus de 16 ans). De rares patients proviennent des autres CHU (Mustapha, HCA). I-Critères d’inclusion • Âge supérieur à 16 ans • Diagnostic de maladie cœliaque certain (sérologie cœliaque positive associée à une atrophie villositaire) • Suivi régulier d’au moins 2 ans. II-Critères de non inclusion • Malades de moins de 16 ans. • Diagnostic incertain de maladie cœliaque (sérologie négative ou absence d’atrophie villositaire). III-Critères d’exclusion Patients perdus de vue avant le contrôle de 12-24 mois. IV-Déroulement de l’étude Une fois le diagnostic de maladie cœliaque posé, les renseignements concernant le malade et sa maladie sont reportés sur une fiche médicale préétablie, dont les principaux items (cf. fiche cœliaque annexe) sont : 69 IV-1 Données sociodémographiques Âge Sexe Situation familiale Nombre d’enfants Niveau socio-économique (profession, niveau d’instruction, mode de vie). IV-2 Antécédents Personnels : atopie, maladies auto-immunes, chirurgie Familiaux de maladie cœliaque ou autres maladies auto- immunes. IV-3 Examen clinique IV-3-1 Anamnèse : Date de début des symptômes, nature symptômes révélateurs (digestifs, extra digestifs). Si la découvertes de la maladie est fortuite, préciser les circonstances (dépistage). IV-3-2 Examen clinique complet, calcul du BMI. IV-4 Exploration biologique FNS, fer sérique et ferritinémie, Calcémie, Albuminémie, Bilan lipidique : cholestérol et triglycérides Taux de prothrombine, Bilan rénal : urée et créatinine sanguines Glycémie, Bilan hépatique : transaminases, et gamma GT Vitamine D Bilan thyroïdien (TSH, FT3, FT4, anticorps anti thyroïdiens). 70 IV-5 Sérologie cœliaque Anticorps anti gliadines Anti endomysium Anti transglutaminase La sérologie est toujours accompagnée d’un dosage pondéral des IgA afin de ne pas négliger les éventuels faux négatifs dus au déficit en IgA. Etant donné la moindre spécificité et sensibilité des anti gliadines, ceux-ci sont toujours associés aux anti transglutaminases ou aux anti endomysiums. Les techniques utilisées dans la sérologie sont différentes selon l’anticorps utilisé et le centre dans lequel l’examen a été réalisé. En effet, la sérologie a été réalisée à l’institut Pasteur d’Alger, aux laboratoires d’immunologie du CHU Bab el oued, du CHU Mustapha et du CHU Beni Messous. Certaines sérologies ont été réalisées dans un laboratoire de ville. IV-6 Endoscopie digestive haute Elle est réalisée sous anesthésie oro pharyngée. La progression du fibroscope se fait jusqu’au deuxième duodénum. Au moins six fragments biopsiques sont réalisés, à des sites différents du deuxième duodénum. La fixation se fait au formol à 10%. IV-7 Histologie L’histologie doit préciser le degré d’atrophie villositaire, et rechercher les autres signes de la maladie cœliaque, à savoir la taille des cryptes, l’hyper lymphocytose intra épithéliale, les altérations enterocytaires, et l’infiltrat inflammatoire du chorion. 71 IV-8 Ostéodensitométrie (DMO) Elle est réalisée systématiquement afin de rechercher des anomalies à type d’ostéopénie ou d’ostéoporose. L’ostéopénie est définie par un T-score compris entre -1,0 et -2,5 déviation standard. L’ostéoporose par un T-score <-2,5. Le taux le plus faible est pris en considération (rachis ou col du fémur). La DMO est fait lors du diagnostic et si elle est pathologique, un contrôle est réalisé entre 12 et 24 mois après le début du régime. IV-9 Bilan de l’hepatopathie En cas de maladie hépatique associée, un bilan étiologique est réalisé : Sérologies virales B et C complètes faites à l’institut Pasteur d’Alger Bilan d’auto-immunité (anticorps anti nucléaires, anti LKM1, anti mitochondrie de type M2, anti muscle lisse) Bilan du fer et du cuivre Bilan de thrombose en cas de thrombose au niveau du système porte Une bili IRM Une échographie abdominale couplée au doppler à la recherche de signes d’HTP et du niveau du bloc. La biopsie du foie est pratiquée si les examens étiologiques ne sont pas suffisants pour poser le diagnostic de certitude. Au terme de cette première partie, les malades sont classés : Cliniquement : Maladie typique Maladie atypique Maladie silencieuse 72 Histologiquement selon la classification de Marsh modifiée: Stade IIIa (atrophie villositaire partielle) Stade IIIb (atrophie villositaire subtotale) Stade IIIc (atrophie villositaire totale) A noter que le degré d’atrophie le plus sévère est pris en compte lorsque sur les biopsies il existe deux degrés d’atrophie. Par exemple, l’atrophie partielle à subtotale est considérée comme subtotale. IV-10 Régime sans gluten et surveillance Le régime sans gluten est institué chez tous les patients dont le diagnostic est certain. Une feuille de régime est donnée au patient avec des explications détaillées. On demande aux patients de la lire attentivement et de noter toutes les questions qu’ils pourraient se poser afin qu’on y réponde lors des consultations suivantes, ou par téléphone. IV-10-1 Contrôles des patients Les contrôles sont faits entre 1 et 3 mois pour le premier, entre 6 et 9 mois pour le deuxième et entre 12 et 24 mois pour le troisième. Des consultations intermédiaires sont souvent nécessaires si le patient a des difficultés particulières, mais aussi pour collecter les résultats des différents examens demandés. IV-10-1-a Premier contrôle Le contrôle entre 1 et 3 mois, permet d’évaluer la régression des symptômes cliniques sous régime, de contrôler l’observance au régime par un interrogatoire minutieux, de corriger les éventuelles erreurs de régime, et de faire une évaluation biologique (à 3 mois) pour voir si le syndrome carentiel s’est corrigé. 73 IV-10-1-b Deuxième contrôle Le contrôle entre 6 et 9 mois est clinique, biologique (si à 3 mois non fait ou non complètement corrigé) et sérologique grâce aux anti transglutaminases et /ou anti endomysiums (selon leur disponibilité). IV-10-1-c Troisième contrôle Le contrôle entre 12 et 24 mois est aussi clinique, biologique (si des anomalies persistent), sérologique, mais surtout endoscopique avec biopsies de contrôle. Au terme de la deuxième partie, on établie le taux d’observance au RSG et la réponse clinique, sérologique, histologique. IV-10-2 Observance au régime sans gluten L’observance au régime est dite bonne si le régime est strict ou avec écarts minimes. Le régime est dit strict lorsque le patient ne déclare aucun écart, même minime, les symptômes cliniques sont absents, la sérologie de contrôle est négative et l’histologie de contrôle ne retrouve plus d’atrophie villositaire. Le régime est dit avec écarts minimes, lorsque le patient fait des écarts peu importants en quantité et à des intervalles éloignés (plus de 3 mois), bien entendu, chez ces patients la clinique, la sérologie et l’histologie doivent être favorables. Le régime est dit non fait, lorsque le patient s’alimente normalement ou fait de nombreux écarts, si ceux si sont importants en quantité et/ou plus d’une fois par mois. Ces patients peuvent être symptomatiques ou pas, la sérologie est le plus souvent positive, et l’histologie montre la persistance de l’atrophie villositaire. 74 IV-10-3 Réponse clinique sous régime sans gluten Elle s’évalue dès le premier contrôle, il s’agit de constater la disparition des symptômes existant lors du diagnostic, imputés à la maladie cœliaque. La correction du syndrome carentiel met plus de temps (entre 3 et 6 mois selon sa sévérité). La sérologie de contrôle est réalisée à 6 mois, puis à 12 mois de régime. A 6 mois elle peut diminuer ou se négativer, à 12 mois elle doit être négative si le régime est bien effectif. Entre 12 et 24 mois est réalisé le contrôle endoscopique avec biopsies duodénales. L’aspect endoscopique est comparé à l’aspect initial, et c’est surtout l’histologie qui va permettre de confirmer la bonne réponse en montrant la disparition de l’atrophie villositaire. IV-10-3 Facteurs qui influencent l’observance au régime sans gluten Les paramètres étudiés sont : L’âge au moment du diagnostic Le sexe Les conditions socio-économiques et le niveau d’instruction Les comorbidités associées (diabète, pathologies psychiatriques) Les antécédents familiaux de maladie cœliaque La forme clinique de la maladie cœliaque (typique ou atypique). IV-11 Dépistage des maladies auto-immunes associées Elle consiste à décrire les différentes pathologies auto-immunes associées à la maladie cœliaque soit lors du diagnostic, soit au cours du suivi. 75 Les maladies auto-immunes qui sont recherchées systématiquement lors du diagnostic sont : • Le diabète (par une glycémie à jeun) • La thyroïdite auto-immune (par un bilan thyroïdien complet avec recherche d’anticorps) • Les autres affections, sont recherchées devant des signes d’appels cliniques (lésions dermatologiques) ou biologiques (perturbation du bilan hépatique). V-Analyse statistique La taille de l’échantillon est calculée par la formule suivante : N= 𝜖 2 x P Q = i2 P: 80% P (1,96)2 x0, 8x0, 2 = 245,76 ≈ 246 (0,005)2 Q: (1-P) = (1-0, 80) = 0,2 =20% I: precision = 5% Le nombre de 246 patients porteurs de maladie coeliaque atypique est donc retenu pour cette étude basé sur le taux de 80 %. La formule statistique sus citée est habituellement utilisée pour ce genre d’étude. L’analyse des données est faite sur le logiciel EPI info et le logiciel SPSS. Nous avons calculé les paramètres statistiques suivants : Fréquences, pourcentages, moyennes, médianes et écarts types. Les tests statistiques utilisés sont : Un test de khi deux (variables qualitatives) pour la comparaison de pourcentage. Le test de Student (variables quantitatives) pour la comparaison de deux moyennes. La comparaison de plusieurs moyennes se fait par une analyse de variance (ANOVA). 76 Résultats 77 Notre étude est transversale observationnelle et prospective, les résultats sont les suivants: La population totale de malades cœliaques est de 419 patients. 102 patients ont été exclus de l’étude. Deux patients dont le diagnostic de maladie cœliaque est connu mais non documenté. Ceux-ci ont été hospitalisés dans un tableau très sévère de dénutrition avec diarrhée intense, associée à une complication très probable à type de sprue réfractaire ou de lymphome. Le diagnostic de certitude n’a pas pu être établi, du fait du décès rapide des patients. Dix patients chez qui on soupçonne le diagnostic de maladie cœliaque non atrophique, sont en attente d’un typage HLA. 90 patients perdus de vue dés les premiers entretiens et sont impossibles à joindre (changement de numéro de téléphone et/ou adresse incomplète ou fausse), parmi ces 90 patients 85 sont typiques et 5 atypiques (cf. schéma 1 page 79). La population de malades cœliaques retenue est donc de 317 patients. 78 Schéma 1 : Patients inclus et exclus 79 I-Caractéristiques démographiques de la population étudiée I-1 Âge de la population étudiée L’âge moyen est de 31,64 ans avec des extrêmes de 17 à 72 ans. On observe sur le graphe représentant l’âge des patients au moment du diagnostic, un pic entre 25 et 40 ans. Cf. graphe représentant l’âge des patients en années. Schéma 2 : Graphe représentant l’âge de la population de malades cœliaques en années 80 I-2 Répartition de la maladie selon le sexe Il existe une nette prédominance féminine. En effet, notre étude comprend 258 femmes (81,4%) et 59 hommes 18,6%). Le sex-ratio (H/F) est de 0,28. (Cf. schéma 3 représentant la répartition des malades selon le sexe) Schéma 3 : Répartition des malades selon le sexe 81 I-3 Formes cliniques On dénombre 250 (78,8%) formes atypiques et 67 (21,2%) formes typiques. Aucune forme silencieuse n’a été diagnostiquée. La forme atypique est nettement prédominante dans notre population. (Cf. schéma 4 représentant la répartition des patients selon la forme clinique) Schéma 4 : Répartition des patients selon la forme cliniques 82 I-4 Comparaison moyennes d’âge, sexe et formes cliniques La moyenne d’âge selon le sexe de toute la population est de 32,4 ans chez les femmes (+/-11,51 variance=132,51) et de 28,3 ans chez les hommes (+/-10,82 variance=117,18) avec une différence significative p=0,005. Dans notre population de malades coeliaques, les hommes sont plus jeunes que les femmes. (Cf. tableau 1 représente la moyenne d’âge selon le sexe). Tableau 1 : Moyennes d’âge selon le sexe Moyennes d’âge Femmes Hommes 32,4 ans 28,3 ans p=0,005 83 L’âge moyen dans la population atypique est de 31,6 ans +/- 11,41 (variance=130,24) avec des extrêmes de 17 à 72 ans. Pour la forme typique, l’âge moyen est de 31,6 ans +/-11,81 (variance=139,48) avec des extrêmes de 17 à 69 ans, le p=0,99. (Cf. tableau 2 représente la moyenne d’âge selon la forme clinique). Tableau 2 : Moyennes d’âge selon la forme clinique Forme atypique Moyennes d’âge 31,6 ans Forme typique 31,6 ans p=0,99 84 Les deux populations de malades cœliaques (atypique et typique) sont homogènes selon le sexe et l’âge. Le sex-ratio dans la population atypique est de 0,25 (200 femmes pour 50 hommes), il est de 0,15 (58 femmes pour 9 hommes) pour la population typique avec un p=O,21. (Cf. tableau 3 représentant le sex ratio selon la forme clinique). Tableau 3 : Sex-ratio selon la forme clinique Sex-ratio : F/H Forme atypique Forme typique 0,25 : 50/200 0,15 : 9/58 p=0,21 85 Dans la population atypique, la moyenne d’âge chez les femmes est de 32,76 ans +/-11,42 (variance=130,56), elle est significativement (p=0,001) plus élevée que celle des hommes qui est de 26,92 ans +/-10,18 (variance=103,71). Dans la population typique, l’âge moyen chez les femmes est de 30, 93 ans +/-11,78 (variance=138,94) et chez les hommes de 36 ans +/-11,65 (variance=135,75) sans différence significative (p=0,23) (cf. tableau 4 représente la moyenne d’âge selon le sexe et la forme clinique). Tableau 4 : Moyennes d’âge selon le sexe et la forme clinique Formes Ages moyens Ages moyens p femmes hommes 32,76 ans 26,92 ans 0,001 30,93 36 0,23 cliniques Forme atypique Forme typique 86 I-5 Situation familiale, conditions socio-économiques, mode de vie et tabagisme La situation familiale, les conditions socio-économiques, le niveau d’instruction, et le mode de vie de la population étudiée sont représentés dans le tableau 5 page 88. On note qu’il n’existe pas de différence entre les deux formes cliniques concernant ces données. En effet, la majorité de la population de malades cœliaques est célibataire (60,6%), le niveau d’instruction de la plupart des patients est le collège (31,2%) et la grande majorité des malades est citadine (95,2%). Les fumeurs représentent environ 7% (22 patients) de la population de patients cœliaques soit 21 hommes et 1 femme, leur moyenne d’âge est de 24,81 ans. 87 Tableau 5 : Situation familiale, conditions socio-économiques, niveau d’instruction et mode de vie, selon la forme clinique Situation familiale Toute la Forme Forme population Atypique typique Célibataire 192 (60,6%) 155 (62%) 37 (55,2%) Divorcé(e) 6 (1,8%) 6 (2,4%) 0 Marié(e) 117 (37%) 88 (35,2%) 29 (43,3%) Veuf(ve) 2 (0,6%) 1 (O,4%) 1 (1,5%) Total 317 250 67 p= 0,26 Conditions socioéconomiques Bonnes 53 (16,7%) 46 (18,4%) 7 (10,4%) Mauvaises 94 (29,7%) 79 (31,6%) 15 (22,4%) Moyennes 170 (53,6%) 125 (50%) 45 (67,2%) p= 0,24 Niveau d’instruction Sans 23 (7,2%) 15 (6%) 8 (12%) Primaire 60 (19%) 46 (18,4%) 14 (20,8%) Collège 99 (31,2%) 76 (30,4%) 23 (34,3%) Lycée 69 (21,8%) 56 (22,4%) 13 (19,4%) Universitaire 66 (20,8%) 57 (22,8%) 9 (13,5%) p=0,24 Mode de vie Citadin 302 (95,2%) 240 (96%) 62 (92,5%) Rural 15 (4,8%) 10 (4%) 5 (7,5%) p=0,4 88 II- Antécédents personnels et familiaux II-1 Antécédents personnels médicaux Les patients qui ont des antécédents d’atopie (asthme, toux, rhinite, eczéma) sont en nombre de 18 (5,6%) ; dont 16 (88,9%) femmes et 2 (11,10%) hommes. La moyenne d’âge est de 32,55 ans +/-11,53. Les autres antécédents médicaux sont : • La tuberculose 6 cas soit 1,9% (5 tuberculoses ganglionnaires et 1 tuberculose gastrique) • Les pathologies psychiatriques 4 cas soit 1,2% • Le syndrome de Turner 4 cas (1,2%). Cf. Schéma 5 ci-dessous représente les antécédents médicaux de la population de malades cœliaques. Ainsi, l’atopie est l’antécédent prédominant avec 56%, viennent ensuite, la tuberculose 18,8%, les psychoses 12,5% et le syndrome de Turner 12,5%. Schéma 5 : Principaux antécédents personnels médicaux 89 II-2 Antécédents personnels de pathologies auto-immunes Les antécédents personnels de pathologies auto-immunes (AI) dans la population de malades cœliaques sont représentés comme suit : • 6 (1,9%) diabètes type 1 • 16 (5%) thyroïdites AI • 7 (2,2%) dermatites herpétiformes • 5 (1,6%) vitiligos • 4 (1,2%) maladies de Crohn • Les autres : 2 (0,6%) psoriasis, 1 (0,3%) Syndrome de Sjogren Gougerot, 1 (0,3%) maladie d’Addison. Au total, 42 patients ont une pathologie auto-immune qui a précédé le diagnostic de maladie cœliaque. On remarque que la thyroïdite auto-immune tient la première place avec 38%, puis viennent la dermatite herpétiforme (16,7%), le diabète type 1 (14,3%), le vitiligo (11,9%), la maladie de Crohn (9,6%) et les autres pathologies regroupées dans la portion orange du camembert 9,5% qui comprennent, la maladie d’Addison, le psoriasis et le syndrome de Sjogren Gougerot. (Cf. schéma 6 page 91 représentant les antécédents personnels de maladies auto-immunes). 90 Schéma 6 : Antécédents personnels de pathologies autoimmunes II-3 Antécédents gynéco-obstétricaux et troubles de la procréation Etant donné la grande majorité féminine de la population de patients cœliaques, nous avons rapporté les différentes caractéristiques gynécoobstétricales de la population féminine (ménarchie, ménopause, problème obstétricaux, et stérilité). La ménopause est observée chez 31 patientes soit 12% des femmes, la moyenne d’âge de la ménopause est de 53 ans +/- 7,9 ans (variance=63,53), 13 femmes soit environ 42% sont ménopausées avant 50 ans. 91 La moyenne d’âge de la ménarchie est de 14,57 ans + /-1,34 avec des extrêmes de 11 à 19 ans (27 patientes ne connaissent pas la date de leur ménarchie). On note 10 aménorrhées primaires, dont 6 sont en rapport avec leur maladie cœliaque, 4 sont des syndromes de Turner traités par hormonothérapie et 2 aménorrhées secondaires. Parmi ces 8 patientes, 3 (1,2%) sont atypiques et 5 (7,4%) typiques. Chez les hommes, 1 seul cas de stérilité, un cas d’anomalies du spermogramme ayant nécessité un traitement et un autre cas de baisse de la libido chez un sujet de 30 ans, ont été retrouvés. Globalement, ces anomalies gynéco-obstétricales sont plus fréquentes dans la population typique de façon significative. Cependant, on note un taux plus important de stérilité, et de mort in utero chez les femmes avec forme typiques, alors que les avortements et la prématurité sont plus vus dans la forme atypique. (Cf. tableau 6 page 93). 92 Tableau 6 : Anomalies gynéco-obstétricales dans la population féminine selon la forme clinique. Anomalies gynéco- Total Forme atypique Forme typique obstétricales Aménorrhée 2 (0,6%) 0 2 (3%) Stérilité 7 (2,2%) 4 (1,6%) 3 (4,4%) Avortements 38 (12%) 31 (12,4%) 7 (10,4) Mort intra utérine 5 (1,6%) 3 (1,2%) 2 (3%) Prématurité 5 (1,6%) 5 (2%) 0 Total 57 (18%) 43 (17,2%) 14 (20,8%) Secondaire p= 0,03 93 II-3 Antécédents personnels chirurgicaux Dans la population de malades cœliaques, 47 soit 14,8% ont des antécédents chirurgicaux dont 41 femmes (87,2%) et 6 hommes (12,8%), la moyenne d’âge est de 38 ans +/- 10,93. Ci-dessous les différents types de chirurgie : • 20 (6,3%) Césariennes • 7 (2,2%) appendicectomies • 14 (4,4%) cholécystectomies • 4 (1,2%) résections intestinales pour maladie de Crohn • 2 (0,6%) résections mammaires pour adénocarcinomes du sein. A noter que certaines patientes ont subi plus d’une chirurgie. Le schéma 7 représente les antécédents chirurgicaux en pourcentage. La césarienne est la chirurgie la plus fréquente avec 42,5% des chirurgies, la cholécystectomie est observée dans 29,8%, l’appendicectomie est retrouvée dans 14,9%, la résection intestinale pour maladie de Crohn est observée dans 8,5% et la résection mammaire dans 4,3%. (Cf. schéma 7 page 95) 94 Schéma 7 : Antécédents personnels de chirurgie II-4 Antécédents familiaux de maladies auto-immunes On dénombre 115 antécédents familiaux de maladies auto-immunes répartis comme suit : • Maladie cœliaque familiale : 80 (25,2%) • Diabète type 1 :12 (3,8%) • Thyroïdite 12 : (3,8%) • Syndrome de Sjogren Gougerot : 5 (1,6%) • Hepatopathie dysimmunitaire : 3 (1%) • Les autres : une maladie de Crohn (0,3%), une dermatite herpétiforme (0,3%) et une sclérose en plaque (SEP) (0,3%). Il est à noter que certains patients peuvent avoir plus d’un antécédent. Certains patients appartiennent à la même famille, les antécédents familiaux sont alors communs pour plusieurs patients. 95 Le schéma 8 de la page 96 représente les antécédents familiaux de maladies auto-immunes. Ainsi les antécédents familiaux de maladie cœliaque sont les plus observés avec 70% des antécédents, la thyroidite et le diabète 10,4% chacun, le syndrome de Sjogren Gougerot 4,3%, les hepatopathies dysimmunitaires 2,6% et les autres maladies auto-immunes (maladie de Crohn, dermatite herpétiforme, SEP) 2,3%. Schéma 8 : Antécédents familiaux de maladies auto-immunes 96 III- Délais diagnostiques : La symptomatologie clinique peut débuter à l’enfance (164 des patients soit 51,7%), dont l’âge moyen est de 26,78 ans +/- 9,67 (v=93,62) ou à l’âge adulte (153 patients soit 48,3%), dont l’âge moyen est de 36,76 ans +/-11,03 (v=121,61). Les patients dont les symptômes ont débuté dans l’enfance sont plus jeunes que ceux dont les symptômes ont débuté à l’âge adulte avec un p=0,000001. (Cf. tableau 7 représentant l’âge moyen selon le début des symptômes). Tableau 7 : Age moyen selon le début des symptômes Début des Nombre de malades Âges moyens symptômes Enfance 164 26,78 ans Adulte 153 36,76 ans p=0,000001 97 Par contre il n’existe pas de différence significative dans le délai diagnostique selon la forme clinique p=0,28 chez les sujets dont les symptômes ont débuté à l’âge adulte. (Ci-dessous le tableau 8 résumant les délais diagnostiques selon la forme clinique). Tableau 8 : Délais diagnostiques selon la forme clinique Délais Total Forme atypique Forme typique diagnostiques Total 153 (48,3%) 117 (46,8%) 36 (53,7%) < 6mois 11 (7,2%) 6 (5,2%) 5 (13,9%) 6 à 1 an 35 (22,9%) 26 (22,2%) 9 (25%) >1an et < ou = 83 (54,2%) 65 (55,5%) 18 (50%) 24 (15,7%) 20 (17,1%) 4 (11,1%) à 10ans >10 ans p=0,28 98 III-1 Evolution des symptômes ayant déduter à l’enfance Parmi les patients dont les symptômes remontent à l’enfance (164), 66 malades ont une forme atypique et ne sont pas diagnostiqués. 98 patients ont une forme typique, 75 de ces derniers sont diagnostiqués dans l’enfance, le RSG est instauré puis arrêté à l’adolescence ou à l’âge adulte. Le RSG permet la disparition de la diarrhée. A l’arrêt du RSG, 8 recidivent cliniquement et par consequent ont toujours une forme typique à l’age adulte. Tandis que 67 patients ne presentent plus de diarrhée en depis de l’arrêt du RSG, la forme clinique est alors atypique. En somme, 67 des patients qui avaient une forme typique dans l’enfance ont une forme atypique à l’age adulte. Le RSG a permis chez ces patients l’arrêt de la diarrhée, cette derniere n’est plus réapparue à l’arrêt du RSG. Pour mieux comprendre comment s’est faite la transition, entre forme typique et atypique pour certains des patients, voir le schéma 9 page 100 qui représente cette évolution des symptômes. 99 Schéma 9 : Evolution des symptômes 100 IV- Manifestations révélatrices Les manifestations révélatrices de la maladie cœliaque sont très variées, elles peuvent être digestives et extra digestives, les deux types de manifestations pouvant être associées. IV-1 Manifestations digestives Dans notre série, parmi les manifestations digestives, il existe celles spécifiques à la forme typique : la diarrhée, et celles de la forme atypique : la constipation et le syndrome de l’intestin irritable (alternance diarrhée/ constipation). Ce dernier représente 4,7% de la population totale de malades cœliaques. (Cf. tableau 9). Tableau 9 : Symptômes spécifiques de chaque forme clinique Symptômes Forme atypique Forme typique Diarrhée (21,1%) 0 67 (100%) Constipation (8,8%) 28 (11,2%) 0 Syndrome de l’intestin 15 (6%) 0 irritable (4,7%) 101 Il existe des manifestations digestives communes aux deux formes cliniques : la douleur abdominale, les ballonnements et les vomissements qui sont plus fréquents dans la forme typique, alors que la dyspepsie et le RGO sont plus rarement retrouvés dans la forme typique. (Cf. le tableau 10). La douleur abdominale est de nature différente selon la forme clinique. Dans la forme atypique, la douleur abdominale est de type pseudo-ulcéreux dans 2 cas (2,5%), accès subocclusifs dans 2 cas (2,5%), colique dans 63,3% (50 patients) et dans 31,7% (25 malades) la douleur n’est pas classée. Dans la forme typique la douleur est de type colique dans 100% des cas. Tableau 10: Symptômes digestifs communs aux deux formes cliniques Symptômes Douleur Total Forme atypique Forme typique 137 (43,2%) 79 (31,6%) 58 (86,5%) Ballonnement 158 (49,8%) 99 (39,6%) 59 (88%) Vomissements 32(10,1%) 24 (9,6%) 8 (12%) Dyspepsie 23 (7,2%) 21 (8,4%) 2 (3%) RGO 8 (2,5%) 7 (2,8%) 1 (1,5%) abdominale p=0,009 102 IV-2 Manifestations extra-digestives Les signes extra-digestifs de façon générale sont présents aussi bien dans la forme atypique que dans la forme typique sans différence significative. L’anémie récidivante est le symptôme extra-digestif prédominant (86,7%), suivie par les manifestations osseuses (ostéopénie et ostéoporose) (41%), les autres manifestations hépatiques, articulaires, neurologiques et buccales sont moins fréquentes. (Cf. tableau 11). Tableau 11 : Symptômes extra-digestifs selon la forme clinique Signes extra- Total Forme Forme Atypique typique 275 86,7%) 210 (84%) 65 (97%) 26 (8,2%) 20 (8%) 6 (9%) Arthralgies 29 (9,1%) 24 (9,6%) 5 (7,4%) Manifestations 15 (4,7%) 14 (5,6%) 1 (1,5%) 21 (6,6%) 18 (7,2%) 3 (4,5%) 130(41%) 103 (41,2%) 27 (40,3%) digestifs Anémie Manifestations hépatiques neurologiques Aphtose buccale récidivante Manifestations osseuses p=0,55 103 IV-2-1 Manifestations osseuses Les anomalies osseuses sont retrouvées dans les deux formes cliniques sans différence statistiquement significative. On note la rareté de l’ostéomalacie, observée chez 8 patients seulement, tous atypiques dont une avec des déformations osseuses témoignant de l’ancienneté de la carence et 4 cas de fractures également tous atypiques. Les détails des résultats de l’ostéodensitométrie (DMO) sont représentés dans le tableau 12. La DMO est réalisée chez 207 patients soit chez 65,3% : 164 (65,6%) des formes atypiques et 43 (64,2%) des formes typiques. Le tiers environ de la population a une DMO normale les deux-tiers restants ont une DMO pathologique à type d’ostéopénie et d’ostéoporose. Nous avons regroupé toutes les ostéopénies (minimes, modérées et sévères) car la DMO a été réalisée dans des centres différents. Tableau 12 : Résultats de la DMO selon la forme clinique Résultats Total Forme atypique Forme typique DMO normale 77 (37,2%) 61 (37,2%) 16 (37,2%) Ostéopénie 93 (45%) 75 (45,7%) 18 (41,8%) Ostéoporose 37 (17,8%) 28 (17%) 9 (21%) Total 207 (65,3%) 164 (65,6%) 43 (64,2%) de la DMO p=0,8 104 IV-2-2 Manifestations neurologiques Elles sont rares, représentées par l’épilepsie 1,6% (5 cas) idiopathique, la neuropathie périphérique 1,26% (4 cas) dont un cas de névrite optique, le syndrome dépressif 1,6% (5 cas) et l’ataxie au gluten un cas. Les manifestations hépatiques sont abordées dans le chapitre XI page 129. IV-3 Signes généraux Les signes généraux (asthénie et amaigrissement) sont fréquents dans les deux formes cliniques sans différence significative. (Cf. tableau 13). Tableau 13 : Signes généraux selon la forme clinique Signes généraux Total Forme atypique Forme typique Asthénie 280 (88,3%) 215 (86%) 65 (97%) Amaigrissement 199 (62,8%) 141 (56,4%) 58 (86,5%) p=0,14 105 IV-4 Dépistage Certains patients ont été diagnostiqués grâce au dépistage sérologique, soit demandé par le gastroentérologue, soit par un autre spécialiste. Tous ces patients ont une forme atypique (sauf l’ataxie). Il s’agit de diabète type 1 dans deux cas, de dermatite herpétiforme dans un cas, de cirrhose biliaire primitive dans deux cas, d’ostéomalacie associée à une ostéopénie inexpliquée dans un cas et d’ataxie idiopathique dans un cas. (Cf. tableau 14). Tableau 14 : Situations de dépistage Situation Nbre de dépistage Age Sexe Symptômes carences (ans) Dermatite herpétiforme Diabète type 1 1 49 F ostéopénie Vit D ↓ 2 26/60 H vomissements non Osteopenie+ ostéomalacie inexpliquée Cirrhose biliaire primitive Ataxie inexpliqué 1 22 F ballonnement Vit D ↓ 2 41/72 F ballonnement Anémie 1 37 F Ostéopenie Vit D ↓ Total 7 (2.2%) 106 V- Examen physique L’examen physique évalue le BMI (body mass index) selon les données du national « heart, lung and blood institute », recherche les signes carentiels, et les autres anomalies (en rapport avec une hepatopathie par exemple). V-1 Données du BMI Le BMI moyen de toute la population de malades cœliaques est de 20,78 +/3,6 v=12,96. Le BMI de la population atypique est de 21,15 +/-3,62 v=13,14 celui de la population typique est de 19,44 + /-3,19 v=10,19. On remarque que le BMI de la forme atypique est supérieur à celui de la forme typique de façon significative (p=0,0005). Cf. tableau 15. Tableau 15 : Moyennes du BMI selon la forme clinique Population Total Atypique Typique Moyennes 20,78 21,15 19,44 du BMI p=0,0005 107 Lorsque les patients sont classés selon la catégorie de BMI en fonction de la forme clinique. On note une différence significative. Cf. tableau 16. En effet, dans la catégorie déficit pondéral (BMI<18,5), les patients de la forme atypique sont moins nombreux, tandis que dans les catégories surpoids et obésité, les formes atypiques sont prédominantes. Tableau 16: BMI selon la catégorie et la forme clinique Catégorie de BMI Total Forme atypique Forme typique BMI<18,5 70 50 (20%) 20 (29,8%) BMI > 18,5 et <25 208 164 (65,6%) 44 (65,7%) BMI> ou = à 25 39 36 (14,4%) 3 (4,5%) Total 317 250 67 p=0,03 108 Par contre, si l’on compare la moyenne des BMI dans chaque catégorie selon la forme clinique, il n y a pas de différence. Cf. les tableaux 17, 18 et 19 aux pages 109, 110 et 111. Dans la catégorie BMI <18,5 (patients en déficit pondéral) La moyenne d’âge est de 29,77 ans +/-10,38 v=107,83. Il existe 59 (84,3%) femmes et 11 (15,1%) hommes. Le tableau 17 page 109 représente les moyennes de BMI dans cette catégorie de BMI selon la forme clinique. On ne note pas de différences entre les deux formes cliniques. Tableau 17: BMI<18,5 et formes cliniques Formes cliniques Nombre de malades Moyennes du BMI Forme atypique 50 (20%) 16,74 Forme typique 20 (29,8%) 15,79 Total 70 (22,1%) p=0,15 109 Dans la catégorie BMI > ou = à 18,5 et < à 25 (BMI normal) La moyenne d’âge est de 31,84 ans +/-12,1 v=146,23. La répartition selon le sexe est de 168 (80,8%) femmes pour 40 (19,2%) hommes. Le tableau18 page 110 représente les moyennes de BMI dans cette catégorie de BMI selon la forme clinique. On ne note pas de différences entre les deux formes cliniques. Tableau 18 : BMI > ou = 18,5 et < 25 et formes cliniques Formes Nombres de malades Moyennes du BMI Cliniques Forme atypique 164 (65,6%) 21,10 Forme typique 44 (65,7%) 20,59 Total 2O8 (65,6%) p=0,07 110 Dans la catégorie BMI > ou = à 25 et < à 30 (patients en surpoids) La moyenne d’âge est de 33,67 ans +/-10,25 (v=105,1). Il existe dans cette tranche de BMI, 23 (74,2%) femmes et 8 (25,8%) hommes. Le tableau 19 page 111 représente les moyennes de BMI dans cette catégorie de BMI selon la forme clinique. On note également qu’il n’existe pas de différences entre les deux formes cliniques. Tableau 19 : BMI > ou = à 25 et < à 30 et formes cliniques Formes cliniques Nombre de malades Moyennes du BMI Forme atypique 28 (11,2%) 25,95 Forme typique 3 (4,5%) 26,83 Total 31 (9,8%) p=0,22 111 Dans la catégorie BMI > ou = à 30 (patients obèses), la moyenne d’âge est de 33,37 ans +/- 7,25 (v=52,55), la population est à 100% atypique, exclusivement féminine en nombre de 8 soit 2,5% de la population totale de malades cœliaques et 3,2% de la forme atypique. La moyenne du BMI est de 32,81. La comparaison des moyennes d’âge selon la catégorie de BMI ne retrouve pas de différence p=0,38. Cf. tableau 20. Tableau 20 : Moyennes d’âge selon le BMI Catégorie de BMI Moyennes d’âge BMI<18,5 29,77 BMI > 18,5 et <25 31,84 BMI> ou = à 25 et <25 33,67 BMI >30 33,37 p=0,38 112 De même, il n’existe pas de différence du BMI selon le sexe. En effet, la moyenne du BMI chez les femmes est de 20,76 +/-3,7 v=13,74 tandis que chez l’homme elle est de 20,92 +/-3,12 (v=9,7) p=0,74. (Cf. tableau 21) Tableau 21 : BMI selon le sexe Moyennes du BMI Femmes Hommes 20,76 20,92 p=0,74 V-2 Données de l’examen physique A l’examen physique les signes carentiels recherchés sont : la pâleur cutanéo-muqueuse, les troubles des phanères et de la peau, le retard staturo-pondéral (RSP) et/ou pubertaire (RP). On note que dans 75% l’examen physique ne retrouve pas de signes carentiels. Les signes carentiels tels que les anomalies de la peau et des phanères, et le RSP et/ou pubertaire sont souvent associés ; ils sont moins fréquents dans la forme atypique mais de façon non significative (p=0,09). Cf. tableau 22 page 114. 113 Tableau 22 : Signes carentiels selon la forme clinique Signes carentiels Total Forme Forme atypique typique Pâleur 72 (22,7%) 50 (20%) 22 (32,8%) Troubles de la 59 (18,6%) 35 (14%) 24 (35,8%) 19 (6%) 11 (4,4%) 8 (12%) peau et des phanères RSP et/ou RP p=0,09 VI- Données de la biologie La biologie recherche le syndrome carentiel représenté par l’anémie et ses caractères, le bilan martial, la calcémie, la vitamine D, le bilan lipidique, l’albuminémie, et le taux de prothrombine. La FNS est réalisée chez tous les patients. Le fer est dosé chez 313 patients soit 98,7%, dont 246 (98,4%) pour la forme atypique et 67 soit 100% pour la forme typique. La ferritinémie est faite chez 144 patients soit 45,4%, dont 111 (44,4%) pour la forme atypique et 33 (49,2%) pour la forme typique. 114 La calcémie est dosée chez 310 patients soit 97,8% dont 244 (97,6%) pour la forme atypique et 66 (98,5%) pour la forme typique. La vitamine D est faite chez 167 patients soit 52,7% dont 134 (53,6%) pour la forme atypique et 33 (49,2%) pour la forme typique. Le bilan lipidique qui comprend le cholestérol et les triglycérides est réalisé chez 311 patients soit 98,1% dont 244 (97,6%) pour la forme atypique et 66 (98,5%) pour la forme typique. L’albuminémie est dosée chez 313 patients soit 98,7% dont 247 (98,8%) pour la forme atypique et 66 (98,5%) pour la forme typique. Le taux de prothrombine (TP) est dosé chez tous les patients, s’il est diminué l’origine digestive est attestée par sa correction avec le test de Koller (en dehors des hépatopathies). L’anémie est la carence la plus fréquente dans les deux formes, mais elle est retrouvée le plus souvent dans la forme typique (p=0,03). Elle est rarement absente. Cette situation est beaucoup plus fréquente dans la forme atypique. L’anémie est ferriprive et microcytaire hypochrome dans la quasi-totalité des cas et cela dans les deux formes cliniques sans différence significative. Cf. tableau 23 page 116. 115 Tableau 23 : Caractéristiques de l’anémie et du bilan martial, selon la forme clinique Anémie et ses caractères Total Forme atypique Forme typique Anémie absente 54 (17%) 49 (19,6%) 5 (7,4%) Anémie présente 263(83%) 201 (80,4%) 62 (92,5%) 261 (99,2%) 200 (80%) 61 (91%) 2 (0,8%) 1 (0,4%) 1 (1,5%) 0 0 0 30 (9,6%) 28 (11,4%) 2 (3%) 283 (90,4%) 218 (88,6%) 65 (97%) 10 (7%) 9 (8,1%) 1 (3%) 134 (93%) 102 (91,9%) 32 (97%) p=0,03 Microcytaire hypochrome Mégaloblastique Normocytaire normo chrome Fer sérique normal Fer sérique bas Ferritinémie normale Hypoferritinémie p=0,28 116 Les autres paramètres du syndrome carentiel sont significativement plus présents dans la forme typique, sauf pour la vitamine D (le p n’est pas significatif). Cf. tableau 24 page 117. Tableau 24 : Caracteristiques des autres signes biologiques carentiels et formes cliniques Paramètres Total Forme atypique Forme typique Calcémie normale 231 (74,5%) 198 (81,2%) 33 (50%) Hypocalcémie 79 (25,5%) 46 (18,8%) 33 (50%) p=0,000001 Vitamine D normale 50 (30%) 42 (31,4%) 8 (24,2%) Vitamine D basse 117 (70%) 92 (68,6%) 25 (75,8%) 230 (74%) 196 (80,3%) 34 (50,7%) 81(26%) 48 (19,7%) 33 (49,2%) p=0,42 Lipides normaux Hypolipidémie p=0,000001 Albuminémie normale 258 (82,4%) 222 (89,9%) 36 (54,5%) Albuminémie basse 55 (17,6%) 25 (10,1%) 30 (45,5%) p=0,000001 TP normal TP bas corrigé 300 (94,6%) 243 (97,2%) 57 (85%) 10 (3,2%) 4 (1,6%) 6 (9%) 7 (2,2%) 3 (1,2%) 4 (6%) / vit K TP bas non corrigé / vit K p=0,006 117 VII- Sérologie La sérologie est réalisée chez tous les patients, les anticorps anti gliadine (AGA), anti endomysium (END) et anti transglutaminase (TTG). Etant donné la faible spécificité et sensibilité des anticorps AGA, ils sont toujours associés à un autre anticorps (END ou TTG). Les anti AGA sont les plus utilisés (78,8%) associés à un des anticorps, anti END (57,4%) ou anti TTG (53,9%). Ci-dessous le schéma 10 page 118, représentant un histogramme qui résume le taux d’utilisation des anticorps. Schéma 10 : Taux d’utilisation des anticorps 118 Le tableau 25, résume les taux de positivité des anticorps selon le nombre d’anticorps utilisé. La situation la plus fréquente (83,9%) est la positivité de deux anticorps, puis vient la positivité d’un anticorps (13%), enfin, rarement trois anticorps sont positifs (3,1%). Tableau 25 : Anticorps positifs selon le nombre d’anticorps utilisés 2 Anticorps positifs 266 (83,9%) AGA + END 145 (54,5%) AGA + TTG 99 (37,2%) TTG + END 22 (8,3%) 3 Anticorps positifs 10 (3,1%) AGA + TTG + END 1 Anticorps Positif 41 (13%) END ou TTG Il nous est impossible de comparer les taux de positivité selon l’anticorps utilisé, car d’une part, les anticorps ont été dosés dans des centres différents (problèmes de cut-off) et d’autre part, la nature des anticorps utilisés peut être différente d’un patient à un autre. Le souci principal pour nous est de confirmer le diagnostic de maladie cœliaque 119 VIII- Résultats de l’endoscopie L’endoscopie digestive haute est réalisée chez tous les patients. L’endoscopie peut être normale ou pathologique. Les lésions peuvent siéger au niveau du bulbe (muqueuse nodulaire ou en mosaïque) (cf. tableau 26 page 121) et/ou dans le duodénum (muqueuse nodulaire, plis hachurés, muqueuse en mosaïque, diminution du plissement, ou associations de plusieurs types de lésions) (cf. tableau 27 page 122). Il peut exister également des lésions associées non rattachées à la maladie cœliaque, cf. tableau 28 page 124. Les images 1 à la page 123 représentent certains aspects endoscopiques observés dans le duodénum chez nos patients. On note qu’il n’existe pas de différence entre les deux formes cliniques. Les lésions duodénales sont plus fréquentes que celles du bulbe (84,2% VS 15,5%), elles sont dominées par l’association de plusieurs anomalies (56,2%) Dans le tableau 26 page 121 les ulcères du bulbe sont des lésions associées et non pas liées à la maladie cœliaque. 120 Tableau 26 : Aspects endoscopiques au niveau du bulbe selon la forme clinique Aspects Total endoscopiques Forme Forme atypique typique Normal 268(84,5%) 213 (85,2%) 55 (82%) Pathologique : 49 (15,5%) 37 (14,8%) 12 (18%) Nodulaire 13 (26,5%) 11 (29,6%) 2 (16,6%) Mosaïque 32 (65,3%) 22 (59,4%) 10 (83,4%) p=0,53 Ulcère du bulbe 4 (8,2%) 4 (11%) 0 (0%) 121 Tableau 27: Aspects endoscopiques au niveau du duodénum selon la forme clinique Aspects Total endoscopiques Forme Forme atypique typique 43 (17,2%) 7 (10,5%) Normal 50 (15,8%) Pathologique 267 (84,2%) 207 (82,8%) 60 (89,5%) Nodulaire 2 (0,75%) 1 (0,5%) 1 (1,7%) Hachuré 74 (27,7%) 55 (26,6%) 19 (31,6%) Mosaïque 10 (3,7%) 9 (4,3%) 1 (1,7%) Diminution du 31 (11,6%) 25 (12,1%) 6 (10%) plissement Anomalies 150 (56,2%) 117 (56,5%) 33 (55%) associées p=0,17 122 Images 1 : Aspects endoscopiques du duodénum (a : diminution des plis duodénaux et aspect fissuraire des plis, b : aspect fissuraire des plis qui sont conservés, c : réduction isolée des plis duodénaux, d : discret aspect en mosaïque de la muqueuse). 123 Les lésions œsogastriques associées sans rapport avec la maladie cœliaque rencontrées au cours de l’endoscopie sont rapportées sur le tableau 28 page 124. Il s’agit essentiellement de gastropathies congestives érosives ou non (10,1%), de signes endoscopiques d’HTP (6,3%), d’œsophagites peptiques ou mycosiques (1,5%) on observe également un cas de syndrome de Plummer Vincent. Tableau 28 : Lésions endoscopiques associées Lésions associées Total Forme atypique Forme typique Œsophagite 5 (1,5%) 4 (1,6%) 1 (1,5%) Gastropathie 32 (10,1%) 15 (6%) 17 (25,4%) Hypertension portale 20 (6,3%) 15 (6%) 5 (7,4%) Plummer-Vincent 1 (0,3%) 1 (0,4%) 0 IX- Résultats de l’histologie L’histologie décrit l’épithélium, les cryptes, le chorion, mais surtout le nombre des lymphocytes intra épithéliaux et le degré de l’atrophie villositaire. On note que l’hyper lymphocytose intra épithéliale et l’atrophie villositaire totale sont fréquentes dans les deux formes, mais l’atrophie villositaire totale est significativement plus importante dans la population typique (58% versus 82,1%). Cf. tableau 29 page 125. L’image 2 page 126 : aspects histologiques de la muqueuse intestinale au cours de la maladie. 124 Tableau 29 : Lésions histologiques selon la forme clinique Histologie Total Forme Forme Atypique Typique Epithélium Non précisé 15 (4,7%) 15 (6%) 295 (93,1%) 229 (91,6%) 66 (98,5%) 7 (2,2%) 6 (2,4%) 1 (1,5%) Non précisées 151 (47,6%) 124 (49,6%) 27 (40,3%) Hyperplasiques 166 (52,4%) 126 (50,4%) 40 (59,7%) 0 O 1 (0,3%) 1 (0,4%) 314 (99%) 248 (99,2%) 66 (98,5%) 2 (0,7%) 1 (0,4%) 1 (1,5%) Altéré Normal 0 Cryptes Normales Chorion Non précisé Inflammatoire Normal 0 Lymphocytes intra épithéliaux Non précisés 45 (14,2%) 34 (13,6%) 11 (16,4%) Augmentés 271 (85,5%) 216 (86,4%) 55 (82,1%) 0 1 (1,5%) Normaux 1 (0,3%) p=0,12 Atrophie villositaire IIIa 31 (9,8%) 28 (11,2%) 3 (4,5%) IIIb 86 (27,1%) 77 (30,8%) 9 (13,4%) IIIc 200 (63,1%) 145 (58%) 55 (82,1%) p=0,001 125 126 Il existe une corrélation entre le degré d’atrophie villositaire et l’aspect endoscopique dans le duodénum. En effet, plus le degré d’atrophie est sévère plus l’aspect endoscopique est anormal dans le duodénum. Cf. tableau 30 page 127. Tableau 30 : Corrélation entre aspects endoscopiques et histologiques Atrophie villositaire Total Endoscopie normale Endoscopie pathologique IIIa 31 10 (32,3%) 21 (67,7%) IIIb 86 21 (24,4%) 65(75,6%) IIIc 200 19 (9,5%) 181 (90,5%) Total 317 50 267 p=0,001 127 X- Résultats de l’échographie L’échographie (écho) n’est pas demandée systématiquement, elle est réalisée en cas d’hépatopathie associée ou en cas de suspicion de complication. Cependant la majorité a eu une échographie, demandée par le médecin généraliste, ou par le malade lui-même (avant le diagnostic de maladie cœliaque). L’échographie est le plus souvent normale, couplée au doppler en cas de problème hépatique, elle identifie les signes d’HTP et le niveau du bloc. Ci-dessous le tableau 31 des résultats de l’échographie. On note qu’il n’existe pas de différence entre les deux formes cliniques (p=0,27). Tableau 31 : Résultats de l’échographie selon la forme clinique Résultats de l’échographie Total Forme atypique Forme typique Nombre d’échographies 233 (73,5%) 173 (69,2%) 60 (89,5%) Echographies normales 194 (83,3%) 146 (84,4%) 48 (80%) Signes d’HTP 19 (8,1%) 12 (7%) 7 (11,6%) Angiomes hépatiques 4 (1,7%) 4 (2,3%) 0 Lithiase vésiculaire 1 (0,4%) 0 1 (1,6%) Stéatose 5 (2,1%) 3 (1,7%) 2 (3,3%) Adénopathies abdominales 10 (3,4%) 8 (4,6%) 2 (3,3%) p= 0,27 128 XI- Manifestations hépatiques Les hépatopathies associées à la maladie cœliaque sont représentées par les cytolyses cryptogénétiques bénignes (dans cette série non révélatrices de l’entéropathie), et les autres hépatopathies dysimmunitaire ou non, plus sérieuses, révélatrices de la maladie cœliaque dans 100% des cas dans cette étude. XI-1 Hypertransaminasémies cryptogénétiques Appelées aussi « hépatites cœliaques » sont retrouvées chez 32 patients soit 10,1%. La répartition selon la forme clinique est de 21 patients (8,4%) dans la forme atypique et 11 patients (16,4%) dans la forme typique avec un p proche du taux significatif (p =0,053). Cf. tableau 32. Tableau 32 : Hypertransaminasémies selon la forme clinique Total Forme atypique Forme typique Hypertransaminasémies 32/317 (10,1%) 21/250 11/67 (8,4%) (16,4%) p=0,053 129 XI-2 Autres hépatopathies : Plus sévères, elles ont révélé la maladie cœliaque, elles sont rapportées dans le tableau 33 page 131 selon la forme clinique. Ces hépatopathies sont reparties ainsi : • Cirrhose biliaire primitive (CBP) : 6 cas • Hépatite auto-immune (HAI) : un cas • Overlop syndrome deux cas ; dont un fait de l’association entre CBP et HAI et un fait de l’association entre HAI et Cholangite sclérosante des petits canaux • Cirrhose cryptogénétique 4 cas • Un syndrome de Budd Chiari • Une maladie de Wilson • Hypertension portale (HTP) bloc intra-hépatique (dix patients) sans évidence de cirrhose ou de cause décelée et une par bloc sous-hépatique secondaire à une fibrose retro péritonéale. Sur le tableau 33, sont mentionnées uniquement les HTP intra-hépatiques de cause inconnue (les HTP dues aux hépatopathies connues ne sont pas rapportées). 130 Tableau 33 : Hépatopathies révélatrices de la maladie cœliaque Hépatopathies Total Forme atypique Forme typique CBP 6 (1,9%) 6 (2,4%) 0 HAI 1 (0 ,3%) 0 1 (1,5%) Overlop syndrome 2 (0,6%) 1 (0,4%) 1 (1,5%) Cirrhoses 4 (1,2%) 2 (0,8%) 2 (3%) Budd Chiari 1 (0,3%) 1 (0,4%) 0 HTP 10 (3,1%) 9 (3,6%) 1(1,5%) 1 (0,3%) 1 (0,4%) 0 Wilson 1 (0,3%) 0 1 (1,5%) Total 26 (8,2%) 20 (8%) 6 (9%) intra-hépatique HTP sous-hépatique p= O,O8 131 XI-3 Modes de révélation des hépatopathies Ces maladies du foie ont été révélées le plus souvent par une décompensation de l’hépatopathie (ascite, ictère, hémorragie par rupture de varices œsophagiennes : RVO) associés à d’autres anomalies (prurit, insuffisance hépatique) sans différence significative entre les deux formes cliniques typique et atypique (p=0,24). Cf. tableau 34. Dans le tableau 34, les pourcentages sont calculés par rapport au nombre d’hépatopathies égal à 26 dont 20 sont atypiques et 6 typiques). Tableau 34 : Signes et complications des hépatopathies selon la forme clinique Signes et complications Total Forme Forme atypique Typique 5 (25%) 2 (33,3%) hépatiques Insuffisance 7(27%) hépatocellulaire Ascite 5 (19,2%) 2 (10%) 3 (50%) Rupture de VO 2 (7,7%) 1 (5%) 1 (16,6%) Prurit 7 (27%) 7 (35%) 0 Ictère 7 (27%) 6 (30%) 1 (16,6%) Hépato-splénomégalie 6 (23%) 4 (20%) 2 (33,3%) p=0,24 132 XI-4 Bilan biologique au cours des hépatopathies Les patients porteurs d’hépatopathies ont des anomalies du bilan hépatique, et des signes d’hypersplénisme. Ces anomalies peuvent être associées (ne sont pas incluses les cytolyses cryptogénétiques). Il n’existe pas de différence significative entre les deux formes cliniques. Cf. tableau 35. L’anomalie la plus fréquente est la cytolyse (65,4%), viennent ensuite, la Cholestase, l’hypersplénisme (50%) et l’insuffisance hépatocellulaire (27%). Dans le tableau 35, les pourcentages sont calculés par rapport au nombre d’hépatopathies égal à 26 dont 20 sont atypiques et 6 typiques. Tableau 35 : Anomalies du bilan au cours des hépatopathies Bilan hépatique Insuffisance Total Forme Forme atypique Typique 7 (27%) 3 (15%) 4 (66,6%) Cytolyse 17 (65,4%) 13 (65%) 4 (66,6%) Cholestase 13 (50%) 12 (60%) 1(16,6%) Hypersplénisme 13 (50%) 8 (40%) 5 (83,3%) hépatocellulaire p= 0,09 133 XI-4 Biopsie hépatique La biopsie hépatique (PBF) est réalisée chez 14 patients, elle n’est contributive pour le diagnostic étiologique que dans 2 cas (CBP associée à HAI et HAI associée à une Cholangite sclérosante des petits canaux). Parmi les 4 cirrhoses cryptogénétiques, 2 patients ont une PBF, mais celleci a juste confirmé la cirrhose sans apporter de diagnostic étiologique. Les patients ayant une cytolyse cryptogénétique (n=32) n’ont pas de PBF sauf pour 2 d’entre eux, car l’échographie retrouve des images focales suspectes de stéatose. L’histologie confirme pour ces deux cas une stéatose micro et macro vacuolaire. 8 HTP idiopathiques ont bénéficié d’une PBF (les autres ont des troubles de l’hémostase), l’histologie permet d’écarter la cirrhose, mais aucune étiologie n’est retrouvée. Les lésions ne sont pas spécifiques (infiltrat inflammatoire lobulaire et des espaces portes, avec parfois fibrose minime). Le schéma 11 à la page 135 résume les résultats de la biopsie hépatique. 134 Schéma 11: Résultats de la biopsie hépatique 135 XII-Régime sans gluten Le régime sans gluten (RSG) est institué chez tous les patients ; l’observance est évaluée entre un et deux ans de suivi. 150 patients respectent le RSG soit 47,3% dont 120 (48%) pour la forme atypique et 30 (44,77%) pour la forme typique. 167 patients ne suivent pas correctement le RSG soit 52,7% dont 130 (77,8%) pour la forme atypique et 37 (22,2%) pour la forme typique. XII-1 Facteurs qui influencent l’observance au RSG Les facteurs (liés au malade et à la maladie) prédictifs du respect ou non du RSG ont été évalués. Nous avons retrouvé les résultats suivants : Les antécédents personnels (diabète, pathologie psychiatrique, tabagisme) et familiaux de maladie cœliaque (MC) n’influencent pas l’observance au RSG (cf. le tableau 36 page 137). 136 Tableau 36 : Influence des antécédents familiaux de maladie cœliaque, du diabète, des psychoses et du tabagisme dans l’observance au RSG Antécédents Total MC familiale 80 (25,2%) Observance au Non observance RSG (n=150) au RSG (n=167) 42 (28%) 38 (22,7%) p=0,26 Diabète 6 (1,9%) 2 (1,3%) 4 (2,4%) p=0,39 Psychiatrie 4 (1,2%) 0 4 (100%) p=0,07 Tabac 22 (7%) 8 (5,3%) 14 (8,3%) p=0,28 137 Il existe une Influence des conditions socio-économiques, et du niveau d’instruction, sur la compliance au RSG, tandis que le sexe, l’âge au moment du diagnostic et la forme clinique ne jouent pas de rôle dans l’adhérence au RSG (cf. tableau 37 page 138). Tableau 37 : Influence du sexe, de l’âge, des conditions socioéconomiques, du niveau d’instruction et de la forme clinique sur l’observance au RSG Facteurs Sexe Masculin Féminin Total RSG + (n=150) 59 258 25 (16,6%) 125 (83,4%) p=0,39 RSG – (n=167) 34 (20,3%) 133 (79,7%) Age au diagnostic < à 30 ans Entre 30 et 50 ans >à 50 ans 160 138 19 74 (49,3%) 64 (42,7%) 12 (8%) p=0,36 86 (51,5%) 74 (44,3%) 7 (4,2%) Conditions socioéconomiques Mauvaises Moyennes Bonnes 94 170 53 26 (17,3%) 85 (56,7%) 39 (26%) p=0,000001 68 (40,7%) 85 (50,9%) 14 (8,4%) 23 60 99 69 66 7 (4,6%) 26 (17,4%) 38 (25,3%) 37(24,7%) 42 (28%) p=0,006 16 (9,6%) 34 (20,4%) 61 (36,5%) 32 (19,1%) 24 (14,4%) Niveau d’instruction Sans Primaire Collège Secondaire Universitaire Forme clinique Atypique Typique 250 120 (80%) 67 30 (20%) p=0,6 130 (77,8%) 37 (22,2%) 138 XII-2 Effets du RSG Les effets du RSG sur les symptômes cliniques, le syndrome carentiel, la sérologie, l’endoscopie, l’histologie et la DMO de contrôle, évalués entre 1 et 2 ans sont positifs de façon significative chez les sujets qui suivent correctement le RSG (cf. tableau 38 page 140 et 141). La DMO de contrôle est réalisée chez 103 patients soit 32,5%. Les malades qui ont une DMO normale avant l’initiation du RSG (77 patients), ne sont pas contrôlés. Deux patients n’ont pas pu faire le bilan carentiel de contrôle et la sérologie de contrôle n’a pas été réalisée chez 16 patients. L’endoscopie de contrôle et par conséquent l’histologie de contrôle sont réalisées chez 291 patients soit 91,8% dont 230 (92%) formes atypiques et 61 (91%) formes typiques. Les endoscopies de contrôle non faites (26 patients) sont dues au refus du patient. 139 Tableau 38 : Influence du RSG sur les symptômes cliniques, le syndrome carentiel, la sérologie, la DMO et l’histologie Facteurs Total RSG + RSG - Symptômes cliniques Présents 86 4 (2,7%) 82 (49%) Absents 231 146 (97,3%) 85 (51%) Total 317 150 167 p=0,000001 Syndrome carentiel Présent 151 4 (2,7%) 147 (88,5%) Absent 164 145 (97,3%) 19 (11,5%) Total 315 149 166 p=0,000001 DMO Normale n=103 n=61 17 n=42 13 (21,3%) 4 (9,5%) 12 (19,7%) 1 (2,4%) 33 (54,1%) 32 (76,2%) 3 (4,9%) 5 (11,9%) (16,5%) Amélioration 13 (12,6%) Stable 65 (63,1%) Aggravation 8 (7,8%) p=0,009 Sérologie Positive 161 15 (10,3%) 146 (94,2%) 131 (89,7%) 9 (5,8%) (53,5%) Négative 140 (46,5%) Total 301 146 155 p=0,000001 140 SUITE DU TABLEAU 38 Facteur Total RSG+ RSG- Endoscopie Pas de 171(58,8%) 31 (21,3%) 140 (96%) Amélioration 82 (28,2%) 77 (52,7%) 5 (4%) Normalisation 38 (13%) changement Total 38 (26%) 0 146 145 291 p=0,000001 Histologie Normalisation 96 93 (63,7%) 3 (2%) 49 (33,5%) 17 (11,7%) 4 (2,8%) 123 (85%) (33%) Diminution du degré d’atrophie Persistance du même degré 66 (22,7%) 127 (43,7%) d’atrophie Aggravation de l’atrophie Total 2 0 2 (1,3%) (0,6%) 291 146 145 p=0,000001 141 XII-3 Résultats de l’endoscopie et de l’histologie de contrôle en fonction de la forme clinique XII-3-1 Endoscopie Les résultats de l’endoscopie et de l’histologie de contrôle ne diffèrent pas selon la forme clinique. Nous notons qu’il n’existe pas d’amélioration de l’endoscopie dans la plupart des cas (58,4%) ; l’aspect normal observé lors du contrôle est soit dù à une régression totale des lésions endoscopiques, soit à un aspect normal qui existait dès l’endoscopie initiale (cf. le tableau 39). Tableau 39 : Aspects endoscopiques lors de l’examen de contrôle selon la forme clinique Endoscopie Total Pas de changement Total 291 Forme Forme Atypique typique 230 61 171(58,8%) 136 (59,1%) 35 (57,4%) Amélioration 82 (28,2%) 63 (27,4%) 19 (31,1%) Normalisation 38 (13%) 31 (13,5%) 7 (11,5%) p=0,83 142 XII-3-2 Histologie La cicatrisation définie par une disparition de l’atrophie villositaire est observée dans 32,6%, sans différence significative entre les deux formes cliniques (32,6% pour la forme atypique et 32,8% pour la forme typique). On note une baisse du grade d’atrophie dans 22,7%, la persistance du même grade d’atrophie dans 44% et une aggravation de l’atrophie dans 0,7% (p=0,44) (cf. tableau 40). Tableau 40 : aspect histologiques lors de l’examen de contrôle selon la forme clinique Histologie Total Forme Atypique Forme Typique Cicatrisation 96 (33%) 76(33%) 20 (32,8%) Diminution de 66 (22,7%) 56 (24,3%) 10 (16,4%) 127(43,7%) 96 (41,8%) 31 (50,8%) 2 (0,6%) 2 (0,9%) l’atrophie Même degré d’atrophie Aggravation Total 291 230 0 61 p=0,44 143 Le taux de cicatrisation augmente à 63,7% si l’on prend en considération l’observance au RSG, il n y a pas de différence entre les deux formes cliniques (62,4% VS 69% p=0,51) (cf. tableau 41). A noter que parmi les 150 patients qui suivent correctement leur RSG, 146 ont bénéficié d’un contrôle histologique. Tableau 41 : Histologie de contrôle chez les sujets observants au RSG selon la forme clinique Contrôle Total Forme atypique Forme typique 93 (63,7%) 73 (62,4%) 20 (69%) 49 (33,5%) 41 (35%) 8 (27,6%) d’atrophie 4 (2,8%) 3 (2,6%) 1 (3,4%) Aggravation 0 0 0 146 117 histologique Normal Diminution de l’atrophie Même grade Total 29 p=O,51 144 XIII-Evolution des hépatopathies sous RSG Les cytolyses cryptogénétiques ont toutes régressé au bout de 3 à 6 mois d’évolution et cela indépendamment du RSG. En effet, 8 (25%) ont un RSG respecté et 24 (75%) ne suivent pas correctement le RSG. Les autres hépatopathies ont une évolution variable sous RSG associées ou pas à un traitement spécifique. Toutes les CBP ont reçu un traitement à base d’acide ursodésoxycolique à la dose de 13 à 15 mg/Kg/J. Les 3 patients qui sont sous RSG correct ont pour deux d’entre eux une évolution favorable, alors que le troisième s’est aggravé. Les 3 patients non adhérents au RSG ont une évolution différente. Un patient s’est amélioré, un malade est stable tandis que le troisième s’est aggravé. Les 2 overlop syndromes ont reçu une trithérapie à base de Corticoïdes, Azathioprine, et Acide Ursodesoxycolique. Nous avons noté que chez une patiente sous RSG strict, la maladie s’est stabilisée ; tandis que chez une autre ne suivant pas correctement le RSG, la maladie s’est aggravée. L’HAI est mise sous Corticoïdes associés à l’Azathioprine mais avec une très mauvaise observance en raison de troubles psychiatriques associés. L’observance au RSG chez cette patiente est nulle. L’évolution s’est faite vers l’aggravation, avec décompensation ascitique puis rupture de varices œsophagiennes. Le patient atteint de maladie de Wilson est déjà au stade de décompensation ascitique lors du diagnostic de la maladie cœliaque. Il n’a pas été mis sous traitement spécifique en raison d’une thrombopénie sévère. Le RSG est très mal suivi, l’évolution s’est faite vers l’aggravation. 145 Les 4 cirrhoses cryptogénétiques ont été mises sous traitement symptomatique. Une patiente est stable sous RSG. Les trois autres n’ont pas suivi correctement le RSG. Parmi ces patients un s’est aggravé et deux sont stables. La patiente porteuse d’un syndrome de Budd Chiari sans signes endoscopiques d’HTP, est sous RSG strict, et évolue favorablement sous anti vitamine K. La malade porteuse d’une fibrose rétro péritonéale compliquée d’HTP par bloc sous-hépatique, ne suit pas le RSG. Sa maladie s’est très rapidement aggravée. Cette patiente et a été perdue de vue au bout de deux ans de suivi. Les dix HTP par bloc intra hépatique ont reçu un traitement symptomatique, leur évolution s’est faite comme suit : Deux cas ont évolué favorablement sous RSG. L’ HTP chez ces deux patients est très modérées (varices œsophagiennes de grade I). On note une disparition des varices œsophagiennes sous RSG. Six patients sont stables, dont un seulement est sous RSG Deux malades se sont aggravés, un suit le RSG l’autre non. Le tableau 42 page 147 résume l’évolution des hépatopathie selon l’observance au RSG. 146 Tableau 42 : Evolution des hépatopathies sous RSG Hépatopathies Evolution RSG+ RSG- Cytolyses Favorable 8 24 Stable 0 0 Aggravation 0 0 Favorable 2 1 Stable 1 1 Aggravation 1 3 Favorable 0 0 Stable 0 0 Aggravation 0 1 Cirrhoses Favorable 0 0 cryptogénétiques Stable 1 2 0 1 Favorable 2 0 Stable 1 5 Aggravation 1 1 Favorable 1 0 Stable 0 0 Aggravation 0 0 Fibrose rétro Favorable 0 0 péritonéale Stable 0 0 Aggravation 0 1 Hépatopathies auto-immunes Wilson Aggravation HTP Budd chiari En raison du faible effectif, aucune comparaison n’a pu être faite. 147 XIV- Suivi des patients – Apparition des Complications XIV-1 Durée du suivi La moyenne de suivi de la population cœliaque est de 2,82 ans +/-1,21 (v=1,47). La moyenne de suivi pour la population atypique est de 2,78 ans +/1,19 (v=1,42). La forme typique a une moyenne de suivi de 2,97 ans +/-1,29 (v=1,29), sans différence significative p=0,24 (cf. tableau 43) . Tableau 43 : Durée du suivi en années selon la forme clinique Suivi en années Total Forme atypique Forme typique 2 ans 195 158 (64%) 37 (56,1%) 3ans 31 23 (9,3%) 8 (12,1%) 4 ans 28 23 (9,3%) 5 (7,6%) 5 ans 59 43 (17,4%) 16 (24,2%) Total 313 247 66 p=0,24 Il existe cependant 4 patients décédés à 1an de suivi (3 formes atypiques et 1 forme typique). Les causes de déces sont : la tuberculose multiresistante dans un cas et le coma hépatique dans trois cas. 148 XIV-2 Pathologies apparues au cours du suivi Au cours du suivi, 7 patients soit 2,2% ont développé une maladie autoimmune (Mies AI) ; il s’agit de 3 diabètes type 1, un syndrome de Sjogren Gougerot, une anémie hémolytique, une dermatite herpétiforme et une thyroïdite auto-immune. Deux malades ont developpé une cirrhose de cause inconnue. L’âge moyen de cette population est de 39,89 ans +/-13,38 avec des extrêmes de 23 à 63 ans. Le délai moyen d’apparition de ces pathologies dysimmunitaires est de 1,44 ans +/- 1,24. Le tableau 44, résume les différentes pathologies auto immunes ou non, apparues au cours du suivi, selon le sexe, les antécédents familiaux de maladies auto-immunes, la forme clinique, et l’adhérence ou non au RSG (en raison du faible effectif aucune comparaison n’a pu être effectuée). Tableau 44 : Pathologies auto-immunes apparues au cours du suivi Mies AI Diabète Gougerot Cirrhose Anémie Dermatite Thyroï hémolytique herpétiforme -dite Femme 3 1 1 1 1 1 Homme 0 0 1 0 0 0 Antécédent 1 1 0 0 0 0 3 1 1 1 1 0 0 0 1 0 0 1 RSG + 1 1 1 0 0 0 RSG- 2 0 1 1 1 1 Familial Mie AI Forme atypique Forme typique 149 XIV-3 Complications malignes Les complications malignes sont observées chez deux patientes soit dans 0,63%. Il s’agit d’un lymphome T étendu gastroduodénal, et d’un adénocarcinome du jéjunum métastatique. Nous avons observé aussi un cas de jéjunite ulcéreuse. La patiente porteuse d’un adénocarcinome, est âgée de 51 ans lors du diagnostic. Les symptômes digestifs sont discrets, ils ont débuté un an avant le diagnostic, accompagnés sur le plan biologique d’une anémie. Le RSG est institué, mais jamais respecté. Les symptômes ont d’ailleurs persisté, imputés au début à la non observance au RSG. Devant l’apparition de vomissements et d’une altération rapide de l’état général, un scanner est réalisé, faisant suspecter une tumeur intestinale. La Jejunoscopie n’arrive pas au processus, d’où la décision d’opérer la patiente. La laparotomie met en évidence une tumeur du jéjunum distal qui envahit les structures avoisinantes, avec une probable carcinose péritonéale. La tumeur n’est pas reséquée mais biopsiée. L’étude anatomo-pathologique confirme l’adénocarcinome moyennement différencié avec métastases ganglionnaires et péritonéales. La malade décède quatre mois après la laparotomie. Seul un traitement symptomatique a été institué. La deuxième malade porteuse du lymphome est âgée de 54 ans lors du diagnostic de la maladie cœliaque. Les symptômes digestifs mineurs associés à une asthénie profonde et une anémie ont évolué depuis 4 ans. Le RSG est institué, mais la patiente est perdue de vue. Elle consulte deux ans plus tard dans un tableau de vomissements et d’altération profonde de l’état général. La fibroscopie retrouve un aspect de gros plis ulcérés gastriques, le duodénum présente en plus des marqueurs endoscopiques de la maladie 150 cœliaque, des ulcérations éparses. L’étude anatomo-pathologique confirme le lymphome gastrique de type T, étendu au duodénum. Le scanner détecte des adénopathies profondes métastatiques, la biopsie médullaire une infiltration de la moëlle. La patiente avoue que le RSG n’a jamais été initié. Un CHOP est tenté, mais devant la dégradation de l’état de la patiente, seule une cure est réalisée. La malade décède à son domicile, quatre mois après le diagnostic du lymphome. La troisième patiente est âgée de 46 ans, le diagnostic de maladie cœliaque est posé devant une diarrhée chronique avec syndrome carentiel sévère, dénutrition et déshydratation. Ce tableau qui évolue depuis plus de dix ans s’est aggravé il y a trois mois. Les symptômes sévères nous font craindre une complication maligne sur maladie cœliaque, surtout devant l’existence de multiples ulcérations jéjunales. L’étude anatomo-pathologique de trois séries de biopsies a écarté une complication maligne. Le traitement institué est à base de prednisone 1 mg/Kg/jour pendant quatre semaines associé au RSG. Le contrôle jéjunal à un mois constate la disparition des ulcérations. La patiente n’a néanmoins pas pu continuer à suivre le RSG, elle est peu symptomatique et le contrôle endoscopique du duodénum à 18 mois retrouve toujours le même grade d’atrophie villositaire. 151 XV-Mortalité et Influence du RSG sur la morbimortalité : La mortalité globale de la population cœliaque est de 1,9% (6 patients). Les causes de décès sont : une tuberculose pulmonaire massive multi résistante, trois comas hépatiques et deux complications malignes. Parmi les décès, plus de la moitié (66,6%), ne sont pas directement liés à la maladie cœliaque mais à une pathologie associée (tuberculose et cirrhoses : deux CBP et une cirrhose cryptogénétique) (cf. tableau 45). Tableau 45 Causes des décès Causes de décès Nombre de malades Tuberculose 1 Coma hépatique 3 Malignité 2 Total 6 152 L’influence du régime sans gluten dans la survenue des complications malignes (cf. tableau 46), des maladies auto-immunes (cf. tableau 47) et dans la mortalité (cf. tableau 48) n’est pas retrouvée dans cette étude, la différence n’est pas statistiquement significative. Tableau 46 : influence du RSG sur la survenue des complications malignes Observance au RSG Oui Malignité 0 Non Pas de malignité 150 2 165 p=0,27 Tableau 47 : Influence du RSG sur la survenue des maladies auto-immunes Observance au Pathologies autoRSG immunes Pas de pathologies autoimmunes Oui 4 146 Non 5 162 p=0,86 Sont inclus dans le Tableau 48, les deux cirrhoses de causes inconnues survenues au cours du suivi. Tableau 48 : Influence du RSG sur la mortalité Observance au RSG Mortalité + Mortalité – Oui 1 149 Non 5 162 p= 0,12 153 Discussion 154 La maladie cœliaque est une pathologie multi facettes, dont les symptômes très variés peuvent intéresser plusieurs spécialités médicales. En Algérie, à l’heure actuelle aucune étude sur le phénotype de la maladie cœliaque de l’adulte n’a été publiée, l’étude que nous vous soumettons reflète cet aspect. Dans la littérature, les aspects phénotypiques de la maladie cœliaque sont décrits, mais il n’y a pas de comparaison entre les deux formes cliniques (typique et atypique). Dans notre population de patients coeliaques, la forme atypique est prédominante ; elle représente 78,8% de la population totale de malades cœliaques avec un ratio forme atypique/forme typique=3,7. Dans la littérature, les formes atypiques sont les plus fréquentes, en particulier au cours de ces 10 dernières années, elles représentent 80% dans l’étude de Farrell [523] et dans une série Italienne publiée récemment ce taux est de 66% [29]. Dans les rares études du Maghreb et du Moyen Orient les résultats sont très variables selon les régions. Notre étude ne retrouve aucune forme silencieuse, cela s’explique d’une part par notre respect strict de la définition d’Oslo [85] concernant la forme silencieuse et d’autre part l’utilisation du dépistage sérologique est très rare dans notre étude. Nous avons considéré qu’une maladie cœliaque révélée par une anémie isolée ou une ostéopénie isolée est une forme atypique et non pas silencieuse. Il est intéressant de constater que parmi les patients dont les symptômes remontent à l’enfance, certains avaient une forme typique (98 cas) et sous l’effet du RSG institué toujours dans l’enfance, la diarrhée n’est pas réapparue après l’arrêt du RSG (67 cas). Ces patients à l’âge adulte présentent une forme atypique. Cela peut être expliqué par le fait que la récidive clinique n’est pas toujours retrouvée [488] chez les patients qui arrêtent le RSG. 155 I-Caractéristiques démographiques Notre population de malades cœliaques est plutôt jeune, la moyenne d’âge est de 31,6 ans avec des extrêmes de 17 à 72 ans. Les deux populations atypique et typique sont homogènes selon l’âge. La moyenne d’âge des populations atypique et typique est de 31,6 ans (p=0,99). Les patients qui ont 50 ans et plus sont en nombre de 22, ce qui représente seulement 7% de la population de malades cœliaques. Il est actuellement admis que la maladie cœliaque est une affection qui survient à tout âge (enfants et adultes). Chez l’adulte, la maladie cœliaque est observée avec un maximum entre 30 et 40 ans [30], ce qui est compatible avec nos résultats. Le sujet âgé n’est pas épargné, le taux de patients diagnostiqués après 60 ans est de 20% d’après Hankey et al [528] tandis que Singh et al [529] ont rapporté le taux de 9,3%, et dans une étude épidémiologique très récente publiée par Zingone et al, le taux de 6,5% a été retrouvé [530] ce qui est proche du taux observé dans notre population de malades cœliaques (7%). Dans notre étude, Il existe probablement une sous estimation du nombre de patients âgés, ces patients sont le plus souvent asymptomatiques, expliqué par le fait qu’il existe probablement, une tolérance tard dans la vie [504]. Les formes silencieuses ou pauci symptomatiques du sujet âgé sont le plus souvent diagnostiquées grâce au dépistage qui fait fortement défaut dans notre série. La prédominance féminine est nette dans notre étude, le sex ratio : H/F = 0,28 (258 femmes et 59 hommes). Cette majorité féminine est constatée aussi bien dans la population atypique (H/F=0,25, 200 femmes pour 50 hommes) que dans la forme typique (H/F=0,15 58 femmes pour 9 hommes). 156 Ces résultats ne sont pas surprenants car comme pour la plupart des maladies auto-immunes, dans la maladie cœliaque, toutes les séries publiées rapportent cette prédominance à des degrés variables 1/2 à 1/4 [531, 532]. Les caractères tels que la situation familiale et les conditions socioéconomiques ont été analysées, se sont des données qui peuvent avoir une influence dans la prise en charge de la maladie. Notre population est jeune, ce qui explique que 62% et 55,2% respectivement formes atypique et typique soient célibataires. Le niveau d’instruction est cependant faible, seuls 22,8% des formes atypiques et 13,5% des formes typiques ont un niveau universitaire. La majorité a un niveau du collège, soit 30,4% pour la population atypique et 34,3% pour la population typique (dont la plupart ne maitrisent pas la lecture en français). L’échec scolaire est probablement en rapport avec l’absentéisme répété dù à la maladie, et aussi au niveau socio-économique défavorable. Les conditions socio-économiques sont pour la plupart moyennes : 50% pour la forme atypique et 67,2% pour la forme typique. 31,6% des formes atypiques et 22,4% des formes typiques ont de mauvaises conditions socio-économiques. La majorité des malades n’ont pas de revenu personnel. En effet, les patients porteurs des formes respectivement atypique et typique, sont dans 50% et 60% sans emploi, 12,4% et 6% sont étudiants universitaires dont certains résidants dans une cité universitaire. 10,8% et 12% sont lycéens ou stagiaires. Le mode de vie est citadin pour la grande majorité des patients, 96% pour le groupe atypique et 92,5% pour le groupe typique. 157 II- Antécédents de la population de malades cœliaques Les antécédents médicaux de nos patients sont divers, parmi ceux qui n’ont pas de liens avec leur maladie cœliaque, nous retrouvons l’atopie (respiratoire, ORL ou dermatologique) dans 5,6% (dix huit cas) de la population de malades cœliaques. Ce taux est probablement sous estimé car nous n’avons pris en compte, que les malades ayant des tests d’allergie positifs. Dans la littérature, l’atopie ne semble pas être plus fréquente chez le cœliaque par rapport à la population générale [533, 534, 535]. Les autres antécédents sont la schizophrénie quatre cas (1,2%), la tuberculose six cas (1,9%) et le syndrome de Turner quatre cas (1,2%). Les troubles psychiatriques telles que la schizophrénie et la dépression ont été décrits associés à la maladie cœliaque par certains auteurs [536, 537] mais il n’existe aucune preuve évidente que ces deux pathologies soient liées. Pourtant, certains troubles psychiatriques tels que les psychoses ont été révélateurs de la maladie cœliaque et ont régressé sous régime sans gluten [284]. Chez nos patients, leur maladie psychiatrique n’est pas révélatrice de leur maladie cœliaque. Bien que la tuberculose soit une maladie prévalente en Algérie, le taux de tuberculose retrouvé dans notre série est faible par rapport à celui de la littérature. Dans l’étude de Williams et al [538] le taux de tuberculose chez les cœliaques est de 7,9%. Ceci est probablement dù au faible effectif de notre série par rapport à celle de Williams. Cette susceptibilité à la tuberculose chez le cœliaque serait due à la malabsorption de la vitamine D impliquée dans la régulation des peptides antimicrobiens comme l’IL37 [539] mais aussi à la production par le macrophage d’oxyde nitrique qui inhibe la croissance du mycobacterium 158 tuberculosis [540]. Le risque de tuberculose serait en rapport aussi avec la sécrétion du TNFα [541] et du complément (C2 et C8) [542] au cours de la maladie cœliaque. Ce risque a récemment été revu à la baisse (deux fois plus que la population générale) et serait maximum au cours de la première année du diagnostic [543], le même auteur l’avait évalué à quatre fois plus que la population générale [544]. Ce qui est intéressant dans les six cas de tuberculoses retrouvés, c’est qu’ils ont été à l’origine du diagnostic de la maladie cœliaque. Cinq cas de tuberculose ganglionnaire (dont un avec localisation splénique) ont été adressés en gastroentérologie pour exploration de ganglions profonds. L’exploration digestive grâce à l’endoscopie digestive haute (avec biopsies) a permis de détecter l’entéropathie associée. Néanmoins, il faut rappeler que la maladie cœliaque peut être associée à des adénopathies mésentériques en dehors de toute complication ou de pathologie associée. Chez nos patients, l’IDR était phlycténulaire, une notion de contage tuberculeux était présente, et le traitement antituberculeux a permis la régression de la tuberculose même si les patients n’ont pas pu avoir une observance parfaite au régime sans gluten. Le dernier cas de tuberculose est de localisation gastrique, localisation rare, qui s’est manifesté par des vomissements chroniques sans diarrhée associée. L’endoscopie a permis de poser concomitamment les diagnostics de tuberculose et de maladie cœliaque. La prévalence du syndrome de Turner associé à la maladie cœliaque est variable, selon des études, il est de 2,2 à 6% [355, 356, 357]. Dans notre série le nombre de syndromes de Turner est faible (4 cas soit 1,2%), expliqué probablement par l’absence de dépistage dans cette population. 159 III- Délai diagnostique La maladie cœliaque est une pathologie sous diagnostiquée, en effet, pour chaque malade diagnostiqué, ils en existent 7 à 8 non diagnostiqués [522]. De même, le délai diagnostique est variable (de 5 à 11 ans) [28, 77,522, 545]. En dépit d’une meilleure connaissance de la maladie, le retard diagnostique, défini par un délai entre le début des symptômes et le diagnostic, de plus de 10 ans, reste élevé, 32% dans l’étude de Fuchs et al [546]. Dans notre population de patients cœliaques, il est impossible de déterminer le délai diagnostique lorsque les symptômes remontent à l’enfance (164 patients) car les comptes rendus de pédiatrie sont souvent non disponibles et parmi ces patients, 75 malades ont été diagnostiqués dans l’enfance. Chez les sujets dont les symptômes ont commencés à l’âge adulte (153 malades), il n’ya pas de différence dans le délai diagnostique entre les deux formes cliniques. La majorité a un délai diagnostique entre 1 et 10 ans respectivement pour les formes atypique et typique 55,5% VS 50%. Le diagnostic est précoce (< ou = à 1 an) dans 27,4% pour la forme atypique et 38,9% pour la typique. Le diagnostic est tardif (> 10 ans) dans 17,1% pour la population atypique et 11,1% pour celle typique. Ces données du délai diagnostique reposent sur la mémoire des patients, des erreurs sont donc possibles, en particulier lorsque les symptômes remontent à longtemps. 160 IV- Manifestations digestives révélatrices de la maladie cœliaque La maladie cœliaque peut être révélée par différentes situations. Les manifestations digestives sont diverses et peuvent être associées. Aucun signe digestif n’est prédictif de la maladie cœliaque même lorsque les symptômes sont associés [547]. Dans la littérature les manifestations digestives décrites dans la maladie cœliaque sont variées et leur fréquence diffère d’une étude à l’autre. Ainsi, dans une étude multicentrique (Italie, Iran et Roumanie) [548] (cf. tableau 49 page 161), les symptômes digestifs varient d’un centre à un autre. Les symptômes prédominant sont la douleur abdominale et la diarrhée. La constipation, la dyspepsie et le ballonnement sont moins fréquent dans cette étude. 161 Devant ce grand polymorphisme symptomatique, le clinicien a du mal à sélectionner les patients susceptibles d’avoir une maladie cœliaque. Des algorithmes décisionnels ont été proposés pour aider le praticien à choisir les patients à dépister. Certains de ces algorithmes informatisés semblent avoir une bonne sensibilité et spécificité [549], encore faut il qu’ils soient disponibles et faciles à utiliser pour avoir une meilleure adhésion des médecins. Dans notre série les signes digestifs les plus fréquents sont le ballonnement abdominal 49,8%, les douleurs abdominales 43,2% et la diarrhée chronique 21,2% (100% des formes typiques). Moins fréquemment, sont observés les vomissements 10,1%, la dyspepsie 7,2% et le RGO 2,5%. On note une prédominance du ballonnement et des douleurs abdominales dans les deux formes cliniques, mais d’une façon plus marquée dans la forme typique. Tandis que la dyspepsie et le RGO sont significativement plus observés dans la forme atypique. La diarrhée n’est observée que dans la forme typique (définition d’Oslo), tandis que la constipation et le syndrome de l’intestin irritable sont vus exclusivement dans la forme atypique. Dans de notre population de malades cœliaques, 4,7% ont des symptômes qui correspondent aux critères de Rome III du syndrome de l’intestin irritable dans sa forme alternance diarrhée constipation. Cette catégorie de patients était traitée par des antispasmodiques et des traitements anti gaz sans succès. En dépit du caractère refractaire des symptômes, aucun dépistage sérologique n’a été réalisé. La fibroscopie digestive est effectuée devant l’apparition d’une anémie ferriprive permettant ainsi de faire le diagnostic de maladie cœliaque. Dans la littérature le taux de syndrome de l’intestin irritable dans la maladie cœliaque est très variable d’une étude à l’autre, cette variabilité dépend des critères utilisés pour le diagnostic du syndrome de l’intestin irritable et de la population étudiée. Ainsi, lorsque les critères de Rome II sont utilisés pour identifier les patients qui ont un syndrome de l’intestin irritable, 3,23% sont cœliaques dans une étude jordanienne [550] et 12% 162 dans une étude iranienne [83]. Tandis que 36% des cœliaques ont des symptômes du syndrome de l’intestin irritable dans l’étude de Green et al [28]. Dans une étude plus récente, les critères de Rome III ont été utilisés, le taux de 0,8% de maladie cœliaque confirmée histologiquement a été rapporté [551]. Cela est probablement dù, aux critères diagnostiques plus sélectifs utilisés dans la classification de Rome III pour le diagnostic du syndrome de l’intestin irritable. Dans notre cohorte, les symptômes cliniques sont souvent non accompagnés de signes carentiels qui orientent vers une pathologie organique, tels que, la pâleur intense observée dans seulement 22,7%, ou les anomalies de la peau et des phanères (18,6%), ainsi que le retard staturo-pondéral (6%). Ces anomalies secondaires à des carences sévères et prolongées sont peu fréquentes dans la population de malades cœliaques témoignant de la rareté des formes sévères. Elles sont plus observées dans les formes typiques mais la différence sur le plan statistique n’est pas significative (p=O,O9). Les signes tels que l’asthénie (88,3%) et l’amaigrissement (62,8%) sont plus présents dans les deux populations, mais se sont des signes subjectifs rapportés par le patient, même pour le poids, car souvent il n’existe pas de poids antérieur. V- BMI (body mass index) Le signe le plus objectif lors de l’examen physique qui renseigne sur le retentissement de la maladie cœliaque est le BMI (body mass index). Ce dernier est influencé par la forme clinique, mais non par le sexe ou l’âge. En effet, dans notre population de malades cœliaques la moyenne du BMI est de 20,78, mais celui de la population atypique est statistiquement supérieur à celui de la population typique (21,15 VS 19,44). Cela est probablement dû au fait qu’il y ait plus de malades en deficit ponderal dans la forme typique et plus de patients en surpoids dans la population atypique. De même, l’obésité n’existe que chez les sujets avec forme atypique. 163 Ces résultats nous permettent de dire que le BMI n’est pas un bon indicateur de maladie cœliaque, la majorité des patients a un BMI normal, ce qui est rapporté dans la littérature [552]. Dans notre population cœliaque, les patients en surpoids (obésité incluse), représentent 12,4%, ce qui est nettement inférieur aux taux rapportés dans les études. Dans le tableau 50 page 164, sont comparés les données du BMI de notre étude et celles de trois autres : deux britanniques faites chez l’adulte et une américaine faite chez l’enfant [553, 554, 555]. L’obésité en Algérie, commence à émerger, mais semble encore inférieure à celle rencontrée dans les pays occidentaux [556] ce qui explique le taux faible de patients obèses ou en surpoids dans notre série. Dans notre étude le nombre de patients dont le BMI est diminué est nettement supérieur à ceux des trois études citées témoignant de la rareté du retentissement carentiel chez les cœliaques dans ces trois études : 5%, 0% et 3% VS 22% pour notre étude. Tableau 50 : Tableau comparatif du BMI Etudes Dickey (UK) Reuilly (US) Tucker (UK) Notre étude Année de l’etude 2006 2011 2012 2015 Nombre de malades 371 142 187 317 BMI diminué 5% 0% 3% 22% BMI normal 56% 74% 53% 65.6% Surpoids 26% 12% 31% 9.8% Obesité 13% 6% 13% 2.6% 164 VI- Anémie et autres carences L’anémie est le signe carentiel le plus fréquent dans les deux formes cliniques, de façon significativement plus importante dans la forme typique. Elle est présente dans 83% de notre population. Elle est dans notre étude le plus souvent ferriprive (90,4%) et microcytaire hypochrome (99,2%). Cette fréquence (dans les deux formes cliniques) est probablement en rapport avec le fait que le fer soit absorbé dans le duodénum, atteint de façon quasi constante dans la maladie cœliaque. L’anémie est absente dans 19,6% des formes atypiques et 7,4% des formes typiques, ceci peut être expliqué en partie par le fait que certains patients aient été traités avant le diagnostic de l’entéropathie (cinq patients de la forme atypiques et quatre de la forme typique), mais des maladies cœliaques sans anémie sont possibles (45 cas tous des formes atypiques). Dans la littérature, l’anémie n’est pas aussi fréquente que dans notre série, elle est présente lors du diagnostic de maladie cœliaque dans 12 à 69% [168]. Elle représente le symptôme extra-digestif le plus fréquent [168]. L’anémie est le plus souvent ferriprive, récidivante ou réfractaire au traitement [171]. Les autres causes d’anémie par carence en vitamines B12, ou acide folique peuvent être associées [168, 171, 175] mais dans notre étude nous n’avons pas pu les doser Le taux très élevé d’anémie observé dans notre étude, peut être expliqué par des carences d’apport probablement associées à la malabsorption. En effet, nous avons annoncé plus haut que notre population pour la majorité, avait des conditions socio-économiques moyennes à mauvaises. 165 Les autres carences sont beaucoup moins fréquentes que l’anémie. Elles témoignent d’une malabsorption plus sévère. En effet, l’hypocalcémie est présente dans 25,5%, l’hypolipidémie dans 26%, l’hypo albuminémie dans 17,6%, et la carence en vitamine K dans 3,2%. Ces carences sont de façon très significative plus observées dans la forme typique, ce qui témoigne de la plus grande sévérité de cette forme par rapport à la forme atypique. Dans la littérature les carences en albumine, électrolytes ou lipides sont rares [557], elles sont observées surtout dans les formes typiques de maladie cœliaque comme dans notre étude. VII- Manifestations extra-digestives de la maladie cœliaque VII-1 Aménorrhées et troubles gynéco-obstétricaux sont moins fréquents dans la forme atypique de notre population de malades cœliaques, les carences profondes sont à l’origine de ces troubles [306, 307, 308] pas nécessairement rattachés par le praticien à une malabsorption. Le fait que les aménorrhées (qu’elles soient primaires ou secondaires) aient toutes régressé dés l’initiation du RSG, témoigne de leur origine carentielle, et ceci même si la plupart des malades n’avait pas de RSG parfait (les premiers mois du RSG sont en général respectés ce qui permet d’améliorer l’état nutritionnel). Les stérilités et les troubles obstétricaux ont été évalués chez les femmes mariées, qui ne représentent que 39% (101 femmes) de la population féminine de malades cœliaques. Ces anomalies sont plus fréquentes dans les formes typiques témoignant de leur sévérité. Le fait de voir ces anomalies chez certaines patientes dont la carence n’est pas intense (forme atypique) a été expliqué par le fait de l’existence d’anomalies immunitaires [310]. La littérature consacrée aux troubles de la procréation chez l’homme est peu abondante [558, 559]. Dans notre série, nous avons observe trois 166 cas : une stérilité, une mauvaise qualité du spermogramme ayant nécessité un traitement puis une insémination artificielle, et une impuissance. A noter que dans notre étude, seuls 16 hommes soit 27% sont mariés. VII-2 Manifestations hépatiques Dans notre étude, les manifestations hépatiques sévères (cirrhoses, hypertension portale) ont été révélatrices de la maladie cœliaque dans la majorité des cas. Tandis que l’hépatite cœliaque est découverte fortuitement lors du bilan hépatique réalisé systématiquement chez tous nos patients. Les hépatites cœliaques sont observées dans 10% des cas, elles sont plus rencontrées dans la forme typique. Les maladies hépatiques plus sévères telles que les cirrhoses et les hypertensions portales représentent 8,2% de la population de malades cœliaques. Ces atteintes hépatiques ont relégué la maladie cœliaque au second plan, elles sont retrouvées dans les deux populations sans différence significative. Dans la littérature, l’hépatite cœliaque est plus fréquente, elle est présente chez près de la moitié des cœliaques non traités [186]. Dans notre cohorte de cœliaque, elles sont plus observées dans la forme typique en raison de la sévérité de l’atteinte intestinale dans cette population. En effet, on pense que l’augmentation de la perméabilité intestinale joue un rôle non négligeable dans la survenue de ces hépatites [187], d’autant plus atteinte que les lésions sont sévères dans l’intestin. Les atteintes hépatiques sévères sont moins fréquentes (26 cas soit 8,2% dans notre série). Dans près de la moitié des cas (53,8% soit 14 sur 26), le diagnostic étiologique n’a pas pu être établi, il s’agit des quatre cirrhoses cryptogénétiques et des dix HTP intra-hépatiques. Des auteurs ont décrit, l’existence de cirrhoses cryptogénétiques [193] ou d’HTP intra-hépatique [194] associées à la maladie cœliaque. La relation entre ces atteintes hépatiques (non étiquetées) et la maladie cœliaque ne peut pas être établie avec certitude chez nos patients. 167 En effet, certaines causes d’hepatopathies n’ont pas pu être recherchées (maladie de surcharge, troubles de la microcirculation hépatiques). Les maladies auto-immunes hépatiques représentent dans notre série 34,6% (9 cas sur 26) de la totalité des hépatopathies. Elles sont plus fréquentes dans la forme atypique, mais en raison du faible effectif de la population, la comparaison sur le plan statistique n’est pas possible. Ces maladies auto-immunes hépatiques sont dominées par la CBP (23,1%), puis viennent l’overlop syndrome (7,7%) et l’HAI (3,8%). Les CBP et HAI sont les maladies hépatiques dysimmunitaires les plus fréquemment associées à la maladie cœliaque [200, 201, 203]. La même prédisposition génétique est probablement à l’origine de cette association [207]. Le dépistage de la maladie cœliaque est recommandé au cours de ces maladies auto-immunes [521]. VII-3 Anomalies osseuses Les résultats de l’ostéodensitométrie (DMO) observées au cours de notre étude sont similaires à ceux décrits dans la littérature : 1/3 des patients ont une DMO normale et dans 2/3 des cas la DMO est pathologique entre ostéopénie et ostéoporose [160]. Ces anomalies osseuses sont présentes dans les deux formes de maladie cœliaque sans différence significative, elles sont dues essentiellement à la malabsorption en calcium et vitamine D [318]. L’absorption du calcium se fait au niveau du duodénum constamment atteint quelle que soit la forme clinique [560]. Ces manifestations sont le plus souvent asymptomatiques, et ne sont découvertes que si la DMO est réalisée, d’où la nécessité de demander cet examen chez tous les patients cœliaques, en particulier chez les femmes ménopausées étant donné que l’ostéoporose est plus fréquente chez celles-ci. 168 La carence en vitamine D est fréquente (70%), le taux d’hypovitaminose D est plus faible dans la forme atypique mais de façon non significative. Par contre, comme dans littérature [335], l’ostéomalacie symptomatique est plus rare (huit cas dans notre série). Elle témoigne d’une carence plus profonde est plus prolongée [336]. Non corrigée à temps, elle entraîne des déformations osseuses irréversibles [336]. Nous avons observé chez une jeune patiente, des déformations du thorax et des membres inférieurs entraînant une anomalie de la marche. Cette patiente n’a été diagnostiquée qu’après apparition d’une cirrhose compliquée, les symptômes intestinaux étant très discrets. VII-4 Autres manifestations extra-digestives Plus rarement, d’autres manifestations extra-digestives ont été décrites associées à la maladie cœliaque telles que : Les arthralgies qui sont retrouvées dans 9,1%, les manifestations neurologiques et l’aphtose buccale récidivante observées dans respectivement 4,7% et 6,6% de notre population de malades cœliaques. Ces signes extra-digestifs sont plus observés dans la population atypique mais la différence n’est pas statistiquement significative (p=0,55). Les données de la littérature sont contradictoires concernant ces manifestations associées à la maladie cœliaque. Cependant, l’ataxie au gluten, est actuellement considérée comme une pathologie liée au gluten [253]. La patiente porteuse d’une ataxie que nous avons rapportée, n’a pas suivi de RSG strict, par conséquent, la relation avec sa maladie cœliaque n’a pas pu être établie. En effet, la disparition de sa symptomatologie neurologique sous RSG aurait conforté le diagnostic d’ataxie au gluten [253], qui reste la seule cause retrouvée chez cette malade. 169 VIII- Maladies cœliaques dépistées Bien que le dépistage soit recommandé dans de nombreuses situations, il a été rarement l’occasion du diagnostic, dans notre étude il n’a concerné que 2,2% des coeliaques. Il s’est fait devant certaines pathologies extra-digestives souvent associées à la maladie cœliaque (dermatite herpétiforme, diabète type 1, CBP, ostéopénie inexpliquée, et ataxie inexpliquée). Aucun dépistage familial chez l’adulte n’a pu être réalisé. Chez deux enfants de patientes cœliaques, un dépistage positif a été réalisé, et les deux enfants ont été adressés en pédiatrie. Cette situation est expliquée par le fait que la sérologie reste un examen coûteux et non accessible à tous les patients, d’où, probablement, les nombreux diagnostics tardifs ou manqués. IX- Sérologie Elle est indispensable au diagnostic de la maladie cœliaque. Tous nos malades ont une sérologie positive. Les anticorps utilisés selon leur fréquence d’utilisation sont : les anti gliadines, les anti endomysiums et les anti transglutaminases. Les anti gliadines désaminées utilisés au cours de la dernière année de l’étude chez une poignée de malades n’ont pas été cités. Le choix de l’anticorps dépendait de sa disponibilité, ce qui explique la grande hétérogénéité des anticorps utilisés. Pour ces raisons, aucune comparaison n’a pu être faite concernant les données sérologiques. 170 X- Endoscopie digestive haute et histologie L’endoscopie digestive haute avec biopsie duodénale a été réalisée chez tous les patients. Des aspects endoscopiques divers ont été observés dans le bulbe ou dans le duodénum sans différence entre les deux formes cliniques. Les aspects endoscopiques caractéristiques de la maladie cœliaque mais non spécifiques sont : l’aspect hachuré des plis duodénaux, l’aspect en mosaïque ou en pavage de la muqueuse duodénale, la diminution ou la disparition des plis duodénaux et les nodules de la muqueuse intestinale. Le bulbe est moins souvent atteint que le duodénum dans les deux formes cliniques (respectivement formes atypique et typique 14,8% VS 18% pour le bulbe et 82,8% VS 89,5% pour le duodénum). Les anomalies endoscopiques citées plus haut sont le plus souvent associées dans le duodénum (56,5% pour la forme atypique et 55% pour la typique). Dans la littérature, les aspects endoscopiques évocateurs de maladie cœliaque ont une valeur prédictive négative basse 5,5% à 18,1% [116, 561, 562, 563, 564], en revanche, leur valeur prédictive positive est plus importante, elle atteint 99% [561, 562, 563, 564]. Dans notre étude nous n’avons pas pu évaluer la valeur prédictive de ces aspects endoscopiques puisque nous n’avons pas de groupe témoin, mais ce qui en ressort, c’est la bonne corrélation entre le degré d’atrophie et les anomalies endoscopiques. L’absence de lésions endoscopiques n’élimine pas le diagnostic de maladie cœliaque. En effet, dans notre population 17,2% et 10,5% respectivement pour formes atypique et typique n’ont pas de lésions duodénales endoscopiques. Il est donc important de faire des biopsies sur un duodénum endoscopiquement sain en cas de suspicion de maladie cœliaque. 171 Selon une étude australienne récente, 11% des maladies cœliaques n’auraient pas été diagnostiquées si des biopsies systématiques n’avaient pas été réalisées [565]. Néanmoins, dans les pays où tout geste est évalué selon son coût et sa rentabilité, la stratégie biopsier le duodénum systématiquement sans se soucier de la sérologie, chez des patients asymptomatiques avec anémie ferriprive, s’est révélée trop coûteuse [566]. Dans notre étude, la plupart des patients ont eu une endoscopie avant la sérologie, ceci est dû à l’accessibilité et la gratuité de l’endoscopie dans notre système de santé. Tandis que la sérologie est coûteuse (environ 4000 DA) et souvent indisponible ou inaccessible dans les principaux centres hospitaliers d’Alger. L’utilisation du dépistage sérologique est limitée par de nombreuses barrières même dans les pays développés comme les Etats Unis. Une étude américaine [567] a montré que les malades sont sous diagnostiqués en raison d’une part, de la méconnaissance du praticien (généraliste), et d’autre part, par la méconnaissance du patient de la maladie cœliaque, le non accès à un médecin, l’absence d’assurance médicale ou les mauvaises conditions sociales. La majorité des malades dans notre étude a tous les critères histologiques de la maladie cœliaque, à savoir altération épithéliale, hyperplasie des cryptes, augmentation des lymphocytes intra épithéliaux, infiltrat inflammatoire polymorphe du chorion et enfin 100% des patients ont une atrophie villositaire. L’atrophie villositaire totale est majoritaire dans les deux formes cliniques (58% pour la forme atypique VS 82,1% pour la typique). Ravelli et al [568] dans son étude a retrouvé un taux de 45% d’atrophie totale et Malamut et al [486] un taux de 54%. La plupart des études stipulent qu’il n’existe pas de corrélation entre la présentation clinique et le degré d’atrophie [145, 486]. Dans notre série cette évidence n’est pas retrouvée. Bien au contraire, nous observons une nette 172 corrélation entre la forme clinique et la sévérité de l’atrophie. En effet, l’atrophie totale est plus vue dans la forme typique (58% vs 82,1%). Les formes d’atrophie moins sévères que sont l’atrophie subtotale (30,8% VS 13,4%) et partielle (11,2% VS 4,5%) sont plus retrouvées dans la forme atypique. Nos constatations sont proches de celles de Dinler et al [569] qui ont retrouvé un taux d’atrophie totale et subtotale plus important dans la forme typique (72% VS 37,5%) et un taux d’atrophie partielle plus fréquent dans la forme atypique (62,5% VS 27,3%). Nos résultats peuvent être expliqués probablement par le fait que nous avons pris en compte le degré d’atrophie le plus sévère lorsque l’atrophie était variable sur le même prélèvement. De ce fait, un biais dans la classification de l’atrophie peut se voir, dans le sens ou il pourrait y avoir une sur-estimation du degré d’atrophie. La mauvaise orientation des biopsies peut aussi entraîner une sur-estimation de l’atrophie. A noter que lorsque le nombre de biopsies est élevé (comme dans notre étude : 6 fragments à des sites différents), le risque d’avoir des grades d’atrophie différents chez le même patient augmente [570]. Il est également à relever que les formes typiques (dans notre étude) sont beaucoup plus sévères que les atypiques, d’ailleurs il est dit que l’un des critères de sévérité de la maladie est l’atrophie sévère [130]. XI- Echographie L’échographie a été réalisée chez plus des 2/3 des patients (73,5%), elle n’est pas systématiquement demandée dans la maladie cœliaque. Par contre, c’est un examen utile, non invasif et très prescrit dans les troubles gastro-intestinaux, ce qui explique que la plupart de nos patients aient eu une échographie avant le diagnostic de maladie cœliaque. L’échographie a une faible rentabilité diagnostique dans la maladie cœliaque. Cependant, lorsqu’elle est réalisée par un opérateur averti et spécialisé, des signes indirects de maladie cœliaque ont été décrits: la 173 dilatation des anses intestinales, l’épaississement de la paroi intestinale, l’augmentation du péristaltisme, la jéjunisation de l’iléon et les adénopathies mésentériques. [571, 572]. Dans notre étude, sa rentabilité diagnostique est médiocre, 83,3% ont une échographie normale et aucune anomalie en rapport avec la maladie cœliaque n’a été décrite. Ceci est dù à la non orientation de l’opérateur avant l’examen, la présence de gaz, l’expérience, et l’intéressement de l’opérateur. Dans le cadre des complications, notamment lymphomateuses, l’échographie peut retrouver la fameuse image en « pseudo rein » témoignant d’un épaississement irrégulier et excentré de la paroi intestinale [573] mais cette dernière n’est pas un examen de référence dans le diagnostic du lymphome de la maladie cœliaque, en raison de sa faible sensibilité et son caractère opérateur dépendant [574]. Les deux patientes qui ont développé une complication maligne ont toutes deux eu une échographie lors du diagnostic de maladie cœliaque et au moment de la suspicion de la complication. Ces examens s’étaient révélés normaux. L’échographie couplée au doppler a été demandée chez les patients avec hépatopathies. Elle a permis de faire le diagnostic de l’HTP, et le niveau du bloc chez la quasi-totalité des malades. Cet examen a été réalisé par un opérateur expérimenté, spécialisé et orienté par la demande. XII- Régime sans gluten (RSG) Il a été prescrit chez tous nos patients, mais seuls 47,3% suivent le régime correctement. Ce taux d’observance obtenu lors de l’évaluation des patients à 12-24 mois peut fluctuer. En effet, des patients ont arrêté de suivre le RSG après cette date, d’autres au contraire ont décidé de commencer à le faire sérieusement. Cette variation du RSG n’a pas été évaluée dans notre étude, mais pourrait expliquer certains résultats contradictoires concernant les résultats de la sérologie de contrôle par exemple. 174 Les patients qui respectent le RSG ont beaucoup moins de symptômes que ceux non observants (97,3% versus 51%), de même le RSG a permis le contrôle du syndrome carentiel (97,3%), l’amélioration voire la normalisation de la DMO (41%), la négativation de la sérologie (89,7%) et la cicatrisation intestinale (63,7%) dans la majorité des cas. Il est connu que le RSG permet de contrôler en quelques semaines les symptômes cliniques [524], leur persistance sous RSG, fait suspecter avant tout une mauvaise compliance [377, 575]. Dans notre série les rares patients (quatre) qui sont toujours symptomatiques sous RSG, ont probablement des troubles fonctionnels intestinaux, car le bilan effectué chez eux est négatif et les symptômes répondent bien au traitement médical. Le RSG permet d’améliorer l’état nutritionnel et le statut osseux des patients (84). Chez nos malades, même si les résultats de la DMO sont nettement meilleurs chez les sujets adhérents au RSG (DMO normale : 21,3% versus 9,5%), il est à noter que les anomalies de la DMO entre ostéopénie et ostéoporose persistent dans 78,7%, ce chiffre est proche de celui observé dans l’étude de Lassura et al (74%) [576] suggérant ainsi que le RSG seul ne suffit pas à améliorer le statut osseux. En effet, d’autres facteurs interviennent tels que le statut hormonal chez la femme, le BMI, l’activité physique et la supplémentation en calcium [312, 325, 326, 327]. La supplémentation en calcium et vitamine D est nécessaire pour traiter ces anomalies osseuses [577]. Une hormonothérapie ou des biophosphonates chez les femmes ménopausées sont prescrits. Quoiqu’aucune étude n’ait montré l’efficacité d’une drogue dans l’ostéoporose au cours de la maladie cœliaque [578]. Dans notre étude, les patients qui présentent une anomalie de la DMO ont tous été référés à un rhumatologue, mais nous n’avons pas évalué l’influence des traitements institués sur les résultats de la DMO de contrôle. 175 La sérologie se négative sous RSG [579]. Parmi les 150 observants au RSG, 146 ont une sérologie de contrôle, la majorité a une sérologie négative (89,7% des sujets observants au RSG VS 5,8% des patients non observants), cependant, quinze patients soit 10,3% des patients sous RSG correctement conduit ont une sérologie positive, cela est du probablement à un écart assez important effectué avant le dosage sérologique. On note aussi que 5,8% des sujets non observants au RSG ont une sérologie négative. Cette contradiction possible lors du suivi, indique les limites de la sérologie seule au cours du follow-up des patients [490, 491, 492, 493, 494] et incite à surveiller endoscopiquement les malades. La cicatrisation ou réparation muqueuse définie dans notre étude par la disparition de l’atrophie villositaire (AV) sans préjuger de l’infiltration lymphocytaire, a été obtenue dans 33% sans différence significative entre les deux formes cliniques (33% pour la forme atypique VS 32,8% pour la forme typique). Ce taux de cicatrisation atteint 63,7% chez les sujets observants au RSG (évaluée chez 146 patients) sans différence significative entre les deux formes cliniques (62,4% pour la forme atypique VS 69% pour la forme typique), témoignant du rôle important que joue le RSG dans la repousse villositaire. L’atrophie villositaire a diminué d’un degré chez 33,5% et il y a persistance du même degré d’atrophie chez 2,8%. Dans la littérature, la repartion muqueuse chez l’adulte est incomplète et peut prendre plus de temps que chez l’enfant. Ce taux de cicatrisation chez l’adulte varie selon les études de 52 à 76% [488, 525, 526, 527]. A noter que la cicatrisation du grêle sous régime se fait de façon ascendante, et elle est plus rapide dans l’intestin distal [484, 580]. Le contrôle histologique se fait au niveau de l’intestin proximal, ce qui peut expliquer que certains patients aient encore de l’atrophie au moment du contrôle. Dans notre étude, nous notons chez trois patients des histologies normales de contrôle alors que le RSG n’est pas respecté. La mauvaise 176 observance a été attestée chez ces patients, par l’interrogatoire et la sérologie positive. La relecture des lames confirme l’absence d’atrophie. Nous avons souhaité refaire une autre série de biopsies mais cela n’était pas possible (deux patients sont perdus de vu et un malade refuse de refaire l’examen). Nous avons noté une diminution du degré d’atrophie chez 17 patients non adhérents au RSG. Nous pensons (pour ces deux catégories de patients) que cela est dù à la présence de lésions hétérogènes dans le duodénum. Pour comprendre le taux important de mauvaise observance au RSG dans notre population, nous avons recherché les facteurs liés au malade et la maladie qui peuvent influencer l’adhérence au régime. Il ressort de notre étude que la forme clinique, l’âge, le sexe, les antécédents familiaux de maladie cœliaque, le tabac, et les comorbidités associées (diabète, maladies psychiatriques) n’influencent pas la compliance au RSG. Par contre, nous avons identifié des facteurs qui influencent l’observance au RSG, ce sont les conditions socio-économiques et le niveau d’instruction. En effet, les patients qui ont de mauvaises conditions socio-économiques (17,3% VS 40,7%) et un niveau d’instruction bas (4,6% VS 9,6%), ont une mauvaise observance au RSG Dans la littérature, l’adhérence au RSG varie de 42% à 91%. Cette différence n’est pas uniquement due aux différences de populations étudiées, mais aussi à la définition et à la méthode utilisée dans l’évaluation de l’observance au RSG [456]. Il parait évident qu’il existe des facteurs qui influencent l’observance au RSG, mais les résultats des études peuvent être différents. La méta-analyse de Hall et al [461] a comparé 38 études, les auteurs concluent que les influences cognitives, émotionnelles et socioculturelles interviennent dans l’observance au RSG. Les associations de malades, et le suivi par un diététicien sont également positivement associés à la bonne compliance au RSG. Une étude plus récente de 2012 [456] a montré que le phénotype de la maladie, le sexe, les comorbidités, l’histoire de maladie cœliaque dans la 177 famille, et le tabac n’influencent pas l’observance au RSG, en revanche, l’âge serait un facteur déterminant dans la compliance au RSG. Il est à noter que dans cette étude, des enfants et des adolescents sont inclus, contrairement à la notre qui n’a concerné que les adultes. XIII- Maladies auto-immunes associées La maladie cœliaque est une affection auto-immune, d’autres pathologies auto-immunes peuvent lui être associées, sans que l’on puisse l’expliquer de façon précise [581]. Certains pensent que l’augmentation de la perméabilité intestinale, comme observé dans la maladie cœliaque, et la consommation de produits agro-alimentaires de plus en plus enrichis en additifs alimentaires expliquent l’augmentation de l’incidence des maladies auto-immunes en général [582]. Le taux de 30% de maladies auto-immunes associées à la maladie cœliaque a été rapporté dans l’étude de Ventura et al après un suivi de plusieurs années [583]. Certaines maladies auto-immunes sont plus fréquemment associées à la maladie cœliaque probablement en raison de la même susceptibilité génétique, ce sont la thyroïdite auto-immune, le diabète type 1, la dermatite herpétiforme, l’hépatite auto-immune, la cirrhose biliaire primitive, et moins fréquemment la maladie d’Addison, le syndrome de Sjogren Gougerot, et d’autres [205,218, 219, 254, 255, 345]. Dans notre série, les maladies dysimmunitaires sont en nombre de 58. Elles se repartissent ainsi : la thyroïdite auto-immune dix sept cas soit 5,4%, le diabète insulinodépendant neuf cas soit 2,8%, la dermatite herpétiforme huit cas soit 2,5%, la cirrhose biliaire primitive six cas soit 1,9%, l’hépatite auto-immune (dont deux sous forme d’overlop syndrome) trois cas soit 0,9%, le vitiligo cinq cas soit 1,6%, la maladie de Crohn quatre cas soit 1,2%, le syndrome de Gougerot Sjogren deux cas soit 0,6%, le psoriasis deux cas soit 0 ,6%, une anémie hémolytique auto-immune et une maladie d’Addison soit 0,3% chacune. 178 La totalité des maladies auto-immunes représentent 18,3% (58 cas) de la population cœliaque, dont 48 cas soit 19,2% pour la forme atypique et 10 cas soit environ 15% pour la forme typique sans différence significative. Ce taux peu élevé par rapport à celui cité dans la littérature est probablement dù à la rareté des cas de maladie cœliaque dépistés dans les maladies autoimmunes (cinq cas : 1 dermatite herpétiforme, 2 diabètes et 2 CBP), et peut être dù aussi au faible échantillon de notre population. Dans notre série, les thyroïdites auto-immunes viennent en première place comme dans la série de Larizza et al [584]. Ces maladies auto-immunes ont dans la plupart des cas (42 patients sur 58 soit 72,4%) précédé l’entéropathie. Elles ont permis de faire le diagnostic de la maladie cœliaque dans 20,6% (neuf hépatopathies dysimmunitaires, deux diabètes et une dermatite herpétiforme), et sont survenues après le diagnostic de la maladie cœliaque dans 12% (trois diabètes type 1, Une thyroïdite auto-immune, une dermatite herpétiforme, une anémie hémolytique et un syndrome de Sjogren Gougerot). Les maladies auto-immunes apparues au cours du suivi de la maladie cœliaque ont été diagnostiquées grâce à la surveillance instituée chez nos patients. En effet, les trois cas de diabète, le cas de thyroïdite auto-immune, et l’anémie hémolytique, étaient asymptomatiques, et ont été diagnostiqué grâce au bilan annuel pratiqué systématiquement chez tous les malades. Les deux cas de cirrhoses, apparues au cours du suivi, ont été diagnostiqués grâce à la FNS qui a objectivé un hypersplénisme. L’un des patients a été exploré dans notre service sans qu’aucune étiologie ne soit détectée. Le deuxième a été perdu de vu, son exploration n’était pas complète. Dans notre étude, nous n’avons pas pu établir de relation entre le temps d’exposition au gluten et les pathologies auto-immunes, car la date d’apparition exacte de ces maladies auto-immunes lorsqu’elles ont précédé la maladie cœliaque (situation prédominante) n’a pas pu être déterminée pour la plupart des patients. 179 Néanmoins, en ce qui concerne les autres patients, nous avons évalué l’effet du RSG sur les hépatopathies auto-immunes et sur l’apparition des maladies auto-immunes au cours du suivi. Les données concernant l’effet du RSG sur les maladies auto-immunes sont très controversées. Dans une étude prospective, Ventura et al [585] a montré la normalisation du taux d’anticorps (acide glutamique décarboxylase, anti insuline) au cours du diabète et de la thyroïdite (anti thyroperoxidase) chez tous les patients au bout de deux ans de RSG. Dans son étude prospective, Metso et al [586] conclut que les manifestations auto-immunes qui apparaissent au cours de la maladie cœliaque peuvent régresser sous RSG chez l’enfant, mais pas chez l’adulte. Dans la série de Cosnes et al [239], le taux de maladies auto-immunes est plus faible chez les patients compliants au RSG. Dans cette même étude, les maladies auto-immunes sont moins fréquentes chez les sujets de plus de 36 ans par rapport aux plus jeunes, concluant que chez les patients dont le diagnostic de maladie cœliaque a été posé tardivement, la barrière intestinale est plus compétente, réduisant ainsi le passage d’antigènes susceptibles de déclencher une maladie auto-immune. Ceci est en contradiction avec les données de Ventura et al [585] qui conclut que le risque de maladie auto-immune augmente avec la durée d’exposition au gluten. Dans notre étude, parmi les patients qui ont développé au cours du suivi une maladie auto-immune (sept cas), deux cas soit 28,5% ont un bon RSG, les cinq autres soit 71,5% ne suivent pas correctement leur RSG. Bien que l’effectif étudié soit réduit, on pourrait penser que le RSG joue un rôle dans le développement des maladies auto-immunes chez le cœliaque. Le fait que ces maladies auto-immunes apparaissent assez précocement (moyenne 1,44 ans) serait expliqué par le fait que les phénomènes inflammatoires et immunologiques soient encore présents lors de la première année du RSG. Un suivi plus prolongé permettrait probablement d’étayer cette hypothèse, et de rechercher d’autres facteurs qui influenceraient la survenue de ces maladies. 180 XIV- Evolution des hépatopathies L’influence du régime dans l’évolution des maladies hépatiques (auto-immunes ou non) est tout autant moins connue. Des auteurs ont rapporté l’amélioration des fonctions hépatiques sous RSG, si bien que certains patients qui étaient sur liste d’attente de greffe hépatique, ne l’étaient plus grâce au RSG [195] mais d’autres auteurs n’ont pas retrouvé d’effet du RSG sur l’hépatopathie [186, 200]. Ce qui parait le plus évident, c’est que les hypertransaminasémies dues à la maladie cœliaque régressent complètement sous RSG [190, 191, 192], ceci a été observé chez nos patients même lorsque le RSG n’a pas pu être maintenu correctement. Dans notre série, les hépatopathies dysimmunitaires qui sont sous RSG correct (quatre patients), ont bien évolué. En effet, on note une normalisation du bilan hépatique dans 50%, les deux autres patients sont pour l’un stable et pour l’autre aggravé (car déjà en insuffisance hépatique sévère). Les quatre cirrhoses, pour la plupart, ne suivent pas le RSG. Enfin, concernant les hypertensions portales, deux malades sous RSG ont très bien évolué avec régression des varices œsophagiennes et un seul patient déjà très sévère lors du diagnostic n’a pas bien évolué sous RSG. L’influence du RSG sur l’évolution des hepatopathies, ne peut pas être formellement établie dans notre étude (le nombre de malades sous RSG est trop faible). Mais nous sommes tentés de dire, que les hépatopathies peu sévères évoluent mieux sous RSG, d’où la nécessité du diagnostic précoce des deux pathologies, intestinale par la sérologie de la maladie cœliaque et hépatique par le bilan hépatique et la FNS (hypersplénisme). 181 XV- Durée du suivi Le suivi des patients s’est fait sur une moyenne de 2,82 ans, sans différences entre les formes atypique et typique, respectivement 2,8 versus 3 ans avec des extrêmes de 2 à 5 ans. Les seuls patients suivis un an, sont décédés. Il est très difficile d’obtenir des patients cœliaques, un suivi régulier et prolongé, d’une part parce qu’aucun traitement médical n’est disponible, et d’autre part en raison de l’inexistence d’aide particulière que l’on pourrait procurer à ces patients (diététicien, psychologue). XVI- Complications malignes Les complications malignes sont observées dans 0,63% de la population de malades cœliaques (0,8% de la population atypique et 0% de la population typique). Ce taux de complications malignes est proche de celui observé dans la série de Volta et al (0,9%) sur un suivi de 15 ans [29]. Les deux complications survenues dans notre série (lymphome T gastro duodénal et adénocarcinome jéjunal) sont diagnostiquées assez rapidement après le diagnostic de l’entéropathie, notamment pour l’adénocarcinome (dans l’année du diagnostic de la maladie cœliaque), avec une évolution très rapidement gravissime entrainant la mort sans qu’aucun traitement spécifique ne puisse être institué. Nous pensons que ces deux complications étaient déjà présentes lors du diagnostic de l’entéropathie étant donné le caractère rapidement évolué de ces deux cas. Dans la littérature, les complications malignes, en particulier le lymphome, surviennent le plus souvent précocement après le diagnostic de maladie cœliaque [366] et sont de moins bon pronostic que celles qui surviennent plus tardivement [366]. Les deux patientes compliquées de notre série ne suivaient pas le RSG et la persistance des symptômes était imputée au début à la maladie cœliaque. Cependant, devant l’apparition de signes de gravité des 182 explorations plus approfondies ont permis de faire le diagnostic. Le diagnostic des complications malignes repose sur l’imagerie (scanner, IRM, Pet scan), mais aussi sur les examens endoscopiques tels que la jejunoscopie, l’entéroscopie et la vidéo-capsule [404, 405, 406, 407, 408]. Ces examens ne sont réalisés que devant des signes d’appels orientant vers une complication, ce qui rend le diagnostic tardif fort possible. Etant donné la rareté de ces complications malignes, Il n’existe à l’heure actuelle aucun programme de surveillance de ces complications chez le cœliaque. Leur pronostic est mauvais, même lorsqu’un traitement est institué [497]. Nos deux patientes avaient un seul facteur de mauvais pronostic au moment du diagnostic de la maladie cœliaque, il s’agit de l’âge supérieur à 50 ans (moyenne d’âge des deux patientes égal à 52,5 ans). Par contre, le typage HLA de ces deux patientes n’était pas disponible. Le score pronostique calculé à posteriori est égal à -2 pour les deux patientes, ce qui représente un faible risque de malignité. XVII-Mortalité La mortalité de notre population de patients cœliaques est de 1,9%. Les causes de décès sont pour la plupart (quatre décès sur six) non liées à la maladie cœliaque elle-même mais à une pathologie associée (complications de l’hépatopathie et tuberculose). Ce taux est très inférieur à celui décrit dans les publications qui sont pour la plupart des études rétrospectives, 8% dans une large population de 7648 cœliaques suivi sur 11,5 ans [485] et 11 patients décédés dans une série de 241 cœliaques [484]. Ce taux relativement bas de mortalité dans notre population est probablement en rapport avec le suivi relativement cours de notre étude. L’effet du RSG sur la mortalité ou la survenue des complications malignes n’apparait pas dans notre étude. Nous pensons que cela est dù à l’effectif de la population étudiée et la durée du suivi. 183 Conclusion 184 Dans notre population de malades cœliaques, le phénotype prédominant est le phénotype atypique, situation semblable à de nombreuses séries publiées. La maladie cœliaque est diagnostiquée à tout âge chez l’adulte avec un pic entre 30 et 40 ans. Il est à noter qu’il existe une nette prédominance féminine dans cette pathologie. Les formes atypiques de notre étude sont moins sévères, tant sur le plan de la symptomatologie, que sur celui des données du BMI, ou du syndrome carentiel et de ses conséquences. Bien que l’atrophie villositaire totale soit le degré prépondérant à l’histologie témoignant de la latence clinique prolongée de la maladie, elle est moins fréquente dans la forme atypique. Les manifestations extra-digestives sont retrouvées dans les deux formes cliniques, alors qu’elles sont plus fréquentes dans les formes typiques lorsqu’il s’agit de manifestations liées aux carences sévères. L’anémie est le signe extra-digestif le plus fréquent. D’autres manifestations extra-digestives sont observées à une moindre fréquence ; ce sont les manifestations osseuses, hépatiques, dermatologiques, endocriniennes, gynéco-obstétricales, neurologiques et buccales. Les hépatopathies associées à la maladie cœliaque sont, dans près de la moitié des cas, de causes inconnues (six cas de cirrhose et dix hypertensions portales). Il est possible que certains de ces patients aient réellement une cirrhose ou une hypertension portale secondaires à la maladie cœliaque comme cela à été décrit dans la littérature ; en attestent les deux cas d’hypertensions portales mineures qui ont régressé sous RSG. Les pathologies auto-immunes associées à la maladie cœliaque sont la thyroïdite auto-immune, le diabète type 1, les hépatopathies dysimmunitaire, les affections dermatologiques auto-immunes (dermatite herpétiforme, 185 vitiligo, psoriasis), la maladie de Crohn, le syndrome de Sjogren Gougerot, une maladie d’Addison et une anémie hémolytique auto-immune. Les formes atypiques sont certes moins sévères, mais les complications sont possibles ; en effet, les deux complications malignes retrouvées dans notre série sont toutes deux des formes atypiques. L’observance au RSG est faible dans notre population. Cette adhérence au RSG ne dépend ni de la forme clinique, ni des antécédents ou de l’âge et du sexe des patients, mais plutôt du niveau socio-économique et du niveau d’instruction. Aussi, il est important que cette population vulnérable, ait un soutien moral et financier, d’associations de malades et pourquoi pas, la reconnaissance (sécurité sociale) de la maladie cœliaque comme maladie chronique. Le RSG permet, l’amendement des symptômes cliniques, l’amélioration du statut nutritionnel et la reparation de la muqueuse. La reparation muqueuse dans notre population de malades coeliaques qui respectent le régime n’est pas totale. Elle atteint les 64% sans difference significative entre les deux formes cliniques. La surveillance de nos patients est clinique, biologique, sérologique, radiologique (ostéodensitométrie) et endoscopique. Le programme de surveillance institué à nos patients est difficile à suivre sur le plan pratique. En effet, de nombreux examens biologiques ou radiologiques ne sont pas disponibles de façon régulière à l’hôpital. Ce qui explique que certains de nos patients ont un bilan incomplet lors du contrôle à 12-24 mois. De même, le contrôle endoscopique, à cause de l’inconfort que procure cet examen, a été refusé par quelques patients. L’influence du RSG sur la survenue de complications malignes, de maladies auto-immunes ou sur la mortalité n’a pas pu être établi, en raison probablement du faible effectif de notre échantillon et du suivi relativement court. 186 Notre étude a néanmoins atteint ses objectifs principaux, à savoir déterminer la prévalence des formes atypiques dans la population de malades cœliaques et ses caractéristiques par rapport à la population typique. Les objectifs secondaires ont également été atteints. En effet, nous avons déterminé le taux d’observance au RSG et les facteurs qui l’influencent ainsi que les pathologies auto-immunes associées à la maladie cœliaque. 187 BIBLIOGRAPHIE 1. European Society for Pediatric, Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition guidelines for the diagnosis of coeliac disease (Husby S et al). J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012; 54(1): 136-60. 2. Scherer JR. Celiac Disease. Drugs Today 2008; 44(1):75-88. 3. Case S. Gluten-free diet. Education and Ressources. Gastroenterology 2005; 128(4) S1:118-134. 4. J Askling, Linet M, Gridley G et al. Cancer incidence in a population based cohort of individuals hospitalized with celiac disease or dermatitis herpetiformis. Gastroenterology 2002; 123:1428-35. 5. Green PHR, Fleischauer AT, Bhagat G, Goyal R, Jabri B et Neugut AI. Risk of malignancy for patients with celiac disease. Am J Med 2003; 115:191-195. 6. Holmes G K, Prior P, Lane MR et Allan RN. Malignancy in Celiac Disease-Effect of a gluten-free diet. Gut 1989; 30(3):333-338. 7. World Gastroenterology Organisation Practice Guideline: Maladie cœliaque. Avril 2012. 8. West J, Logan RFA, Hill PG et Khaw KE. The iceberg of celiac disease: What is below the waterline? Clin Gastroenterol Hepatol. 2007; 5(1): 5962. 9. Catassi C, Gatti S, Fasano A. The new epidemiology of coeliac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2014; 59(S1): S7-9. 10. West J, Logan RFA, Hill PG et al. Seroprevalence correlates and characteristics of undetected celiac disease in England, Gut 2003; 52:960965. 11. Luis Rodrigo. Celiac Disease, WJGE 2006;12:6585-93 12. Cook HB, Burt MJ, Collett JA et al. Adult coeliac disease: Prevalence and clinical significance. J Gastroenterol Hepatol. 2000; 15 :1032-36. 13. Barada K, Bitar A, Mokadem M A et al. Celiac disease in Middle Eastern and North African countries: A new burden? WJGE 2010, 16(12):1442-57. 14. Benhariz M, Kallel-Sellami M, Kallel L et al, Prevalence of celiac disease in Tunisia: Mass screening study in school children. Eur J Gastroenterol Hepatol 2007; 19:687-94. 15. Bidioui F, Sakly N, Hassine M et Safar H. Prevalence of celiac disease in Tunisian blood donors. GECB 2006; 30:33-36. 16. Boudraa G, Hachelaf W, Benbouabellah M et al. Prevalence of celiac disease in diabetic children and their first-degree relatives in West Algeria: screening with serological markers. Arch Pediatr 1996 ; 412 :58-60. 17. Catassi C, Doleretta Macis M, Ratsch IM et al. The distribution of DQ genes in the Sahraoui population provides only a partial explanation for the high celiac disease prevalence, Tissue Antigens 2001; 58:402-406. 18. Bhattacharya M, Bybey AP et Mathur NB. Prevalence of celiac disease in North Indian Children. Indian Pediatrics 2009; 46:415-17. 19. Brar P, Lee AR, Lewis SK et al. Celiac disease in African-Americans. Dig Dis Sci. 2006:51:1012-5. 20. Bouguerra R, Bensalem L, Chaabouni H et al. Celiac disease in adult patients with type I diadetes mellitus in Tunisia. Diabetes Metab 2005; 31:83-86. 21. Ashabani A, Abushofa U, Abusrewill S et al. The prevalence of celiac disease in Libyan children with type I diabetes mellitus. Diabetes Metab Res Rev 2003; 19:69-75. 22. Kang J, Kang A, Green A et al. Systematic Review: Worldwide variation in the frequency of coeliac disease and changes over time. APT. 2013; 38: 226-45. 23. Dixit R, Lebwohl B, Ludvigsson JF et al. Celiac disease is diagnosed less frequently in young adult males. Dig Dis Sci 2014 ; 59(7) :3025-6. 24. Tajuddin T, Razif S, Dhar R et al. Clinical presentation of adult coeliac disease. Ir Med 2011; 104:20-22. 25. Pinkhasov RM, Wong J, Kashanian J et al. Are men shortchanged on health? Perspective on health care utilization and health risk behavior in men and women in the United States. Int J Clin Pract 2010; 64(4):475-87. 26. Schapepert SM et Burt CW. Ambulatory care visits to physician offices, hospital outpatient departments, and emergency: United States 20012002. Vital Health Stat 2006 ; 13 :159,1-66. 27. Megiorni F, Mora B, Bonamico M et al. HLA-DQ and susceptibility to celiac disease: evidence for gender differences and parent-of-origin effects. Am J Gastroenterol. 2008; 103:997-1003. 28. Green PHR, Stavropoulos SN, Panagi SG et al. Characteristics of adult celiac disease in the USA: results of a national survey. Am J Gastroenterol 2001; 96(1) :126-31. 29. Volta U, Caio G, Sanghellini V et al. The changing clinical profile of celiac disease: a 15-year experience (1998-2012) in a Italian referal center. Gasroenterology. 2014 ; 14 :194-8. 30. Snyder CL, Young DO, Green PHR, et al. Celiac disease. 2008, in Pagon RA, Adam MP, Ardinger HH, et al editors. Gene Reviews. University of Washington, Seatle; 1993-2015. 31. Gasbarini G, Ciccocioppo R, DeVitis I et Corazza GR. Club del Tenue study group. Coeliac disease in the elderly. A multicentre Italian study. Gerontology. 2001 ; 47 : 306-10. 32. Mukherjee R, Egbuna I, Brar P et al. Celiac disease: similar presentations in the elderly and young adults. Dig Dis Sci. 2010; 55: 3147-53. 33. Greco L, Romino R, Coto I et al. The first large population based twin study of celiac disease. Gut. 2002 ; 50 :624-8. 34. Fasano A, Berti I, Gerarduzzi T, et al. Prevalence of celiac disease in atrisk and not-at-risk groups in the United States. Arch Intern Med. 2003 ; 163 : 286-92. 35. Bonamico M, Ferri M, Mariani P et al. Serologic and genetic markers of celiac disease: a sequentiel study in the screening of first relatives. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2006 ; 42 : 150-4. 36. Emilsson L, Wijmenga C, Murray JA et Ludvigsson JF. Autoimmune disease in first-degree relatives and spouse of individuals with celiac disease. Clin Gastrenterol Hepatol. 2015 pii: S1542-3565(15)00112-3. 37. Sollid LM et Thorsby E. HLA susceptibility genes in celiac disease: genetic mapping and role in pathogenesis. Gastroenterology. 1993; 105: 910-22 38. Polvi A, Arranz E, Fernandez-Arquero M et al. HLA-DQ2-negative celiac disease in Finland and Spain. Hum Immunol. 1998 ; 59 : 169-75. 39. Qiao S, Bergseng E, Molberg O et al. Refining the rules of gliadin T cell epitope binding to the disease-associated DQ2 molecule in celiac disease : importance of proline spacing and glutamine deamidation. J Immunol. 2005 ; 175 : 254-61. 40. Abadi V, Sollid LM, Barreiro LB et al. Integration of genetic and immunological insights into a model of coeliac disease pathogenesis. Annu Rev Immunol. 2011; 29:493-525. 41. Lionetti E et Catassi C. Co-Localisation of gluten consumption and HLADQ2 and –DQ8 genotypes, a clue to the history of celiac disease. Dig Liv Dis.2014; 46: 1057-63. 42. Alarida K, Harown J, Di Pierro MR et al. HLA DQ2 and DQ8 genotypes in celiac and healthy Lybian children. Dig Liv Dis. 2010 ; 42 : 425-7. 43. Gonzalez-Galarza FF, Christmas S, Middleton D et al. Allele frequency net : A database and online repository for immune gene frequencies in worldwide population. Nucleic Acids Res. 2011; 39: D913-9. 44. Schuppman D, Junker Y et Barisani D. Coeliac disease: from pathogenesis to novel therapies. Gastroenterology. 2009; 137:1912-33. 45. Camato E, Zupin L, Segat L et al. HLA-G and susceptibility to develop celiac disease. Hum Immunol. 2015 ; 76(1) : 36-41. 46. Trynka G, Hunt KA, Bockett NA et al. Dense genotyping identifies and localizes multiple common and rare variant association signals in celiac disease. Nat Genet. 2011 ; 43 : 1193-1201. 47. Smyth D, Plagnol V, Walker NM et al. Shared and distinct genetic variants in type 1 diabetes and celiac disease. NEJM. 2008; 359: 2767-2777. 48. Voight BF, Cotsapas C. human genetics offers an emerging picture of commun pathways and mecanisms in autoimmunity. Curr Opin Immunol. 2012; 24: 552-57. 49. Garner C, Ahn R, Chun Ding Y et al. Genome-wide association study of celiac disease in North America confirms FRMD4B as new celiac locus. Plos One. 2014; 9(7): e101428. 50. Maresse B, Malamut G et Cerf-Benussan N. Celiac disease: An immunological jigsaw. Immunity Review. 2012; 36: 907-19. 51. Karell K, Louka AS, Moodies SJ et al. HLA typing in coeliac disease patients not carring the DQA1*05-DQB1*02 (DQ2) heterodimer: results from the European Genetics cluster on coeliac disease. Hum Immunol 2003 ; 64 :469-77. 52. Sturges RP, Ellis HJ et Ciclitira PJ. Cereal chemistry, molecular biology, and toxicity in coeliac disease. Gut. 1991 ; 32 :1055-60. 53. Shan L, Molberg O, Parrot I et al. Structural basis for gluten intolerance in celiac sprue. Science. 2002 ; 297 :2275-79. 54. Gregorini A, Colomba M, Ellis HJ et Ciclitira PJ. Immunogenicity characterization of two ancient wheat α-gliadin peptides related to coeliac disease. Nutrients. 2009 ; 1(2) :276-90. 55. Zemskov EA, Mikhailenko I, Hsia RC et al. Unconventional secretion of tissue transglutaminase involves phospholipid-dependent delivery into recycling endomoses. PloS ONE. 2011 ; 6(4) :e19414. 56. Iversen R, Mysling S, Hnida K, Joergensen TJD et sollid LM. Activityregulating structural changes and autoantibodies epitopes in tranglutaminase 2 assessed by hydrogen/deuterium exchange. Proc Nat Acad Sci U S A. 2014 ; 111(48) : 17146-17151. 57. Ivarsson A, Persson LA, Nystrom L et al. Epidemic of coeliac disease in Swedish children. Acta Paediatr. 2000; 89:165-71. 58. Norris JM, Barriga K, Hoffenberg EJ et al. Risk of celiac disease autoimmunity and timing of gluten introduction in the diet of infants at risk of disease. JAMA. 2005 ; 293 :2343-51. 59. Vriezinga SL, Auricchio R, Bravi E et al. Randomized feeding intervention in infants at high risk for celiac disease. NEJM.2014 ; 371 :1304-15. 60. Lionetti E, Castellaneta S, Francavilla R, et al. Introduction of gluten, HLA status, and the risk of celiac disease in children. NEJM. 2014 ; 371 :1295303. 61. Aronsson CA, Lee HS, Liu E, et al. Age of gluten introduction and risk of celiac disease. Pediatrics. 2015 ; 135(2) : 239-45. 62. Monteleone G, Pender SL, Wathen NC, et al. Interferon α drives T cellmediated immunopathology in the intestine. Eur J Immunol. 2001 ; 31 : 2247-55. 63. Vasquez H, Smecuol E, Flores D, et al. Relation between cigarette smoking and celiac disease: evidence from a case-control study. Am J Gastroenterol. 2001; 96: 798-802. 64. Lebwohl B, Spechler SJ, Wang TC, Green PHR, et Ludvigsson JF. Use of proton pump inhibitors and subsequent risk of celiac disease. Dig Liv Dis. 2014 ; 46(1) : 36-40. 65. Ludvigsson JF et Green PHR. The missing environmental factor in celiac disease. NEJM. 2014 ; 371 :1341-43. 66. Qiao SW, Iversen R, Raki M et Sollid LM. The adaptative immune response in celiac disease. Semin Immunopathol 2012; 34 (4):523-40. 67. Visser J, Rozing J, Sapone A et al. Tight junctions, intestinal permeability, and autoimmunity celiac disease and type1 diabete paradigms. Ann NY Acad Sci.2009; 1165:195-205. 68. Barone MV, Troncone R et Auricchio S. Gliadin Peptid as Triggers of the proliferative and Innate Immune Response of the celiac Small Intestinal Mucosa. Int J Mol Sci. 2014; 15:20518-37. 69. Jabri B, De Serre NP, Cellier C et al. Selective expansion of intra epithtelial lymphocytes expressing the HLA-E-specific natural killer receptor CD94 in celiac disease. Gastroenterology. 2000; 118:876-79. 70. Hue S, Mention JJ, Monteiro RC et al. A direct role of NKG2D/MICA interaction in villous atrophy during celiac disease. Immunity. 2004 ; 21 :367-77. 71. Moss SF, Attia L, Scholes JV, et al. Increased small intestinal apoptosis in coeliac disease. Gut. 1996 ; 39 : 811-7. 72. Mooney PD. Coeliac disease. BMJ. 2014; 348, 8 pages. 73. Corrao G, Corazza GR, Bagnardi V, et al. Mortality in patients with coeliac disease and their relatives: a cohot study. Lancet. 2001 ; 358 : 356-61. 74. Tosco A, Salvari VM, Auricchio R, et al. Natural history of potential celiac disease in children. Clin Gastroenterol Hepatol. 2011 ; 9(4) : 320-5. 75. Biagi F, Trotta L, Alfano C, et al. Prevalence and natural history of potential celiac disease in adults patients. Scand J Gastroenterol. 2013 ; 48(5) : 537-42. 76. Jones S, D’Souza C, et Haboubi N. Patterns of clinical presentation of adults coeliac disease in a rural setting. Nutr J. 2006; 5(24): 8 pages. 77. Lo W, Sano K, Lebwohl B et al. Changing presentation of adult celiac disease. Dig Dis Sci. 2003; 48:395-98. 78. Reilly NR, Fasano A, green PH. Presentation of celiac disease. Gastrointestin Endosc Clin N Am. 2012; 22: 613-21. 79. Ganji A, Esmaielzadeh A, Aghayee MA, et al. The clinical presentation of celiac disease: Experiences from Northeastern Iran. Mid East J Dig Dis. 2014 ; 6(2) :93-97. 80. Masood N et Shaikh IA. Clinical presentation and biochemical profile in adult celiac patients in Hyderabad: Pakistan. Pak J med Sci. 2014; 30 (2): 287-90. 81. Al-Tawaty AI et Elbargathy SM. Coeliac disease in North-Eastern Lybia. Ann Trop Paediatr; 1998; 18: 27-30. 82. Ashabani A, Errabtea H, Shapan A et al. Serological markers of untreated celiac disease in Libyan children: antigliadin, antitransglutaminase, antiendomysial, and antireticulin antibodies. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2001 ; 33 : 276-82. 83. Masjedijadeh R, Hajjani E, Hashemi J, et al. Celiac disease in South-West Iran. WJGE. 2006 ; 12 : 4416-19. 84. American Gastroenterological Association (AGA) Institute Technical Review on the Diagnosis and Management of Celiac Disease (Rostom A, Murray JA, et Kagnoff MF). Gastroenterology. 2006; 131:1981-2002. 85. Ludvingsson JF, Leffler DA, Bai JC, et al. The Oslo definitions for celiac disease and related terms. Gut. 2013 ; 62 : 43-52. 86. Ciclitira PJ. The management of adult with celiac disease, The Medecine Publishing Company LFD 2003: 33-34. 87. Duggan JM et Duggan AEl. Systematic review: The liver in celiac disease, APT 2005; 21:515-8. 88. Sahebari M, Sigerri SY, Heidari H, et Biglarian O. Osteomalacia can still be a point of attention to celiac disease. Clin Cases Miner Bone Metab. 2011; 8(3): 14-15. 89. ACG: American college of Gastroenterology Clinical guidelines: Diagnosis and management of celiac disease (Rubio-Tapia A, Hill ID, Kelly CP, et al). Am J Gastroenterology. 2013; 108(5): 656-77. 90. Reeves GEM, Squance ML, Duggan AE, et al, Diagnosis accurancy of celiac disease serological tests: A prospective study, Eur J Gastroenterol Hepatol 2006; 18:493-501. 91. Vallejo-Diez S, Bernardo D et Arranz E. Detection of specific IgA antibodies against a novel deamidated 8-Mer Gliadin Peptid in blood plasma samples from celiac patients. Plos One. 2013; 8(11): e80982. 92. Mooney PD, Wong SH, Johnston AJ, et al. Increased detection of celiac disease with measerement of deamidated gliadin peptide antibody before endoscopy. Clin Gastroenterol Hepatol 2015 Jan 26, pii S15423565(15)00096-8. 93. McPherson RA. Commentary: Advances in the laboratory diagnosis of celiac disease. J Clin Lab Anal. 2001; 15: 105-107. 94. Jaskowski TD, Scroder C, Martins TP, Litwin CM, et Hill HR. IgA antibodies against Endomysium and Transglutaminase: A comparison of methods, J Clin Lab An 2001; 15:108-111. 95. Troncone R, Maurano F, Rossi M, et al. IgA antibodies to tissue tranglutaminase: an effective diagnostic test for celiac disease, J Pediatr 1999; 134:166-71. 96. Leffler DA, Pallav K, Bennett M, et al. Open conformation tissue transglutaminase testing for celiac diatary assessment. Dig Liv Dis. 2012; 44(5): 375-78. 97. Schyum AC et Rumessen JJ. .Serological testing for celiac disease in adults. UEG J 2013; 1(5) :319-25. 98. Bienvenu F, Besson-Duvanael C, Seignovert C, et al. Evaluation of a point-of-care test based on deamidated gliadin peptides for celiac disease screening in a large pediatric population. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2012; 24:1418-23. 99. Bonamico M, Ferri M, Nenna R, et al. Tissue transglutaminase antibody detection in human saliva: a powerful method for celiac disease screening. J Pediatr. 2004 ; 144(5) : 632-6. 100. Cataldo C, Marino V, Bottaro G, Greco P, et Ventura A. Celiac disease and selective immunoglobulin A deficiency. J Pediatr 1997; 131:306-308. 101. Kumar V, Jarzabek-Chorzeloska M, Suley J, Karnewska K, Farell T, et Jablonska S. Celiac disease and immunoglobulin A deficiency: How effective are the serological methods of diagnosis? Clin Dia Lab Imm 2002; 9:1295-1300. 102. Picarelli A, Ditola M, Sabbatella L, Mastracchio A, et al , Identification of a new celiac disease subgroup: antibodies of IgG class in the absence of selective IgA deficiency, J Intern Med 2001;249:181-88. 103. Rashtak S, Ettne NW, Hamburger HA, et al. Combination testing for antibodies in the diagnosis of celiac disease: comparison of multiplex immunoassay and Elisa methods. APT.2008; 28: 805-13. 104. Leffler DA, et Schuppan D. Update on serological testing in celiac disease. Am J Gastroenterol. 2010; 105: 2520-24. 105. Alessio MG, Tonutti E, Brusca I, et al. Correlation between IgA tissue transglutaminase antibody ratio and histological finding in celiac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012; 55: 44-9. 106. Zanini B, Magni A, Caselani F, et al. High tissue transglutaminase antibody levels predict small intestinal villous atrophy in adult patients at high risk of celiac disease. Dig Liv Dis. 2012; 44: 280-16. 107. Rahmati A, Shakeri R, Sohrabi M, et al. Correlation of tissue transglutaminase antibody with duodenal histologic Marsh grading. Mid East J Dig Dis. 2014; 6(3): 131-36. 108. DeGaetani M, Tennysson CA, Lebwohl B, et al. Villous atrophy and negative celiac serology : A diagnostic and therapeutic dilemma. Am J Gastroenterol. 2013; 108: 647-53. 109. Bao F, Green PHR, et Bhagat G. An update on celiac disease histology and the road ahead. Arch Pathol Lab Med. 2012 ; 136 : 735-45 110. Bonamico M, Mariani P, Thanasi P, et al. Patchy villous atrophy of the duodenum in childhood celiac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2004 ; 38 : 204-7. 111. Mangiavillano B, Masci E, Parma B, et al. Bulb biopsies for the diagnosis of celiac disease in pediatric patients. Gastrointest Endosc. 2010 ; 72 : 564-68. 112. Trecca A, Gaj F, Gagliardi G, et al. Role of magnified ileoscopy in the diagnosis of cases of coeliac disease with predominent abdominal symptoms. Scand J Gastroenterol. 2009; 44:320-24. 113. Cammarota G, Fedeli P, Gasbarrini A. Emerging technologies in upper gastrointestinal endoscopy and celiac disease. Nat Clin Pract Gastroenterol hepatol. 2009; 6:47-56. 114. Hopper AD, Cross SS, et Sanders DS. Patchy villous atrophy in adult patients with suspected gluten-sensitive enteropathy: a multiple duodenal biopsy strategy appropriate? Endoscopy. 2008; 40: 219-24. 115. Brocchi E, Tomassetti P, Misitano B, et al. Endocsopic markers in adult coeliac disease. Dig Liver Dis. 2002; 34 : 177-82. 116. Molina-Infante J, Vinagre-Rodriguez G, Martin-Noguerol E, et al. Duodenal erosions: an uncommun endoscopic marker of celiac disease. Rev Esp Enferm Dig. 2010; 102(7): 442-43. 117. Smith AD, Graham I, Rose JD. A prospective endoscopic study of scalloped folds and grooves in the mucosa of duodenum as signs of villous atrophy. Gastrointest Endosc. 1998; 47: 461-65. 118. Dickey W et Hughes D. Disappointing sensitivity of endoscopic markers for villous atrophy in high –risk population: implications for celiac disease diagnosis during routine endoscopy. Am J Gastroenterol. 2001; 96: 2126-8. 119. Prassad KK, Thapa BR, Nain C, et Singh K. J. Assessment of the diagnostic value of duodenal bulb histology in patients with celiac disease, using multiple biopsy sites. Clin Gastroenterol. 2009. 43(7): 692-3. 120. Kurien M, Evans KE, Hopper AD, et al. Duodenal bulb biopsy for diagnosing adult celiac disease: is there an optimal biopsy site? Gastrointest Endosc. 2012; 75: 1190-96. 121. Latorre M, Lagana SM, Freedberg DF, et al. Endoscopic biopsy technique in the diagnosis of celiac disease: one bite or two? Gastrointest Endosc. 2015.81(5): 12228-33 122. Ianiro G, Gasbarrini A et Cammarota G. Endoscopic tools for the diagnosis and evaluation of celiac disease. WJGE. 2013; 19(46): 8562-70. 123. Tchekmedvian AJ, Coronel E, et Czul K. « Leopard skin sign »: The use of narrow-band imaging with magnification endoscopy in celiac disease. Rev Gastroenterol Peru. 2014 ; 34(4) : 321-24. 124. Trotovo C, Sonzogni A, Ravizza D, et al. Celiac disease: in vivo diagnosis by confocal endomicroscopy. Gastrointest Endosc. 2007 ; 65 : 1096-99. 125. Masci E, Mangiavillano B, Barera G, et al. Optical coherence tomography in pediatric patients: feasible technique for diagnosing celiac disease in children with villous atrophy. Dig Liv Did. 2009; 41: 639-43. 126. Johnston AJ, Kurien M, Avgerinos A, et al. Is there a role for chromoscopy in the diagnosis of coeliac disease? J Gastrointestin Liver Dis. 2014; 23(1): 99-104. 127. Siegel LM, Stevens PD, Lightdale CJ, et al. Combined magnification endoscopy with chromoscopy in the evaluation of patients with suspected malabsorption. Gastrointest Endosc. 1997 ; 46 : 226-30. 128. Cammarota G, Cesaro P, La Mura R, et al. Role of the « immersion technique » in diagnosing celiac disease with villous atrophy limited to the duodenal bulb. J Clin Gastroenterol. 2007; 41:571-75. 129. Gasbarrini A, Ojetti V, Cuoco L, et al. Lack of endoscopic visualization of intestinal villi with the « immersion technique » in overt atrophic celiac disease. Gastrointest Endosc. 2003; 57: 348-51. 130. Rokkas T,et Niv Y. The role of video capsule endoscopy in the diagnosis of celiac disease: a meta-analysis. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2012; 24: 303-8. 131. Cellier C, Green PH, Collin P, et al. ICCE consensus for celiac disease. Endoscopy. 2005; 37:1055-59. 132. Oxentenko AS et Murray J. Celiac disease: Ten things that every gastroenterologist should know. Clin Gastroenterol Hepatol. 2014; Jul19, S1542-3564(14)01053-2. 133. Murray JA, Rubio-Tapia A, Van Dyke CT, et al. Mucosal atrophy in celiac disease: Extent of involvement, correlation with clinical presentation, and response to treatment. Clin Gastroenterol Hepatol. 2008; 6(2): 18695. 134. Kutlu T, Brousse N, Rambaud C, et al. Numbers of T cell receptor TCR&agr;&bgr;+ but not TCR&dgr;+ intraepithelial lymphocytes correlate with the grade of villous atrophy in celiac patients on a long term normal diet. Gut 1993; 34: 208-14. 135. Arguelle-Grande C, Tennyson CA, Lewis SK, et al. Variability in small bowel histopathology reporting between different pathology practice setting: impact on the diagnosis of celiac disease. J Clin Pathol. 2012; 65: 242-7. 136. Villanacci V. The histological classification of biopsy in celiac disease : Time for a change ? Dig Liv Dis. 2015 ; 47 : 2-3. 137. Villanacci V, Ceppa P, Tavari F, et al. Celiac disease the histology report. Dig Liver Dis. 2011; 43(S4): S385-95. 138. Biagi F, Luinetti O, Campanella J et al.Intra epithelial lymphocytes in the villous tip: do they indicate potentiel celiac disease? J Clin Pathol. 2004 ; 57 :835-9. 139. Jarvinen TT, Collin P, Rasmussen M, et al. Villous tip intra epithelial lymphocytes as markers of early-stage of celiac disease. Scand J Gastroenterol. 2004; 39: 428-33. 140. Walker MM, Murray JA, Ronkainen J, et al. Detection of celiac disease and lymphocytic enteropathy by parallel serology and histology in a population-based study. Gastroenterology. 2010; 139:112-9. 141. Ensari A. Gluten-sensitive enteropathy (celiac disease): controversies in diagnosis and classification. Arch Pathol Lab Med. 2010 ; 134 :826-36 142. Oberhuber G, Granditsch G, Vogelsang H. The histopathology of celiac disease, time for a standardized report scheme for pathologist. Eur J Gastroenterol Hepatol. 1999; 11: 1185-94. 143. Serra S et Jani PA. An approach to duodenal biopsies, J Clin Path 2006; 59:1133-50. 144. Marsh MN. Gluten-Major histocompatibility complex and the small intestin. A molecular and immunobiologic approach to the spectrum of gluten sensitivity « celiac sprue » Gastroenterology. 1992 ; 192 :330-54. 145. Corazza GR, Villanacci V. Celiac disease. J Clin Pathol. 2005 ; 58 :573-4. 146. Corazza GR, Villanacci V, Zambelli C, et al. Comparison of the interobserver reproducibility with different histologic criteria used in celiac disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 2007; 5(7): 838-43. 147. Marsh MN, Crowe PT. Morphology of the mucosal lesion in gluten sensitivity. Bailliéres Clin Gastroenterol. 1995; 9: 273-93. 148. Brar P, Kwon GY, Egbuna, et al. Lack of correlation of degree of villous atrophy with severity of clinical presentation of celiac disease. Dig Liver Dis. 2007; 39: 26-29. 149. Marsh MN. Mechanisms of diarrhea and malabsorption in glutensensitive enteropathy. Eur J Gastroenterol Hepatol. 1993; 5: 784-95. 150. Pallav K, Leffler DA, Tariq S, et al. Non celiac enteropathy : The differential diagnosis of villous atrophy in comtemporary clinical practice. APT. 2012; 35: 380-90. 151. Brown IS, Smith J, et Rosty C. Gastrointestinal pathology in celiac disease. Am J Pathol. 2012; 138:42-49. 152. Wolber R, Owen D, Delbueno L, et al. Lymphocytic gastritis in patients with celiac sprue or sprue like intestinal disease. Gastroenterology. 1990; 98: 310-15. 153. Feeley KM, Heneghan MA, Steven FM, et al. Lymphocytic gastritis and celiac disease: evidence of positive association. J Clin Pathol. 1998; 51: 207-10. 154. Prassad KK, Thapa BR, Lal S, et al. Lymphocytic gastritis and celiac disease in Indian children: Evidence of a positive relation. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2008; 47: 568-72. 155. Bhatti TR, Jatla M, Verna R, et al. Lymphocytic gastritis in pediatric celiac disease. Pediatr Dev Pathol. 2011; 14(4); 280-3. 156. Bohr J, Wickborn A, Hegedus A, et al. Diagnosis and management of microscopic colitis : current perspectives. Clin Exp Gastroenterol. 2014; 7: 273-84. 157. Rettenbacher T, Hollerweger A, Macheiner P, et al. Adult celiac disease: US signs. Radiology. 1999; 211: 389-94. 158. Soyer P, Boudiaf M, Fargeaudou Y, et al. Celiac disease in adults: Evaluation with MDCT enteroclysis. AJR. 2008 ; 191 :148392. 159. Masselli G, Picarelli A, Di Tola M, et al. Celiac disease: Evaluation with dynamic contrast-enhanced MR imaging. Radiology. 2010; 256: 78390. 160. Fouda MA, Khan AA, Sultan M, et al. Evaluation and management of skeletal health in celiac disease: position statement. Can J Gastroenterol. 2012; 26(11): 819-29. 161. Rabenlink NM, Westgeest HM, Bravenboer N, et al. Bone pain and extremely low bone density due to severe vitamin D deficiency in celiac disease. Arch Osteoporosis. 2011; 6: 209-13. 162. Pantaleoni S, Luchino M, Adriani A, et al. Bone mineral density at diagnosis of celiac disease and after 1 year of gluten-free diet. The Scientific World Journal. 2014, article ID 173082, 6 pages. 163. Ludvigsson JF, Bai JC, Biagi F, et al. Diagnosis and management of adult coeliac disease: guidelines from the British society of Gastroenterology. Gut. 2014; 0: 1-20. 164. Dahlbom I, Olsson M, Forooz NK, et al. Immunoglobulin G (IgG) anti-tissue transglutaminase antibodies used as markers for IgA-deficient celiac disease patients. Clin Diag Lab Immunol. 2005 ; 12 : 254-8. 165. Ierardi E, Losurdo G, Piscitelli D, et al. Seronegative celiac disease: Where is the specific setting? Gastroenterology Hepatology from Bed to Bench. 2015 ; 8(2): 110-116) 166. Leffler D, Vange R, et Mukherjee R. Mild enteropathy celiac disease: a wolf in sheep’s clothing. Clin Gastroenterol Hepatol. 2013; 11: 259-61. 167. DeGaetani M, Tennyson CA, Lebwohl B, et al. Villous atrophy and negative celiac disease serology : A diagnostic and therapeutic dilemma. Am J Gastroenterol. 2013; 108: 647-53. 168. Halfdanarson TR, Litzow MR, Murray JA. Hematologic manifestations of celiac disease. Blood. 2007 ; 109 : 412-21 169. Corazza GR, Valentini RA, Andreani ML, et al. Subclinical coeliac disease is a frequent cause of iron-deficiency anaemia. Scand J Gastroenterol. 1995 ; 30 : 153-6 170. Bottaro G, Cataldo F, Rotolo N, et al. The clinical pattern of subclinical/silent celiac disease: an analysis on 1026 consecutive cases. Am J Gastroenterol. 1999; 94 :691-6) 171. Hershko C et Patz J. Ironing out mechanisms of anemia in celiac disease. Haematologica. 2008; 93(12):1761—65. 172. Harper JW, Holleran SF, Ramakrishnan R, et al. Anemia in celiac disease is multifactorial in etiology. Am J Hematol. 2007; 82 : 996-1000 173. Bergamaschi G, Markopoulos K, Albertin R, et al. Anemia of chronic disease and defective erythropoietin production in patients with celiac disease. Haematologica. 2008; 93(12): 1785-91 174. Weiss G et Goodnough LT. Anemia of chronic disease. NEJM. 2005; 352: 1011-23. 175. Gillberg R, Kastrup W, Mobacken H, et al. Gastric morphology and function in dermatitis herpetiformis and celiac disease. Scand J Gastroenterol. 1985; 20:133-40. 176. Saibeni S, Lecchi A, Meucci G, et al. Prevalence of hyperhomocysteinemia in adult gluten-sensitive enteropathy at diagnosis : role of B12, folate and genetics. Clin Gastroenterol Hepatol. 2005; 3: 57480. 177. Kirkineska L, Perifanis V, et Vasiliadis T. Functional hyposplenism. Hippocratia. 2014; 18: 7-11. 178. Croese J, Harris O, et Bain B. Coeliac disease: haematological features, and delay in diagnosis. Med J Aust. 1979; 2:335-38 179. Robertson DA, Bullen AW, Hall R, et al. Blood film appearances in the hyposplenism of celiac disease. Br J Clun Pract. 1983; 37 :19-22 180. Robinson BJ, Bullen AW, hall R, et al. Splenic size and function in adult celiac disease . Br J Radiol. 1980; 53: 532-37. 181. Marsh GW et Stewart JS. Splenic function in adult celiac disease. Br J Haematol. 1970; 19:445-57. 182. Doncaster and Basstlaw Hospitals. Guidelines for management of asplenic patients. Fev 2014 183. Ludvingson JF, Welander A, Lassila R, et al. Risk of thromboembolism in 14000 individuals with celiac disease. Br J Haematol. 2007; 139: 121-27. 184. Cavallaro R, Iovino P, Casriglione F, et al. Prevalence and clinical associations of prolonged prothrombin time in adult untreated celiac disease. Eur J Gastroenterol. 2004; 16: 219-23. 185. Zali MR, Rostami-Nejad M, Rostami K, et al. Liver complications in celiac disease. Hepat Mon. 2011; 11(5): 333-41. 186. Volta U. Liver dysfunction in celiac disease, Minerva Med 2008;99:619-29 187. Volta U, De Franceshi L, Lari F, et al. Coeliac disease hidden by cryptogenetic hypertransaminasaemia. Lancet. 1998 ; 352 : 26-9 188. Bardella MT, Vecchi M, Conte D, et al. Chronic unexplicated hypertransaminasemia may be caused by occult celiac disease. Hepatology. 1999 ; 29 : 654-7) 189. Khorashad A, Vossoughinia H, Saadatnia H, et al. Causes of persistently elevated alanine aminotransferase levels in patients who presented to two referral hospitals in Mashhad, Iran during 2011. Mid East J Dig Dis .2014; 6(1): 18-22. 190. Moghaddam MA, Rostami-Nejad M, Shalmani HM, et al. The effect of gluten-free diet on hypertransaminasemia in patients with celiac disease. Int J Prev Med. 2013; 4(6): 700-704. 191. Rostami-Nejad M, Haldane T, Aldulaimi D, et al. The role of celiac disease in severity of liver disorders and effect of gluten-free diet on disease improvement. Hepat Mon. 2013 ; 13(10) : e11893. 192. Bardella MT, Fraquelli M, Quatrini M, et al. Prevalence of hypertransaminasemia in adult celiac patients and effect of gluten-free diet. Hepatology. 1995; 22(3): 833-6. 193. Wakim-Fleming J, Pagadala MR, McCullough AJ, et al. Prevalence of celiac disease in cirrhosis and outcome of cirrhosis on a gluten-free diet : a prospective study. J Hepatol. 2014; 61(3): 558-63. 194. Maiwall R, Pulimood AB, Babji S, et al. Investigation into celiac disease in Indian population patients with portal hypertension. Ind J Gastroenterol. 2014; 33(6): 517-23. 195. Kaukinen K, Halme L, Collin P,et al. Celiac disease in patients with severe liver disease : gluten-free diet may reverse hepatic failure. Gastroenterology. 2002; 122(4): 881-8. 196. Demir H, Yuce A, Caglar M, et al. Cirrhosis in children with celiac disease. J Clin Gastroenterol. 2005; 39(7): 630-3. 197. Dickey W, McMillan SA, et Callender ME. High prevalence of celiac sprue among patients with primary biliary cirhhosis. J Clin Gastroenterol. 1997; 25(1): 328-9. 198. Volta U, Rodrigo L, Granito A, et al. Celiac disease in autoimmune cholestatic liver disorder. Am J Gastroenterol. 2002; 97(10): 2609-13. 199. Lawson A, West J, Aithal GP, et al. Autoimmune cholestatic liver disease in people with celiac disease : a population-based study of their association. APT. 2005; 21(4): 401-5. 200. Floerani A, Betterie C, Baragiotta A et al. Prevalence of celiac disease in primary biliary cirrhosis and antimitochondrial antibodies in adults celiac patients in Italy, Dig Liv Dis 2002; 34:258-261 201. Van Gerven NM, Bakker SF, DE Boer YS, et al. Seroprevalence of celiac disease in patients with autoimmune hepatitis. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2014 ; 26(10) : 1104-7. 202. Volta U, De Franceschi L, Molinaro N, et al. Frequency and significance of anti-gliadin anti-endomysial antibodies in autoimmune hepatitis. Dig Dis Sci. 1998; 43(10): 2190-5. 203. Villalta D, Girolami D, Bidoli E, et al. High prevalence of celiac disease in autoimmune hepatitis detected by anti-tissue transglutaminases autoantibodies. J Clin Lab Anal. 2005; 19(1): 6-10. 204. Novacek G, Miehsler W, Wrba F, et al. Prevalence and clinical importance of hypertransaminasemia in coeliac disease. Eur J Gastroenterol Hepatol. 1999; 11(3): 283-8. 205. Czaja AJ, Doherty DG, et Donaldson PT. Genetic bases of autoimmune hepatitis. Dig Dis Sci. 2002; 47(10): 2139-50. 206. Rubio-Tapia A, et Murray JA. The liver in celiac disease. Hepatology. 2007; 46(5): 1650-8. 207. Ludvingsson JF, Elfstrom P, Broom U, et al. Celiac disease and risk of liver disease : a general population-based study. Clin Gastroenterol Hepatol. 2007; 5(1): 63-9 e1. 208. Brazier F, Delcenserie R, Sevestre H, et al. Primary sclerosing cholangitis and coeliac disease : beneficial effect of gluten-free diet on the liver. Eur J Gastrenterol Hepatol. 1994; 6(2): 183-6. 209. Emami MH, Hashemi M, Kouhestani S, et al. Should we look for celiac disease among all patients with liver function test abnormalities? Int J Prev Med. 2012; 3:167-72. 210. Bizzaro N, Tampoia M, Villalta D, et al. Low specificity of anti-tissue transglutaminase antibodies in patients with primary biliary cirrhosis. J Clin Lab Anal. 2006 ; 20(5): 185-9. 211. Bardella MT, Valenti L, Pagliari C, et al. Searching for coeliac disease in patients with non-alcoholic fatty liver disease. Dig Liv Dis. 2004 ; 36(5) : 333-6. 212. Hmami F, Chaouki S, Souilmi FZ, et al. L’association maladie cœliaque et syndrome de Budd Chiari : à propos d’un cas. Arch Pediatr. 2011 ; 18(1) : 102. 213. BenHriz F, Habbassi N, Maamouri N, et al. Syndrome de Budd Chiari associé à une maladie cœliaque. La Revue de Médecine Interne.2010 ; 31(2) : 160-2 214. Marteau P, Cadranel JF, Messing B, et al. Association of hepatic vein obstruction and celiac disease in North African subjects. J Hepatol. 1994; 20(5): 650-53. 215. Afredj N, Metatla S, Faraoun SA, et al. Association of Budd Chiari syndrome and celiac disease. GECB. 2010; 34(11): 621-24. 216. Freeman HJ. Hepatobiliary and pancreatic disorders in celiac disease. WJGE. 2006; 12(10): 1503-08. 217. Philip R, Patidar PP, Saran S, et al. Endocrine manifestations of celiac disease. Ind J Endocrinol Metab. 2012; 6S2): S506-8. 218. Saadah OI, Zacharin M, O’Callaghan A, et al. Effect of gluten-free diet and adherence on growth and diabetic control in diabetics with celiac disease. Arch Dis Child. 2004 ; 89 : 871-76 219. Schober E, Rami B, Granditsch G, et al Celiac disease in children and adolescents with type 1 diabetes mellitus : to screen or not ? Horm Res.2002 ; 57 : 97-100. 220. Mustalahti K, Catassi C, Reunanen A, et al. The prevalence of celiac disease in Europe: results of a centralized, international mass screening project. Ann Med. 2010 ; 42 : 587-95 221. Guptar R, Reddy DN, Makharia GK, et al. Indian task force for celiac disease : current status. WJGE. 2009; 15: 6028-33. 222. Cerutti F, Bruno G, Chiarelli F, et al. Younger age at onset and sex predict celiac disease in children and adolescent with type 1 diabetes: an Italian multicenter study. Diabetes Care. 2004; 27: 1294-98. 223. Not A, Tommasini A, Tonini G, et al. Undiagnosed celiac disease and risk of autoimmune disorders in subjects with type 1 diabetes mellitus. Diabetol. 2001; 44:151-55. 224. Sud S, Marcon M, Assor E, et al. Celiac disease and pediatric type 1 diabetes: diagnostic and treatment dilemmas. Int J Pediat Endocrinol. 2010; 2010: 161285. 225. Leeds JS, Hadjvassiliou M, Tefaye S, et al. High prevalence of microvascular complications in adult with type 1 diabetes and newly diagnosed celiac disease. Diabetes Care. 2011; 34: 2158-63. 226. Hogg-Kollars S, Al Dulaimi D, Tait K, et al. Type 1 diabetes mellitus and gluten induced disorders. Gastroenterol Hepatol Bed to Bench. 2014; 7(4): 189-97. 227. Sherif MAA, Allison G, Robertson K, et al. Effect of diagnosing celiac disease and instituting a gluten-free diet on glycemic control in asymptomatic children with type 1 diabetes mellitus. Endocrine Abstracts. 2011; 27: 58. 228. Kaukinen K, Salmi J, lahtela J, et al. No effect of gluten-free diet on the metabolic control of type1 diabetes in patients with diabetes and celiac disease: retrospective and controlled prospective study. Diabetes Care. 1999; 22: 1747-48. 229. Westman E, Ambler GR, Royle M, Peat J, Chan A. Children with celiac disease and insulin dependent diabetes mellitus-growth diabetes and diatary intake. J Pediatr Endocrinol Metabol. 1999; 12: 433-42. 230. Kabbani T, Kelly CP, Betensky RA, et al. Patients with celiac disease have a lower prevalence of non-insulin-dependent diabetes mellitus and metabolic syndrome. Gastroenterology. 2013; 144(5): 912-17. 231. Olen O, Montgomery SM, Marcus C, et al. Coeliac disease and body mass index: a study of two Swedish general population-based registers. Scand J Gastroenterol. 2009; 44: 1198-206. 232. Cheng J, Brar PS, Lee AR, et al. Body mass index in celiac disease: beneficial effect of gluten-free diet. J Clin Gastroenterol. 2014; 44: 267-71. 233. Kabbani TA, Goldberg A, Kelly CP, et al. Body mass index and the risk of obesity in coeliac disease treated with the gluten-free diet. APT. 2012; 35: 723-29. 234. Van Der Pals M, Ivarson A, Norstrom F, et al. Prevalence of thyroid autoimmunity in children with celiac disease compared to healthy 12-year olds. Autoimmune Diseases. 2014; ID417356, 6 pages. 235. Green A. The EURODIAB studies on childhood diadetes: 19881999. Diabetologica. 2001 ; 44(S3) :B1-B2 236. Vanderpump MP, et Tunbridge WM. Epidemiology and prevention of clinical and subclinical hypothyroidism. Thyroid. 2002; 12(10): 839-47. 237. Viljamaa M, Kaukinen K, Huhtala H, et al. Coeliac disease, autoimmune diseases and gluten exposure. Scand J Gastroenterol. 2005; 40(4): 437-43. 238. Sategna-Guidetti C, Solerio E, Scaglione N, et al. Duration of gluten exposure in adult celiac disease does not correlate with of autoimmune disorders. Gut. 2001; 49(4): 502-5. 239. Coenes J, Cellier C, Viola S, et al. Incidence of autoimmune diseases in celiac disease: prospective effect of the gluten-free diet. Clin Gastroenterol Hepatol. 2008; 6(7): 753-8. 240. O’Leary C, Walsh CH, Wieneke P, et al. Celiac disease and autoimmune Addison’s disease : a clinical pitfall. QJM. 2002; 95: 79-82. 241. Myhre AG, Aarsetoy H, Undlien DE, et al. High frequency of celiac disease among patients with autoimmune adrenocortical failure. Scand J Gastroenterol. 2003; 38: 511-15. 242. Elfstrom P, Montgomery SM, Kampe O, et al. Risk of primary insufficiency in patients with celiac disease. .J Clin Endocrinol Metab. 2007; 92 (9): 3595-98. 243. Cacciari E, Salardi S, Volta U, et al. Can antigliadin antibody detect symptomless coeliac disease in children with short stature? Lancet. 1985; 1: 1469-71. 244. Cacciari E, Salardi S, Lazzari R, et al. Short stature and celiac disease: a relationship to consider even in patients with no gastrointestinal tract symptoms. J Pediatr. 1983; 103: 708-11. 245. Van Rijn JC, Grot FK, Oostdijk W, et al. Short stature and the probability of celiac disease, in absence of gastrointestinal symptoms. Arch Dis Child. 2004; 89: 882-3. 246. Dieterich W, Laag E, Schopper H, et al. Autoantibodies to tissue transglutaminase as predictors of celiac disease. Gastroenterolgy. 1998; 115: 1317-21. 247. Al-Jurayyan NAM, Al-Nemri AMH, Al-Jurayyan ANA, et al. Celiac disease in children with short stature: a hospital based study. J Taibah Univ Med Sci. 2013; 8(2): 93-96. 248. Queiroz MS, Nery M, Cancado EL, et al. Prevalence of celiac disease in Brazilian children of short stature. Braz J Med Biol Res. 2004; 37:55-60 249. Bozzola M, Bozzola E, Pagani S, et al. Late diagnosis of celiac disease in a asymptomatic infant with growth failure. Ital J Pediatr. 2014; 40: 4. 250. Weiss B, Skourikhin Y, Modan-Moses D,et al. Is adult height of patients with celiac disease influenced by delayed diagnosis? Am J Gastroenterol. 2008 ;103 (7) :1770-4) 251. Sonti R, Lebowhl B, Lewis SK, et al. Men with celiac disease are shorter than their peers in the general population. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2013; 25(9): 1033-7. 252. Karpat S. Dermatitis herpetiformis. Clin Dermatol. 2012; 30(1): 569. 253. Sapone A, Bai JC, Ciacci C,et al. Spectrum of gluten-related disorders: Consensus on new nomenclature and classification. BMC Med. 2012; 10: 13. 254. Bonciana D, Verdelli A, Bonciolini V, et al. Dermatitis herpetiformis: from the genetis to the development of skin lesions. Clin Devel Immunol. 2012 ; ID239691 : 7 pages. 255. Mendes FBR, Hissa-Elian A, Morgano de Abreu MAM, et al. Review: dermatitis herpertiformis. An Bras Dermatol. 2013; 88(4): 594-9. 256. West J, Fleming KM, Tata LJ, et al. Incidence and prevalence of celiac disease and dermatitis herpetiformis in the UK over two decades: population-based study. Am J Gastroenterol. 2014; 109: 757-68. 257. Gregory B, et Ho VC. Cutaneous manifestations of gastrointestinal disorders. Part II. Am J Clin Dermatol. 1992; 26:371-83. 258. Fry L. Dermatitis herpetiformis. Bailliéres Clin Gastroenterol 1995; 9:371-93. 259. Smith JB, Taylor TB, et Zone JJ. The site of blister formation in dermatitis herpetiformis is within lamina lucida. J Am Acad Dermatol. 1992; 27(21): 209-13. 260. Sardy M, Karpati S, Merkl B, et al. Epidermal transglutaminase (TGase 3) is the autoantigen of dermatitis herpetiformis. J Exp Med. 2002; 195: 747-57. 261. Bolotin D, et Petronic-Rosic V. Dermatitis herpetiformis : part II. Diagnosis and prognosis. J Am Acad Dermatol. 2011; 64(6) : 1027-33 262. Hautekeet ML, DeClerck LS, et Stevens WJ. Chronic urticaria associated with celiac disease, Lancet 1987; 1: 157. 263. Farkas H, Visy B, Fekete B, et al ,Associated of celiac disease and hereditary angioneurotic edema, Am J Gastroenterol 2002;97:2682-83. 264. Holdstock DJ et Oleesky S. Vascularitis in celiac disease, Br Med 1970; 4:369 265. Goodenberg MD, Lawley TJ, Strober W, et al. Necrotic migratory erythema without glucagonoma, Arch Dermatol 1979;115:1429-32. 266. Durand JM, Lefèvre P, et Weiller C. Erythema nodosum and celiac disease, Br J Dermatol 1991;125:291-92. 267. Birkenfeld S, Dreiher J, Weitzman D, et al. Coeliac disease associated with psoriasis. Br J Dermatol. 2009 ; 161(6) : 1331-34. 268. Shahmoradi Z, Najafian J, Naeini FF, et al. Vitiligo and autoantibodies of celiac disease. Int J Rev Med. 2013; 4(2): 200-3. 269. Naveh Y, Rosenthal E, Ben-Arieh Y, et al. Celiac diseaseassociated alopecia in childhood. J Pediatr. 1999; 134(3): 362-4. 270. Hadjivassiliou M, Grunewald RA, Chattopathay AK, at al. Clinical, radiological, neurophysiological and neuropathological characteristics of gluten ataxia. Lancet 1998; 352: 1582-85. 271. Abele M, Burk K, Schol L, et al The etiology of sporadic adult-onset ataxis. Brain. 2002; 125: 961-68. 272. Hadjivassiliou M, Maki M, Sanders DS, et al. Autoantibody targeting of brain and intestinal transglutaminase in gluten ataxia. Neurology. 2006; 66: 373-77. 273. Lerner A, Makhoul B, et Eliakim R. Neurological manifestations of celiac disease in children, adults. Eur Neur J. 2010 ; 000 : 1-6. 274. Feretti A, Parisi P, et Villa MP. The role of hyperhomocysteinemia in neurological features associated celiac disease. Med Hypoth 2013; 81(4): 524-31. 275. Korponay-Szabo IR, halltunen T, Szalai Z, et al. In vivo targeting intestinal and extraintestinal transglutaminase 2 by coeliac autoantibodies. Gut. 2004; 53: 641-8. 276. Thomas H, beck K, Adamczyk M, et al. Transglutaminase 6: a protein associated with central nervous system development and motor function. Amino Acids. 2013; 44: 161-77. 277. Tursi A, Giorgetti GM, Iani C, et al. Peripheral neurological disturbances autonomic dysfunction, and antineuronal antibodies in adults celiac disease before and after a gluten-free diet. Dig Dis Sci. 2006; 51: 1869-74. 278. Ertekin V, Selimoglu MA, tan H, et al. Prevalence of celiac disease in a sample of Turkish children with epilepsy. Pediatr Neurol. 2010; 42: 380. 279. Labate A, Gambardella A, Messina A, et al. Silent celiac disease in patients with childhood localization-related epilepsies. Epilepsia. 2001; 42: 1153-5. 280. Madrid SAM, Diaz SM, Hurtado HC, et al. Silent celiac disease among 21 patients with cryptogenetic epilepsy. Rev Med Chil. 2011; 139: 587-91. 281. Vieira C, Jatoba I, Matos M, et al. Prevalence of celiac disease in children with epilepsy. Arq Gastroenterol. 2013; 50(4): 290-96. 282. Johnson AM, dale RC, Wienholt L, et al. Coeliac disease, epilepsy, and cerebral calcifications: association with TG6 transglutaminase. Dev Med Chil Neurol. 2013 ; 55 : 90-3 283. Arroyo HA, De Rosa S, Ruggieri V, et al. Epilepy, occipital calcification, an oligosymptomatic celiac disease. J Child Neurol. 2002; 17: 800-6. 284. Urban-Kowalczyk M, Smigielski J, et Gmitrowicz A.neuropsychiatric symptoms and celiac disease. Neuropsych Dis Treat.2014; 10: 1961-64. 285. Ciacci C, Iavarone A, Mazzaca G et al. Depressive symptoms in adult celiac disease. Scand J Gastroenterol. 1998; 33(3): 247-50. 286. Smith DF, et Gerdes LU. Meta-analysis on anxiety and depression in adult celiac disease. Acta Psychiatr Scand. 2012; 125(3): 189-93. 287. Hermanz A, et Polanco I. Plasma precursor amino acids of central nervous system monoamines in children with celiac disease. Gut. 1991; 32: 1478-81. 288. Hallert C, Svensson M, Tholstrup J, Hultberg B. Clinical trials: B vitamin improve health in patients with celiac disease living on gluten-free diet. APT. 2009; 29(8): 811-6. 289. Pynnonen PA, isometsa ET, Verkasalo MA, et al.Untreated celiac disease and development of mental disorders in children and adolescents. Psychosomatics. 2002; 43 (4):331-34. 290. Van Hees NJ, Van Der Does W, et Giltay EJ. Celiac disease, diet adherance and depressive symptoms. J Psychosom Res. 2013; 74(2) :155-60. 291. Choi JM, Lebwohl B, Wang J, et al. Increased prevalence of celiac disease in patients with unexplained infertility in the United States: a prospective study. J Reprod Med. 2011; 56: 199. 292. Kumar D. Prevalence of femal infertility and its socio-economic factors in tribal communities of central India. Rural Remot Health. 2007; 7: 456. 293. Jackson JE, Rosen M, Mc Lear T, et al. Prevalence of celiac disease in a cohort of women with inexplained infertility. Fertil Steril. 2008; 89: 1002-4. 294. Meloni GK, Dessol S, Vargiu N, et al. The prevalence of celiac disease in infertility. Hum Reprod. 1999; 14: 2759-61. 295. Lasa JS, Zubiaurre I, et Soifer LO. Risk of infertility in patients with celiac disease: a meta-analysis of observational studies. Arq Gastroenterol. 2014; 51(2): 144-50. 296. Sigh P, Aroras S, Lal S, et al. Celiac disease in women with infertility: a meta-analysis. J Clin Gastroenterol. Jan 2015. 297. Sher KS, Mayberry JF. Femal fertility, obstetric and gynaecological history in coeliac disease: A case control study. Acta Paediatr Suppl. 1996; 412: 76-77. 298. Collin P, Vilska S, Heinonen PK, et al. Infertility and coeliac disease. Gut. 1996; 39: 382-84. 299. Kolho KL, Tiitinen A, Tulpaala M, et al. Screening for coeliac disease in women with a history of recurrent miscariage or infertility. Br J Obstetr Gynaecol. 1999; 106: 171-73. 300. Dhalwani NN, West J, Sultan AA, et al. Women with celiac disease present with fertility problems no more often than women in the general population. Gastroenterology. 2014; 147: 1267-74. 301. Gasbarrini A, Torres ES, Trivellini C, et al. Recurrent spontaeous abortioned, intrauterin fetal growth retardation as symptoms of celiac disease. Lancet. 2000 ; 356 : 399-400). 302. Greco L, Veneziano A, Di Donato L, et al. Undiagnosed celiac disease appear to be associated with unfavourable outcome of pregnancy. Gut. 2004; 53: 149-51. 303. Martinelli P, Troncone R, Paparo F, et al. Celiac disease and unfavourable outcome of pregnancy. Gut. 2000; 46: 332-5. 304. Smecuol E, Maurino E, Vazquez H, et al. Gynaecological and obstetric disorders in celiac disease: frequent clinical outset during pregnancy or puerperium. Eur J Gastroenterol Hepatol. 1996: 8: 63-89. 305. Fortunato F, Martinelli D, Prato R,et al. Results from Ad Hoc and routinely collected data among celiac women with infertility or pregnancy related disorders, Italy 2001-2011. The Scientific World J. 2014; ID614269, 7 pages. 306. Hirson C. Coeliac infertility-folic acid therapy. Lancet. 1970; 1(7643): 412. 307. Bedwal RSBA. Zinc, Copper, and Selenium in reproduction. Experimentia. 1994; 50: 626-40. 308. Singhal N, Alam S, Sherwani R, et al. Serum zinc levels in celiac disease. Indian Pediatr. 2008; 45: 319-21. 309. Martin JR, Lieber SB, McGrath J, et al. Maternal ghrelin deficiency compromises reproduction in femal progery through altered uterine developmental programming. Endocrinology. 2011; 152: 2060-66. 310. Anjum N, Baker PN, Robinson NJ, et al. Maternel celiac disease autoantibodies from celiac patients are responsible for trophoblast damage via apoptosis in vitro. Am J Gastroenterol. 2010. 311. Corazza GR, Di Sario A, Cecchetti A, et al. Bone mass and metabolism in patients with celiac disease. Gastroenterology. 1995; 109: 122-128. 312. Mazure R, Vazquez H, Gonzalez D, et al. Bone mineral affectation in asymptomatic adult patients with celiac disease. Am J Gastroenterol. 1994; 89: 2130-34. 313. Mustalahti K, Collin P, Sievanen H, et al. Osteopenia in patients with clinically silent coeliac disease warrants screening. Lancet. 1999; 354: 744-45. 314. Duerksen DR, et Leslie WD. Positive celiac serology and reduced bone mineral density in adult women. Can J Gastroenterol. 2010 ; 24 : 103-7. 315. Armagan O, Uz T, Tascioglu F, et al. Serological screening for celiac disease in premenopausal women with idiopathic osteoporosis. Clin Rheumatol. 2005; 24: 239-43. 316. Drummond FJ, Annis P, O’Sullivan K, et al. Screening for asymptomatic celiac disease among patients referred for bone densitometry measurement. Bone. 2003 ; 33 : 970-74. 317. Karakan T, Ozyemisci-Taskiran O, Gunendi Z, et al. Prevalence of IgA-antiendomysial antibodies in a patient cohort with idiopathic low bone mineral density. WJGE. 2007; 21: 2978-82. 318. Molteni N, Bardella MT, Vezzoli G, et al. Intestinal calcium absorption as shown by stable strontium test in celiac disease before and after gluten-free diet. Am J Gastroenterol. 1995; 90: 2025-28. 319. Kontakou M, Przemioslo RT, Sturgess RP, et al. Expression of tumor necrosis factor-alpha, interleukin-6, and interleukin-2 mRNA in the jejunum of patients with coeliac disease. Scand J Gastroenterol. 1995; 30: 456-63. 320. Fornari MC, Pedreira S, Niveloni S, et al. Pre- and post-treatment serum levels of cytokines IL-1beta, IL-6, and IL-1 receptor antagonist in celiac disease. Are they related to the associated osteopenia? Am J Gastroenterol. 1998; 93: 413-18. 321. Di Stefano M, Mengoli C, Bergonzi M, et al. Bone mass and mineral metabolism alterations in adult celiac disease: Pathophysiology and Clinical approach. Nutrients. 2013; 5: 4786-99. 322. Mora S, Barera G, Beccio S, et al. A prospective: longitudinal study of the long-term effect of treatment on bone density in children with celiac disease. J Pediatr. 2001; 139: 516-21. 323. Bodé S, Hassager C, Gudmand-Hoyer E, et al. Body composition and calcium metabolism in adult treated coeliac disease. Gut. 1991; 32: 1342-45. 324. Feretti J, Mazure R, Tanoue P,et al. Analysis of the structure and strength of bones in celiac disease patients. Am J Gastroenterol. 2003; 98: 382-90. 325. Gonzalez D, Mazure R, Mautalen C, et al. Body composition and bone mineral density in untreated and treated patients with celiac disease. Bone. 1995; 16: 231-34. 326. Pistorius LR, Sweiden WH, Purdie DW, et al. Coeliac disease and bone mineral density in adult femal patients. Gut. 1995; 37: 639-42. 327. Kemppainen T, Kroger H, Janatuinen E, et al. Osteoporosis in adult patients with celiac disease. Bone. 1999; 24: 249-55. 328. Bianchi ML, et Bardella MT. Bone in celiac disease. Osteoporos Int. 2008; 19: 1705-16. 329. Sanchez MI, Mohaidle A, Baistrocchi A, et al. Risk of fracture in celiac disease: gender, diatary compliance, or both? WJGE. 2011; 17: 3035-42. 330. West J, Logan RF, Card TR, et al. Fracture risk in people with celiac disease: A population-based cohort study. Gastroenterology. 2003; 125: 429-36. 331. Moreno ML, Vazquez H, Mazure R, et al. Stratification of bone fracture risk in patients with celiac disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 2004; 2: 127-34. 332. Olmos M, Antelo M, Vazquez H, et al. Systematic review and metaanalysis of observational studies on the prevalence of fractures in coeliac disease. Dig liver Dis. 2008; 40: 46-53. 333. Jafri MR, Nordstrom CW, Murray JA, et al. Long-term fracture risk in patients with celiac disease: A population-based study in Olmsted County, Minnesota. Dig Dis Sci. 2008; 53: 964-71. 334. Lebwohl B, Michaelson K, Green PH, et Ludvigson JF. Persistent mucosal damage and risk of fracture in celiac disease. J Clin Endocrinol Metab. 2014; 99(2): 0000-0000. 335. Landolsi H, Bouajina E, mankai A, et al. Severe osteomalacia due to undiagnosed celiac disease. Three case reports of Tunisian women. Rheumatol int. 2006; 261-3. 336. Sahebari M, Sigari SY, Heidari H, et al. Osteomalacia can still be a point of attention to celiac disease. Clin Cases in Mineral and bone Metabolism. 2011; 8(3): 14-15. 337. Harzy T, Benbouazza K, Amine B, et al. An unusual case of osteomalacia as the presenting feature of coeliac disease. Rheumatol Int. 2005; 26: 90-1. 338. Albany C, et Servetnyk Z. Disabling osteomalacia and myopathy as the only presenting feature of celiac disease: a case report. BMC. 2009; 2: 20. 339. Lubrano E, Ciacci C, Ames PRJ, et al. The artritis of celiac disease: prevalence and pattern in 200 adult patients. Br Rheumatol. 1996 ; 35 : 1314-18. 340. Usai P, Boi FM, Piga M, et al. Adult celiac disease is frequently associated with sacroiliitis. Dig Dis Sci. 1995; 40: 1906-8. 341. Kallikorm R, Uibo O, Uibo R, et al. Celiac disease spondyloarthropathy: usefulness of serological screening. Clin Rheumatol. 2000 ; 19 : 118-22. 342. Iqbal T, Zaidi MA, Wells GA, et al. Celiac disease, arthropathy, and autoimmunity study. J Gastroenterol Hepatol. 2013; 28: 99-105. 343. Alvarez-Celorio MD, Angeles-Angeles A , et Kraus A. Primary Sjogren’ syndrome and celiac disease : causal association or serendipity ? J Clin Rhumatol. 2000; 6(4): 194-7. 344. Iltaken S, Collin P, Korpela M, et al. Celiac disease and markers of celiac disease latency in patients with primary Sjogren’s syndrome. Am J Gastroenterol. 1999; 94(4): 1042-6. 345. Luft LM, Barr SG, Martin LO, Chan EK, et Fritzler MJ. Autoantibodies to tissue transglutaminase in Sjogren’s syndrome and related rheumatic disease. J Rheumatol. 2003; 30(12): 2613-9. 346. Emilsson L, Anderson B, Elfstrom P, et al. Risk of idiopathic dilated cardiomyopathy in 29000 patients with celiac disease. J Am Heart Assoc. 2012; 1(3): e001594. 347. Curione M, Barbato M, De Biase L, et al. Prevalence of coeliac disease in idiopathic dilated cardiomyopathy. Lancet. 1999; 354: 222-3. 348. Fonager k, Sorensen HT, Norgard B et al. Cardiomyopathy in Danish patients with coeliac disease. Lancet. 1999; 354: 1561-78. 349. Elfstrom P, Hamsten A, Montgomery SM, et al. Cardiomyopathy, pericarditis, and myocarditis in a population-based cohort of inpatients with coeliac disease. J Intern Med. 2007; 262: 545-54. 350. Frustaci A, Cuoco L, Chimenti C, et al. Celiac disease associated with autoimmune myocarditis. Ciculation. 2002; 105: 2611-8. 351. Krzywicka B, Herman K, Kowalczyk-Zajac M, et al. Celiac disease and its impact on the oral health status. Review of the literature. Adv Clin Exp Med. 2014; 23(5): 675-81. 352. Campisi G, Di Liberto C, Iacono G et al. Oral pathology in untreated celiac disease. APT. 2007; 26: 1529-36. 353. Shakari R, Zamari F, Sotoudehmanesh R, et al. Gluten sensitivity enteropathy in patients with recurrent aphtous stomatitis. BMC. 2009; 9: 44. 354. Hassan A, Patel H, saleh H, et al. Remission of severe aphtous stomatitis of celiac disease with etanercept. Clin Molecular Allergy. 2013; 11: 6. 355. Bonamico M, Pasquino AM, Mariani P, et al. Prevalence and clinical picture of celiac disease in Turner syndrome. Horm Res. 2009; 71: 52-6. 356. Gillett PM, Gillett HR, Israel DM, et al. Increased prevalence of celiac disease in girls with Turner syndrome detected using antibodies to endomysium and tissue transglutaminase. Can J Gastroenterol. 2000; 14: 915-8. 357. Ivarsson SA, Carlsson A, Bredberg A, et al. Prevalence of coeliac disease in Turner syndrome. Acta Pediatr. 1999; 88: 933-6. 358. Jansson U, et Johansson C. Down syndrome and celiac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 1995; 21: 443-45. 359. Hanson T, Dahlbomm I, Rogberrg S, et al. Antitissue transglutaminase and antithyroid autoantibodies in children with Down syndrome. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2005; 40: 170-74. 360. Bonamico M. Wich is the best screening test for celiac disease in Down Syndrome children. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2005; 40: 125-27. 361. Book L, Hart A, Black J, et al. Prevalence and clinical characteristics of celiac disease in Down syndrome in US study. Am J Med Genet. 2001; 98: 70-74. 362. Corrao G, Corazza GR, Bagnardi V, et al. Mortality in patients with celiac disease and their relatives. Lancet. 2001; 358: 356-61. 363. Biagi F, Gobbi P, Marchese A, et al. Low indidence but poor prognosis of complicated coeliac disease: a retrospective multicenter study. Dig Liv Dis. 2014; 46: 227-30. 364. West J. Celiac disease and it’s complications: a time traveller’s perspective. Gastroenterology. 2009; 136: 32-34. 365. Roshan B, Leffler DA, Jamma S, et al. The incidence and clinical spectrum of refractory celiac disease in a North American referral center. Am J Gastroenterology. 2001; 106: 923-28. 366. Biagi F, Marchese A, Ferretti F, et al. A multicenter case control study on complicated coeliac disease different patterns of natural history, two different prognosis. BMC Gastroenterology. 2014; 14: 139. 367. Biagi F, Schiepatti S, Malamut G, et al. Progosticating coeliac patients survival: The proconsul score. PLOS ONE. 2014; 9(4): e84163. 368. Biagi F, Bianchi PI, Vattiato C, et al. The influence of HLA-DQ2 and DQ8 on severity in celiac disease. J Clin Gastroenterol. 2012; 46: 46-50. 369. Ciclitira PJ, King AL, et Frazer JS. AGA technical review on celiac sprue: American Gastroenterological Association. Gastroenterology. 2001; 120: 1526-40. 370. Cellier C, et Cerf-Benussan N. Treatment of clonal refractory celiac disease or cryptic intra-epithelial lymphoma: a long road from Bench to Beside. Clin Gastroenterol Hepatol. 2006 ; 4 : 1320-21 ; 371. Wahab PJ, Meijer JW, Goerres MS, et al. Coeliac disease changing views on gluten-sensitive enteropathy. Scand J Gastroenterol. 2002; 236: 60-65. 372. Rubio-Tapia A, et Murray JA. Classification and management of refractory celiac disease. Gut. 2010; 59(4): 547-57. 373. Daum S, Cellier C, et Mulder CJ. Refractory celiac disease. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2005; 19: 413-24. 374. Verbeek WH, Goerres MS, Von Blomberg BM, et al. Flow cytometric determination of aberrent intra-epithelial lymphocytes predicts T-cell lymphoma development more accurently than T-cell clonality analysis in refractory celiac disease. Clin Immunol. 2008; 126: 48-56. 375. Al-Toma A, Verbeek WH, Hadithi M, et al. Survival in refractory coeliac disease and enteropathy-associated T-cell lymphoma : retrospective evaluation of single-centre experience. Gut. 2007; 56: 13738. 376. Brar P, Lee S, Lewis S, et al. Budesonide in the treatment of refractory celiac disease. Am J Gastroenterol. 2007; 102: 2265-9. 377. Abdulkarim AS, Burgart LJ, See J, et al. Etiology of nonresponsive celiac disease: results of a systematic approach. Am J Gastroenterol. 2002; 97: 2016-21. 378. Leffler DA, Dennis M, Hyett B, et al. Etiology and predictors of diagnosis in nonresponsive celiac disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 2007; 5: 445-50. 379. Nijerboer P, Van Warooij RLJ, Tack GJ, et al. Update on the diagnosis and management of refractory coeliac disease. Gastroenterology 2013; ID518483, 9 pages. 380. DiSabatino A et Corazza GR. Coeliac disease. Lancet. 2009 ; 373 : 1480-93. 381. Malamut G, Afchain P, Verkarre V, et al. Presentation of a long – term follow-up of refratory celiac disease: comparison of type I with type II. Gastroenterology. 2009; 136: 81-90. 382. Rubio-Tapia A, Kelly DG, Lahr BD, et al. Clinical staging and survival in refractory celiac disease: a single center experience. Gastroenterology. 2009; 136: 99-107. 383. Daum S, Ipczynski R, Schumann M, et al. High rates of complications and substantial mortality in both types of refractory sprue. Eur J Gastroeterol Hepatol. 2009; 21: 66-70. 384. Huppert BJ, Farrell MA, Kawashima A, et al. Diagnosis of cavitating mesenteric lymph node syndrome in celiac disease using MRI. ARJ Am J Rentgenol. 2004; 183: 1375-7. 385. Fine KD, Meyer RL, Lee EL, et al. The prevalence and causes of chronic diarrhea in patients with celiac sprue treated with a gluten-free diet. Gastroenterology. 1997; 112: 1830-8. 386. Gale J, Simmonds PD, Mead GL, et al. Enteropathy-type intestinal T-cell lymphoma: clinical features and treatment of 31 patients in a single center. J Clin Oncol. 2000; 18; 795-802. 387. Baer AN, Bayless TM et Yardley JH. Intestinal ulceration and malabsorption syndrome. Gastroenterology. 1980; 79: 754-65. 388. Trier JS, Falchuk ZM, Carey MC, et al. Celiac disease and refratory sprue. Gastroenterology. 1978; 75: 307-16. 389. Meresse B, Ripoche J, Heyman M, et al. Celiac disease: from oral tolerance to intestinal inflammation, autoimmunity and lymphomagenesis. Mucosal Immunol. 2009 ; 2 : 8-23. 390. Cellier C, Delabesse E, Helmer C, et al. Refratory sprue, coeliac disease, and enteropathy- associated T-cell lymphoma. Frensh Coeliac Disease Study Group. Lancet. 2000; 356: 203-8. 391. Cellier C, Patey N, Mauvieux L, et al. Abnormal intestinal intraepithelial lymphocytes in refractory sprue. Gastroenterology. 1998; 114: 471-81. 392. Biagi F, Lorenzini P, corazza GR, et al. Littérature review on the clinical relationship between ulcerative jejunoileitis, coeliac disease and enteropathy associated T cell lymphoma. Scand J Gastroenterol. 2000; 35(8): 785-90. 393. Ashton-Key M, Diss TC, Pan LX, et al. Molecular analysis of T-cell clonality in ulcerative jejunitis and enteropathy associated T-cell lymphoma. Am J Pathol. 1997; 151: 493. 394. Biagi F, poggioli G, Mazzoni G, et al. Intestinal strictures. Lancet. 1998 ; 352 : 352 (9131): 876. 395. Smedby KE, Akerman M, Hidebrand H, et al. Malignant lymphomas in celiac disease: evidence of increased risks for lymphome types other than enteropathy Tcell lymphoma. Gut. 2005; 54: 54-59. 396. Tursi A, Elisei, Giorgetti GM, et al. Complicatoins in celiac disease under gluten-free diet. Dig Dis Sci. 2009; 54: 2175-82. 397. Holmes GK, Stokes PL, Sorahan TM, et al. Coeliac disease, glutenfree diet, and malignancy. Gut. 1976; 17: 612-19. 398. Deleeuw RJ, Zettl A, Klinker E, et al. Whole-genome analysis and HLA genotyping of enteropathy type T-cell lymphoma reveals 2 distinct lymphoma subtypes. Gastroenterology. 2007; 132(5): 1902-11. 399. Felipe-Silva A, DeCampos FF, DeMedeiros RSS, et al. Enteropathy associated T-cell lymphoma (type II): a Brazilian case report. Autopsy and case report. 2012; 2(2): 31-36. 400. Mention JJ, BenAhmed M, Begue B, et al. Interleukin-15 a key to disturpted intraepithelial lymphocyte homeostasis and lymphomagenesis in celiac disease. Gastroenterology. 2003; 125: 730-45. 401. Di Sabatino A, Biagi F, Gobbi PG, et Corazza GR. How I treat enteropathy associated Tcell lymphoma. Blood. 2012; 119(11): 2458-68. 402. Novakovics BJ, Novakovics S, Frkovic-Grazia S, et al. A singlecenter report on clinical features and treatment response with Tcell nonHodgkin’s lymphoma. Oncol Resp. 2006; 16(1): 195-218. 403. Hovengas S, De Graaf H, Joosten P, et al. Enteropathy associated T-cell lymphoma presenting with hypereosinophilia. Neth J Med. 2003; 61(1): 25-27. 404. Domizio P, Owen RA, Shephred NA, et al. Primary lymphoma of the small intestine: a clinicopathological study of 119 cases. Am J Surg Pathol. 1993; 17(5): 429-42. 405. Daum S, Wahnschaffe U, Glasenapp R, et al. Capsule endoscopy in refractory celiac disease. Endoscopy. 2007; 39(5): 455-58. 406. Hadithi M, AlToma A, Oudejan SJ, et al. The value of double – balloon enteroscopy in patients with refractory celiac disease. Am J Gastroenterol 2007; 102(5): 987-96. 407. Matsumoto T, Nakamura S, Essaki M, et al. Double-balloon endoscopy depicts diminutive small bowel lesions in gastrointestinal lymphoma. Dig Dis Sci. 2010; 55(1): 158-65. 408. Hadithi M, Mallant M, Oudejan JC, et al. 18F-FDF PET versus CT for detection of enteropathy associated Tcell lymphoma in refractory celiac disease. J Nucl Med. 2006; 47(10): 1622-27. 409. Van meyenberg SJ, Meijerin MR, Jacobs MA, et al. Enterolysis in refractory celiac disease: proposal and validation of a severity scoring system. Radiology. 2011; 259(1): 151-61. 410. Bagdi E, Diss TC, Munson P, et al. Mucosal intra-epithelial lymphocytes in enteropathy associated Tcell lymphoma, ulcerative jejunoileitis, and refractory celiac disease constitute a neoplasic population. Blood. 1999 ; 94(1) : 260-64. 411. De Bruin PC, Connolly CE, Oudejans JJ, et al. Enteropathy associated Tcell lymphoma have a cytotoxic T-cell phenotype. Histopathology. 1997; 31(4): 313-17. 412. Howdle PD, Jalal PK, Holmes GKT, et al. Primary small-bowel malignancy in the UK and its association with celiac disease. QJ Med. 2003; 96: 345-53. 413. Halfdanarson TR, Rubio-Tapia A, Ristow KM, et al. Patients with celiac disease and B-cell lymphoma have better prognosis than those with T-cell lymphoma. Clin Gastroenterol Hepatol. 2010; 8(12): 1041-47. 414. Steiner I, Case 1-2011 small intestinal diffuse large B-cell lymphoma in a 58-year old patient with celiac disease. Acta Medica. 2011; 54(1): 25-28. 415. Neugut AI, Jacobson JS, Suh S, et al. The epidemiology of cancer of the small bowel. Cancer Epidemiology, Biomarkers and Prevention. 1998; 7: 343-51. 416. Swinson CM, Slavin G, Coles EC, et al. Coeliac disease and malignancy. Lancet. 1983; 1: 11-5. 417. Catassi C, Bearzi I, Holmes GK, et al. Association of celiac disease and intestinal lymphomas and other cancers. Gastroenterology. 2005; 128(S4): S79-S86. 418. Green PHR, Fleischauer AT, Bhagat G, et al. Risk of malignancy in patients with celiac disease. Am J Med. 2003; 115: 191-95. 419. Bergman F, Singh S, Michel S, et al. Small bowel adenocarcinomas in celiac disease follow the CIM-MSI pathway. Oncol Res. 2010; 24: 153539. 420. Kingham JG, Ramanaden D et Dawson A. Metachronous smallbowel adenocarcinoma in coeliac disease: gluten-free diet is not protective. Scand J Gastroenterol. 1998; 33: 218-222. 421. Talamonti MS, Goetz LH, Rao S, et al. Primary cancers of the small bowel: analysis of prognostic factors and results of surgical management. Arch Surg. 2002 ; 137 : 564-750. 422. Zouhairi ME, Verner A, Charabaty A, et al. Small bowel adenocarcinoma. Curr Treat Oncol. 2008; 9: 388-399. 423. Bilimoria KY, Bentrem DJ, Wayne JD, et al. Small bowel cancer in the United States: changes in epidemiology, treatment, and survival over the last 20 years. Ann Surg. 2009 ; 249 : 63-71. 424. Faivre J, Trama A, De Angelis R, et al. Incidence, prevalence, and survival of patients with rare epithelial digestive cancers diagnosed in Europe in 1995-2002. Eur J Cancer. 2012; 48: 1417-24. 425. Moon YW, Rha SY, Shin SJ, et al. Adenocarcinoma of small bowel at a single Korean institute: management and prognosticators. J Cancer Res Clin Oncol. 2010; 136: 387-94. 426. Freedman HJ.Neoplasic disorders in 100 patients with adult celiac disease.Can J Gastroenterol. 1996; 10: 163-66. 427. Lebwohl B, Stavsky E, Neugut AI et Green PH. Risk of colorectal adenomas in patients with celiac disease.APT. 2010; 32(8): 1037-43. 428. Gasbarini G et Magiola F. Wheat-related disoders: A broad spectrum of « evolving » diseases. United Eur Gastroenterol J. 2014; 2: 254-262. 429. Dicke W. Coeliac disease: investigation of harmful effects of certain type of cereal on patients with coeliac disease. Doctoral thesis. University of Utretch, Netherlands; 1950. 430. Case S. Gluten-free diet: A comprehensive ressource guide-revised and expanded edition. Regina, SK: Publisher. Case Nutrition Consulting, Inc. 2010. 431. Janatuinen EK, Pikkarainen PH, Kemppainen TA, et al. A comparison of diets with or without oats in adults with celiac disease. NEJM. 1995; 333: 1033-7. 432. Janatuinen EK, Kemppainen TA, Pikkarainen PH, et al. Lack of cellular and humoral immunological responses to oats in adults with celiac disease. Gut. 2000; 46: 327-31. 433. Kanerva PM, Sonntag-Strohm TS, Ryoppy PH, et al. Analysis of barley contamination in oats using R5 and omega-gliadin antibodies. J Cereal Sci. 2006; 44: 347-52. 434. Moulton ALC. The place of oats in the coeliac diet. Arch Dis Child. 1958; 34: 51-55. 435. Stazi AV, Trecca A, et Trinti B. Osteoporosis in celiac disease and in endocrine and reproductive disorders. WJGE. 2008; 14(4): 498-505. 436. Fasano A et Catassi C. Current approaches to diagnosis and treatment of celiac disease: an evoling spectrum. Gastroenterology. 2001; 120: 636-51. 437. Wild D, Robbin GG, Barley VJ, et al. Evidence of high sugar intake, and low fibre and mineral intake, in gluten-free diet. APT. 2010; 32: 53781. 438. Inman-Felton AE. Overview of gluten-sensitive enteropathy (celiac sprue). J Am Diet Assoc. 1999; 99: 352-62. 439. Field JM, Shewry P et Miflin BJ. Solubilization and characterization of wheat gluten protein; correlation between the amount of aggregated protein and baking quality. J Sci Food Agric. 1983; 34: 370-77. 440. Zarkadas M, Dubois S, MacIsaac K et al . Living with coeliac disease and gluten-free diet: a Canadian perspective. Hum Nutr Diet. 2012; 26: 10-23. 441. Federal Register, Vol78, N° 150, 5 Aôut 2013/ Rules and regulations. 442. Cruz JE, Cocchio C, et Hermes-DeSantis E. Gluten content of medications. Am J Health Syst Pharm. 2015; 72(1): 54-60. 443. Kautto E, Ryden PJ, Ivarsson A, et al. What happens to food choices when a gluten-free diet is required? A prospective longitudinal population-based study among Swedish adolescent with coeliac disease and their peers. J Nutr Sci. 2014; 3: e2, pages 1 à 10. 444. O’Shea N, Arendt E et Gallagher E. State of the art in gluten-free diet. J Food Sci. 2014; 79 (6): 1067-76. 445. Akobeng AK et Thomas AG. Systematic review: tolerable amount of gluten for people celiac disease. APT. 2008; 27: 1044-52. 446. Hischenhuber C, Crevel R, Jarry B, et al. Review article: Safe amounts of gluten for patients with wheat allergy or celiac disease. APT. 2006; 23: 559-75. 447. Abdulkarim AS et Murray JA. Celiac disease. Curr Treat Opt Gastroenterol. 2002; 5: 27-38. 448. Barratt SM, Leeds JS et Sanders DS. Quality of live in coeliac disease is determined by perceived degree of difficulty adhering to a gluten-free diet, not the level of diatary adherence ultimately achieved. J Gastrointestin Liver Dis. 2011; 20(3): 241-45. 449. Vilppula A, Kaukinen K, Luostarinen L, et al. Clinical benefit of gluten-free diet in screen-detected older celiac disease patients. BMC Gastroenterology. 2011; 11: 136. 450. Fords S, Howard R, Oyebode J, et al. Psychoscial aspects of celiac disease: a cross-sectional survey of UK population. Br J Health Psychol. 2012; 17: 743-57. 451. Nachman F, DelCampo MP, Gonzalez A, et al. Long-term deterioration of quality of life in adult patients with celiac disease is associated with treatment non compliance. Dig Liv Dis. 2010; 42: 685-91. 452. Hauser W, Janke KH, Klump B, Gregor M, et Hinz A. Anxiety and depression in adult patients with celiac disease on gluten-free diet. WJGE. 2010; 16(22): 2780-7. 453. Garuds S, Leffler D, Dennis M, et al. Interaction between psychiatric and autoimmune disorders in coeliac disease patients in the Northeastern United States. APT. 2009; 29(8): 898-905. 454. Shah S, Akbari M, Vanca R, et al. Patients perception that treatment burden is high in celiac disease compared to other common conditions. Am J Gastroenterol. 2014; 109(9): 1304-11. 455. Fabiani F, Taccari LM, Ratsch IM, et al. Compliance with glutenfree diet in adolescents with screening-detected celiac disease: a 5-year follow-up study. J Pediat. 2000; 136: 841-43. 456. Kurppa K, Lauronen O, Collin P, et al. Factors associated with diatary adherence in celiac disease: A nationwide study. Digestion. 2012; 86: 309-14. 457. Singh J et Whelan K. Limited availability and higher cost of glutenfree foods. J Hum Nutr Diet. 2011; 24: 479-86. 458. Lee AR, Ng DL, Zivin J, et al. Economic burden of gluten-free diet. J Hum Nutr Diet. 2007; 20: 423-30 459. Long KH, Rubio-Tapia A, Wagie AE et al. The economics of glutenfree diet: a population-based study. APT. 2010; 32: 261-9. 460. Butterworth JR, Banfield LM, Iqbal TH, et al. Factors relating to compliance with a gluten-free diet in patients with coeliac disease: comparison of white caucasian and South Asian patients. Clin Nutr. 2004 ; 23 : 1127-34. 461. Hall NJ, Rubin G et Charnock A. Syctematic review: adherence to a gluten-free diet in adult patients with celiac disease. APT. 2009; 30: 31530. 462. Schmitz J. Le regime sans gluten chez l’enfant. J Pediatr Puecul. 2007; 20: 337-44. 463. Tennyson CA, Simpson S, Lebwohl B et al. Interest in medical therapy for celiac disease. Ther Adv Gastroenterol. 2013; 6(5): 358-64. 464. Sollid LM et Khosla C. Future therapeutic options for celiac disease. Nat Clin Pract Gastroenteol Hepatol. 2005; 2: 140-7. 465. Rashtak S et Murray JA. Review article: Celiac disease, new aproaches to therapy. APT.2012; 35(7): 768-81. 466. Castillo NE, Theethira TG et Lefler DA. The present and the future in the diagnosis and management of celiac disease. Gastroenterol Rep. 2014; 1-9. 467. Silano M, Di Benedetto R, Maialetti F, et al. A 10-residue peptide from durum wheat promotes a shift from a Th1-type response toward a Th2-type response in celiac disease. Am J Clin Nutr. 2008; 87: 415-23. 468. Paterson BM, Lammers KM, Arrieta MC, et al. The safety, tolerance, pharmacokinetic and pharmacodynamic effects of single doses of concept study. APT. 2007; 26: 757-66. 469. Griffin M, Casadio R, Bergamini CM, et al Transglutaminases: nature’s biological glue. Biochem J. 2002; 368: 377-96. 470. Mention JJ, BenAhmed M, Begue B, et al. Inter-leukin 15: a key to disrupted intraepithelial lymphocyte homeostasis and lymphomagenesis in celiac disease. Gastroenterology. 2003; 125: 730-45. 471. Keech CL, Dromey J et Tye-Din JA. Immune tolerance induced by peptide immunotherapy in a HLA DQ2-dependent mouse model of gluten immunity. Gastroenterol. 2009; 136: A-57. 472. Demin OO, Smirnov SV, Sokolov VV, et al. Modeling of celiac disease immune response and the therapeutic effect of potentiel drugs. BMC Syst Biol. 2013; 7: 56. 473. Branski D. Insight in celiac disease. Rambam Maimonides Medical Journal.2012 ; 3(1) : e0006 474. Maurino E, Niveloni S, Chernavsky AC, et al. Clinical Characteristics and long-term outcome of patients with refractory sprue diagnosed at a single institution. Acta Gastroenterol Latinoam. 2006 ; 36 : 10-22. 475. Goerres MS, Meijer JW, Wahab PJ, et al. Azathioprine and prednisone combination therapy in refractory coeliac disease. APT. 2003; 18: 487-94. 476. Daum S, Ipczynski R, Heine B, et al. Therapy with Budesonide in patients with refractory sprue. Digestion. 2006; 73: 60-8. 477. Wahab PJ, Crusius JB, Meijer JW, et al. Cyclosporine in the treatment of adults with refractory coeliac disease- an open pilot study. APT. 2000; 14: 767-74. 478. Rawal N, Twaddell W, Fasano A et al. Remission of refractory celiac disease with Infliximab in a pediatric patient. ACG Cases Rep J. 2015; 2(2): 121-123. 479. Verbeek WH, Mulder CJ et Zweegman S. Alemtuzumab for refractory celiac disease. NEJM. 2006; 355: 1396-7. 480. Mulder CJ, Wahab PJ, Meijer JW, et al. A pilot study of recombinant human interleukin-10 in adults with refratory coliac disease. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2001; 13: 1183-8. 481. Lee SK, Lo W, Memeo L, et al. Duodenal histology in patients with celiac disease after treatment with gluten-free diet. Gastrointest Endosc. 2003 ; 57 : 187-91. 482. Ciacci C, Cirillo M, Cavallaro R, et al. Long-term follow-up of celiac adults on gluten-free diet: prevalence and correlates of intestinal damage. Digestion. 2002; 66: 178-85. 483. Tursi A, Brandimarte G, Giorgetti GM, et al. Endoscopic and histolocal findings in the duodenum of adults with celiac disease before and after changing to a gluten-free diet : a 2-year prospective study. Endoscopy. 2006; 38: 702-7. 484. Rubio-Tapia A, Rahim MW, See JA, et al. Mucosal recovery and mortality in adults with celiac disease treatment with gluten-free diet. Am J Gastroenterol. 2010; 105: 1412-20. 485. Lebwohl B, Granath F, Ekbom A, et al. Mucosal healing and mortality in celiac disease. APT. 2013 ; 37(3) : 332-39. 486. Malamut G, Matysiak-Budnik T, Grosdider E et al. Adult coeliac diseases with severe or partial villous atrophy: a comparative study. GECB. 2008; 32: 236-42. 487. Tuire I, Marja-Leena L, Leea S et al. Persistent duodenal intraepithelial lymphocytis despite a long-term strict gluten-free diet in celiac disease. Am J Gastroenterol. 2012; 107: 1563-9. 488. Kaukinen K, Peraaho M, Lindfors K et al. Persistent small bowel mucosal villous atrophy without symptoms in coeliac disease. APT. 2007 ; 25 : 1237-45. 489. Hutchinson JM, West NP, Robins GG et al. Long-term histological follow-up of people with coeliac disease in a UK teaching hospital. QJM. 2010 ; 103 : 511-17 ; 490. Kaukinen K, Sulkanen S, Maki M et Collin P. IgA-class transglutaminase antibodies in evaluating the efficacy of gluten-free diet in celiac disease. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2002; 14(3): 311-15. 491. Martini S, Mengozzi G, Aimo G et al. Comparative evaluation of seroloic tests for celiac disease diagnosis and follow-up. Clin Chemist. 2002; 48(6): 960-63. 492. Burgin-Wolff A, Dahlbom I, Hadziselimovic F et Petersson CJ. Antibodies against human tissue transglutaminase and endomysium in diagnosing and monitoring coeliac disease. Scand J Gastroenterol. 2002; 37(6): 687-91. 493. Vahedi K, Mascart F, Mary JY et al. Reliability of antitransglutaminase antibodies as predictors of gluten-free diet compliance in adult celiac disease. Am J Gastroenterol. 2003; 98: 107987. 494. Nachman F, Sugai E, Vazquez H et al. Serological tests for celiac disease as indicators of long-term compliance with the gluten-free diet. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2011; 23(6): 473-80). 495. Sharkey LM, Corbett G, Curric E et al. Optimising delivery of care in coeliac disease : Comparison of the benefits of repeat biopsy and serological follow-up. APT. 2013; 38: 1278-91. 496. Valittuti F, DeVitis I et Ucchiara S. Follow-up practises in coeliac disease-intestinal biopsy after child-to-adult transition might be useful. APT.2014; 39: 229-237. 497. Lohi S, Maki M, Rissanen H et al. Prognosis of unrecognized coeliac disease as regards mortality: a population-based cohort study. Ann Med. 2009; 41: 508-15. 498. Sultan AA, Crooks CJ, Card T, et al. Causes of death in people with coeliac disease in England compared with the general population : a competing risk analysis. Gut. 2014; 0: 1-7. 499. Rubio-Tapia A, Kyle RA, Kaplan EA, et al. Increased prevalence and mortality in undiagnosed celiac disease. Gastroenterolgy. 2009; 137: 88-93. 500. Peters U, Askling J, Gridley G, et al. Causes of death in patients with celiac disease in a population-based Swedish cohort. Arch Intern Med. 2003; 163: 1566-72. 501. West J, Logan RF, Smith CJ, et al. Malignancy and mortality in people with coeliac disease: population based cohort study. BMJ. 2004; 329: 716-19. 502. Collin P, Reunala T, Pukkala E, et al. Coeliac disease-associated disorders and survival. Gut. 1994; 35: 1215-18. 503. Godfrey JD, Brantner TL, Brinjikji W, et al. Morbidity and mortality among individuals with undiagnosed celiac disease. Gastroenterology. 2010; 139(3): 763-69. 504. Vilppula A, Kaukinen K, Luostarinen L et al. Increasing prevalence and high incidence of celiac disease in elderly people: a population based study. BMC Gastroenterol. 2009; 9: 49. 505. CollinP. Should adults be screened for celiac disease? What are the benefits and harms of screening? Gastroenterology. 2005; 128: S104108. 506. Mearin ML, Ivarsson A, Dickey W. Coeliac disease: is it time for mass screening? Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2005; 19: 441-52. 507. Ford AC, Chey WD, Talley NJ et al. Yield of diagnostic tests for celiac disease in individuals with symptoms suggestive of irritable bowel syndrome: systematic review and meta-analysis. Arch Intern Med. 2009; 169: 651-8. 508. Hin H, Bird G, Fisher P et al. Coeliac disease in primary care: case finding study. BMJ. 1999; 318: 164-7. 509. West J, Logan RF, Card TR et al. Fracture risk in people with celiac disease: a population-based cohort study. Gastroenterology. 2003 ; 125 : 429-36 510. Ludvigsson JF, Michaelsson K, Ekbom A et al. Coeliac disease and the risk of fracture-a general population-based cohort study. APT. 2007; 25: 273-85. 511. Marild K, Stephansson O, Grahnquist L et al. Down syndrome is associated with elevated risk of celiac disease: a nationwide case-control study. J Pediatr. 2013 ; 163 : 237-42. 512. Uenishi RH, Gandolfi L, Almeida L et al. Screening for celiac disease in 1st degree relatives: a 10-year follow-up study. BMC Gastroenterol. 2014; 14: 36. 513. Book I, Zone JJ et Neuhaussen SL. Prevalence of celiac disease among relatives of sib pairs with celiac disease in US families. Am J Gastroenterol. 2003; 98: 377-81. 514. Recommendations de l’ADA (American Diabetes Association). Diabetes Care. 2009; 32(S1): S13-61. 515. Canadian Diabetes Association 2008 Clinical Practice Guidelines for the prevention and Management of diabetes in Canada. Can J Diabetes. 2008; 32(S1): 22-33. 516. Chong CL, Jones KJ et Kingham JC. Celiac disease and autoimmune thyroid disease. 2007 ; 5(3) : 184-92. 517. Marietta EV, camelli MJ, Castro LA et al. Transglutaminase autoantibodies in dermatitis herpetiformis and celiac sprue. J Invest Dermatol. 2008 ; 128 ; 332-35. 518. Collin P, Maki M, Keyrilamen O, et al. Selective IgA deficiency and celiac disease. Scand J Gastroenterol. 1992 ; 27 : 367-71. 519. Cataldo F, Marino V, Ventura A, et al. Prevalence and clinical features of selective immunoglobulin A deficiency in celiac disease: an Italian multicentre study. Gut.1998; 42: 362-5. 520. Cataldo F, Lio D, Marino V et al. IgG1 antiendomysium and IgG antitissue transglutaminase (anti-tTG) antibodies in coeliac disease patients with selective IgA deficiency. Gut. 2000; 47: 366-69. 521. National Institute for health and clinical excellence (NICE). Coeliac disease: recognition and assessment of coeliac disease. 2009. 522. Mooney PD, Hadjivassiliou M, Sanders DS. Coeliac disease. BMJ. 2014; 318: g1561. 523. Farrell RJ, Kelly CP. Celiac sprue. NEJM. 2002; 17(346): 180-8. 524. Pietzak MM. Follow-up of patients with celiac disease: achieving compliance with treatment. Gastroenterology. 2005; 128 (4 Suppl 1): S135-141. 525. Galli G, Esposito G, Lahner F et al. Histological recovery and coeliac disease: a prospective follow-up study of adults patients with coeliac disease. APT. 2014; 40(6): 639-47. 526. Lebwohl B, Murray JA, Rubio-Tapia , et al. Predictors of persistent villous atrophy in celiac disease: A population-based study. APT. 2014; 39: 488-95. 527. Lanzini A, Lanzarotto K, Villanacci V et al. Complete recovery of intestinal mucosa occurs very rarely in adult celiac disease patients despite adherence to gluten-free diet. APT. 2009; 29: 1299-308. 528. Hankey GL et Holmes GK. Coeliac disease in the elderly. Gut. 1994; 35: 65-7. 529. Singh P, Sherghill S, Makharia GK et al. Celiac disease in older adults. Gastrointestin Liver Dis. 2013 ; 22 : 359-60. 530. Zingone F, West J, Auricchio R et al. Incidence and distribution of coeliac disease in Campania (Italy) : 2011-2013. UEGJ. 2015; 3(2): 18289. 531. Bardella MT, Fredalla C, Saladino V et al. Gluten intolerance: Gender, and age related differences in symptoms. Scand J Gastroenterol. 2005; 40: 15-9. 532. Liorente-Alonso MJ, Fernandez-Acenero MJ et Sebastien M. Gluten intolerance: Sexe-age-related features. Can J Gastroenterol. 2006 ; 20(11) : 719-722 533. Ciacci C, Cavallaro R, Iovino R et al. Allergy prevalence in adult celiac disease. J Allergy Clin Immunol. 2004; 113(6): 1199-203. 534. Andersen ABT, Erichsen R, Kappelman MD et al. Parental celiac disease and risk of asthma in offspring : A Danish nationwide cohort study. Clin Epidemiol. 2015 ; 7 : 37-44. 535. Ress K, Teesalu K, Annus T et al. Low prevalence of IgA tissue transglutaminase 1,2 and 3 autoantibodies in children with atopic dermatitis. BMC. 2014; 7: 310. 536. Addolorato G, Mirijello A, D’Angelo C et al. Social phobia in coeliac disease. Scand J Gastroenterol. 2008; 43: 410-15. 537. Hallert C, Astrom J, Sedvall G. Psychological disturbances in adult coeliac diseases. Scand J Gastroenterol. 1982; 17: 21-24. 538. Williams AJ, Asquith P et Stableforth DE. Susceptibility to tuberculosis in patients with coeliac disease. Tuberculose. 1988; 69: 26774. 539. Zasloff M. Fighting Infections with vitamine D. Nat Med 2006; 12: 388-96. 540. Rockett KA, Brookes R, Udalova I et al. 1,25-Dihydroxy vitamin D3 induces nitric oxide synthase and supresses growth of mycobacterium tuberculosis in human macrophage-like cell lisse. Infect Immun 1998 ; 66 : 5314-21. 541. Correa PA, Gomez LM, Cadena J et al. Autoimmunity and tuberculosis. Opposite association with TNF polymorphism. J Rheumatol. 2005 ; 32 : 219-24. 542. Schorey JS, Carroll MC, Brown EJ et al. A macrophage invasion mechanism of pathogenic mycobacteria. Science. 1997; 277: 1091-3. 543. Ludvigsson JF, Sanders DS, Maeurer M, et al. Risk of tuberculosis in a large sample of patients with coeliac disease. A nationwide cohort study. APT. 2011; 33: 689-96. 544. Ludvigsson JF, Wahlstrom J, Grunewald J et al. Coeliac disease and risk of tuberculosis a population based cohort study. Thorax. 2007 ; 62 : 23-8. 545. Norstrom F, Lindholm L, Sandstrom G et al. Delay to celiac disease diagnosis and its implications for health-related quality of life. BMC Gastroenterol. 2011; 11: 118. 546. Fuchs V, Kurppa K, Huhtala H et al. Factors associated with long diagnostic delay in celiac disease. Scand J Gastroenterol. 2014 ; 49(11) : 1304-10. 547. Nejad RM, Pourhosseingholi MA, Mojarad EN et al. Atypical presentation is dominant and typical in celiac disease. 2009 ; 18(3) : 28591. 548. Ehsani-Ardakani MJ, Rostami-Nejad M, Villanacci V et al. Gastrointestinal and non gastrointestinal presentation in patients with celiac disease. Arch Iran Med. 2013 ; 16(2) : 78-82 549. Ludvingsson JF, Pathak KJ, Murphy S et al. Use of computerized algorithme to identify individuals in need of testing for celiac disease. J Am Med Inform Assoc. 2013; 20: e306-e310. 550. Jadallah KA et Khader YS. Celiac disease in patients with presumed irritable bowel syndrome: A case-finding study. WJGE. 2009 ; 15(42) : 5321-5325 551. Sharma H, Verma AK, Das P, Gupta SD, Ahuja V et Makharia GK. Prevalence of celiac disease in Idian patients with irritable bowel syndrome and uninvestigated dyspepsia. J Dis Dig. Mai 2015. Doi : 10.1111/1751-2980.12260 (Epud ahead of print) 552. Van Der Pals M, Myleus A, Norstrom F et al. Body mass index is not a reliable tool in predicting celiac disease in children. BMC Pediatr. 2014; 14: 165. 553. Dickey W et Kearney N. Overweight in celiac disease: clinical characteristics and effect of gluten-free diet. Am J Gastroenterol. 2006; 101: 2356-59. 554. Reilly NR, Aguilar K, Hassid BG et al. Celiac disease in normalweight and overweight children: clinical features and growth outcomes following a gluten-free diet. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2011; 53: 52831. 555. Tucker E, Rostami K, Prabhakaran S et al. Patients with coeliac disease are increasingly overweight or obese on presentation. J Gastrointestin Liver Dis. 2012 ; 21(1) : 11-15. 556. Taleb S, Agli AN. Obésité de l’enfant : rôle des facteurs socioéconomiques, obésité parentale, comportement alimentaire et activité physique, chez les enfants scolarisés dans une ville de l’Est Algérien. Cahier de Nutrition et Diététique. 2009 ; 44(4) : 198-206. 557. Murray JA, Van Dyke C, Plevak MF et al. Trends in the identification and clinical feature of celiac disease in a North American community, 1950-2001. Clin Gastroenterol Hepatol. 2003 ; 1(1) : 19-27 558. Ludvigsson JF et Ludvigsson J. Coeliac disease in the father affect the newborn. Gut. 2001; 49: 169-75. 559. Farthing MJ, Edwards CR, Rees LH et Dawson AM. Male gonadal function in coeliac disease: Sexual dysfunction, infertility, and semen quality. Gut. 1982; 23: 608-14. 560. Kurpa-Kozak U. Pathologic bone alterations in celiac disease: Etiology, epidemiology, and treatment. Nutrition. 2014; 30: 16-24. 561. Maurino E, Capizzano H, Niveloni , et al. Value of endoscopic markers in celiac disease. Dig Dis Sci. 1993; 38: 2028-33. 562. Bardella MT, Minoli G, Radaelli F et al. Reevaluation of duodenal endoscopic markers in the diagnosis of celiac disease. Gastrointestin Endosc. 2000 ; 51 : 714-16. 563. Oxentenko AS, Grisolano SW, Murray JA et al. The sensitivity of endoscopic markers in celiac disease. Am J Gastroenterol. 2002; 97: 9338. 564. Enami MH, Karimi S et Nemati A. Do endoscopic markers still play a role in the diagnosis of celiac disease? Ind J Gastroenterol. 2008; 27(5): 183-85. 565. Robson K, Alizart M, Martin J et al. Coeliac disease are undiagnosed at routine upper endoscopy. Plos ONE. 2014; 9(3): e 90552. 566. Burgell KR, King R, Sievert W et al. Random small bowel biopsy for the detection of celiac disease is not cost-effective in patients with asymptomatic iron deficiency anemia. J Gastroenterol Hepatol. 2008; S23 4A1: 176-99. 567. Barbero EM, McNally SL, Donohue MC et al. Barriers impeding serologic screening for celiac disease in clinically high-prevalence populations. BMC gastroenterology. 2014; 14: 42. 568. Ravelli A, Bolignini S, Gambarotti M et al. Variability of histologic lesions in relation to biopsy site in gluten-sensitive enteropathy. Am J Gastroenterol. 2005; 100: 177-85. 569. Dinler G, Ataley E et Kalayci AG. Celiac disease in 87 children with typical and atypical symptoms in Black Sea region of Tukey. W J Pediatr. 2009; 5(4): 282-86. 570. Pais WP, Duerken DR, Pettigrew NM et al. How many duodenal biopsy specimens are required to make a diagnosis of celiac disease? Am J Gastroenterol. 2008; 67: 1082-87. 571. Riccabona M et Rossipal E. Value of ultrasound in diagnosis of celiac disease. Ultraschall Med. 1996; 17: 31-33 ; 572. Rettenbacher T, Hollerweger A, Macheiner P et al. Adult celiac disease: US signs. Radiology. 1999; 211: 389-94. 573. Valletti PJ, saurin JC, Henry L et al. US and CT diagnosis of intestinal tumors. GECB. 2000; 25: B183-189. 574. Fraquelli M, Sciola V, Villa C et Conte D. The role of ultrasonography in patients with celiac disease. WJGE. 2006; 12(7): 10014. 575. Mooney PD, Evans KE, Singh S, Sanders DS. Treatment failure in coeliac disease: A practical guide to investigation and treatment of non- responsive and refractory coeliac disease. J Gastrointestin. 2012 ; 21(2) : 197-203. 576. Lassura T, Suraci E, Nationale I et al. No evidence of circulating autoantibodies against osteoprotegrin in patients with celiac disease. WJGE. 2012; 18: 1622-7. 577. Muzzo S, Burrows R, Burgueno M et al. Effect of calcium and vitamin D supplementation in bone mineral density of celiac disease children. Nutr Res. 2000; 20: 1241-7. 578. Bianchi ML, Bardella MT. Bone in celiac disease. Osteoporos Int. 2008; 19: 1705-16. 579. Hopper AD, Hadjivassilliou M, Hurlstone DP et al. What is the role of serologic testing in celiac disease? A prospective, biopsy-proven study with economic analysis. Clin Gastroenterol Hepatol. 2008; 6: 314-20. 580. Grefte JM, Bouman JG, Grond J, Jansen W, Kleibenker JH. Slow and incomplete histological and functional recovery in adult gluten sensitive enteropathy. J Clin Pathol. 1988; 41: 886-91. 581. Denham JM et Hill ID. Celiac disease and autoimmunity: Review and controversies. Curr Allergy Asthma Rep. 2013; 13: 347-53. 582. Lerner A et Matthias T. Changes in intestinal tight junction permeability associated with industrial food additive explain the rising incidence of autoimmune disease. Autoimmunity Reviews. 2015; 14: 47989. 583. Ventura A, Magazzu G, Greco L. Duration of exposure to gluten and risk for autoimmunes disorders in celiac disease. Gastroenterology. 1999 ; 117 : 297-303 584. Larizza D, Calcaterra V, De Giacomo C et al. Celiac disease in children with autoimmune thyroid disease. J Pediatr. 2001; 139(5): 738-40. 585. Ventura A, Neri E, Ughi C, Leopardi A, Citta A et Not T. Glutendependent diabetes-related thyroid-related autoantibodies in patients with celiac disease. J Pediatr. 2000; 137(2): 263-5. 586. Metso S, Hyytia-Iimonen H, Kaukinen K et al. Gluten-free diet and autoimmune thyroiditis in patients with celiac disease. A prospective controlled study. Scand J Gastroenterol. 2012; 47(1): 43-8. 587. Mc Manus R et Kelleher D. Celiac disease-The villain unmasked? NEJM. 2003; 348: 2573-74. 588. Armstrong D, Don-Wauchope AC et Verdu EF. Testing for glutenrelated disorders in clinical practice, the role of serology in managing the spectrum of gluten sensitivity. Can J Gastroenterology. 2011 ; 25 : 193-97. 589. Freeman HJ. Celiac disease: A disorder emerging for antiquity, its evolving classification and risk, and potential new treatment paradigms. Gut Liver. 2015; 9(1): 28-37. ANNEXES LISTE DES TABLEAUX Maladie cœliaque de l’adulte rappel théorique) 1- Tableau 1 : Sensibilité et spécificité des anticorps………………..18 2- Tableau 2 : Classifications histologiques de la maladie cœliaque…………………………………………………………………..26 3- Tableau 3 : Nouvelles thérapeutiques et mécanismes d’action…………………………………………………………….. …….54 4- Tableau 4 : Recommandations de NICE pour le dépistage de la maladie cœliaque…………………………………………………60 Résultats 1- Tableau 1 : Moyennes d’âge selon le sexe………………………….83 2- Tableau 2 : Moyennes d’âge selon la forme clinique……………..84 3- Tableau 3 : Sex-ratio selon la forme clinique……………………….85 4- Tableau 4 : Moyennes d’âge selon le sexe et la forme clinique…………………………………………………………………….86 5- Tableau 5 : Situation familiale, conditions socio-économiques, niveau d’instruction et mode de vie, selon la forme clinique……88 6- Tableau 6 : Anomalies gynéco-obstétricales dans la population féminine selon la forme clinique…………………….93 7- Tableau 7 : Age moyen selon le début des symptômes………….97 8-Tableau 8 : Délais diagnostiques selon la forme clinique………….98 9-Tableau 9 : Symptômes spécifiques de chaque forme clinique.102 10- Tableau 10: Symptômes digestifs communs aux deux formes cliniques…………………………………………….…………102 11- Tableau 11 : Symptômes extra-digestifs selon la forme clinique…………………………………………………………….…………...103 12-Tableau12 : Résultats de la DMO selon la forme clinique………...104 13- Tableau 13 : Signes généraux selon la forme clinique……...........105 14- Tableau 14 : Situations de dépistage…………………………..........106 15- Tableau 15 : Moyennes du BMI selon la forme clinique….……….107 16- Tableau 16: BMI selon la catégorie et la forme clinique….………108 17- Tableau 17: BMI<18,5 et formes cliniques………………….……….109 18- Tableau 18 : BMI > ou = 18,5 et < 25 et formes cliniques………………………………………………………………………..110 19- Tableau 19 : BMI > ou = à 25 et < à 30 et formes cliniques………111 20- Tableau 20 Moyennes d’âge selon le BMI…………………………...112 21- Tableau 21 BMI selon le sexe……………………………………….....113 22- Tableau 22 : Signes carentiels selon la forme clinique…………...114 23- Tableau 23 : Caractéristiques de l’anémie et du bilan martial, selon la forme clinique………………………………………………………116 24- Tableau 24 : Autres signes biologiques carentiels et formes cliniques………………………………………………………………117 25- Tableau 25 : Anticorps positifs selon le nombre d’anticorps utilisés…………………………………………………………………………119 26- Tableau 26 : Aspects endoscopiques au niveau du bulbe selon la forme clinique………………………………………………………121 27- Tableau 27: Aspects endoscopiques au niveau du duodénum selon la forme clinique………………………………….122 28- Tableau 28 : Lésions endoscopiques associées…………………124 29- Tableau numéro 29 : Lésions histologiques selon la forme clinique……………………………………………….…….........125 30- Tableau 30 : Corrélation entre aspects endoscopiques et histologiques………………………………………………………...127 31- Tableau 31 : Résultats de l’échographie selon la forme clinique…………………………………………………………..128 32- Tableau 32 Les hypertransaminasémies selon la forme clinique…………………………………………………………………...129 33- Tableau 33 : Les hépatopathies révélatrices de la maladie cœliaque…………………………………………………………………131 34- Tableau 34 : Signes et complications des hépatopathies selon la forme clinique…………………………………………………………..132 35- Tableau 35 : Anomalies du bilan au cours des hépatopathies…133 36- Tableau 36 : Influence des antécédents familiaux de maladie cœliaque, du diabète, des psychoses et du tabagisme dans l’observance au RSG…………………………………………………..137 37- Tableau 37 : Influence du sexe, de l’âge, des conditions socio-économiques, du niveau d’instruction et de la forme clinique sur l’observance au RSG…………………………………..138 38- Tableau 38 : Influence du RSG sur les symptômes cliniques, le syndrome carentiel, la sérologie, la DMO et l’histologie……………………………………………………..….140 -141 39- Tableau 39 : Aspects endoscopiques lors de l’examen de contrôle selon la forme clinique………………………………....142 40- Tableau 40: Aspects histologiques lors de l’examen de contrôle selon la forme clinique……………………………………..143 41- Tableau 41 : Histologie de contrôle chez les sujets observants au RSG selon la forme clinique………………..……..144 42- Tableau 42 : Evolution des hépatopathies sous RSG…………………………………………………………………........147 43- Tableau 43 : Durée du suivi en années selon la forme clinique…………………………………………………………………..148 44- Tableau 44 : Pathologies auto-immunes apparues au cours du suivi…………………………………………………………...149 45- Tableau 45 : Causes des décès……………………………….……..152 46- Tableau 46 : influence du RSG sur la survenue des complications malignes……………………………………….………153 47- Tableau 47 : Influence du RSG sur la survenue des maladies auto-immunes………………………………………………153 48- Tableau 48 : Influence du RSG sur la mortalité…………………..153 Discussion 1- Tableau 49 : Signes digestifs révélant la maladie cœliaque (étude multicentrique)…………... ……………………………………161 2-Tableau 50 : Tableau comparatif du BMI……………………………..164 LISTE DES FIGURES ET IMAGES Maladie cœliaque de l’adulte (rappel théorique) 1-Schéma 1 : The celiac iceberg…………………………………………...06 2-Schéma 2 : Réponse immune adaptative……………………….……..12 3-Image 1 : Aspects endoscopiques de la maladie cœliaque……….20 4-Image 2 : Muqueuse intestinale normale………………………………23 5-Image 3 : Aspects histologiques (Marsh modifié)…………………..28 6-Figure 4 : Algorithme décisionnel devant une atrophie villositaire…………………………………………………….…………............29 Résultats 1-Schéma 1 : Patients inclus et exclus…………………………………...79 2-Schéma 2 : Graphe représentant l’âge de la population de malades cœliaques en années……………………80 3-Schéma 3 : Répartition des malades selon le sexe………………….81 4- Schéma 4 : Répartition des patients selon la forme clinique .......82 5- Schéma 5 : Principaux antécédents personnels médicaux ........89 6- Schéma 6 : Antécédents personnels de pathologies auto-immunes…………………………………………………..91 7- Schéma 7 : Antécédents personnels de chirurgie…………………...95 8- Schéma 8 : Antécédents familiaux de maladies auto-immunes……96 9- Schéma 9 : Evolution des symptômes…………………………..........100 10- Schéma 10 : Taux d’utilisation des anticorps ...............................118 11- Images 1 : Aspects endoscopiques du duodénum………………..123 12- Image 2 : Aspects d’atrophie villositaire au cours de la maladie cœliaque……………………………………………………………………….126 13-Schéma 11: Résultats de la biopsie hépatique……………………..135 Fiche médicale Maladie Cœliaque Première partie Données sociodémographiques Âge sexe d’enfants situation familiale profession niveau d’instruction nombre niveau socio-économique mode de vie (rural, citadin) Antécédents : familiaux de MC ou autres Personnels de maladie auto-immune ou autres Mode de révélation de la maladie : Début des symptômes enfance / adulte (mois, années) Leurs types digestifs Extra digestifs) Ou fortuitement (préciser les circonstances) L’examen clinique complet (BMI) L’exploration biologique : o FNS, fer sérique, ferritinémie, frottis sanguin (si anomalies) o Calcémie o Albuminémie o Bilan lipidique (cholestérol, triglycérides) o TP o Bilan rénal (urée et créatinine sanguines) o Glycémie o Transaminases, gamma GT, phosphatases alcalines Sérologie de la maladie cœliaque : AC AGA AC EM AC TTG Dosage sérique des IgA Endoscopie digestive haute Aspect du duodénum : Plissement diminue Aspect hachures Aspect nodulaire Aspect en mosaïque Aspect normal Autres anomalies Histologie (selon la classification de Marsh) Stade I, Stade II, Stade III: IIIa, IIb, IIIc, stade IV Ostéodensitométrie Normale, ostéopénie, ostéoporose Classification de la maladie cœliaque Clinique Forme typique Forme atypique Forme silencieuse Histologique Atrophie villositaire Iia, IIIb, IIIc Deuxième partie : Traitement Régime sans gluten et Follow up Date d’institution Contrôle clinique à 1 et 3 mois : Observance au RSG : Bonne, écarts, mauvaise Signes digestifs Signes extra digestifs Contrôle entre 6 et 9 mois : Observance au RSG: Bonne, écarts de régime, mauvaise Signes digestifs Signes extradigestifs Biologie Sérologie Contrôle entre 12 et 24 mois : Observance au RSG: Bonne, écarts, mauvaise Signes cliniques Signes digestifs Signes extradigestifs Biologie Sérologie Endoscopie Histologie REGIME SANS GLUTEN Types d’aliments Céréales Autorisés Interdits Riz, maïs, soja, millet, Blé, orge, seigle sous châtaignes, sésame, forme de semoule ou féculent de pomme de farine, couscous, pain, terre viennoiseries, crêpes, pâtisserie, biscuits Produits laitiers Lait frais, pasteurisé, Yaourt, fromage frais UHT, en poudre ou petits suisses aux Yaourt, fromage blanc, céréales. petits suisses nature Yaourt aromatisés*, Fromages (cuits, aux fruits*, fromages à fermenté, à pâte molle, tartiner* à pâte pressée) Viandes et volailles Fraîches, surgelées, Panées ou en croûte congelée Poissons Frais, surgelés, Panés ou farinés congelés, en conserve nature ou à l’huile Œufs Tous Matières grasses Beurre, crème fraîche, Margarines* huile végétale Légumes Frais, conserves nature, surgelés Fruits Desserts Frais, compote nature, Figues sèches dans la sirop, fruits secs nature farine Flan maison, crème Desserts contenant un caramel maison, biscuit mousse au chocolat, pur cacao Amuse-gueules Fruits oléagineux Fruits oléagineux (amandes, noix de grillés cajou) non grillés, olives Types d’aliments Boissons Autorisés Thé, café, tisane Interdits Sodas*, jus de fruits en boîtes* Condiments Divers Sel, épices pures, Sauces* (mayonnaise, cornichons ketchup), moutarde* Levure de boulanger Levure chimique*, sèche ou fraîche médicaments* *la composition de ces produits est à vérifier RESUME But de l’étude : Le but de ce travail est de déterminer la prévalence des formes atypiques au sein de la population de malades cœliaques étudiée. Les différentes caractéristiques cliniques, biologiques et évolutives de cette forme clinique sont analysées et comparées à la forme typique. Nous rapportons également, le taux de maladies auto-immunes associées à la maladie cœliaque, le taux d’observance au régime sans gluten (RSG) et les facteurs qui influencent l’observance au RSG. Matériels et méthodes : Il s’agit d’une étude prospective, menée au niveau du service de Gastroentérologie du CHU Bab El Oued de janvier 2009 à janvier 2014. 317 patients ont été diagnostiqués grâce à la sérologie et l’histologie. Une analyse des caractéristiques clinique, biologique et histologique des formes atypiques de maladie cœliaque a été réalisée en les comparant aux formes typiques. Les maladies auto-immunes associées ont été systématiquement dépistées, afin de déterminer leur prevalence. Sous RSG, le taux d’observance au régime est évalué. Les facteurs qui influencent l’observance au RSG sont recherchés. Résultats : La forme atypique est prédominante (78,8%), il s’agit d’une forme clinique moins sévère que la forme typique tant sur le plan clinique que biologique ou histologique. Cependant, les deux complications malignes observées dans notre étude sont des formes atypiques. Les manifestations extra-digestives sont observées dans les deux formes cliniques sans différence significative. De même, les maladies auto-immunes sont retrouvées dans 18,3% sans différence entre les deux formes de maladie cœliaque. L’observance au RSG est faible, elle est de 47,3% (sans différence entre les deux formes cliniques). Les facteurs qui influencent l’adhérence au RSG sont le niveau socio-économique des patients et leur niveau d’instruction. Conclusion : La forme atypique de maladie cœliaque est la forme la plus fréquemment observée dans la population de malades cœliaques étudiée. Il s’agit d’une forme peu sévère mais qui peut évoluer péjorativement en absence de traitement. Le RSG est difficilement suivi par nos patients, en raison des mauvaises conditions socio-économiques et du niveau d’instruction bas de nos malades. Mots clés : maladie cœliaque, forme atypique, régime sans gluten. ABSTRACT AIM: The aim of this work is to determine the prevalence of atypical forms in the studied population of celiac patients. The various clinical, biological and evolutionary features of this clinical form are analyzed and compared to the typical form. We also report the rate of autoimmune diseases associated with celiac disease, the rate of adherence to the gluten-free diet (GFD) and the factors that influence adherence to GFD. Materials and Methods: This is a prospective study, conducted at the Department of Gastroenterology in the University Hospital of Bab El Oued from January 2009 to January 2014. 317 patients were diagnosed using serology and histology. An analysis of clinical, biological and histological features of atypical forms of celiac disease was performed by comparing them to the typical forms. The autoimmune diseases associated to celiac disease were systematically screened to determine their prevalence. Under GFD, the rate of adherence to the GFD is assessed. Factors that influence the adherence to GFD are sought. Results: The atypical form is predominant (78.8%).This clinical form is less severe than the typical one both at the clinical and biological or histological level. However, the two malignant complications observed in our study are of atypical forms. Extra-digestive symptoms were observed in the two clinical forms of celiac disease with no significant difference. Similarly, auto-immune diseases are found in 18.3% of celiac disease with no difference between the two forms. Adherence to GFD is low; it is of 47.3% (with no difference between the two clinical forms). Factors influencing adherence GFD are the socio-economic level of the patients and their level of education. Conclusion: The atypical form of celiac disease is the most frequently observed form in the studied population of celiac disease. This is a mild form, but which may progress pejoratively if not treated. The GFD is hardly followed by our patients because of poor socio-economic conditions and the low level of education. Keywords: celiac disease, atypical form, gluten free diet.