Téléchargez le bulletin - PDF - Ecophyto Pro en zones non agricoles

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N°4 – 24 mai 2012
SOMMAIRE
Maladies
-
Feu bactérien
Anthracnose du platane
Oïdium
Cloques
Les structures partenaires dans la réalisation des observations nécessaires à l'élaboration
du Bulletin de santé du végétal d'Aquitaine Zones non agricoles sont principalement les
collectivités d'Aquitaine (au nombre de 58 réparties sur les 5 départements), des
particuliers qui font ponctuellement des signalements et le laboratoire départemental
d'analyse (LDA).
Le rédacteur du BSV Zones non agricoles est :
FREDON Aquitaine
Ravageurs
-
Tigre du platane
Processionnaire du pin
Mineuse du marronnier
Méticuleuse
Chrysomèle du romarin
Cochenille
Biocontrôle des cochenilles
pulvinaires
Chrysomèle de la viorne
Pucerons
Acariens
Cicadelle blanche
Hyponomeute
Cynips du châtaignier
Xylophages
Hylobes du pin
Directeur de publication :
Dominique Graciet,
Président de la Chambre
régionale d'agriculture d'Aquitaine
Cité mondiale
6, Parvis des Chartrons
33075 Bordeaux cedex
Tél. 05 56 01 33 33
Fax 05 57 85 40 40
http://www.aquitainagri.org/
Ce qu’il faut retenir :
Maladies :
Feu bactérien : période de forte sensibilité
Anthracnose du platane : nombreux symptômes
Oïdium : symptômes apparents
Cloques : apparition des symptômes sur feuille
Ravageurs :
Tigre du platane : migration des adultes vers les feuilles en cours
Processionnaire du pin : fin des processions, prévoir la pose des pièges à papillons
Mineuse du marronnier : mines visibles
Cochenilles : migration des jeunes larves de cochenille du mûrier
Pucerons : présence remarquée sur de nombreux végétaux
Cicadelle blanche : premières larves observées
Cynips du châtaignier : signaler la présence de galles
Xylébore : Installer les pièges pour diminuer les attaques.
Supervision :
DRAAF / Service Régional de
l'Alimentation Aquitaine
51, rue Kièser
33077 Bordeaux cedex
Tél. 05 56 00 42 03
http://draaf.aquitaine.agriculture.
gouv.fr/
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Les abeilles butinent, protégeons les ! Respectez la réglementation « abeilles »
et lisez attentivement la note nationale BSV 2012 sur les abeilles
1. Dans les situations proches de la floraison des arbres, lors de la pleine floraison, ou lorsque
d'autres plantes sont en fleurs dans les parcelles (semées sous couvert ou adventices), utiliser un
insecticide ou acaricide portant la mention « abeille », autorisé « pendant la floraison mais toujours
en dehors de la présence d’abeilles » et intervenir le soir par température <13°C (et jamais le matin)
lorsque les ouvrières sont dans la ruche ou lorsque les conditions climatiques ne sont pas favorables
à l'activité des abeilles, ceci afin de les préserver ainsi que les autres auxiliaires des cultures
potentiellement exposés.
2. Attention, la mention « abeille » sur un insecticide ou acaricide ne signifie pas que le produit est
inoffensif pour les abeilles. Cette mention « abeille » rappelle que, appliqué dans certaines
conditions, le produit a une toxicité moindre pour les abeilles
mais reste potentiellement dangereux.
3. Il est formellement interdit de mélanger pyréthrinoïdes et triazoles ou imidazoles.
Si elles sont utilisées, ces familles de matières actives doivent être appliquées à 24
heures d’intervalle en appliquant l’insecticide pyréthrinoïde en premier.
4. N’intervenir sur les cultures que si nécessaire et veiller à respecter scrupuleusement les
conditions d’emploi associées à l’usage du produit, qui sont mentionnées sur la brochure technique
(ou l’étiquette) livrée avec l’emballage du produit.
5. Lors de la pollinisation (prestation de service), de nombreuses ruches sont en place dans les
vergers et les cultures légumières. Les traitements fongicides et insecticides qui sont appliqués sur
ces parcelles, mais aussi dans les parcelles voisines ont un effet toxique pour les abeilles. Veiller à
informer le voisinage de la présence de ruches.
Pour en savoir plus : téléchargez la plaquette « Les abeilles butinent » et la note nationale BSV «
Les abeilles, des alliées pour nos cultures : protégeons-les ! » sur les sites Internet partenaires
du réseau d'épidémiosurveillance des cultures ou sur www.itsap.asso.fr (ITSAP : Institut technique
et scientifique de l’apiculture et de la pollinisation)
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Rappel réglementaire
Les organismes nuisibles réglementés sont définis dans l’arrêté national de lutte du 31 juillet 2000 et
dans l’arrêté du 24 mai 2006 qui traduit en droit français la directive 2000/29/CE concernant les
mesures de protection contre l’introduction dans la communauté d’organismes nuisibles aux
végétaux et aux produits végétaux et contre leur propagation à l’intérieur de la communauté. La
notion d’organisme nuisible réglementé englobe la notion d’organismes de quarantaine. Un
organisme de quarantaine est défini par la Convention Internationale pour la Protection des
Végétaux comme suit : « organisme nuisible qui a une importance potentielle pour l’économie de la
zone menacée et qui n’est pas encore présent dans cette zone ou bien qui y est présent mais n’y est
pas largement disséminé et fait l’objet d’une lutte officielle».
Toute personne qui constate sur un végétal la présence d’un organisme nuisible réglementé a
l’obligation d’en faire déclaration auprès de la Direction Régionale de l’Alimentation, de l’Agriculture
et de la Forêt (DRAAF) (Service Régional de l’Alimentation-SRAL).
SRAL Aquitaine :
Tél. : 05 56 00 42 03 Fax. : 05 56 00 42 31
Courriel. : [email protected]
 Plante parasite : la cuscute
Dépourvue de chlorophylle, la cuscute développe des tiges filamenteuses jaunâtres s’enroulant
étroitement sur le végétal hôte dont elle prélève la sève élaborée au moyen de suçoirs. Ses tiges
sont pratiquement dépourvues de feuille et portent des petites fleurs abondantes regroupées en
glomérules qui contiennent des graines de petite taille (1 mm) assurant la dissémination du parasite.
Les graines ont une longévité d’une dizaine d’années. Une dizaine d’espèces de cuscute est
recensée en France. De nombreuses plantes sont sensibles parmi lesquelles : bruyère, caryopteris,
chèvrefeuille arbustif, Coleus, forsythia couvre-sol, genêt d’Espagne, géranium lierre, reine
marguerite, zinnia, et des plantes potagères. Vigilance dans les potagers, certaines cuscutes
transmettent la maladie du Stolbur sur pomme de terre et tomate.
Oter manuellement la cuscute dès que vous la détectez pour éviter son invasion.
Cuscute sur Coleus
Photo : réseau d’observateurs BSV ZNA AQ.
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 Dégâts de gel
En début d’automne lorsque l’arbre a terminé sa croissance, 5 à 10 jours de refroidissement
progressif lui sont nécessaires afin que l’écorce des pousses de l’année durcisse et devienne
protectrice. Si une gelée survient avant cet endurcissement survient, elle peut provoquer des dégâts
sur les pousses imparfaitement lignifiées. Lors d’automnes doux, ce fut le cas en 2011, les
mécanismes de préparation au gel ont été retardés et si un froid brutal survient, les arbres peuvent
subir des lésions sous l’écorce (zone cambiale) au niveau du tronc. Les arbres à écorce fine (hêtre,
platane, …) y sont sensibles, surtout s’il s’agit de jeunes sujets récemment plantés.
De nombreux sujets sont morts cet hiver, particulièrement les palmiers Phoenix sp. non adaptés au
froid (les palmes de P. canariensis en pleine terre gèlent dès que la température est inférieure à –
8°C pendant plus de 24h).
Le choix des essences destinées aux extérieurs devront désormais porter sur des espèces (arbres
et arbustes) résistantes à la fois à des températures persistant pendant plusieurs jours en dessous
de –10°C en hiver, et au delà de 40°C pour les conditions estivales.
Dégât de gel sur platane
Aspect général du feuillage, Gironde, mai 2012
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Maladies

Feu bactérien
La bactérie responsable, Erwinia amylovora est un organisme nuisible réglementé de lutte
obligatoire en tout lieu en tout temps sur tout le territoire national.
Consulter spécifiquement le bulletin de santé du végétal édition arboriculture fruitière n°12 du 15 mai
2012 sur : http://draaf.aquitaine.agriculture.gouv.fr/Arboriculture-fruitiere.
Les conditions météorologiques et les stades phénologiques sont favorables aux contaminations par
la bactérie responsable de cette maladie.
Vigilance en Lot-et-Garonne et en Dordogne dans les environnements de pépinières et de vergers
de fruits à pépins (Malus).
En période de risque élevé, la mesure d’assainissement vis-à-vis du feu bactérien consiste à couper
largement en dessous des parties atteintes, en assurant entre deux coupes la désinfection soignée
des outils de taille (par trempage dans l’alcool à 70°C ou dans l’eau de Javel diluée), suivie d’une
incinération des parties coupées. L’application d’une pâte cicatrisante sur les plaies de taille
demeure indispensable. Les communes sont soumises à des mesures d’interdiction d’allumer des
feux, aussi elles peuvent se rapprocher des centres d’incinération dont elles dépendent pour les
ordures ménagères pour trouver une solution à cette problématique (idem pour l’incinération des
nids de processionnaires du pin en hiver, …).

Anthracnose du platane
Le champignon Apiognomonia errabunda est responsable de l’apparition de petites crevasses sur
les jeunes rameaux puis de noircissement des nervures des jeunes feuilles, flétrissement et
défeuillaison prématurée. Les arbres touchés s’affaiblissent au fil des ans et deviennent sensibles
aux champignons lignivores de faiblesse (pourriture cubique, amadouviers, phellin tâcheté …). Les
jeunes platanes en formation sont les plus exposés.
La conservation se fait sur les feuilles mortes sous forme de périthèces et sur les rameaux sous
forme de chancres.
La contamination : les spores véhiculées par la pluie contaminent les jeunes pousses et les
feuilles. Après pénétration, le champignon se développe sous la cuticule et peut rester à l’état latent
pendant quelques temps. Pendant la période estivale, des acervules formées sur la face inférieure
des feuilles libèrent de nouvelles conidies responsables de contaminations secondaires.

Les conditions favorables au développement de la maladie
- Les conditions climatiques : printemp humide et froid.
- La sensibilité variétale : les variétés Platanus x acerifolia et P. occidentalis sont sensibles
à l'anthracnose. La variété Platanus orientalis est tolérante.
La présence de blessures occasionnées par diverses agressions
favorise la pénétration du champignon.
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Analyse du risque :
Le risque est très élevé en période pluvieuse lorsque la température moyenne se situe entre 10°C
et 12°C ET lorsque l’arbre est dans la phase de sensibilité au champignon, soit à partir du
débourrement jusqu’à l’étalement complet des feuilles. Entre 12°C et 14°C le risque demeure
moyen et au delà de 16°C, le risque devient nul.
Les conditions printanières ont été favorables à la maladie qui est signalée fréquemment (tous les
départements aquitains sont touchés).
Les arbres adultes ne sont pas altérés, outre leur aspect esthétique, de nouvelles feuilles effaceront
bien vite les stigmates de la maladie qui est sans gravité pour les sujets. Les interventions sont à
réserver à des maladies plus graves. Les jeunes plants sont plus fragiles et une stratégie de
protection peut s’avérer nécessaire, à réserver uniquement si l’attaque est très sévère. Donc à
examiner au cas par cas, pas de stratégie globale.
 Oïdium
Des symptômes d’oïdium sont signalés sur l’ensemble du réseau et concernent l’ensemble des
végétaux sensibles. Des attaques moyennes à fortes sont signalées sur les feuilles de bambous,
laurier-tin, spirée et lilas notamment sur le bassin d’Arcachon. Actuellement l’oïdium se présente
sous la forme d’un feutrage blanc grisâtre, soit sur les jeunes pousses soit sur les feuilles.
La période de pousse est une période à risque. Des températures douces et une forte hygrométrie
sont favorables au développement du champignon, notamment à la libération des spores
infectieuses (conidies) à partir du mycélium (conservation hivernale). Le vent et les courants d’air
dispersent les spores. Le mycélium recouvre la surface des tissus du végétal hôte et pénètre les
cellules épidermiques par émission de suçoirs pour y prélever l’eau et les éléments nutritifs. Les
spores germent sur les tissus verts et sains en l’absence d'un film d'eau (pluies ou condensations),
l’eau libre à la surface végétale inhibant la germination des spores. L’évolution des températures
pourrait rendre les conditions favorables à la maladie. L’oïdium a besoin d’une humidité importante
(optimum au delà de 90%). L’apport régulier d’une faible quantité d’eau lui est particulièrement
favorable.
Gamme optimale de températures favorisant l'installation du parasite selon le type d’oïdium :
De 18 à 25 °C pour l’oïdium des rosiers (Sphaerotheca pannosa var.rosae)
De 23 à 26 °C pour l’oïdium des cucurbitacées
De 25 à 28 °C pour l’oïdium de la vigne (Uncinula necator)
 Cloques
Les cloques foliaires sont dues aux champignons du genre Taphrina (Ascomycètes), parasite. Elles
défigurent les arbres et les arbustes sensibles. Elles sont virulentes au printemps par temps frais et
humide, ralenties en cas de sécheresse et d’élévation de température.
Cloque foliaire du chêne
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Cloque foliaire du chêne
Taphrina caerulescens
Cloque foliaire du chêne sur Quercus robur
Feuilles : face inférieure
face supérieure
Cloque du pêcher (feuille face inférieure)
Cloque du pêcher
Taphrina deformans
Au printemps, les feuilles parasitées par le mycélium se déforment, le limbe s’épaissit, prend une
pigmentation rouge ou lie-de-vin ; des boursouflures y apparaissent. Lorsque les cloques
deviennent nombreuses, les feuilles se recroquevillent du côté inférieur et se replient en spirale.
Elles ne grandissent plus, se dessèchent, noircissent et finissent par tomber.
- Si l’attaque est tardive, seules quelques feuilles, disséminées sur l’arbre, sont concernées
et la pigmentation lie-de-vin ne touche qu’une partie du limbe.
- Si l’attaque est précoce, de nombreuses feuilles sont touchées, en particulier toutes les
feuilles issues d’un même bourgeon foliaire et dans les cas extrêmes, il peut y avoir
défoliation complète de l’arbre avant le début du mois de juillet.
La photosynthèse est très fortement perturbée, la plante très fragilisée. Si ce phénomène persiste
durant plusieurs années, celui-ci peut entraîner la mort de l’arbre.
Parfois le champignon se développe à l’extrémité des jeunes rameaux stoppant leur croissance, ils
restent petits, deviennent tortueux et présentent un diamètre inégal suite à l’apparition de bosses et
de crêtes. Exceptionnellement les fleurs et les fruits sont contaminés ; les fleurs avortent et les fruits
présentent des boursouflures et des zones décolorées.
Les spores constituent la forme de conservation hivernale du champignon dans les anfractuosités
des rameaux et sous les écailles des bourgeons foliaires. Lors du débourrement, lorsque la
température dépasse 10°C, les spores amenées par les pluies ou le vent au niveau des bourgeons
germent et donnent naissance au mycélium infectieux qui va parasiter les feuilles au printemps et
infecter les espaces intercellulaires du parenchyme (mode de vie parasite).
Le stade de sensibilité à la cloque du pêcher, se situe à partir du stade « pointe verte » jusqu’au
stade « première feuille étalée » (généralement de fin janvier à début février). Durant cette période,
la protection de l’arbre est possible.
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En cas d’attaque, privilégiez avant tout la prophylaxie : enlever les feuilles atteintes, ne pas les
laisser sur le sol car le champignon s’y conserve, prélever les fruits momifiés et détruire toutes ces
structures végétales atteintes par le feu. Ne pas tailler les branches pour éviter d’ouvrir des plaies,
source possible d’infection pour des parasites capables de se développer sur des arbres fragilisés
par la perte d’une plus ou moins grande partie de leur feuillage. Apporter au début de la végétation
des éléments biogènes sous forme de compost ou d’engrais. Un végétal en bonne santé résiste
mieux aux attaques parasitaires d’une façon générale.
Ravageurs

Tigre du platane
Corythucha ciliata, (Hemiptera Heteroptera Tingidae)
Résistant à – 10°C, les températures hivernales enregistrées cet hiver n’auront eu que peu d’effet
sur la population de tigre en zones (très) urbanisées. Les adultes ont en partie quitté leur abri
hivernal (phase de diapause, sous les plaques de rhytidomes, plaques d’écorce qui se décollent du
tronc). Leur migration est en cours, ils se déplacent le long des rameaux, se diluent
progressivement dans le feuillage, où ils gagnent la face inférieure des feuilles afin de se nourrir en
ponctionnant le contenu des cellules. La phase de migration s’étale dans le temps, retardée d’une
quinzaine de jours par les périodes de froid qui se succèdent en dents de scie depuis 2 mois.
Actuellement, pour les platanes en situation protégée des zones urbaines, les tigres adultes
commencent tout juste à coloniser les feuilles, on en rencontre peu encore aux extrémités des
branches basses.
Le bio-contrôle du tigre du platane existe, utilisant le nématode entomopathogène Steinernema spp.
contre les adultes de tigre durant leur phase hivernale sur tronc et charpentières ; le chrysope,
Chrysoperla lucasina, dont les larves peuvent être lâchées dans le houppier pour se nourrir des
larves de la première génération de tigre. Les stratégies sont à adapter spécifiquement (périodes
clés, conditions météorologiques, …) (communiqué de presse du programme PETAAL mené durant
4 années dans plusieurs villes de France :
http://www.vegepolys.eu/media/cp__petaal__160212_vf__088785600_1202_24022012.pdf
Pour les collectivités adhérentes à Plante et Cité, vous pouvez consulter les résultats de l‘étude
grâce à ce lien : http://www.plante-et-cite.fr/resultats-du-programme-petaal-une-strategie-de-luttebiologique-innovante-contre-le-tigre-du-platane-3969.html
Actuellement pas de gène commoditaire à prévoir.
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Processionnaire du pin
Thaumetopoea pytiocampa (Lepidoptera : Noctuoidea)
Les dernières processions s’observent encore. Les chenilles cherchent un site d’enfouissement
largement ensoleillé, dans un sol meuble, pour entamer la phase de repos complet de
développement, la diapause, qui dure deux mois. Durant cette période, la processionnaire du pin
subit une forte mortalité des nymphes (chrysalides) sous l’action des microorganismes présents
dans le sol (bactéries, virus, champignons) et des insectes (carabes, …) et arthropodes. Les
papillons issus des nymphes viables émergeront depuis le sol à partir de début juin. Les dispositifs
de piégeage des papillons (pièges, capsules de phéromone sexuelle attirant spécifiquement les
papillons mâles) sont à installer à partir de la fin mai. La diffusion de la phéromone sexuelle dans
l’air perturbe les rencontres entre mâles et femelles, limitant ainsi les accouplements et donc
indirectement les pontes. La combinaison des méthodes de contrôle (à chaque saison, vis-à-vis de
chaque stade de la processionnaire du pin, immobile ou baladeur) peut réduire efficacement
l’impact de l’insecte sur les arbres, et contribuer à protéger humains et animaux domestiques (des
chenilles urticantes et des nids). Respectez bien la densité de pièges adéquate à chaque situation.

Mineuse du marronnier
Cameraria ohridella (Lepidoptera Gracillariidae)
Les mines de premier stade sont visibles : de forme circulaire, de couleur brun roux et mesurant
moins de 3 mm, vous pouvez les observer par transparence pour y distinguer la petite chenille. Ceci
permet d’éviter toute confusion avec le black rot du marronnier.

Méticuleuse
Phlogophora meticulosa (Lepidoptera : Noctuoidea)
Cette espèce est commune et infeste fréquemment, parmi les herbacées, les genres
Chrysanthemum, Cineraria, Geranium, Viola (pensées) et diverses fougères. Les infestations
peuvent être graves dans les serres éclairées sur Althea rosea (rose trémière), anémone,
Cheiranthus cheiri (giroflée ravenelle), Dahlia, Fushia, Primula (primevères), Iris et nombreuses
autres plantes d’ornement utilisées en plate-bandes.
Les papillons apparaissent en mai-juin et en automne. Les chenilles, présentes presque toute
l’année, sont abondantes de juillet à septembre. Les jeunes stades découpent des trous dans le
limbe sans toucher aux nervures, tandis que les chenilles âgées (derniers stades larvaires)
dévorent tout le limbe provoquant parfois une importante défoliation. Elles consomment aussi les
organes en croissance, boutons et bouquets floraux.
On peut observer les larves âgées, reconnaissables à leur teinte vert vif et à leur fin liseré blanc sur
toute la longueur de leur partie dorsale. Le risque est faible actuellement, cas isolé dans un parc
de la Gironde.
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Enlever manuellement les œufs et les chenilles présents sur les arbustes / parties basses du
houppier des arbres pour limiter les dégâts.
A gauche : Larve âgée de la Méticuleuse sur feuille de tilleul
Au centre : Adulte de la chrysomèle du romarin sur romarin
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A droite : Mines de 1 stade de la mineuse du marronnier
Photos C. Rapaport 
Chrysomèle du romarin
Chrysolina americana (Coleoptera : Chrysomelidae)
Insecte phytophage retrouvé fréquemment sur les lavandes et les romarins, dont elle croque les
feuilles et les boutons floraux, compromettant la floraison attendue. Les adultes sont actuellement
ponctuellement très nombreux par plante, d’où l’intérêt de la diversification des massifs et
alignements.

Cochenille
La présence de cochenilles sur feuilles de bambou (Phyllostachis aurea) est signalée sur le Bassin
d’Arcachon. La fumagine abondante sur les feuilles témoigne de l’attaque parasitaire de 2011. Les
auxiliaires seront d’une aide efficace.
Présence aussi de la cochenille blanche du mûrier rencontrée sur les arbres d’ornement, les feuillus
et les arbres fruitiers. D’une manière générale, elle est surtout préjudiciable aux fruitiers en cas de
forte infestation, car en affaiblissant l’arbre (ponction de la sève) elle peut compromettre la
production de fruits (impact sur le rendement), problématique ne concernant pas les arbres
d’ornement urbains, en alignement ou dans les parcs (tous fruitiers soient-ils). La gestion chimique
de cette cochenille ne doit être réservée qu’aux fortes attaques. Le jet d’eau projeté sous pression
décape partiellement les encroûtements sur le tronc.
Insecte auxiliaire « de nettoyage », la coccinelle noire à deux points (larves et adultes) régule
spécifiquement cette cochenille en consommant les larves (prédation) ; des lâchers peuvent être
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opérés sur sites dès que vous détectez les jeunes boucliers.
Observation de cochenilles lécanines sur jeunes rameaux d’arbousier (Bordeaux). Les boucliers
protègent les pontes (amas blancs).
A gauche : Cochenilles à bouclier sur jeunes rameaux d’arbousier. Sous les boucliers, les
œufs (amas blancs)
A droite : Coccinelle à 4 points sur rosier. Photos C. Rapaport, 15/05/2012
 Biocontrôle des cochenilles pulvinaires
Parmi les auxiliaires présents naturellement, on peut citer la coccinelle à 4 points Brumus
quadripustulatus et la guêpe parasite Coccophagus lycimnia.
En ville, la situation des arbres (alignements, arbres isolés, petits îlots, …) rend difficile le maintien
des insectes auxiliaires en général, de fait peu ou pas présents en zones très artificialisées. C’est
pourquoi, il est nécessaire de faire des introductions pour renforcer les populations parfois déjà en
place et créer des conditions favorables à leur maintien, pour venir à bout des cochenilles.
Si les populations d’auxiliaires sont dans de bonnes conditions, elles peuvent se maintenir d’une
année à l’autre. Ainsi, après quelques années d’introduction, on peut compter sur une
recolonisation suffisante des arbres par B. quadripustulus ou C. lycimnia.
Coccinelle à 4 points Brumus quadripustulatus
C’est une coccinelle noire avec des taches rouges mesurant entre 4 et 5 mm de longueur. La larve
est grise avec des rangées de poils de couleur foncée. Les oeufs sont de couleur jaune-orange.
La larve et l’adulte dans une moindre mesure, se nourrissent de larves de cochenilles pulvinaires et
de pucerons (larves et adultes).
L’adulte dépose ses oeufs dans les sacs de ponte des cochenilles. A l’éclosion, soit 7 à 10 jours
après la ponte, les larves de la coccinelle vont se nourrir des oeufs des cochenilles.
Elle est très active lorsque la température est supérieure à 15°C. En dessous, son activité est
ralentie et elle se nourrit peu. L’adulte vit un an.
C’est une espèce arboricole souvent rencontrée en forêt, dans les parcs et les jardins. On la
retrouve préférentiellement sur Pinus spp., aussi sur Acer spp., Crataegus spp., Malus spp., Picea
spp., Salix spp., Sambucus spp., Tilia spp. et Quercus spp.
Microhyménoptère parasitoïde Coccophagus lycimnia (superfamille des Chalcidiens, qui
compte de nombreux parasitoïdes)
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Adulte de 1 à 2 mm de long, femelle de couleur noire avec un point jaune blanc sur le thorax, mâle
tout noir.
Adulte de Coccophagus lycimnia
Cette guêpe parasite les cochenilles en pondant ses oeufs à l’intérieur du 2ème stade larvaire
uniquement. Une action de prédation directe a lieu aussi sur les jeunes stades larvaires des
cochenilles (par sucion).
La cochenille parasitée prend alors une couleur foncée (après environ deux semaines) et gonfle.
Lorsque la guêpe a atteint le stade adulte, elle quitte la cochenille en perçant une ouverture
circulaire dans la carapace de la cochenille.
Le cycle complet (de l’œuf à l’adulte) dure environ 3 semaines à 25°C.
Son activité est optimale lorsque la température est supérieure à 18°C.
Cet auxiliaire est actif contre diverses cochenilles : Coccus hesperidum, Saissetia coffeae,
Pulvinaria sp., Parthenolecanium sp.…
Il existe d’autres insectes auxiliaires utilisables dans le cadre d’un contrôle biologique contre les
cochenilles, ils sont prédateurs et ou parasitoïdes et spécifiques. Il est donc crucial de connaître
(par une détermination) l’espèce de cochenille cible afin d’adapter de choix de l’auxiliaire.

Chrysomèle de la viorne
Pyrrhalta viburni (Coleoptera Chrysomelidae)
Les dégâts de cet insecte ont été observés dans le secteur bordelais sur un massif de Viburnum
opulus. Les larves et les adultes sont phytophages, ils se nourrissent des feuilles entre les
nervures, ce qui leur donne l'apparence d'une dentelle. Les sujets subissant une forte attaque
(défoliation quasi complète) pendant 2 ou 3 ans successifs peuvent en mourir. Une attention
particulière est donc de mise pour vos prochaines observations.
Les larves de ce ravageur sont préoccupantes en pépinières et au niveau des aménagements
paysagers des villes. Elles peuvent en effet défolier les viornes en assez peu de temps.
Larve de chrysomèle de la viorne Pyrraltha
viburni sur Viburnum sp.
Photo C. Rapaport, 15/05/2012
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Tableau de vulnérabilité des différentes espèces de Viburnum
Très vulnérables
Viburnum opulus, viorne trilobée d'Europe
et ses cultivars
Modérément
vulnérables
V. lantana, viorne mancienne,
V. rafinesquianum, viorne de Rafinesque
Légèrement
vulnérables
V. dentatum, viorne dentée,
V. trilobum, viorne trilobée d'Amérique
Vulnérables aux
attaques des adultes
en laboratoire
V. acerifolium, viorne à feuilles d'érable,
V. lentago, viorne lentago
Cycle biologique
L’insecte survit à l'hiver à l'état d’œufs insérés dans des trous pratiqués au préalable par la femelle
au niveau des rameaux. Les œufs éclosent en mai et les larves commencent dès lors à se nourrir
des feuilles en croissance. Les larves sont assez petites et de couleur sombre. L'alimentation des
larves se manifeste d'abord par de petites piqûres sur les feuilles. Dès le mois de mai, le limbe de la
plante est passablement rongé.
En juin, les larves s’enfouissent dans le sol où elles se transforment ensuite en nymphe puis en
adulte. Les adultes émergent vers la fin juillet, ils mesurent environ 4,5 à 6,5 mm de longueur et
sont de couleur brune.
Les femelles pondent des oeufs de la fin de l'été jusqu'aux premières gelées. Elles percent des
trous dans les jeunes rameaux et pondent plusieurs oeufs dans chacun. Une même femelle peut
pondre jusqu'à 500 œufs par saison.
Le cycle biologique de la chrysomèle de la viorne dure de 8 à 10 semaines de l'éclosion de l’œuf
jusqu'au stade adulte.
Au début du printemps, examinez de près les rameaux attaqués à la saison précédente à la
recherche des œufs d'hiver. Il est possible d’élaguer et de détruire les branches atteintes avant que
les œufs n'éclosent.
 Pucerons
Hemipera Stenorrhyncha Aphididae
Observation sur la couronne bordelaise (secteur sud est) de différents pucerons signalés sous les
feuilles des essences suivantes : Pyrus caleriana, Prunus kanzan , Quercus ilex, Viburnum nobilis,
Rosa sp.
- Eucalipterus tillea sur tilleul : formes larvaires et adultes ailés. Les individus non ailés se
déplacent peu d’où parfois la formation de colonies denses (un peu plus tard dans la saison, en
liaison avec des températures élevées).
- Macrosiphum rosae sur rosier : nombreuses exuvies blanches (restes des mues) laissées à
chaque étape de mue larvaire.
Les feuilles commencent à briller et poisser du fait des déjections collantes (car sucrées) laissées
par les pucerons. Actuellement, en conditions naturelles en extérieur, des coccinelles (Adalia
septempuntata, Adalia bipunctata) sont visibles sur les arbustes et consomment les pucerons
présents (elles sont aphidiphages), comme les larves de syrphes présentes aussi.
Eviter les excès d’azote et les tailles trop sévères qui favorisent l ‘émission de pousses tendres qui
attirent les pucerons.
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M. rosae sur rosier :
Formes ailées (en haut)
sur bouton floral
 Acariens
Sous les feuilles de végétaux d’ornement divers (ici un groseillier à fleurs) se logent des acariens
dont les morsures de nutrition provoquent des crispations des limbes foliaires. Enlever les feuilles
atteintes pour éviter la dissémination à l’ensemble du végétal.
Dégâts d’acarien sur feuilles de
groseillier à fleurs
Dégâts d’hyponomeute sur une haie de Hyponomeute adulte
Laurus spp. et toile du nid communautaire déserté.
 Cicadelle blanche
Metcalfa pruinosa (Hemiptera : Fulgoromorpha, Flatidae)
Les premières éclosions se sont produites à la faveur des dernières journées chaudes enregistrées
les 10 et 11 mai derniers et les premières larves ont été observées sur des berges de cours d’eau,
dans les départements de Lot-et-Garonne et Pyrénées-Atlantiques.
 Hyponomeute
Genre Yponomeuta (Lepidoptera Yponomeutidae)
Il existe dix espèces d’hyponomeute, parmi lesquelles l’hyponomeute du pommier, l’h. du cerisier,
l’h. du fusain, … ils sont tous défoliateurs et attaquent principalement les arbustes et les arbres
fruitiers. En général, les essences ligneuses touchées ne subissent qu’une baisse de croissance.
Ce genre d’attaque est considéré comme un phénomène spectaculaire mais sans danger pour la
population. Dans les parcs et les jardins, ils sont souvent synonymes de nuisances car ils touchent
à l’esthétique du paysage; leur présence en ces lieux fait souvent l’objet de réclamations et de
demandes de renseignements.
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Les nids communautaires sont désormais vides pour la plupart, sans chenilles ou nymphes. Seuls
peuvent persister les vestiges (grandes toiles blanc-grisâtre) sur les végétaux hôtes parfois très
largement entoilés et largement défoliés par les chenilles de 5ème stade, voraces. Aucun autre dégât
n’est à attendre, les papillons n’en causent pas. Les nouvelles feuilles apparaîtront très rapidement,
compensant les feuilles consommées.
 Cynips du châtaignier
Dryocosmus kuriphilus .( Hymenoptera Apocrita Cynipidae)
Tous les documents de référence sont sur le site de la Draaf Aquitaine :
http://draaf.aquitaine.agriculture.gouv.fr/Cynips-du-chataignier,857
L’ensemble des espèces du genre Castanea a terminé sa phase d’étalement des feuilles,
permettant l’observation des galles éventuelles. La formation d’une galle est une réaction de l’arbre
à la ponte de l’insecte et ce symptôme n’est visible qu’au printemps suivant, lors de la sortie des
feuilles, sous la forme d’un renflement vert au niveau du pétiole et/ou du limbe.
Si les galles sont fermées (= pas de petit trou visible), les larves et nymphes de cynips sont encore
enfermées à l’intérieur, jusqu’à une dizaine d’individus en croissance. En cas de découverte de
galle fermée, veuillez signaler le cas au SRAL de la DRAAF Aquitaine conformément à l’arrêté
ministériel spécifique du 22 novembre 2010 qui précise dans son article 7 :
Toute suspicion ou découverte de symptômes de contamination par Dryocosmus kuriphilus en
dehors d’une zone contaminée telle que définie à l’article 8 doit faire immédiatement l’objet d’une
déclaration soit auprès du maire de la commune qui la transmet au service chargé de la protection
des végétaux dans le département, soit directement auprès de ce service.
(liste des communes concernées par un arrêté préfectoral cynips par département sur le site
mentionné en début de paragraphe)
DRAAF Aquitaine : téléphone : 05 56 00 42 03, Fax : 05 56 00 42 31
courriel : [email protected]
Si les galles présentent des petits trous, on parle alors de galle ouverte, cela signifie que les cynips
adultes se sont envolés dans la nature et vont chercher à pondre dans les châtaigniers, il y a donc
un risque important pour tout châtaignier situé à proximité.
Galles provoquées par le cynips
du châtaignier.
A gauche : galle de l’année (issue
des pontes de l’été 2011)
A droite : galle sèche (issue de
pontes datant de l’été 2010)
Photo Christel Rapaport
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 Xylophages
Constat de la présence de trous sur le tronc de Prunus serulata, attribuables à l’émergence de
scolytes adultes. Disposez des pièges à xylébore disparate, fréquent sur le genre Prunus
(contiennent de l’éthanol). L’intensité d’attaque est moyenne. Un document complet est à consulter
dans le BSV horticulture et pépinières, sud-ouest n°4 du 21 mai 2012 :
http://draaf.aquitaine.agriculture.gouv.fr/Bulletin-de-sante-du-vegetal,2639

Hylobe du pin ou grand charançon du pin
Hylobus abietis
Hylobe adulte
Photo : C. Rapaport
Ravageur des pins et des sapins
Suite aux épisodes venteux récemment
enregistrés (semaine 17, journée du 15 mai, fin de
semaine 20 début semaine 21), des adultes du
grand charançon des pins sont retrouvés au sol
(proximité du lac Magdeleine, Gironde). Pourvu
d’un long rostre (caractéristique des charançons)
portant les antennes à son extrémité, il mesure 8
à 14 mm de long, les élytres présentent des
taches jaunâtres. Il est xylophage secondaire sur
les souches d’arbres et les bois abattus.
Insecte à surveiller.
Au printemps, après un repas de maturation sexuelle (se nourrissant de l’écorce, aux dépens de
l’arbre), les femelles adultes pondent préférentiellement dans les grosses racines des souches des
résineux fraîchement exploités. Le développement embryonnaire, fortement dépendant de la
température, dure environ 1 mois. La jeune larve pénètre sous l’écorce des racines et consomme le
liber au fur et à mesure qu’elle creuse sa galerie. Le développement larvaire s’étale sur une période
variant de 4 à 16 mois selon les conditions climatiques. Au cours du dernier stade, la larve
aménage une loge de nymphose entre le bois et l’écorce ou dans le bois de la racine, qu’elle
tapisse de gros copeaux.
Les dégâts correspondent exclusivement aux morsures effectuées par les adultes aux dépens de
l’écorce des jeunes plants résineux. Les dommages peuvent intervenir toute l’année lorsque la
température avoisine 20°C dans la journée.
(source : Département Santé des Forêts, fiche complète consultable en suivant ce lien :
http://agriculture.gouv.fr/IMG/pdf/HYLOABI_V2011.pdf)
" Action pilotée par le ministère chargé de l'agriculture, avec l’appui financier de l’Office national de l'eau et des milieux aquatiques, par
les crédits issus de la redevance pour pollutions diffuses attribués au financement du plan Ecophyto 2018 ".
Ce bulletin est produit à partir d'observations ponctuelles. S'il donne une tendance de la situation sanitaire régionale, celle-ci ne peut-être
transposée telle quelle à la parcelle. La Chambre régionale d'agriculture d'Aquitaine dégage donc toute responsabilité quant aux décisions prises
par les agriculteurs pour la protection de leurs cultures et les invite à prendre ces décisions sur la base des observations qu'ils auront réalisées
sur leurs parcelles et/ou en s'appuyant sur les préconisations issues de bulletins techniques (la traçabilité des observations est nécessaire).
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