PROBLEM 2 Lentilles et pas seulement de contact

April 14, 2011
PROBLEM 2
Lentilles et pas seulement de contact
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General instructions
Vous avez quatre heures pour faire l’ensemble du travail
Portez toujours votre tablier de labo et vos lunettes de protection dans le
laboratoire.
Manger ou boire dans le laboratoire est interdit.
Les gants doivent être portés lorsqu’on manipule des produits chimiques.
N’utiliser que les crayons, Bic et calculatrice fournis.
Tous les papiers, y compris les feuilles de brouillon et de calculs doivent
être rendus à la fin de l’expérience.
Commencez par la mise en place et la réalisation des différentes
expériences avant de répondre aux questions théoriques.
Toutefois l’ordre dans lequel vous faites les expériences est indiffèrent.
Tous les résultats doivent figurer sur la feuille réponses.
Les calculs doivent être rendus avec la feuille réponses.
Seul le fascicule de réponses et les feuilles attachés seront notés.
Lorsque vous avez fini, laissez TOUT sur la table. Vous ne pouvez rien
emporter hors du laboratoire.
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.
Introduction
Une des inventions Tchèque sont les lentilles souples de contact. Elles furent inventées par le
chimiste Tchèque Otto Wichterle et son assistant Drahoslav Lím,qui a aussi inventé le
premier hydrogel utilisé pour leur production. Ces lentilles de correction placées sur la
cornée de l’œil sont maintenant répandues dans le monde entier
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A. Propriétés des différentes
lentilles.
Généralement,une lentille est un dispositif optique qui
influence la propagation de la lumière. Elle peut être
faite de différentes matières. Les lentilles les plus
courantes sont en verre , mais l’eau peut aussi faire
office de lentille (Nicolas Cage utilise une bouteille
d’eau en guise de loupe dans le film “National treasure”, voir la photo), ou l’hydrogel
comme mentionné plus haut.
A la base, il y a 2 sortes de lentilles selon la manière qu’elles influencent le rayon
lumineux : les lentilles convergentes et les lentilles divergentes. Voir Fig1
Converging lens
Diverging lens
Focus
Focal length f
Focus
Focal length f
Figure 1 – Lenses
Attention, ne pas regarder directement dans le faisceau laser
TASK A.I: GROSSE LENTILLE D’EAU DE RAYON VARIABLE
Matériel : Erlenmeyer, 4 feuilles en carton, ciseaux, règle avec échelle, pointeur laser,
compas.
A.I.1.
Trace sur la feuille de réponse l’image que tu peux voir sur le carton quand la lumière
traverse l’erlenmeyer rempli d’eau jusqu’au bord. Place le carton juste derrière l’erlen.
Prépare un ensemble de 4 cartons avec un cercle au milieu de façon à pouvoir les placer sur
l’erlen, voir Fig 2.
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R
o
Figure 2 – Préparation des cartons
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Trace des droites qui divisent les cartons en 2 dans les 2 directions. Utilise le compas pour tracer un
cercle de rayon R à partir de l’intersection des 2 axes voir Fig 2.
Choisis 4 rayons différents pour pouvoir mesurer 4 lentilles différentes.
Il est recommandé de prendre des rayons entre 2,5 et 5,5 cm.
Découpe les cercles au milieu des cartons avec des ciseaux. L’axe le plus grand du carton sera l’axe
optique (axe o dans la Fig 2).Sur chaque carton, trace aussi 2 demi-droites parallèles à l’axe optique à
partir de l’ouverture. Les demi-droites seront placées de chaque côté de l’axe pas plus que 50% du
rayon (voir Fig 3).
Place le carton sur l’erlen et place le pointeur laser de telle façon qu’il prenne la direction de la demidroite tracée. Courbe le carton pour être capable de voir un rayon lumineux derrière l’erlen. Trouve le
point d’intersection du rayon lumineux avec l’axe optique (voir fig 3). Le rayon lumineux est aussi
diffracté dans le plan vertical en traversant l’erlen(voir Fig 4). C’est la raison pour laquelle tu dois
courber le carton pour trouver la position correcte du foyer. Trace les intersections des rayons avec
l’axe optique pour les 2 rayons parallèles préparés sur chaque carton et trace aussi la trajectoire des
rayons.AJOUTE TES CARTONS A LA FEUILLE DE REPONSE
Focus
f
Figure 3 – mesure de la distance focale
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Figure 4 – la diffraction dans le plan vertical
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A.I.1 Mesure les distances focales f1 – f4 pour les rayons R1 - R4 et recopie-les sur la
feuille de réponse..
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Trace le graphe de f en fonction de R. sur le papier graphique.
Appelle ton graphe “GRAPH A1” et n’oublie pas de l’ajouter à ta feuille de réponse.
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A.I.2 quelle est la forme de votre graph? Choisissez une des possibilités suivantes.
a) f = keqR, q>0
b) f = ke qR, q <0
c) f = kR + q, k>0
d) f = kR + q, k<0
e) f = kR2 + qR
A.I.3 à partir du graph estimez la valeur des paramètres k et q et indiquez les sur
votre feuille réponses avec les unités correctes
Supposons que les lentilles soient faites d’un matériel homogène appelé, »waterglass » la
relation suivante serait correcte :
k=
n
,
2(n − 1)
Où n est l’indice de réfraction du “waterglass”.
A.I.4 déterminez l’indice de réfraction de waterglass. Écrivez votre réponse sur la
feuille réponses.
TASK A.II: BANC OPTIQUE
Appareil et matériel : banc optique, lentille, pointeur laser avec deux LED écran et
règle et tournevis
Faites le montage du banc optique, disposez la lentille environ à 30 cm de la source de
lumière. Allumer les LED et faites la mise point sur l’écran. Notez a la distance de la source
à la lentille et à la lentille a´ la distance de la lentille à l’écran. L’équation suivante est
réalisée :
1
1 1
=
+
f
a′ a
où f est la distance focale
Mis en forme : Anglais (États-Unis)
Figure 5 – optical bench
Une autre valeur utile pour la description des propriétés de la lentille est le grossissement
(vertical)
Z=
y′
y
Où y est la distance entre deux points de la source dans un plan perpendiculaire à l’axe
optique et y’ la distance des deux points sur l’écran.
f
y
y´
a
a´
Figure 6 – pour déduire la formule du grossissement vertical
A.II.1 utilisez la Fig. 6 pour déduire la formule du grossissement en fonction de a
(distance de la source de lumière à la lentille) et a’ (distance de l’image à la
lentille)
A.II.2 mesurez la distance de la source à la lentille et la distance de l’image à la lentille..
Répétez cette opération 5 fois pour différentes valeur de la distance entre la
source et la lentille. Écrivez vos mesures dans le tableau de la feuille réponses.
Calculez le grossissement pour chaque mesure. écrivez vos résultats dans le
tableau A.II.2 de la feuille réponses
Tracez un graph du grossissement en fonction de la distance de l’image à la lentille (a’)
sur le papier graphique. Notez ce graph “GRAPH A2” et n’oubliez pas de le joindre à
la Feuille réponses.
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A.II.3 écris la formule du grossissement en fonction de la distance focale et de la
distance image - lentille
A.II.4 utilisez le Graph A2 pour déterminer la distance focale de la lentille. Indiquez
sur le graphe la manière dont vous avez obtenu la distance focale et écrivez vos
résultats sur la Feuille réponses.
TASK A.III: LENTILLE DE CONTACT
Appareil et matériel: pointeur laser avec deux LED, écran, et lentille de contact
Placez précautionneusement la lentille de contact sur la source lumineuse. Si nécessaire
réalignez le banc optique suivant les instructions ; utilisée l’écran et glissez le lentement
d’une distance de 10cm de la source jusqu’à 3 m de la source. Etudiez l’image la trace de la
source sur l’écran
A.III.1 dans la Feuille réponses entourez les mots corrects dans chaque ligne
A.
la trace de vient plus grande
petite lorsque la distance augmente.
B.
la lentille de contact est
convergente divergente.
C.
est il possible de voir sur l’écran l’image d’un objet quelconque obtenue avec la
lentille de contact? OUI
NON.
NE PAS OUBLIER DE JOINDRE VOS GRAPHS ET CARTONS ALA FEUILLE
RÉPONSES!
B. DETERMINATION du formaldéhyde résiduel
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Formaldehyde is a colourless gas with a characteristic pungent odour. It is an important
precursor to many other chemical compounds, especially for polymers. In the history of
contact lens preparation, formaldehyde was used as a part of polymerization mixture. The
reason, why formaldehyde based polymers were banned was residual formaldehyde content,
which irritated the lens and lead to the contact allergy responses. The only complication
concerning formaldehyde today is a fact that permeable contact lenses may absorb formalin
and cause irritation to the eyes. Those working with concentrated formalin (aqueous
formaldehyde solutions) should remove contact lens to prevent eye irritation. I our case we
will work with highly diluted formalin solution and measure concentrations relevant to the
residual formaldehyde content in industrial polymers, including resins originally tested as a
contact lens material.
Dosage iodométrique du formaldéhyde
L’iodométrie est une des méthodes de titrage rédox les plus importantes. L’iode réagit
directement, rapidement et quantitativement avec beaucoup de substances organiques
et inorganiques.
Thanks to its relatively low, pH independent redox potential, and reversibility of the
iodine/iodide reaction, iodometry can be used both to determine amount of reducing agents
(by direct titration with iodine) and of oxidizing agents (by titration of iodine with
thiosulfate).
Dans tous les cas, on détecte le point d’équivalence par la couleur bleue prise par
l’empois d’amidon utilisé comme indicateur (formation d’un complexe).
La réaction réversible iodure/ iode est la suivante :
Mis en forme : Anglais (États-Unis)
Mis en forme : Français (Belgique)
:
2 I- ↔ I2 + 2 eOù l’iode est un oxydant et l’iodure un réducteur
Une deuxième réaction importante en iodométrie est la réduction de l’iode en iodure par le.
thiosulfate:
:
2 S2O32- + I2 → S4O62- + 2 IIn the case of both reactions it is better to avoid low pH. Thiosulfate is unstable in the
presence of acids, and iodides in low pH can be oxidized by air oxygen to iodine. Both
processes can be source of titration errors.
Iodine is very weakly soluble in the water, and can be easily lost from the solution due to its
volatility. However, in the presence of excess iodides iodine creates I3- ions. This lowers free
iodine concentration and such solutions are stable enough to be used in lab practice. Still, we
should remember that their shelf life is relatively short (they should be kept tightly closed in
dark brown bottles, and standardized every few weeks). Iodine solutions are prepared
dissolving elemental iodine directly in the iodides solution. Elemental iodine can be prepared
very pure through sublimation, but because of its high volatility it is difficult to weight. Thus
use of iodine as a standard substance, although possible, is neither easy nor recommended.
La solution d’iode peut facilement être étalonnée avec de l’oxyde d’arsenic (III) (As2O3) ou
une solution de thiosulfate de sodium.
Mis en forme : Français (Belgique)
Formaldehyde, which is basic part of phenol-formaldehyde resins, is possible to determinate
by iodometric titration method. In this method the sample is added to an excess of
hypoiodite, formed from standard iodine solution making the alkaline. solution Part of the
hypoiodite (IO-) is reduced by the formaldehyde in the sample, and the unreduced part is
converted to iodine by acidifying the solution (iodine is then titrated with sodium thiosulfate
using starch indicator) according to the following reactions:
Mis en forme : Anglais (États-Unis)
:
I2 + 2 OH– → IO– + I– + H2O
HCHO + IO– + OH– → HCOO– + I– + H2O
IO–+ I– + 2 H+ → I2 + H2O
Mis en forme : Français (Belgique)
Le bilan de ces réactions est le suivant :
I2 + HCHO + 3 OH– → HCOO– + 2 I– + 2 H2O
Matériel et réactifs :
• Echantillon: Formaldéhyde (dans un ballon jaugé de 100 mL)
• Matériel:
2× Erlenmeyer (250 mL)
2× récipients de titrage (berlin ou erlenmeyer) (250 mL)
1× Pipette 10 mL
2× Burette 25 mL
1× Entonnoir
2×berlins 150 mL
1× cylindre gradué 10 mL
1× pissette d’eau distillée
• Réactifs :
solution 0.1 M thiosulfate de sodium (Na2S2O3) la concentration exacte
sera donnée par l’assistant (écrite au tableau)
Solution d’iode environ 0.05 M
Indicateur : empois d’amidon
Acide chlorhydrique (HCl) – diluée 1:4 avec de l’eau distillée
Solution d’hydroxyde de sodium NaOH 2 M
•
•
•
•
•
•
•
•
TEST B.I: ETALONAGE de la solution d’IODE environ 0.05 M
A l’aide d’une burette, place 10.0 mL de solution d’iode dans le récipient de titrage de
250 mL
Ajoute approximativement 50 mL d’eau distillée et 5 mL de HCl (1:4) à l’aide du
cylindre gradué.
Titre immédiatement avec la solution standard de thiosulfate de sodium (Na2S2O3)
jusqu’à obtenir une coloration jaune claire.
A l’aide d’un cylindre gradué, ajoute 5mL d’empois d’amidon (indicateur) et continue le
titrage jusqu’à disparition de la coloration bleue..
B.I.1 Recopie sur la feuille de réponse le volume de thiosulfate de sodium utilisé
(départ, fin et différence)
B.I.2 Calcule la concentration de la solution d’iode I2 (mol/L) ECRIS TES
CALCULS ET TES RESULTATS sur la feuille de réponse.
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TEST B.II: ANALYSE DE L’ECHANTILLON DE FORMADEHYDE
•
•
•
•
•
•
Place l’échantillon de formaldéhyde dans un jaugé de 100mL et ajoute de l’eau jusqu’au
trait de jauge.
Pipete 10 mL de l’échantillon et place –les dans un erlen de 250 mL.
Ajoute 15 mL de NaOH 2 M et exactement 25,0 mL de solution d’iode 0.05 M à l’aide
de la burette.
Bouche le récipient, agite en faisant tourner la solution et attends environ 5 min.
Après ce temps, ajoute 20 mL de HCl (1:4) à l’aide d’un cylindre gradué (la solution doit
devenir brune en raison de la formation d’iode ; autrement il faut ajouter à nouveau de
l’acide.
Titre immédiatement avec la solution standard de thiosulfate de sodium (Na2S2O3)
jusqu’à obtenir une coloration jaune claire.
•
•
•
A l’aide d’un cylindre gradué, ajoute 5mL d’empois d’amidon (indicateur) et continue
le titrage jusqu’à disparition de la coloration bleue...
• B.II.1 Recopie sur la feuille de réponse le volume de thiosulfate de sodium utilisé.
Refais au moins 2 ou 3 titrages si nécessaire
B.II.2 Calcule la masse de formaldéhyde dans l’échantillon de départ. Le résultat DOIT
être exprimé en milligrammes (mg) de formaldéhyde dans l’échantillon de départ
M(HCHO) = 30,03 g·mol-1
Mis en forme : Français (Belgique)
Mis en forme : Français (Belgique)
TEST B.III: QUESTIONS SUPPLEMENTAIRES
B.III.1 Ecris les équations qui décrivent la réaction de l’iode avec les ions suivants:
Mis en forme : Français (Belgique)
a) SbO33- (antimonite)
b) SO32- (sulfite)
c) S2O32- (thiosulfate) en lieu neutre
Mis en forme : Français (Belgique)
d) S2O32- (thiosulfate) en milieu basique
Mis en forme : Français (Belgique)
B.III.2 Quels composés (au moins deux pour chaque exemple) sont utilisés pour
l’étalonnage des solutions suivantes ?
a) Thiosulfate (S2O32-)
b) Iode (I2)
B.III.3 Combien de grammes de Na2S2O3.5 H2O sont nécessaires à la préparation de
500 mL de solution 0.05 M (mol·l-1)?
Ar (Na) = 23.0
Mis en forme : Néerlandais
Ar (O) =
16.0
Ar (H) =
1.0
Ar (S) =
32.1
Mis en forme : Français (Belgique)
C. l’œil et la vision
TASK C.I: VISION
Les yeux sont des organes qui détectent la lumière et la convertissent en impulsions
électrochimiques dans les neurones. Chez les organismes supérieurs l’œil est un système
optique complexe qui collecte la lumière de l’environnement; régule son intensité; qui réalise
la mise au point grâce à un système de lentilles ajustables afin de former une image; convertit
l’image e une série de signaux électriques ; et transmet ces signaux au cerveau. Les premiers
proto-yeux sont apparus parmi des animaux il y a 600 millions d’années, lors de l’explosion
évolutive au cambrien. Dans la plupart des vertébrés et quelques mollusques, les yeux
travaillent en permettant l’entrée de la lumière et la projettent sur un Feuillet de cellules
photosensibles, la rétine, au fond de l’œil.
Evolution de l’œil
C.I.1. entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou
fausses.
A
B
C
(vrai) (faux) alors que la photoréception et les pigments photorécepteurs sont
phylogénétiquement très vieux, les yeux se sont développé de manière indépendante
de nombreuses fois au cours dans le règne animal
(vrai) (faux) la Photoréception, les pigments photorécepteurs de même que tous les
yeux des animaux sont phylogénétiquement très vieux et ont une origine commune.
(vrai) (faux) alors que les yeux sont phylogénétiquement très vieux et ont une
origine évolutive commune des groupes animaux différents ont opté pour des
pigments photorécepteurs très différents
Adaptation de la vision aux besoins vitaux
C.I.2. entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou
fausses
A
(vrai) (faux) les animaux vivant dans l’obscurité développent des pigments sensibles
à l’ultraviolet
B
(vrai) (faux) les oiseaux de proie possèdent une plus grande concentration d’éléments
nerveux tels que cônes et bâtonnets et ont de ce fait une meilleure acuité visuelle que
l’homme
Perception des couleurs
C.I.3. entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou
fausses.
A
B
(vrai) (faux) chez les mammifères la vision est réduite à une faible
spectre électromagnétique ; ceci varie d’animal à animal mais
principalement entre 400 and 700 nm.
(vrai) (faux) la vision chez les organismes une part importante
électromagnétique, varie d’un animal à l’autre, et chez la plupart des
s’étend de l’infrarouge à l’ultraviolet
(100 – 1500 nm)
gamme du
est située
du spectre
invertébrés
Mise au point
C.I.4. entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou
fausses
A
(vrai) (faux) la courbure de la lentille (cristallin) peut être ajustée afin de mettre au
point les objets lointains
B
(vrai) (faux) le cristallin a une forme fixe, la mise au point s’opère par le mouvement
en arrière et en avant de la lentille dans l’œil.
Vision des Couleurs
I.5. entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou fausses
A
B
C
(vrai) (faux) les mammifères à l’exception de primates ne voient pas les couleurs.
(vrai) (faux) la plupart des mammifères ont une vision dichromatique, ils distinguent
le bleu du jaune-vert mais pas le rouge du vert; ils sont daltoniens pour rouge vert.
(vrai) (faux) des vertébrés non mammaliens sont daltoniens
TASK C.II: la CORNEE
La cornée est la partie avant transparente de l’œil qui couvre l’iris, la pupille et la chambre
antérieure. Ensemble avec le cristallin la cornée réfracte la lumière, la cornée représentant les
deux tiers du pouvoir optique de l'œil. Chez l’homme, le pouvoir réfracteur de la cornée est
d’environ 43 dioptries. Si la cornée contribue pour la majeure partie à la mise au point de
l’œil, sa “focalisation” est fixe. Les fonctions principales de la cornée sont sa résistance
mécanique et sa transparence. Ceci est lié à sa morphologie, qui est constituée de plus
couches distinctes.
Votre travail va consister à colorer la cornée, fixée brièvement dans du formol saturé en
saccharose ; congelée et découpée au microtome à congélation en fines coupes de 10
micromètres.
• Porter des gants pour toutes manipulations de coloration : les colorants colorent
aussi durablement votre peau !!!
• Mettez les coupes de cornée dans la « staining chamber »bac à coloration
• Avec une pipette Pasteur couvrez la coupe avec environ 1ml de solution
d’hématoxyline, laissez incuber durant 5 min
• Rincer bien les pipettes pasteur à l’eau distillée après chaque utilisation
• Laver l’excès de colorant à l’eau distillée Utilisez une autre pipette Pasteur pipette
pour couvrir la coupe avec 1 ml d’ éosine et incubez 5 min
• Laver l’excès de colorant avec l’eau distillée. Enlevez l’excès d’eau de la lame en
essuyant avec le papier filtre (sans touchez la coupe)
• Déposez une goutte d’eau (10 microlitres) sur la coupe et couvrez avec une lamelle
couvre objet
• Observez le spécimen au microscope au grossissement approprié
• Lavez les pipettes Pasteur convenablement avec de l’eau distillée
C.II.1. faites un schéma au crayon noir de la coupe histologique sur la Feuille réponses
en utilisant les caractéristiques suivantes identifiez les différentes couches
cellulaires (indiquant les coutours/limites). Mettez-les en évidence dans le
dessin en utilisant des crayons de couleur différente. Indiquer la direction de la
pénétration de la lumière dans l’œil à l’aide d’une flèche.
A. épithélium cornéen (colorez la surface en ROUGE): fine couche de tissu épithélial
pluristratifié a (épithélium pavimenteux stratifié non kératinisé). Elle est composée de
6 couches de cellules dont la plus externe est constamment éliminée.
B. stroma cornéen (colorez la surface en BLEU): une couche épaisse transparente, faite
de fibres de collagène disposées régulièrement aves des kératocytes épars interconnectés.
C. endothélium cornéen colorez la surface en VERT): un épithélium pavimenteux simple
ou faiblement cubique de cellules responsables de la distribution et de la distribution du
transport de fluides et des solutés entre les compartiments aqueux et le stroma cornéen
C.II.2. une des couches décrites en C.II.1. ne régénère pas. Les cellules restantes
s’étirent afin de compenser la perte des cellules mortes. C’est pourquoi la densité
générale de la couche en question se réduit avec l’âge. Laquelle des 3 couches ne
régénère pas ? Entourez la bonne réponse dans la Feuille réponses.
A
B
C
C.II.3. Sur base de vos observations de la coupe et de votre expérience sélectionnez la
/les bonnes réponses. Quels types de tissus peut-on trouver dans la cornée ?
entourez dans la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou
fausses
A
B
C
D
(vrai) (faux) tissu épithélial
(vrai) (faux) tissu conjonctif
(vrai) (faux) cellules musculaires
(vrai) (faux) neurones sensoriels
C.II.4. Sur base de vos observations de la coupe et de votre expérience entourez dans
la Feuille réponses si les propositions suivantes sont vraies ou fausses
A
(vrai) (faux) la cornée n’est pas irriguée par le sang ; elle obtient son oxygène
directement par l’air. L’oxygène se dissout d’abord dans les larmes et diffuse ensuite
à travers la cornée pour la maintenir en vie
B
(vrai) (faux) la cornée est fortement vascularisée ; elle obtient son oxygène
directement via les capillaires. L’Athéroscléroses conduit à la perte de la transparence
de la cornée appelée glaucome, qui peut être traité par une transplantation cornéenne.
TASK C.III: EPITHELIUM PAVIMENTEUX STATIFIE NON KERATINISE
Dans votre corps il existe d’autres tissus semblables à l’épithélium pavimenteux stratifié non
kératinisé de la cornée. L’un d’entre eux est l’épithélium buccal dans votre bouche
• À l’aide d’un cure-dents grattez légèrement là la peau intérieure de votre bouche.
• Suspendez le matériel cellulaire dans des tubes eppendorf avec 200 microlitres de
NaCl 140 mM
• Pipetez 30 microlitres de la suspension cellulaire et déposez là au bout d’un lame de
verre
• Préparez 4 lames et réalisez 4 frottis en vous aidant de lames ou de lamelles couvre
objets
• laissez sécher les frottis
• mettez les lames avec les frottis dans la »staining chamber »(bac à coloration)
• à l’aide d’une pipette Pasteur recouvrez les lames avec environ 2ml d’éthanol et
incubez durant 5 min
• lavez l’excès de la solution de fixation à l’eau distillée
• à l’aide d’une pipette Pasteur couvrez les lames avec environ 2ml d’un colorant
(utilisez 4 colorants différents pour les 4 lames (A – Acridine orange, B Hématoxyline, C – Eosine et D - Toluidine bleu) et incubez durant 10 min.
• lavez l’excès de colorant à l’eau distillée mettez une goutte d’eau (10 microlitres) sur
chaque lame et couvrez à l’aide d’une lame couvre objet.
• Rincer bien les pipettes pasteur à l’eau distillée après chaque utilisation
• observez au microscope au grossissement approprié
C.III.1 quels colorants (A-D) colore les structures basophiles (se lie à des molécules
acides, dans la cellule ils colorent principalement les noyaux)? Entourez la /les
réponses correctes dans la Feuille réponses
A (oui) (non)
B (oui) (non)
C (oui) (non)
D (oui) (non)
C.III.2 quels colorants (A-D) colore les structures acidophiles (colore les structures
basiques, dans la cellule principalement le cytosol)?
Entourez la /les réponses correctes dans la Feuille réponses
A (oui) (non)
B (oui) (non)
C (oui) (non)
D (oui) (non)
C.III.3. comment l’éthanol 96% fixe t’il les tissus ?
Entourez la /les réponses correctes dans la Feuille réponses
A
B
(vrai) (faux) en modifiant de manière covalente les molécules de l’échantillon
(vrai) (faux) en déshydratant et par conséquent dénaturant –de cette manière dans un
environnement non aqueux les composants cellulaires, principalement les protéines
changent dramatiquement de conformation
C.III.4. identifiez et dessinez dans la Feuille réponses une cellule couverte de bactéries,
indiquer quel(s) colorant (A, B, C ou D) a/ont été utilisé/s pour le spécimen où
les bactéries étaient bien visibles. Indiquer l’endroit
Des bactéries avec une flèche
C.III.5 la taille des cellules de la bouche est d’environ 100
système métrique appropriées.
– ajouter les unités du
IV. LENTILLE
Le cristallin dans l’œil est une structure transparente biconvexe ou sphérique qui avec la
cornée aide à la réfraction de la lumière qui se focalise sur la rétine. L’ajustement du
cristallin est appelé accommodation. Le cristallin est plus « plat » sur la face antérieure.
Chez l’homme, le pouvoir réfracteur du cristallin dans un environnement naturel est de 18
dioptres, environ un tiers du pouvoir total de l’œil. La forme et la taille peuvent changer en
fonction de l’accommodation et parce que le cristallin continue de grandir au cours de la vie
de la personne. Dans une boite de Pétri vous allez trouver un gel d’électrophorèse de
polyacrylamide avec protéines séparées obtenues à partir de la cornée d’un mammifère
en même temps que les poids moléculaires standards
C.IV.1 dessinez sur la Feuille réponses (avec les masses moléculaires ) le gel avec la
position des bandes correspondant aux 4 protéines principales du cristallinsprotéines solubles du cristallin qui composent plus de 90% des protéines du
cristallin.(dessiner toutes les bandes). indiquez pour chaque bande la masse
moléculaire estimé de la protéine
Échelle de masse moléculaires standards utilisé dans l’expérience avec les
poids moléculaires en kDa. 1 Da=1.66x10-27 kg = 1 UMA).
C.IV.2 Identifiez dans le dessin (avec des flèches) l’extrémité du gel où l’échantillon a
été chargé.
C.IV.3 Quel est approximativement le nombre d’acides aminés dans la plus grosse
cristalline ? Ci-dessous la structure d’un acide aminé de masse moléculaire
moyenne.
Mis en forme : Français (Belgique)
C.IV.4 la quantité de protéine de la bande de la cristalline avec le poids moléculaire le plus
élevé est de 10 micrograms. Les échantillons chargés sur le gel représentent le
1/500 des protéines totales du cristallin d’une souris. Combien y a-t-il de
molécules de cristalline dans le système visuel d’une souris ??
C.IV.5. Indiquez sur la Feuille réponses si les propositions sont vraies ou fausses :
A
(vrai) (faux) les protéines du cristallin doivent rester dans un être humain pour toute
sa vie
B
(vrai) (faux) un facteur important du maintien de la transparence est l’absence au sein
des fibres matures du cristallin d’organites qui diffusent la lumière tels les noyaux et les
mitochondries
C
(vrai) (faux) le glucose est la source primaire d’énergie de la lentille. Comme les
cristallines matures ne possèdent pas de mitochondries la plus grande partie du glucose est
métabolisé par respiration anaérobie
bonne chance !!!