Manuel de prlvt 8 - Medibio, laboratoire de biologie médicale.

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Manuel de prlvt 8 - Medibio, laboratoire de biologie médicale.
Laboratoire de Biologie Médicale MEDIBIO
N° document :
PG-MU0-057-05
MANUEL DE
PRÉLÈVEMENT
DOCUMENT A DIFFUSION MAITRISEE
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notamment en cas d'évolution de version. Je m'engage également à signaler au laboratoire dans les
plus brefs délais toute perte d'un ou plusieurs exemplaires de ce document.
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Table des matières
1 RECOMMANDATIONS GÉNÉRALES..........................................................................5
1.1 Pourquoi être à jeun ?.................................................................................................. 5
1.2 Pourquoi prélever à certaines heures ?........................................................................ 5
1.3 Analyses nécessitant des conditions particulières....................................................... 5
1.4 Comment et pourquoi identifier le prélèvement et les Fiches de prélèvement de
biologie médicale ? (annexe 8.6 « Fiches de prélèvement de biologie médicale »)............5
1.4.1 Identification minimale des prélèvements et échantillon transmis.................5
A Identification des tubes ou des échantillons................................................5
B Sur la feuille de suivi.................................................................................. 5
1.4.2 Fiches de prélèvement de biologie médicale...................................................6
1.4.3 Fiche de consentement pour les examens génétiques..................................... 6
1.5 Comment gérer les demandes d'examens sans ordonnance.........................................6
2 LES DIFFÉRENTS TYPES DE RECUEILS ET LA PRÉPARATION DU PATIENT...................6
2.1 Préconisations patients................................................................................................ 6
2.2 Les tests dynamiques...................................................................................................7
2.2.1 HGPO (HyperGlycémie Provoquée par voie Orale).......................................7
2.2.2 Test de O’Sullivan...........................................................................................7
2.2.3 Dosage de la Prolactine...................................................................................8
2.2.4 Test à la LH RH (*).........................................................................................8
2.2.5 Test à la TRH (*) avec dosages de la Prolactine, de la TSH ou de la GH......8
2.2.6 Test au Synacthène (*) avec dosage de cortisol et/ou 17OHprogestérone.....9
2.2.7 Test au peptide C (*) avec dosage de glucose et peptide C............................ 9
2.2.8 Hélikit..............................................................................................................9
2.3 Les suivis thérapeutiques.............................................................................................9
2.4 Formulaires de consentement...................................................................................... 10
3 LES PRÉLÈVEMENTS...........................................................................................11
3.1 Les prélèvements veineux .......................................................................................... 11
3.1.1 Matériel utilisé : ............................................................................................. 11
3.1.2 Avant le prélèvement...................................................................................... 11
A Préleveurs externes (infirmières libérales)..................................................11
B Préleveurs internes...................................................................................... 12
3.1.3 Choix des tubes .............................................................................................. 13
3.1.4 Modalités des prélèvements sanguins.............................................................13
3.2 Protocoles particuliers................................................................................................. 14
3.2.1 Temps de saignement......................................................................................14
3.2.2 Prélèvements pour hémoculture (*)................................................................ 15
3.2.3 Paludisme (*).................................................................................................. 16
3.2.4 Gaz du sang.....................................................................................................16
3.3 Les prélèvements bactériologiques..............................................................................17
3.3.1 Généralités.......................................................................................................17
A Salle de prélèvement bactériologique ........................................................ 17
B Responsabilités............................................................................................17
C Matériel utilisé............................................................................................ 17
3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme........................................................... 18
3.3.3 Prélèvement urétraux chez l'homme............................................................... 19
3.3.4 Autres prélèvements de la sphère uro-génitale............................................... 20
A Prélèvement urétral chez la femme.............................................................20
B Pour la recherche de l’Herpès : .................................................................. 20
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C Recherche de Papillomavirus chez la femme..............................................20
D Autres prélèvements bactériologiques de la région périnéale (prépuce, vulve,
péri-anal...) : code PEAU .................................................................................20
3.3.5 Autres prélèvements bactériologiques............................................................ 21
A Prélèvement de peau .................................................................................. 21
B ECBU, coproculture, crachats.....................................................................21
C Prélèvements ORL, oculaires......................................................................21
D Autres prélèvements bactériologiques........................................................ 22
3.4 Les prélèvements mycologiques, parasitologiques, virologiques............................... 22
3.4.1 Recherche de dermatophytes sur la peau........................................................ 22
3.4.2 Recherche de dermatophytes au niveau des ongles........................................ 22
3.4.3 Recherche de dermatophytes au niveau du cuir chevelu (teigne)................... 22
3.4.4 Test de Graham (recherche d'oxyures par scotch test)....................................23
3.4.5 Recherche de Demodex folliculorum..............................................................23
3.4.6 Recherche de gale (Sarcoptes scabiei)........................................................... 23
3.4.7 Recherche de Pytiriasis versicolor par scotch-test..........................................23
3.4.8 Recherche d’Herpès virus : ............................................................................23
3.5 Les prélèvements dans le cadre d'un bilan hématologique..........................................24
3.5.1 Myélogramme................................................................................................. 24
3.5.2 Biopsie ostéo-médullaire.................................................................................24
3.5.3 Ponction ganglionnaire ...................................................................................24
3.6 Frottis cervico-vaginal.................................................................................................24
3.6.1 Généralités.......................................................................................................24
A Salle de prélèvement bactériologique ........................................................ 24
B Responsabilités............................................................................................25
C Matériel utilisé............................................................................................ 25
3.6.2 Déroulement....................................................................................................25
A Frottis en milieu liquide :............................................................................25
B Frottis sur lame :......................................................................................... 25
3.7 Test de Hühner.............................................................................................................25
4 CONSERVATION ET TRANSPORT DES ÉCHANTILLONS............................................ 26
5 CATALOGUE DES PRINCIPALES ANALYSES MEDIBIO.............................................26
6 CONDUITE À TENIR EN CAS D'INCIDENT DE PRÉLÈVEMENT OU D'ACCIDENT
D'EXPOSITION AU SANG........................................................................................... 26
7 INTÉRÊT CLINIQUE DES EXAMENS DE ROUTINE.................................................... 28
8 ANNEXES.......................................................................................................... 29
8.1 Annexe : Liste des analyses à conditions particulières (SFBC 2011)........................ 29
Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral)........................... 29
Analyses nécessitant un régime alimentaire particulier............................................ 30
Autres analyses à conditions particulières.......................................................31
Analyses spécialisées nécessitant un traitement pré-analytique particulier.....35
8.2 Annexe Consentements............................................................................................... 36
8.2.1 « Consentement en vue d'un examen »..........................................................36
8.2.2 Dépistage sanguin du risque accru de trisomie 21 fœtale...............................37
8.3 Annexe : liste des principales interférences et variations physiopathologiques ........41
8.4 Annexe : Préconisations patients.................................................................................50
8.4.1 Objet et domaine d’application.......................................................................50
8.4.2 Définitions et abréviations ............................................................................. 51
8.4.3 Références.......................................................................................................51
8.4.4 Responsabilités...............................................................................................51
8.4.5 Descriptif.........................................................................................................51
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RECUEIL D'URINES POUR ECBU.............................................................. 52
Recueil d’urines pour compte d’Addis Hématies Leucocytes par Minute (HLM)....53
Recueil des URINES DE 24 HEURES .......................................................... 54
Recueil et fixation des urines pour étude cytologique.....................................55
Recueil des selles :Coproculture, Examen parasitologique des selles, Clostridium
difficile, Adenovirus, Rotavirus....................................................................... 56
Scotch test........................................................................................................57
Recherche de sang dans les selles....................................................................57
Recueil de sperme ...........................................................................................58
Spermoculture..................................................................................................59
Préconisations pour la réalisation d'un test de Hühner(test post-coïtal)..........60
Recherche de drogues urinaires....................................................................... 61
EXPECTORATION........................................................................................ 61
RECHERCHE DE BILHARZIOSE URINAIRE............................................62
Test HELIKIT (Test respiratoire pour le dépistage d’Helicobacter pylori)....62
Stéatorrhée, créatorrhée, examen fonctionnel de la digestion......................... 63
Legionella pneumophila : Recherche de l’antigène urinaire........................... 63
TRP : Taux de reabsorption du Phosphore...................................................... 64
ELASTASE DANS LES SELLES.................................................................. 64
Epreuves dynamiques...................................................................................... 65
8.4.6 Classement et archivage..................................................................................66
8.5 Annexe : Fiche de prélèvement de biologie médicale.................................................67
8.6 Conservation des échantillons biologiques..................................................................68
8.6.1 Conservation pré-analytique.......................................................................... 68
A Chimie-enzymologie sanguine....................................................................68
B Hormones sanguines................................................................................... 70
C Marqueurs Protéines................................................................................... 71
D Hématologie................................................................................................72
E Hémostase................................................................................................... 72
F Immuno-hématologie.................................................................................. 72
G Médicaments...............................................................................................73
H Biologie du LCR........................................................................................73
I Gazometrie arterielle.................................................................................... 73
J Chimie-enzymologie urinaire.......................................................................74
K Bactériologie...............................................................................................75
8.6.2 Conservation post-analytique .........................................................................77
8.7 Annexe : élimination des déchets................................................................................ 80
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Ce manuel a pour objectif de guider les préleveurs dans leurs pratiques quotidiennes. Il
permet d'avoir une vue d'ensemble de l'organisation mise en place au sein du laboratoire afin
que les examens soient réalisés dans des conditions optimales.
1 Recommandations générales
1.1 Pourquoi être à jeun ?
Extrait de la plaquette d'information 2008 créée par Bio-Log et LABAC (Association des
Laboratoires d'Analyses de Biologie Accrédités COFRAC)
 Certains dosages varient après le repas parce que l’alimentation apporte elle-même
certains des éléments dosés (ex : triglycérides, glucose, …)
 Après un repas, la qualité du sérum ou du plasma est modifiée (trouble, viscosité).
 Ces modifications de la qualité des prélèvements peuvent perturber le fonctionnement
des appareils d’analyse de plus en plus sensibles et précis.
 De manière générale, le jeûne est recommandé pour l’ensemble des analyses.
Voir en annexe 8.4 « Liste des principales interférences et variations physiopathologiques »
1.2 Pourquoi prélever à certaines heures ?
Le cycle nycthéméral a une influence importante sur certains paramètres biologiques (ex :
cortisol, prolactine) et dans ce cas le prélèvement doit être fait à des heures particulières de la
journée. Pour d’autres paramètres, l’influence est modérée mais réelle.
1.3 Analyses nécessitant des conditions particulières
Voir en Annexe 8.1 « Liste des analyses à conditions particulières »
et «Analyses BPR avec traitement pré-analytique particulier»
1.4 Comment et pourquoi identifier le prélèvement et les Fiches de prélèvement
de biologie médicale ? (annexe 8.6 « Fiches de prélèvement de biologie
médicale »)
1.4.1 Identification minimale des prélèvements et échantillon transmis
Toutes les précautions doivent être prises pour identifier correctement le patient y compris en
établissement de santé (utilisation de bracelets électroniques...).
Quelque soit l’analyse, doivent impérativement figurer :
A
Identification des tubes ou des échantillons
 sexe, nom, prénom, DDN +/- nom de JF
B
Sur la feuille de suivi
 patient : nom, prénom, DDN, +/- nom de JF, adresse, sexe +/- téléphone
 date et heure de prélèvement
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 identification du préleveur
 identification du prescripteur
 nombre de tubes prélevés et nature du prélèvement (case : sang, urines, autre)
 transmission des résultats : urgent, à téléphoner, à faxer, à poster, pharmacie,
laboratoire
 renseignements cliniques (Traitement par AVK, héparinothérapie, dosage des
médicaments, DDR, autres)
Ces indications, vérifiées par le préleveur doivent être parfaitement lisibles.
Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses antériorités et
attribuer les valeurs de références adaptées (homme, femme, enfant).
«Attention certains patients peuvent présenter les mêmes nom, prénom et date de naissance,
d’où la nécessité de préciser l’adresse et voire le lieu de naissance, pour la validation des
cartes de groupages sanguins».
L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un critère
de non-conformité et est enregistrée comme telle dans le système qualité des laboratoires :
elle peut entraîner la non exécution des actes.
1.4.2 Fiches de prélèvement de biologie médicale
Associées aux échantillons, elles sont obligatoires. Elles sont mises à disposition dans les
boites de prélèvements.
Nous vous demandons de les compléter et d’y préciser tous renseignements cliniques et
thérapeutiques susceptibles d’aider à la compréhension des résultats des analyses.
1.4.3 Fiche de consentement pour les examens génétiques
Elle est spécifique pour les examens de génétique et de dépistage de la Trisomie 21 Fœtale
par les marqueurs sériques maternels. Si nécessaire, le laboratoire peut à votre demande vous
en fournir.
Annexes 8.2 "Consentements »
1.5 Comment gérer les demandes d'examens sans ordonnance
Le document « Enregistrement des demandes formulées oralement » doit être rempli par
le patient responsable majeur après qu'il ait pris connaissance des modalités du
prélèvement et de rendu des résultats, du montant à payer...
A noter qu'il convient d'obtenir le nom du médecin traitant (indispensable pour les
sérologies HIV) pour avoir un correspondant médical en cas de résultats pathologiques.
2 Les différents types de recueils et la préparation du patient
2.1 Préconisations patients
Voir en Annexe 8.5 "Préconisations patients" »
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2.2 Les tests dynamiques
Certains examens nécessitent de prévoir un temps de réalisation plus ou moins important (ex :
HGPO), ou un jour précis. Pour l’ensemble de ces tests, la réalisation au laboratoire est
recommandée.
Faire les temps indiqués sur l’ordonnance. En l’absence d’indication, il est préférable de
vérifier auprès du prescripteur les temps souhaités.
2.2.1 HGPO (HyperGlycémie Provoquée par voie Orale)
But du test : stimuler la sécrétion d’insuline et freiner la sécrétion hypophysaire de la GH.
Indications : dépistage des états diabétiques, évaluation de l’insulino-sécrétion, diagnostic de
l’acromégalie et suivi thérapeutique, confirmation de diabète gestationnel, diagnostic
étiologique des hypoglycémies.
Dosage : glycémies à 4 temps différents pour les femmes enceintes et les autres patients.
Modalités de l’examen :
 Le patient doit être à jeun depuis 10 h.
 Poser si possible un cathéter et prélever un tube fluorure (= temps 0 minutes).
 Administrer par voie orale :
▪ 75 g de glucose chez l'adulte
▪ 100 g pour une femme enceinte.
▪ 1,75 g/kg de poids corporel (sans dépasser 75g) chez l'enfant
 Prélever de nouveau aux temps :
▪ 60, 120 et 180 minutes pour la femme enceinte.
▪ 30, 60, 90, 120, 150 et 180 minutes pour les autres patients.
 Recueil des urines : 0, 60, 120 et 180 minutes (pour 75g de glucose - absence
de recueil pour les femmes enceintes).
2.2.2 Test de O’Sullivan
Principe : évaluation de la glycorégulation.
Indications : dépistage du diabète gestationnel.
Dosage : glycémie.
Modalité de l’examen :
 La patiente doit être à jeun de préférence
 Prélever un tube fluorure pour une glycémie initiale.
 Administrer à la patiente par voie orale 50 g de glucose (T0).
 Laisser la patiente au repos pendant une heure. Si la patiente ne désire pas
rester au laboratoire, lui faire signer une décharge (l'éditer à partir d'Alysé).
 Prélever un tube fluorure une heure après ingestion du glucose (T60).
2.2.3 Dosage de la Prolactine
Le prélèvement doit être effectué à jeun, entre 8 heures et 12 heures, chez un sujet au repos
depuis au moins 15 minutes et non stressé.
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Différentes méthodes de prélèvement peuvent être utilisées :
1/Prolactine après repos pendant (15-20min).


mettre le patient au repos pendant 15-20mn
prélever à T + 20 minutes.
2/ Prolactine poolée
 Prélever au temps T0
 Mettre la patiente au repos puis prélever aux temps 15 et 30 min.
 Un seul dosage sera réalisé après mélange des trois sérums prélevés à T0
et T15 et T30 minutes.
3/ Test à la TRH avec dosage de prolactine
voir test au TRH
2.2.4 Test à la LH RH (*)
Prise de rendez-vous indispensable : ce test est réalisé par une infirmière ou un médecin
biologiste
 Chez la femme, le prélèvement doit se faire dans la première partie du cycle (entre J3
et J5), sans traitement œstroprogestatif (arrêter depuis 1 mois minimum, de préférence
2 mois), et ne pas être enceinte.
 Patiente à jeun et au repos
 T0 :
◦ Prélever 1 tube
Injecter en intraveineuse 100mg de LH-RH Stimu-LH (délivrée en Pharmacie
hospitalière sur ordonnance et apportée par le patient)
 à T+ 30 et à T+ 60 minutes : Prélevement
2.2.5 Test à la TRH (*) avec dosages de la Prolactine, de la TSH ou de la GH
Prise de rendez-vous obligatoire : ce test est réalisé par une infirmière ou un médecin
biologiste
 Entre J3 et J5 du cycle, sans traitement œstroprogestatif depuis 1 mois.
 Patient à jeun et au repos depuis 30 minutes.
 prélèvement T0, T+30 et T+ 60 minutes.
 T0 :
 Prélever 1 tube
 Injecter en intraveineuse lente (1 à 2 minutes) 250mg de stimu-TSH
(délivrée en pharmacie hospitalière sur ordonnance, apportée par le
patient)
 à T+ 30 et à T+ 60 minutes : Prélevement
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2.2.6 Test au Synacthène (*) avec dosage de cortisol et/ou 17OHprogestérone.
Prise de rendez-vous indispensable : le test est effectué par une infirmière ou un médecin
biologiste.
 Patient à jeun, au repos depuis 15 minutes
 Prélever au temps T0 aussi proche que possible de 8 heures du matin
 Injecter en intramusculaire une ampoule de synacthène immédiat (0, 25 mg)
prescrite par le médecin et apportée par le patient. (Injection IV si patient sous
AVK)
 Prélever ensuite aux temps T + 30 minutes et T + 60 minutes en respectant la
prescription, le patient étant resté au repos dans l’intervalle de temps.
 Contre-indications : asthme et sujets allergiques.
2.2.7 Test au peptide C (*) avec dosage de glucose et peptide C
Prise de rendez-vous indispensable : le test est effectué par une infirmière ou un médecin
biologiste.
Patient à jeun.
 Prélever au temps T0.
 Injecter en intraveineuse une ampoule de glucagon (1 mg) prescrite par le
médecin et apportée par le patient.
 Prélever ensuite aux temps T + 10 minutes et T + 30 minutes.
 Si test long : T0, T+10, T+30, T+60, T+120, T+180 et T+240 minutes.
2.2.8 Hélikit
Buts du test : recherche de présence d’Helicobacter pilori, suivi thérapeutique.
Dosage : envoyé au laboratoire Cerba
Conditions initiales : être à jeun, ne pas fumer, ne pas se brosser les dents avant l'examen
Mise en œuvre :
- Suivre les indications du kit.
2.3 Les suivis thérapeutiques
Voir annexe « Liste des analyses à conditions particulières »
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2.4 Formulaires de consentement
–
Pour les demandes d'analyses sans ordonnance, voir annexe « Enregistrement des
demandes formulées oralement »:
– Pour les analyses génétiques,
Voir :
 Annexe "consentement en vue d'un examen génétique"

Annexe Dépistage sanguin du risque accru de trisomie 21 foetale

Liens vers :

Génotypage Rhésus foetal D

consentement Cerba

Caractéristiques génétiques

Caryotype post-natal

Etude du gène CFTR (mucoviscidose)
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3 Les prélèvements
3.1 Les prélèvements veineux
3.1.1 Matériel utilisé :
 Corps de pompe

garrot, coton conditionné
 Aiguilles, embouts, flacons stériles
 Seringues à usage unique : 2, 5, 10 et 20 ml montées.(IM) -cathéter- dispositif à
ailettes
 Tubes à prélèvements BD® Vacutainer ® :
◦
tubes secs avec activateur de la coagulation et gel 3,5 et 8,5 ml de vide
(bouchon jaune)
◦
tubes secs avec activateur de coagulation, 4ml de vide (bouchon rouge)
◦
tubes citratés 2,7 ml de vide (bouchon bleu)
◦
tubes EDTA K2, 4 ml de vide (bouchon violet)
◦
tubes héparinate de Lithium, 3ml de vide avec gel (bouchon vert pâle)
◦
tubes héparinate de Lithium sans gel,4ml de vide (bouchon vert)
◦
tubes fluorure de sodium /EDTA disodique 4ml de vide
tubes neutres sans additif (purge et fluides biologiques autres que le sang), 3ml
de vide (bouchon transparent).
 Alcool 70 %, Biseptine® (pour les bébés) ou Bétadine®
◦
 Boîte récupératrice d'aiguilles et poubelle pour déchets non contaminés.
 Dakin® (en cas d’Accident d'exposition au sang AES)
+/- : flacons à hémoculture (aérobies et anaérobies), Compresses stériles, gants, Sparadrap
hypoallergénique – Stéristrip®, dispositif Surgicut, adulte et enfant, lancettes, lames,
Tensiomètre, Chronomètre, Papier filtre, Thermomètre électronique
 NB : avant de prendre en charge le patient, il est nécessaire de vérifier la présence de
tout le matériel indispensable au prélèvement.
3.1.2 Avant le prélèvement
A
Préleveurs externes (infirmières libérales)
Le laboratoire fournit le matériel de prélèvement nécessaire dans des coffrets unitaires
conformes à l’ADR. Les « Fiches de prélèvement de biologie médicale » sont placées dans
ces coffrets.
Veiller à n’utiliser que des tubes non périmés : pour vous aider, la Date Limite d’Utilisation
est visible sur l’étiquette collée sur tous les tubes. N’hésitez pas à nous retourner les coffrets
anciens pour des échanges.
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Après avoir vérifié que les conditions pré-analytiques étaient satisfaisantes (jeûne…), vous
pourrez vérifiez le type du tube à prélever en vous reportant au document « Choix des tubes »
ci-après, que nous vous fournirons à votre demande.
Remplissage de la Fiche de prélèvement de biologie médicale :Compléter la Fiche de
prélèvement de biologie médicale (Annexe Fiche de prélèvement de biologie médicale)
en n’oubliant pas les indications concernant directement le patient et qui pourraient
influer sur la qualité et l’interprétation des résultats :
 Jeûne
 Posologie et heure de la dernière prise pour les dosages de médicaments,
 Objectifs thérapeutiques (INR)
 Date et heure de prélèvement
 Date Dernières Règles...
Merci enfin de bien vouloir noter vos coordonnées de façon à ce que l’on puisse vous
contacter en cas de problèmes concernant le prélèvement.
B
Préleveurs internes
Le préleveur, muni de l'ordonnance et de la planche d’étiquettes s'assure de l’identité du
patient (nom, prénom et date de naissance) et vérifie l’intégralité de la prescription (pas
d’erreur ou oubli paramètre), le code médecin et le suffixe « U » pour les urgents.
Il s'assure que le patient est confortablement installé et le rassure si besoin.
Il vérifie la conformité des conditions de prélèvement :
 État de jeûne
 Dernière prise de médicaments, ou injection (pour les héparinémies)
 Périodes de repos pour les paramètres le nécessitant.
 Date des dernières règles.
Il s'enquiert de l'existence d'une éventuelle thérapeutique et sollicite, si nécessaire, des
informations cliniques complémentaires et note ces informations sur la fiche de
renseignements.
Il sélectionne les tubes à prélèvements (nature, contenance et nombre) en fonction des
analyses prescrites (Cf « Choix des tubes ») et du système veineux observé.
LORSQUE LA PRISE EN CHARGE PRE-ANALYTIQUE PEUT SE FAIRE
RAPIDEMENT
(PRELEVEMENT
AU
SEIN
DU
LABORATOIRE
ET
CENTRIFUGATION DANS LES 2 HEURES), LA GLYCEMIE EST PRELEVEE SUR
TUBE SEC : LA SECRETAIRE ACCUEILLE ALORS LE CODE « G » ET NON « GG ».
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3.1.3 Choix des tubes
Se reporter à la plaquette « Choix des couleurs de tubes »
EN CAS DE DOUTE :POUR TOUS LES EXAMENS TRANSMIS AUX
LABORATOIRES
BPR (www.bprlab.com) OU CERBA, CONSULTER LES
CATALOGUES CORRESPONDANTS.
3.1.4 Modalités des prélèvements sanguins
 SE NETTOYER LES MAINS ENTRE CHAQUE PATIENT (SOLUTION
ANTISEPTIQUE A DISPOSITION)
 Antisepsie de la peau à l'aide d'un coton imprégné de solution antiseptique.
(Si prélèvement pour alcoolémie, utiliser une lingette d’antiseptique pour prélèvement
ECBU ou de la Bétadine®)
 Pose du garrot et recherche de la veine.
 Utilisation d'aiguille stérile à usage unique obligatoire. Utiliser les tubes à prélèvement
en fonction des analyses prescrites (Cf « Choix des tubes »).
 Une fois que l'on est dans la veine, desserrer le garrot, prélever le ou les tubes.
 Retirer l’aiguille tout en comprimant la veine avec un coton.
 Retourner délicatement plusieurs fois chaque tube (ne pas agiter)
 Le patient assure la compression pendant 1 minute en temps normal et 2 à 3 minutes
s’il est sous anticoagulant (apposer un coton sec pour la compression des patients sous
traitement anticoagulant)
Pour le prélèvement à la seringue : répartir le sang dans les tubes en respectant l’ordre des
tubes. Ne jamais pousser sur le piston (risque accru d’hémolyse)
Pour les jeunes enfants, veiller à ne pas prélever plus que nécessaire. Le tube citraté utilisé en
routine présente déjà un faible volume (2,7 ml).
NB. Respecter l’ordre de prélèvement des tubes suivant :
BLEU  ROUGE/JAUNE  VERT  MAUVE  GRIS
Le tube citrate
Tube de purge
doit impérativement être correctement rempli jusqu’à la bande dépolie.
si prélèvement à l’ailette.
Bouchon coiffant à refermer d' 1/4 de tour en cas de rupture du vide. Tourner et pousser le
bouchon vers le bas.
Attention, signaler une rupture du vide sur les tubes citratés (sparadrap autour du tube) car
risque d'impact sur le résultat d'hémostase
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Élimination de l'aiguille :
Les aiguilles doivent être obligatoirement éliminées dans les containers jaunes collecteurs à
DASRI (« Procédure d’élimination des déchets »), immédiatement après le prélèvement et au
vu du patient. Le recapuchonnage est interdit. Il est également proscrit d’introduire la main à
l’intérieur du container. Cf «Annexe "élimination des déchets" »
Il est rigoureusement interdit de replacer les aiguilles utilisées dans les coffrets : risque
d’AES par le personnel du laboratoire à l’ouverture du coffret.
Dans la mesure du possible, nous vous remercions de remplir complètement les tubes : le bon
remplissage des tubes est en effet un critère important dans la standardisation des conditions
pré-analytiques et donc des résultats d’analyses.
Il est à noter qu’aucune analyse ne pourra être effectuée sur un tube CITRATE (bleu)
mal rempli ou coagulé, ou sur un tube EDTA (violet) coagulé.
Identification des prélèvements
Selon la législation en vigueur, applicable à tous les préleveurs et correspondants (même
externes au laboratoire), il est impératif de noter sur TOUS les échantillons les :
 Sexe
 Nom
 Prénom
 Date de naissance
 Nom de jeune fille – indispensable pour les tubes EDTA susceptibles d'être utilisés en
Immuno-Hématologie : le laboratoire devra obtenir au maximum le nom de naissance
NE PAS OUBLIER QUE TOUS LES ÉCHANTILLONS DOIVENT ÊTRE
IDENTIFIÉS AVEC SEXE, NOM, PRÉNOM, DATE DE NAISSANCE
3.2 Protocoles particuliers
3.2.1 Temps de saignement






Méthode de DUKE substituée par l’évaluation de la fonction plaquettaire par
mesure du temps d’occlusion capillaire :
Prélever un tube citraté
Homogénéiser par un seul retournement
Mettre un sparadrap autour du bouchon (pas de centrifugation)
Coller l’étiquette : TS
Transférer sur le site de Melun
Méthode d’ IVY sensibilisée : (*)
L’aspirine doit être arrêtée 7 à 10 jours avant, les corticoïdes peuvent entraîner une
modification.
Placer le bras du patient sur un accoudoir, en exposant la face antérieure de l'avant
bras.
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 Désinfecter la peau à l’alcool
 Installer le brassard du tensiomètre sur le haut du bras et appliquer une pression
permanente de 40mm Hg.
 Avec un dispositif Surgicut, faire une incision horizontale sur la face antérieure de
l’avant bras, à 5cm au dessous du coude en évitant les veinules superficielles.
 Déclencher le chronomètre.
 Après une période de 30 secondes, éponger avec du papier filtre en tamponnant
légèrement en périphérie pour ne pas gêner la formation du clou plaquettaire.
 Éponger le sang toutes les 30 secondes jusqu'à ce que le sang ne tache plus le papier
filtre. Arrêter le chronomètre, le temps de saignement est déterminé par le temps
arrondi à 30 secondes.
 Mettre éventuellement un stéristrip®
 Noter le temps écoulé depuis l’incision jusqu’à l’arrêt du saignement sur la fiche
résultat.
NB : Valeur normale jusqu’à 8 min ; entre 8 et 10 min : refaire le test à l’autre bras,
allongement > 10 min contrôlé, prévenir le biologiste.
Remarque : Pour les enfants de 5 mois à 15 ans, utiliser un dispositif SURGICUT
JUNIOR. Le protocole reste le même.
Toutefois les pressions suivantes sont recommandées en fonction du poids du
nouveau-né :
1 30 mm Hg > ou égale à 2kg
2 25 mm Hg entre 1kg et 2kg (chez le prématuré)
Valeur normale 1.30 à 9 minutes.
3.2.2 Prélèvements pour hémoculture (*)
Matériel : 2 flacons (1 aérobie et 1 anaérobie), dispositif à ailettes ou seringue de 10cc ou
corps de pompe spécial hémoculture, compresses stériles bétadinées, thermomètre, gants.

Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de suivi : l’heure du prélèvement,
température du patient au moment du prélèvement, l’antibiothérapie éventuelle.

Se laver les mains, mettre les gants
 Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, avant le début d’une
antibiothérapie. En cas d’impossibilité, prélever l’échantillon immédiatement avant
l’administration de la dose d’antibiotique.
 Retirer la capsule en plastique, désinfecter soigneusement
 Nettoyer très soigneusement le site de ponction en utilisant une compresse bétadinée.
Laisser agir l'antiseptique.
 Prélèvement standard avec l’adaptateur adéquat pour les flacons : Remplir en premier
le flacon pour culture aérobie (vert) puis celui pour culture anaérobie (orange) (10 ml
de sang par flacon) puis les autres tubes éventuels.
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 Prélèvement à la seringue : inoculer en premier le flacon pour culture anaérobie
(orange) puis celui pour culture aérobie (vert).
 Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements, les laisser à température
ambiante.
3.2.3 Paludisme (*)
Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de renseignements :
◦ Notion de fièvre
◦ Zone géographique avec date de retour
◦ Chimio- prophylaxie : nom, durée du traitement, interruption éventuelle
◦ Antécédent d’accès palustre

Prélever en systématique un tube sur EDTA

Éventuellement, réaliser un frottis à partir du sang capillaire :
 Masser l’extrémité du majeur.
 Désinfecter avec de l’alcool à 70 °.
 Piquer la pulpe du doigt avec un vaccinostyle.
 Recueillir une goutte sur deux lames différentes et réaliser les étirements pour
les frottis sanguins.
 Sécher le doigt du patient.
 Identifier les lames et les apporter rapidement en technique.
3.2.4 Gaz du sang
 Matériel nécessaire :
 antiseptique (type bétadine)
 gants à usage unique
 matériel stérile (aiguille intra – veineuse, seringue à usage unique de 3 ml
héparinée, compresses stériles)
 ruban adhésif (petit élasto)
 glace pour le transport
 étiquettes, nécessaire pour élimination des déchets de soin
 Ponction :
 Noter la température du patient
 Remplir bon d'examen, date et heure, T°, service, conditions d'oxygénation
(attendre 15 à 30 minutes si le patient vient d'être placé sous oxygène)
 Se laver les mains
 Préparer le matériel
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 Mettre le poignet du patient en extension et repérer l’artère radiale avec le
majeur et l'index
 Asepsie rigoureuse et large de la zone à ponctionner d'un mouvement circulaire
(compresses stériles bétadinées)
 Attendre une minute de temps de contact
 Mettre les gants non stériles et en bétadiner les doigts servant à repérer l'artère
 Lorsque l' artère est perçue avec ses 2 doigts, ponctionner obliquement à 45 °,
la pointe de l’aiguille face au courant artériel.(biseau vers le haut)
 Ponctionner progressivement jusqu’à l’apparition de sang rouge vif rythmé par
le pouls dans la seringue. Il est inutile de tirer sur le piston car la pression
artérielle permet au sang de monter dans la seringue
 Prélever 2 à 3 ml de sang (minimum 1 ml)
 Retirer l’aiguille et comprimer immédiatement l’artère pendant 5 min avec une
compresse imbibée d’antiseptique
 Chasser les bulles d'air de la seringue en la tapotant
 Obturer la seringue avec un bouchon
 Poser un pansement compressif non circulaire sur l’artère
 Préparer la seringue dans un sachet avec de la glace et le bon de labo
 Transmissions et transport de la seringue au labo immédiatement
 Nettoyer et ranger le matériel et se laver les mains
3.3 Les prélèvements bactériologiques
3.3.1 Généralités
A
Salle de prélèvement bactériologique
Elle est verrouillable et garantit une isolation phonique et visuelle.
Une propreté rigoureuse des locaux et ustensiles doit y régner (poubelles spécifiques pour
déchets et papiers jetables).
B
Responsabilités
Les prélèvements sont réalisés sous la responsabilité du biologiste et sont pratiqués par le
personnel autorisé (cf procédure « prélèvements »).
Lorsque le prélèvement est effectué par le patient, la personne présente à l'accueil remet
les préconisations et le matériel nécessaires.
C
Matériel utilisé

gants à usage unique : LE PORT DES GANTS EST OBLIGATOIRE

spéculum stérile en plastique à usage unique pour les prélèvements vaginaux

écouvillons gélosés, écouvillon sec (pour la lame, la mesure du pH, l'examen direct)

ou milieux de type e-swab

éventuellement, milieu de transport et écouvillons spéciaux pour la recherche de
Chlamydiae et mycoplasmes

papier pH pour les prélèvements vaginaux

lames
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
la FEUILLE DE RENSEIGNEMENTS DOIT ÊTRE COMPLÉTÉE au moment du
prélèvement

LES ECHANTILLONS ET LES LAMES DOIVENT IMPERATIVEMENT ETRE
IDENTIFIES
L’horodatage du prélèvement ou du recueil, de l’acheminent et de la réception de
chaque échantillon au laboratoire ainsi que l’identification de toutes les personnes
qui accomplissent ces tâches sont essentiels

3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme

Installer la patiente en position gynécologique

le préleveur vérifie que la patiente n'a pas effectué de toilette intime ni appliqué de
traitement local (crème, ovules, gels, savons...) avant le prélèvement

Éviter de prélever lors de la période menstruelle car la flore est modifiée : reporter
l'examen en cas de saignements abondants

En cas de difficultés pour visualiser le col, demander à la patiente de placer ses poings
serrés sous ses fesses avant de réintroduire le spéculum.

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (> 2
jours pour les germes banaux, > 15 jours pour les chlamydiae)

PENSER A TOUJOURS IDENTIFIER LES PRELEVEMENTS GRACE AUX
ETIQUETTES PATIENT (indiquer la localisation : endocol ou PV) ET LES LAMES
(nom, numéro de dossier et PV)

Recherche de streptocoque B chez la femme enceinte :
 ne pas utiliser de spéculum s'il existe une notion de col modifié ou de contractions
rapprochées et en cas d'antécédent de prématurité
 le prélèvement se fait au niveau du 1/3 inférieur de la cavité vaginale
 Privilégier les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon et le casser dans
le milieu liquide
 Sinon prélever un écouvillon gélosé et un écouvillon sec pour faire une lame
 Identifier écouvillons et lames

Prélèvement cervico-vaginal +/- Chlamydia +/- Mycoplasmes
 Privilégier les dispositifs de type E-swab :
◦ prélever un écouvillon au niveau de l'endocol et du vagin (y compris culs de
sacs vaginaux) et le casser dans le milieu liquide
◦ utiliser un écouvillon sec pour la mesure du pH
 Sinon :
◦ prélever un écouvillon gélosé au niveau de l'endocol
◦ un écouvillon gélosé au niveau des culs de sacs vaginaux et du vagin
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◦ un écouvillon sec pour faire une lame et mesurer le pH à partir des secrétions
vaginales
 Recherche de Chlamydia :
◦ elle peut être rajoutée à l'initiative du biologiste. Chez la femme enceinte, elle
n'est faite que sur demande explicite du médecin : c’est alors le biologiste qui
décide. La recherche se fait au niveau de l'endocol mais chez la petite fille, elle peut
être faite au niveau vaginal.
◦ utiliser les écouvillons fournis avec le milieu PCR-Media (bouchon jaune)
◦ le premier écouvillon sert à nettoyer le col afin d'éliminer l'excès de glaire et
de mucus. Jeter cet écouvillon après usage
◦ Introduire le deuxième écouvillon dans le canal endo-cervical, effectuer
délicatement environ 5 rotations dans le même sens en évitant le contact avec
les parois vaginales
◦ Dévisser le bouchon du milieu PCR media et introduire l'écouvillon dans le
tube. Casser l'écouvillon dans le milieu de culture (le point de cassure au
niveau de la tige est matérialisé par un trait noir)
◦ Transporter et conserver à température ambiante
 Recherche de Mycoplasmes :
◦ Prélever idéalement au niveau de l'endocol un écouvillon sec qui sera
déchargé dans le flacon de transport

Prélèvement vaginal seul
 Chez l'enfant et la jeune vierge : le prélèvement se fait sans spéculum , en
dégageant bien, manuellement, la fente vaginale et en introduisant directement les
écouvillons.
 Privilégier les dispositifs de type E-swab :
◦ prélever un écouvillon au niveau du vagin (y compris culs de sacs vaginaux)
et le casser dans le milieu liquide
◦ utiliser un écouvillon sec pour la mesure du pH
 Sinon :
◦ un écouvillon gélosé au niveau des culs de sacs vaginaux et du vagin
◦ un écouvillon sec pour faire une lame et mesurer le pH à partir des secrétions
vaginales
3.3.3 Prélèvement urétraux chez l'homme
 Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique
(> 2 jours pour les germes banaux, > 15 jours pour les chlamydiae)
 La recherche de mycoplasmes ne peut se faire que sur prescription explicite du
médecin : ne pas hésiter à le contacter pour lui proposer ces analyses.
 La recherche de Chlamydia peut se faire à l'initiative du biologiste (privilégier la
recherche au niveau du 1er jet urinaire)
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 Le patient ne doit pas avoir uriné dans l'heure précédant le prélèvement (à faire de
préférence le matin).
 Remplir la feuille de renseignements cliniques (notamment présence d'un
écoulement)
 Privilégier les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon au niveau du
méat urinaire et le décharger dans le milieu liquide
 Sinon :
◦ prélever 1 écouvillon fin mis dans le milieu de transport gélosé (ne pas utiliser
de milieu de transport impose un transport rapide < 2h à température
ambiante)
◦ + 1 écouvillon sec pour faire la lame
 Recherche de Chlamydia :
◦ utiliser les écouvillons fournis avec le milieu de transport Cobas® PCR
Female Swab Sample Packet (bouchon jaune)
◦ tourner environ 5 fois un des deux écouvillons au niveau du méat urinaire et le
décharger dans le milieu de transport (le point de cassure au niveau de la tige
est matérialisé par un trait noir).
 Recherche de Mycoplasmes :
◦ Prélever un écouvillon fin sec qui sera déchargé dans le flacon de transport
3.3.4 Autres prélèvements de la sphère uro-génitale
A
Prélèvement urétral chez la femme
 Installer la patiente en position gynécologique.
 Libérer le méat urinaire et réaliser les mêmes prélèvements que pour l’homme.
 Le protocole est identique aussi pour la recherche de Chlamydiae, Mycoplasmes
et Trichomonas.
B
Pour la recherche de l’Herpès :
 Repérer les vésicules et prélever avec un écouvillon au niveau du plancher de
celles-ci en frottant fort à l’aide d’un écouvillon. Faire 2 étalements circulaires
(1cm de diamètre) sur 2 lames avec le même écouvillon.
 Si une recherche par PCR est demandée, décharger l'écouvillon dans un milieu de
transport M4RT. N.B : le prélèvement par PCR est hors nomenclature.
C
Recherche de Papillomavirus chez la femme
cf protocole de prélèvement du frottis cervico-vaginal en milieu liquide
D
Autres prélèvements bactériologiques de la région périnéale (prépuce,
vulve, péri-anal...) : code PEAU
 Remplir la feuille de renseignements cliniques (notamment présence d'un écoulement)
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 Privilégier les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon au niveau du méat
urinaire et le décharger dans le milieu liquide
 Sinon :
◦ prélever 1 écouvillon fin mis dans le milieu de transport gélosé (ne pas utiliser de
milieu de transport impose un transport rapide vers le site analytique < 2h à
température ambiante)
◦ + 1 écouvillon sec pour faire la lame.
3.3.5 Autres prélèvements bactériologiques
 Le préleveur vérifie que le patient n'a pas appliqué de traitement local antibiotique ou
antiseptique avant le prélèvement

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (>
2 jours pour les germes banaux)
 Remplir la feuille de renseignements cliniques
 Penser à bien identifier les échantillons et les lames
 Privilégier les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon et le décharger dans
le milieu liquide
 Sinon :
◦ prélever 1 écouvillon gélosé (ne pas utiliser de milieu de transport impose un
transport rapide vers le site analytique < 2h à température ambiante)
◦ + 1 écouvillon sec pour faire la lame.
A
Prélèvement de peau
 Vérifier s'il est nécessaire de réaliser un prélèvement mycologique avec une recherche
de dermatophytes en parallèle : interroger le patient pour savoir si le médecin s'attend
à un rendu dans un mois, noter si la lésion est compatible avec une mycose (lésion de
la peau glabre avec desquamation périphérique, atteinte d'un ongle, plaque alopéciante
du cuir chevelu...)
 Prélever au centre de la lésion en insistant sur d'éventuelles zones purulentes
B
ECBU, coproculture, crachats
se reporter aux préconisations patients
C
Prélèvements ORL, oculaires
 au niveau de l’œil :
◦ prélever au niveau des conjonctives et de l'angle interne de l’œil
◦ si blépharite (croûtes palpébrales, cils) : prélever des cils à la pince stérile
 prélèvement de gorge :
◦ Abaisser la langue (abaisse-langue)
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◦ Frotter l'écouvillon sur la surface de chaque amygdale et toute la surface
pathologique en évitant le contact avec la langue ou la muqueuse jugale.
◦ Si épiglottite, ne pas faire le prélèvement
 Prélèvement d'oreille : écouvillonner le conduit auditif externe
 Prélèvement de nez : écouvillonner les 2 fosses nasales
 en cas de recherche du bacille de BORDET GENGOU (coqueluche) : Écouvillonner
jusque dans le naso-pharynx (exclusivement au labo) (utilisation d'un milieu M4RT)
cf module de formation http://www.pasteur.fr/pasteur/film_cnr/prelev.swf
D
Autres prélèvements bactériologiques
Suivre le même protocole.
En cas de doute, se renseigner auprès d'un biologiste
3.4 Les prélèvements mycologiques, parasitologiques, virologiques

Remplir la feuille de renseignements cliniques: ancienneté des lésions, traitement
préalable, contact avec les animaux, prurit...

METTRE DES GANTS POUR LE PRELEVEMENT
3.4.1 Recherche de dermatophytes sur la peau
◦ Arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 7 jours
◦ Prélèvement effectué à la curette ou au vaccinostyle par grattage en périphérie des
lésions suspectes. Recueillir les squames dans une boite de Pétri stérile (prendre
soin de bien la fermer).
◦ en cas de lésions suppuratives (levuroses en particulier), utiliser un écouvillon
3.4.2 Recherche de dermatophytes au niveau des ongles
◦ arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 21 jours
◦ Enlever grâce à un coupe-ongle, l'ongle atteint pour dégager la jonction entre la
zone saine et la zone pathologique. Prélèvement à la curette ou au vaccinostyle par
grattage à ce niveau et recueil des squames dans une boite de Pétri stérile (prendre
soin de bien la fermer).
◦ Si la zone jonctionnelle n'est pas accessible (ongle non décollé ou atteint dans son
intégralité), gratter la surface de l'ongle grâce à la curette ou au vaccinostyle.
3.4.3 Recherche de dermatophytes au niveau du cuir chevelu (teigne)
 Arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 21 jours
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 Noter le type de fluorescence si une lumière de Wood est disponible lors du
prélèvement
 Prélèvement de quelques cheveux à la pince stérile en périphérie de la lésion
alopéciante (utiliser des ciseaux pour ne conserver que la racine du cheveu)
 + Prélèvement à la curette ou au vaccinostyle par grattage en périphérie des lésions
suspectes.
 Recueillir les squames et les cheveux dans une boite de Pétri stérile (prendre soin
de bien la fermer).
3.4.4 Test de Graham (recherche d'oxyures par scotch test)
Cf annexe « Préconisations patients »
3.4.5 Recherche de Demodex folliculorum
Les demodex sont à la base des cils (blépharite)
Arracher quelques cils et les recueillir dans une boite de Pétri stérile
3.4.6
Recherche de gale (Sarcoptes scabiei)
◦ Rechercher la notion d'un prurit souvent très intense et à recrudescence nocturne,
symptomatologie identique dans l'entourage
◦ Rechercher les lésions :
▪ au niveau de localisations évocatrices (zones de peau fine) : espaces
interdigitaux, face antérieure des poignets, coude, aisselles, pli fessier, ombilic,
mamelons...
▪ les lésions sont souvent très polymorphes : papules, vésicules, pustules,
« sillon » caractéristique mais rare
▪ Prélever la sérosité après ouverture des sillons et vésicules cutanés et raclage
(scratching-test).
▪ Déposer cette sérosité sur une lame et recouvrir d'une lamelle.
▪ Faire parvenir rapidement au site technique
3.4.7 Recherche de Pytiriasis versicolor par scotch-test
Prélever des squames cutanées à l'aide d'un scotch adhésif transparent au niveau des lésions
hypo ou hyper-pigmentées.
Coller le scotch sur une lame et la faire parvenir au site technique
3.4.8 Recherche d’Herpès virus :
◦ Repérer les lésions vésiculaires, percer les vésicules et gratter le fond à l'aide d'un
écouvillon.
◦ Faire 2 étalements circulaires (1cm de diamètre) sur 2 lames avec le même
écouvillon.
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◦ Il est possible de fixer les lames à l'acétone
◦ S’il n’y a pas de lésion, la recherche peut s’effectuer au niveau de l’endocol.
Si recherche par PCR : décharger l' écouvillon sur milieu M4RT fourni par
Cerba.
3.5 Les prélèvements dans le cadre d'un bilan hématologique

Fait par un médecin biologiste, sur rendez-vous

Les indications du prélèvement ainsi que le contexte clinico-biologique doivent être
mentionnées sur l'ordonnance
Les
analyses
complémentaires
éventuelles
doivent
être
précisées
(immunophénotypage,
biologie
moléculaire,
cytogénétique,
culture
des
progéniteurs...)

3.5.1 Myélogramme

Le descriptif du geste est consultable en ligne :

lien (SFH 2003) vers : Guide_Bonnes_Pratiques des ponctions médullaires
3.5.2 Biopsie ostéo-médullaire
Lien vers procédure SFH : Réalisation d'une biopsie ostéo-médullaire
3.5.3 Ponction ganglionnaire


Matériel nécessaire : aiguille fine, seringue de 5 ou 10 cc, compresses stériles,
désinfectants (type Bétadine), sérum physiologique ou alcool 70°
Préparer une seringue (sans aiguille) remplie d'air

Aseptiser soigneusement la peau (compresse stérile imbibée de Bétadine)

Maintenir le ganglion suspect entre deux doigts


Faire pénétrer une aiguille fine dans le ganglion en la tournant doucement pour bien
« carotter » le prélèvement.
Récupérer l'aiguille, la monter sur la seringue

Chasser l'air de la seringue pour projeter le prélèvement sur une lame

Étaler le prélèvement pour obtenir un frottis grâce à une deuxième lame

Recommencer la manœuvre afin de disposer de 2 – 3 lames analysables

Comprimer si besoin, nettoyer la peau au sérum physiologique ou à l'alcool 70°
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3.6 Frottis cervico-vaginal
3.6.1 Généralités
A
Salle de prélèvement bactériologique
Elle est verrouillable et garantit une isolation phonique et visuelle.
Il y règne une propreté rigoureuse des locaux et ustensiles (poubelles spécifiques pour
déchets et papiers jetables).
B
Responsabilités
Les prélèvements peuvent être réalisés par un médecin ou un biologiste habilité.
C
Matériel utilisé

gants à usage unique : LE PORT DES GANTS EST OBLIGATOIRE

spéculum stérile en plastique à usage unique

brosse à usage unique et milieu de conservation (ThinPrep PAP test)

la feuille de renseignements doit être complétée au moment du prélèvement
3.6.2 Déroulement

Installer la patiente en position gynécologique

Ne pas prélever lors de la période menstruelle

En cas de difficultés à visualiser le col, réintroduire le spéculum en demandant à la
patiente de placer ses poings serrés sous ses fesses.
A
Frottis en milieu liquide :

utiliser la brosse prévue à cet effet

introduire les soies centrales de la brosse dans l'orifice de l'endocol assez
profondément pour que les soies les plus courtes soient en contact avec le col.
Faire tourner la brosse plusieurs fois dans le sens des aiguilles d'une montre

Rincer la brosse dans le flacon de solution de conservation en poussant la
brosse plusieurs fois au fond du flacon. Pour finir, tourner vigoureusement la
brosse pour libérer ce qui reste de substance. Ne pas laisser la tête de la brosse
dans le flacon.
 Identifier le prélèvement.
B
Frottis sur lame :

Faire 3 lames à l'aide d'une spatule de Ayre et d'un écouvillon :

1 lame en prélèvement au niveau du vagin (avec spatule)

1 lame en prélèvement au niveau de l'exocol (avec spatule), à la jonction endo
- exocol

1 lame en prélèvement au niveau de l'endocol (avec écouvillon)
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
Laisser sécher les lames à plat; les identifier (nom et localisation)

Fixer ensuite rapidement avec le fixateur adéquat.
3.7 Test de Hühner

Le prélèvement se fait sur rendez-vous au niveau d'un site analytique

S'assurer du bon respect des préconisations (cf « préconisations patients »)

Installer la patiente en position gynécologique

Après pose d'un spéculum, mise à jour du col utérin et nettoyage de l'exocol si besoin
à l'écouvillon.

Apprécier le degré d'ouverture du col et l'abondance de la glaire (de 0 à +++)

Introduire un cathéter adapté de type Aspiglaire dans l'endocol. Aspirer doucement la
glaire : la dépression ne doit être ni trop forte (risque de saignement ou de mélange de
la glaire de l'endocol et de l'exocol) ni trop faible (absence d'aspiration de la glaire qui
est un milieu très visqueux)

Un prélèvement au niveau de l'exocol et du vagin permet une interprétation
dynamique de la progression des spermatozoïdes, notamment lorsque ceux-ci ne sont
pas retrouvés au niveau de l'endocol.

Le transport de la glaire doit être rapide pour ne pas retarder l'examen microscopique
qui doit être immédiat.
4 Conservation et transport des échantillons
Les conditions de conservation sont un maillon essentiel de la qualité des résultats. Nous vous
demandons de prendre toutes les précautions utiles, par ex : ne pas déposer les coffrets près de
la bouche de chauffage ou de climatisation de votre véhicule, sur le tableau de bord,…
Il est également recommandé de stocker dans le véhicule le minimum de coffrets non-utilisés
afin d’éviter d’éventuels chocs thermiques préjudiciables à la bonne conservation des
anticoagulants contenus dans les tubes.
- Délai et stockage des échantillons, délais pour prescrire analyse supplémentaire, répétition
des analyses en raison d'une défaillance analytique ou des analyses complémentaires du
même échantillon primaire :
Annexe "Conservation des échantillons biologiques"

Certaines analyses nécessitent une centrifugation rapide : cf catalogue Medibio et BPR
www.medibiolab.fr et www.bprlab.com
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
5 Catalogue des principales analyses Medibio
Pour les analyses les plus courantes, se référer à la fiche couleurs de tubes (§ 3.1.3)
Lien : Catalogue des analyses Medibio et BPR
6 Conduite à tenir en cas d'incident de prélèvement ou d'accident
d'exposition au sang
 en cas d’hématome important, de tentatives multiples ou de
douleur sur le trajet nerveux :
 rassurer le patient,
 appliquer un traitement local d’appoint, ou un pansement alcoolisé,
 changer de préleveur si nécessaire
 lui proposer de nous recontacter à terme pour contrôler l’évolution
 ne pas hésiter à faire intervenir un biologiste
 renseigner l’informatique au niveau des renseignements cliniques avec la
mention : « prélèvement difficile »
 renseigner l’informatique avec le code « COM » (texte libre non éditable)
 en cas de malaise :
 surélever les jambes du patient
 le stimuler

lui proposer à boire, un sucre +/- avec de l’alcool de menthe
 renseigner l’informatique
 En cas d'accident d'exposition au sang (AES) :
cf page suivante
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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Manuel de Prélèvements – Version 4
7 Intérêt clinique des examens de routine
Lien vers le site : www.labtestonline.fr
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Manuel de Prélèvements – Version 4
8 Annexes
8.1 Annexe : Liste des analyses à conditions particulières (SFBC 2011)
LISTE DES ANALYSES NÉCESSITANT D'ÊTRE À JEUN (minimum 8h, 1 verre
d'eau)
ACIDES GRAS
APOLIPOPROTÉINES A1 ET B
BILAN LIPIDIQUE (Cholestérol,
Triglycérides)
CROSS-LAPS sérum et urines – CTX
EAU LIBRE : clairance
FER – SATURATION
GASTRINE (10 h de jeûne minimum)
GLUCOSE A JEUN
HELIKIT (ne pas boire ni fumer)
HOMOCYSTÉINE
LDL, NORDIN (index de) : avec ou sans
hydroxyproline
NTX (TELOPEPTIDES N-Terminal collagène
I) : urines
TAUX DE REABSORPTION TUBULAIRE
DU PHOSPHORE
TESTOSTERONE BIODISPONIBLE
XYLOSE
Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral)
ACTH
le matin, à jeun, non stressé +/- 16 et 24h. A
congeler dans l’heure.
Aldostérone
Le matin
Corticostérone, Composé S (11Le matin entre 7 et 10h
désoxycortisol), 21-désoxycortisol, DOC (11désoxycorticostérone)
Cortisol (Composé F)
Rythme nycthéméral : prélever à 8h (taux
maximal), à 16-17h (taux minimal) ou 24h
Cross-laps
Le matin avant 9h toujours à la même heure
(taux maximal la nuit) à jeûn
Cycle glycémique – C-peptide – Insuline
Bien respecter les heures du cycle
17-hydroxy Pregnénolone et Pregnénolone
Sulfate
Le matin entre 7 et 10h (taux maximal)
Prolactine
Entre 8 et 12 heures à jeun et après un repos de
20 minutes, en première partie de cycle chez la
femme
PTH (parathormone)
Prélèvement le matin
Pyridinoline et désoxypyridinoline urinaires Maximum le soir ou la nuit : 2ème urines du
matin (toujours à la même heure)
Rénine-Aldostérone
Le matin entre 7 et 10h –
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position :
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral)
position debout : après 1h de déambulation
position couchée : après 1 h minimum de
repos, allongé en salle de prélèvement
régime normosodé – Noter traitements (antihypertenseurs-spironolactone) si impossible de
les arrêter
Sulfate de DHA, Déhydroépiandrostérone
(DHEA)
Le matin
T3, T4, TSH
Le matin
Analyses nécessitant un régime alimentaire particulier
Aldostérone (sang et urines)
Régime normosodé (80-250 mmol/24h de
natriurèse)
Ammoniémie
Ne pas fumer dans les 6 heures précédant le
prélèvement
CATHÉCHOLAMINES ET DÉRIVÉS
METHOXYLES:
Éviter dans les 48 heures avant le prélèvement
et pendant la période de recueil des urines de
24h, la consommation de
Cathécholamines et dérivés méthoxylés
(plasma ou urines)
Ac.homovanilique (HVA) (urines),
Ac. Vanylmandélique (VMA) (urines)

banane, vanille, thé, café, chocolat
surtout

agrumes, tomates
Sérotonine et
Éviter dans les 48 heures précédant le dosage
Ac. 5-hydroxy indol acétique (5HIA)(plasma la consommation de
et urine
 banane, chocolat,

fruits secs, agrumes, avocat, tomate,
prune, kiwi, ananas,

mollusques
Autres analyses à conditions particulières
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Catégories d'analyses
Conditions de prélèvement
Renseignements à obtenir
Bactériologie, mycologie,
parasitologie
à distance de toute
thérapeutique antibiotique (48
heures) ou antifongique (21
jours pour les ongles et
cheveux, 7 jours pour la peau)
fiche de renseignements remplie
par le patient (recueil à domicile)
fiche de renseignements annotée
par le préleveur (prélèvement au
laboratoire)
Hémoculture
Au moment du pic thermique
fiche de renseignements à
remplir
Prélèvements génitaux
ni toilette, ni rapport sexuel
Fiche de renseignements à
dans les 24 heures précédentes, remplir
éviter la période des règles
Scotch test
Le matin au réveil sans être allé à
la selle
Spermoculture
De préférence au laboratoire et Fiche de renseignements remplie
impérativement si
par le patient
spermogramme associé
Test de HUHNER
Au moment du pic ovulatoire
ou selon prescription
Date des dernières règles,
thérapeutique en cours, heure du
rapport, fiche de renseignements
à remplir par le préleveur
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Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Catégories
d'analyses
Manuel de Prélèvements – Version 4
Conditions de prélèvement
Agglutinines
irrégulières
Coagulation,
Hémostase
Renseignements à
obtenir
¨Préciser la date d'une
éventuelle injection
d'anti-D (Rophylac®)
HBPM (Fraxiparine®, Lovenox®,
Traitement
Fragmine®, Clivarine®, Innohep®, Fraxodi®) si anti-coagulant en cours
dosage Héparinémie ou anti-Xa : Prélèvement 4
Antécédents
à 5 heures après l'injection
(thrombose,
Protéine C, S : à distance d’un
hémorragies)
traitement par AVK (sauf prescription contraire)
ou 1 mois après arrêt du traitement AVK
AT III : à distance d’un traitement par
héparine ou d'une prise d'oestrogènes (1 mois)
Anticoagulant circulant (ne pas faire
chez patient en cours de traitement à l'Héparine)
Temps de saignement pas de prise
d'anti-agrégants plaquettaires depuis 7 à 10 jours
sauf sur prescription explicite
COCKROFT
(clairance estimée
de la créatinine)
Traitement éventuel
Age, sexe, poids
Drogues :
A faire impérativement au laboratoire, protocole Date, heure et lieu du
dépistage urinaire strict de recueil : s'assurer du recueil effectif au recueil, traitement
(amphétamines,
laboratoire, couleur du recueil (pour éviter
médicamenteux
benzodiazépines, dilution par eau, vérifier éventuellement par
barbituriques,
mesure de la densité), température
cannabis, cocaïne,
morphine/opiacés,
métamphétamines,
ecstasy,
méthadone,
antidépresseurs
tricycliques)
Electrophorèse de
l'Hémoglobine
Age, origine ethnique,
transfusions éventuelles
Electrophorèse des A distance des produits de contrastes iodés : pic
protéines
migrant en alpha, bêta ou gamma
Les traitements antibiotiques peuvent donner une
fausse bisalbumine
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Catégories
d'analyses
Glucose-6phosphate
déshydrogénase
(G6PD) et
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Conditions de prélèvement
Renseignements à
obtenir
Ne pas réaliser après une transfusion sanguine
(intervalle : 3 semaines)
Pyruvate Kinase
Groupe sanguin
Nécessité de deux déterminations sur deux
Sexe, date de naissance,
prélèvements distincts pour délivrer une carte de nom de naissance, nom
groupe sanguin
marital, prénom
Hormonologie de
la reproduction
(FSH, LH,
ESTRADIOL,
PROGESTERON
E, PROLACTINE,
BHCG, analyses
spécialisées)
Date des dernières
règles, fiche de
renseignements annotée
par le préleveur
Médicaments :
Dosage en phase résiduelle : juste avant une
Digoxine,
nouvelle prise
Phénytoïne(DiHydan®),
Carbamazépine(T
égrétol®),
Phénobarbital,
Théophylline,
Ac.valproique
(Dépakine®)
Posologie, date et heure
de la dernière prise,
fiche de renseignements
annotée par le préleveur
Antibiotiques :
Vancomycine et
aminosides
:Amikacine
(Amiklin®),
Gentamycine
(Gentalline®),
Nétilmycine
(Nétromicine®),
Tobramycine
(Nebcine®
Tobrex®)
Test au LHRH
Dosage en phase résiduelle : 30min avant une Posologie, date et heure
nouvelle injection
de la dernière injection,
fiche de renseignements
au moment du pic sérique : 30min après la fin annotée par le préleveur
d'une injection de 30min
Notion d'insuffisance
rénale
Du 2ème au 5ème jour du cycle
Absence de traitement
œstroprogestatif depuis
1 mois
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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Catégories
d'analyses
Trisomie 21 :
dépistage au 2ème
trimestre
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Conditions de prélèvement
De la 15ème semaine d'aménorrhée à la 18ème
semaine d'aménorrhée (soit 14SA révolues à
17SA+6jours)
Renseignements à
obtenir
Attestation du médecin
complétée : date de
naissance, date de la
grossesse, poids,
tabagisme, gémellité,
date du prélèvement,
renseignements
échographiques, nom et
adresse du médecin
prescripteur,
+ Consentement éclairé
signé
Trisomie 21 :De la 111S+0jours à 13S+6jours d’aménorrhée
dépistage au
1er trimestre
Typage HLA
Numéro de réseau
périnatalité
Attestation du médecin
complétée : date de
naissance, date de la
grossesse, poids,
tabagisme, gémellité,
date du prélèvement,
renseignements
échographiques, nom et
adresse du médecin
prescripteur
+ Consentement éclairé
signé
Uniquement dans le cadre de l’association HLA- Consentement éclairé
Maladies
Prélèvements particuliers ou délicats : guide BPR ou CERBA
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Bleu clair : centrifugation rapide à +4°C
*** Congélation
Analyses spécialisées nécessitant un traitement pré-analytique particulier
ACTH***
Réaliser les prélèvements sur tubes EDTA réfrigérés
Centrifugation immédiate à +4°C(si impossible, placer l'échantillon dans la
glace immédiatement après le prélèvement)
Congélation rapide***
Ammoniémie***
Réaliser les prélèvements sur tubes EDTA
Centrifugation immédiate(si impossible, placer l'échantillon dans la glace
immédiatement après le prélèvement) à +4°C
Congélation rapide***
Calcitonine
Charges virales
HCV, HBV
Centrifugation à +4°C après formation du caillot
HIV, Prélever 2 tubes EDTA par charge virale avec au moins 2ml dans chaque tube
Faire parvenir à BPR dans la journée
Coagulation
Centrifuger 15 mn à 2500 g - Décanter puis re-centrifuger 15 mn à 2500 g
spécialisée***
Décanter et préparer 2 aliquots de 2 ml dans 2 tubes
(Facteurs, Willebrand,
Congeler rapidement***
RPCA, AT3, Prot C et S)
Gastrine
Centrifugation à +4°C après formation du caillot
HLA27
Prélever le plus proche possible de l'heure d'expédition du prélèvement
Immunophénotypage
lymphocytaire
Transmettre les renseignements cliniques ainsi que la numération leucocytaire,
le nombre total de globules blancs et de lymphocytes (en valeur absolue),
Numération CD4/CD8
L'échantillon doit parvenir au laboratoire dans les 30 heures qui suivent le
prélèvement (du lundi au jeudi matin),
Urines :
Envoyer l'échantillon stabilisé à pH = 2
Sérotonine, 5HIA,
Adrénaline et NorA. ,
Métanéphrine
Normétanéphrine
Pour les urines de 24 heures :
et Stabiliser le recueil en ajoutant 10-15 ml de 6N HCl puis aliquoter un
échantillon de 4 ml pour envoi,
Mutations des gènes Prélever sur tube EDTA et l'envoyer à 4°C sous 24h.
F II, V, BCR- ABL, de
l'hémochromatose
Homocystéine
Centrifuger immédiatement ou Conserver les échantillons sur de la glace
Acide lactique
Si possible, ne pas utiliser de garrot lors du prélèvement.
Centrifuger dans les 15 minutes qui suivent le prélèvement.
Calcium ionisé***
Centrifugation immédiate sans ouvrir le tube, transvaser plasma dans
deuxième tube sec vacutainer en utilisant aiguille longue
Congélation rapide ***
Magnésium
érythrocytaire
globulaire
NSE***
Utiliser un tube sans gel.
ou Centrifuger après prélèvement ; Décanter en rejetant le plasma;
Conserver que le culot globulaire à température ambiante.
Centrifugation dans l'heure qui suit le prélèvement. Congélation rapide***
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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Manuel de Prélèvements – Version 4
8.2 Annexe Consentements
8.2.1
« Consentement en vue d'un examen »
CONSENTEMENT EN VUE D’UN EXAMEN
DES CARACTERISTIQUES GENETIQUES
(décret n° 2000-570 du 23 juin 2000)
Je soussigné(e) M…………………………………………………………………
Né(e) le……………………………….. à ………………………………………..
Demeurant à : …………………………………………………………………….
…………………………………………………………………………………….
Reconnais avoir été informé(e) par le Dr……………………………………sur
les examens des caractéristiques génétiques qui seront réalisés à partir du sang
qui m’a été prélevé, dans le but de confirmer ou infirmer le diagnostic de
maladie génétique.
Je donne mon consentement pour ce prélèvement et je reconnais avoir reçu l’ensemble des
informations conformément aux articles R.162-16-7 et R.145-15 du code de la Santé Publique
permettant la compréhension de cet acte biologique et sa finalité.
Fait à………………….le…………………
(SIGNATURE)
CONTACT :
Dr Frank MENTZ
[email protected]
Dr Benoît CUILLERIER [email protected]
MEDIBIO – Laboratoire d’Analyses de Biologie Médicale, 5 bd du Chinchon 45200 Montargis
Tél. : 02.38.85.07.08 – Fax. : 02.38.89.09.22 – e-mail : [email protected]
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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8.2.2 Dépistage sanguin du risque accru de trisomie 21 fœtale
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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Manuel de Prélèvements – Version 4
8.3 Annexe : liste des principales interférences et variations
physiopathologiques
Pour toutes les analyses spécialisées, se reporter au(x) guide(s) fournis par le(s) laboratoire(s)
spécialisé(s). Document non exhaustif.
Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
Interférences
alimentaires
ACE
Pathologies bénignes digestives (cirrhose) et
pulmonaires, tabagisme, I.rénale chronique :
➚
Acide
homovanilique
Acide
vanylmandéliq
ue (VMA)
Acide urique
Aldostérone
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Banane, vanille, thé,
café, chocolat : ➚
Diurétiques
qui
modifient
l’excrétion
urinaire de l’acide
urique
et
anticancéreux : ➚
Hypo-uricémiants,
Alphaméthyldopa,
déféroxamine,
dobésilate
de
calcium, vitamine
C:➘
Régimes
hyperprotidiques et
hypercaloriques, et En cas de fièvre : ➚
après
ingestion Pendant l’été : ➚ (5 à 7 % plus élevé que
d’alcool : ➚
l’hiver)
Pendant phase folliculaire : ➚
Période de jeûne 5 premiers mois de la grossesse : ➘
prolongé : ➚
Fumeurs : ➘
Corrélation positive avec le poids chez les
adultes (nette surtout pour les poids > 80 kg)
Régime normosodé
Rythme
nycthéméral,
maximale le matin
concentration
Au cours de la grossesse :
-➚ à partir de la 12ème semaine de gestation.
dans le sang maternel les variations
sont fonction de différentes situations
normales ou pathologiques :
Alpha foetoproteine
(AFP)

le poids de la parturiente

la présence d’un ou plusieurs fœtus

les troubles rénaux du fœtus et/ou
la présence de malformations
fœtales
Les taux sont très élevés à la naissance et
dans les premiers mois, en particulier chez
le
prématuré,
puis
diminuent
progressivement pour atteindre les valeurs
de l’adulte vers l’âge de 8 mois.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
Amylase
Aspirine,
diurétiques,
corticostéroïdes,
contraceptifs
oraux,
indométacine
et
dérivés
morphiniques... :
➚
Interférences
alimentaires
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Défaut d’élimination rénale : ➚
Remarque : La salive et la sueur étant
particulièrement riches en amylase attention
à toute contamination, du prélèvement ou
des réactifs
Antithrombine Oestrogènes : ➘
Transplantations rénales ou hépatiques : ➚
des taux sériques.
Grossesse et pré-éclampsies : ➚
Exercice physique intense : ➚ des taux
urinaires.
2
microglobuline
Bilirubine
De
nombreux
médicaments ou
leur
métabolites
Jeûne : ➚
peuvent
induire
une interférence
analytique
Remarque : Eviter la stase veineuse et très
grande sensibilité de la bilirubine à la photo
oxydation par la lumière (oxydation
température dépendante)
Calcium
Traitements
au
long cours par les
Jeûne : ➚
diurétiques
thiazidiques : ➚
Exercice physique intense : ➚
Patient debout : ➚ du calcium total
Grossesse : ➘
Remarque : Eviter la stase veineuse et
l’utilisation de gants talqués
Cholestérol
Anticoagulant : ➚
Alimentation :
nécessité d’un jeûne
strict de 12 heures
avant
toute
détermination
Alcool : ➚
Jeûne prolongé : ➚
Traitements
oestrogéniques : ➚
Cortisol
Corticothérapie :
➚
Remarque : Sevrage
alcoolique chez les
éthyliques,
une
semaine avant les
dosages
Obésité : ➚
Grossesse : ➚ surtout dans les dernières
semaines
Cycle menstruel : Variation
Stress : ➚
Fumeurs : ➚
Grossesse : ➚
Fumeurs : ➚
Stress : ➚
Insuffisance hépatique sévère : ➘
Cycle nycthéméral : maximum à 8h
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
Créatinine
Salicylés, certains
diurétiques, acides Jeûne et régime
ascorbique : ➚
végétarien : ➘
Régimes riches en
Antiépileptiques : protides : ➚
➘.
Créatine
Kinase
(CK)
Médicaments
administrés
en
intramusculaire :
➚ (pouvant être
importante en cas
d’injections
répétées)
Certains
traitements
hypocholestérolémiants : ➚
D-Dimères
Thrombolytiques➚
Digoxine
Vérapamil,quinidi
ne, -bloquants,
amiodarone, antiac.,
charbon
activé, hydroxydes
d’aluminium,
cholestyramine,
salazopyrine,
phénobarbital,
phénytoïne,
diurétiques
hypokaliémiants,
laxatifs, insuline,
glucocorticoïdes,
amphotéricine B,
sels de calcium : ➚
ou ➘ selon les cas
Examen
bactério,
parasito et
mycologique
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Effort physique intense : ➚
Anorexies mentales : ➚
Fumeurs : ➚
Cycle nycthéméral : maximum à 8h et 16h
Grossesse et chez le sujet alité : ➘
Exercice physique intense : ➚
Couleur de peau Noire : ➚
Grossesse : ➚ de la clairance.
Insuffisance rénale : ➚ de la ½ vie
Troubles thyroïdiens : ➚ des concentrations
plasmatiques chez les hypothyroïdiens.
Malabsorptions intestinales : ➘ de la
biodisponibilité des digitaliques.
Insuffisance cardiaque : ➘ de l’élimination.
Régimes
végétariens : ➘ à
court terme, (à long
terme, sans effet).
Electrophorèse
des protéines
Estradiol
Interférences
alimentaires
Grossesse : ➘
Exercices physiques prolongés : ➚
Patient debout : ➚
Remarque : Eviter la stase veineuse
Estrogènes : ➚
A effectuer à distance d'un traitement
antibactérien ou fungique
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
Fer
Contraception
orale
(progestérone) : ➚
Vitamine C : ➚
l'absorption
Traitement
par
desferrioxamine:
Fer complexé non
mesurable
Grossesse : ➚ sous l’effet de la progestérone
Aliments enrichis en ou ➘ par déficit en fer.
fer et vitamines : ➚
Cycle nycthéméral : maximum le matin.
Régime végétarien :
➘
Cycle menstruel : minimale après la
menstruation
Fibrinogène
Thrombolytiques :
➘
Insuffisance hépato-cellulaire et CIVD
(coagulation intra-vasculaire disséminée) :
➘
Grossesse : ➚
Syndromes inflammatoires et néphrotiques :
➚
Patients VIH séro-positifs et VIH : ➚
Stress : ➚
Gamma
Glutamyl
Transferase
(
GT)
Antiépileptiques
(phenobarbital,
phenytoine),
certains
hypolipémiants,
contraceptifs
oraux,
antidepresseurs :
➚.
Gaz du sang
Bronchodilatateurs,
diurétiques
barbituriques,
Repas :
Alcalose
oxygénothérapie, post-prandiale
… modifient les
paramètres
respiratoires.
Glucose
Corticoïdes : ➚
Interférences
alimentaires
L’alcool surtout en
ingestion chronique :
➚
Exercice physique: ➘ du pH artériel et de la
PCO2
Altitude : ➘
Fumeurs : ➘ de la PO2
Alimentation :
nécessité d’un jeûne
strict de 8 heures
avant
toute Cigarette avant la prise de sang, exercice
détermination
physique, stress : ➚.
L’alcool (ingestion
chronique),
la
caféine : ➚
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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LBM MEDIBIO
Analyses
demandées
HDL
Hémoglobine
Glyquée
Hydroxyprolinurie
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Interférences 
médicamenteuses
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Interférences
alimentaires
Oestrogènes
(pilule
oestroprogestative,
traitement
substitutif de la
Alcool : ➚ de
ménopause),
fraction HDL3
corticothérapie: ➚
Progestatifs (type
norstéroïdes
androgéniques) : ➘
la
Patients
non
diabétiques
en
état
d’insuffisance rénale : ➚
Hors technique HPLC : attention aux
hémoglobinopathies
Acide
acétylsalicylique,
dérivés
de
l’éthanol : ➚
viande,
gelée,
gélatine dans les 48
heures précédant le
dosage : ➚
Exercice physique : ➚.
Grossesse : ➚ au cours du 3ème trimestre
LDH
Magnésium
Exercice physique : ➚
Grossesse : modification des HDL
Tabac, Obésité : ➘
Alimentations
parentérales
prolongées : ➘.
Remarque : Eviter la stase veineuse
Cas de stress chronique : ➘
Chocolat,
banane,
Traitement
par
Métanéphrines
agrumes, thé, café :
bêta bloquants
➚
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
Numération
Formule
Sanguine
Anémies,
thrombopénies, ou
agranulocytoses
immunoallergiques
ou
toxiques
:
Antimitotiques,
antibiotiques,
antiviraux,
diurétiques,
antalgiques, antiinflammatoires,
sels
d’or,
antithyroïdiens,
anticonvulsivants,
antiulcéreux,
psychotropes,
antidiabétiques,
héparine, etc
Hyperéosinophilie
iatrogène:
Certains
antibiotiques,
antifongiques,
psychotropes, antiépileptiques,
antidiabétiques
oraux,
cytotoxiques,
produits
iodés,
antiinflammatoires,
héparine, etc :
Anémies
macrocytaires
:
Antifoliques,
analogues
puriques
ou
pyrimidyques :
Grossesse : ➘ de l’hémoglobine, et ➚ de la
leucocytose avec polynucléose au cours du
3ème trimestre.
Altitude : ➚ de l’hémoglobine et du nombre
de globules rouges circulants
Exercice physique intense : ➚ du nombre
des globules rouges, de globules blancs et
du taux de l’hémoglobine.
Stress, exposition au froid, tachycardie
paroxystique, exposition au soleil et aux
rayons UV : ➚ de la leucocytose
Origine : Neutropénie modérée chez les
noirs d’Afrique, des Caraïbes et chez les
juifs
yéménites
et
polyglobulie
microcytaire observée chez les populations
originaires du pourtour méditerranéen
Fumeurs : ➚ de l’hémoglobine, du VGM et
hyperagrégabilité plaquettaire et de la
leucocytose avec polynucléose.
Ethylisme chronique : ➚ du VGM
Cycle nycthéméral : Hémoglobine diminue
l’après-midi
Ph. Alcalines
Oestrogènes et les
hypolipémiants : ➘
Anticoagulants
Malnutrition : ➘
oraux,
antiépileptiques :
➚
Grossesse : ➚ chez la femme enceinte à
partir de la 20ème semaine.
Enfants en période de croissance : ➚
Obésité : ➚ (surtout chez les femmes en
surpoids)
Interférences
alimentaires
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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LBM MEDIBIO
Analyses
demandées
Manuel de Prélèvements – Version 4
Interférences 
médicamenteuses
Interférences
alimentaires
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Consommation
de
légumes verts et de
viande
rouge
saignante dans les 72
h
précédent
le
dosage : ➚
Porphyrines
fécales
Potassium
Antiinflammatoires
Exercices physiques prolongés : ➘
Consommation
non
stéroidiens,
excessive de fruits, Exposition prolongée à la chaleur : ➘
bêta-bloquants …:
de réglisse : ➚
Pose du garrot trop longue : ➚
variations
chez
certains patients
Prolactine
Antiprolactine : ➘
Certains
antidépresseurs,
anxiolytiques
et
antiémétiques type
En post-prandial : ➚
Primpéran® : ➚
De
nombreux
médicaments
modifient le taux
de prolactine
Protéine C
Hypocoagulants
oraux de type
antivitamines K :
➘
Protéine S
Hypocoagulants
oraux de type
antivitamines K ,
Oestrogènes : ➘
Protéines
totales
PSA et PSA
Libre
Recherche de
sang dans les
selles
Régimes
végétariens : ➘ à
court terme, (mais à
long terme, ils sont
sans effet).
Malnutrition : Baisse
globale des protides
sanguins.
Stress : ➚
Grossesse : ➘
Exercices physiques prolongés : ➚
Patient debout : ➚
Remarque : Eviter la stase veineuse
Manipulations prostatiques : ➚
Éviter le prélèvement lors des épisodes de
constipation
sanglante,
hémorroïdes,
règles...
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
44/79
LBM MEDIBIO
Analyses
demandées
Manuel de Prélèvements – Version 4
Interférences 
médicamenteuses
d’un
Corticoïdes
au Influence
régime
hypersodé
ou
long cours : ➚
au contraire d’un
Diurétiques
régime
désodé
thiazidiques : ➘
prolongé.
TCA
AVK, hirudine (ou
ses dérivés),
thrombolytique,
antifibrinolytiques,
antithrombotiques
mélagatran /
ximélagatran :
Allongement du
TCA
Temps de
saignement
Aspirine,
anti
agrégants
plaquettaires : ➚
Temps de
Thrombine
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Banane, chocolat,
fruits secs, agrumes,
avocat, tomate dans
les 48 h précédent le
dosage : ➚
Sérotonine
Sodium
Interférences
alimentaires
Antithrombines
type
hirudine,
antithrombotiques
(mélagatran
/
ximélagatran) ;
traitements
fibrinolytiques:
Allongement du
temps
de
thrombine
Syndrome inflammatoire, grossesse, taux
élevé de facteur VIII et chez certains
patients ayant une résistance à la protéine C
activée : TCA mesuré peut être plus court
que celui du témoin normal
Déficit constitutionnel ou acquis en facteurs
VIII, IX, XI, XII, et dans une moindre
mesure en facteurs II, V, X et/ou en
fibrinogène ; en cas d’insuffisance hépatocellulaire ou de CIVD (coagulation intravasculaire disséminée), en cas de présence
d’anti-VIII ou anti-IX et en cas de carence
en vitamine K : Allongement du TCA
Insuffisance hépato-cellulaire ou de CIVD
(coagulation intra-vasculaire disséminée) :
Allongement du temps de thrombine
Hypofibrinogénémies (dans lesquelles le
fibrinogène fonctionnel et le fibrinogène
antigène sont abaissés dans les mêmes
proportions) et dysfibrinogénémies (dans
lesquelles le taux de fibrinogène fonctionnel
est abaissé tandis que le taux de fibrinogène
antigène est normal) : Allongement du
temps de thrombine
Présence d’héparine non fractionnée, de
taux significativement élevés de produits de
dégradation de la fibrine : Allongement du
temps de thrombine
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 45/79
LBM MEDIBIO
Analyses
demandées
TP
Manuel de Prélèvements – Version 4
Interférences 
médicamenteuses
Interférences
alimentaires
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
De
nombreux
médicaments sont
susceptibles
d’interférer dans le
métabolisme des
AVK
et
de
potentialiser
ou
réduire
l’effet
anticoagulant des
AVK (se référer
au
dictionnaire
Vidal®) ;
ces
interférences
peuvent conduire à
des variations de
l’INR.
Choux, choux-fleurs,
brocolis, foie de
porc, volaille, alcool,
et
vin : A éviter
pendant
le
traitement
Déficit constitutionnel ou acquis en facteurs
II, V, VII, X et/ou en fibrinogène ; en cas
d’insuffisance hépato-cellulaire ou de CIVD
(coagulation intra-vasculaire disséminée) et
en cas de carence en vitamine K :
Abaissement du taux de prothrombine.
Antithrombines
type
hirudine,
antithrombotiques
(mélagatran
/
ximélagatran) :
Abaissement du
taux
de
prothrombine.
Transaminases
:
(ASAT ALAT)
Antiépileptiques,
hypolipémiants,
contraceptifs
oraux,
Roaccutane : ➚.
Traitements
antihypertenseurs,
contraceptifs
oraux
(oestroprogestatifs
TRIGLYCERI
fortement dosés en
DES
œstrogènes) ;
glucocorticoïdes,
la
cyclosporine
chez les patients
transplantés : ➚
L’alcool en ingestion
chronique : ➚
Alimentation :
nécessité d’un jeûne
strict de 12 heures
avant
toute
détermination
Alimentation riche en
glucides à absorption
rapide, alimentation
riche
en
graisse
saturée,
boissons
alcoolisées : ➚.
Utilisation
d’huile
avec des acides gras
mono
ou
polyinsaturés : ➘

Grossesse : ➘

Déficit en vitamine B6, patients
dialysés : ➘

Exercice physique : ➚ (surtout
d’ASAT).
Grossesse : ➚
Obésité : ➚
Fumeurs : ➚
Alcoolisme chronique : ➚
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Analyses
demandées
Interférences 
médicamenteuses
TSH
Corticothérapie :
Abolition des pics
nocturnes de TSH
Dopamine : ➘
Amiodarone : ➚
T4
➚ pouvant aller
jusqu’à 13% dans
les
9
heures
suivant la prise de
lévothyrox®
UREE
VS
Corticothérapie :
➚
Interférences
alimentaires
Autres facteurs physiopathologiques
(effort physique, grossesses, pathologies,
…)
Grossesse : ➘ au 1er trimestre
Etats dépressifs : Abolition des pics
nocturnes de TSH
Insuffisance surrénalienne : ➚
Stress : ➚
Rythme
nycthéméral,
maximale le matin
concentration
Régime végétarien :
Grossesse : ➘
➘.
Effort physique prolongé : ➚
Cas d’hypercatabolisme protidique (jeûne,
Régime
fièvre,...) : ➚
hyperprotidique : ➚
La vitesse de sédimentation est modérément
accélérée en fin de grossesse et en période
menstruelle
L’aspirine et les
antiinflammatoires
non stéroïdiens : ➘
La polyglobulie et la présence abondante de
cryoglobulines : Empêchement de la
sédimentation des hématies, quelle que soit
la pathologie.
L’hypofibrinémie, l’hypohaptoglobinémie
et l’agammaglobulinémie : Empêchement
de la V.S. d’augmenter
L’anémie : ➚
La période post-prandiale : ➚
Références :

Bioqualité

« L'exploration de la thyroïde » Cahier de formation Bioforma n°14
8.4 Annexe : Préconisations patients
8.4.1 Objet et domaine d’application
Cette fiche d’instruction décrit les conditions à respecter pour réaliser un prélèvement
dans de bonnes conditions. Elle s’applique aux prélèvements réalisés par le patient et
dont la liste suit :

CBU, BK, Chlamydiae, mycoplasmes urinaires, Pose d’un urinocol

ADDIS ou HLM

Recueil des URINES DE 24 HEURES

Cytologie urinaire
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4


Recherche de Drogues urinaires
Coproculture, examen parasitologique des selles, recherche de
Clostridium difficile, adenovirus, rotavirus, recherche de sang dans les
selles, scotch test

Expectoration

Spermogramme, spermoculture, test de huhner

Helicobacter pylori
 Stéatorrhée, chimie des selles, examen fonctionnel de la digestion
créatorrhée.

Legionella pneumophila

TRP ou taux de réabsorption du Phosphore

Elastase

Epreuves dynamiques
8.4.2 Définitions et abréviations
Sans objet
8.4.3 Références

Rémic 2010,

Fiches de la phase pré-analytique :
http://www.sante-sports.gouv.fr/IMG/pdf/microbiologie.pdf
http://www.sante-sports.gouv.fr/IMG/pdf/parasitologie.pdf
8.4.4
Responsabilités
La responsabilité globale des préconisations à suivre appartient au patient. La personne
présente à l'accueil est responsable de la vérification des conditions de recueil.
8.4.5
Descriptif
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
RECUEIL D'URINES POUR ECBU
LABORATOIRES
BIOPLUS
MEDIBIO
MEDI+
RENSEIGNEMENTS CLINIQUES : EXAMEN CYTOBACTERIOLOGIQUE URINAIRE
Etiquette
Nom :…………………………………………………….
Prénom :………………………………………………..
Date de naissance :…………………………………
Dr :…………………………………… Date :…..…/………/……… Heure :………h………….
Contexte clinique :
Fièvre 
Grossesse(….. mois)

Diabète

Sensation de brûlure

Sonde urinaire 
Douleurs au niveau des reins ou du dos

Urinocol 
Traitement antibiotique en cours :
OUI
NON
e
Dialyse 
Malformation urinaire

Si oui lequel ?………………………………………
depuis quand ?….…………………………………..
Renseignements divers :…………………………………………………………………………….
PRECONISATIONS POUR LE PRELEVEMENT
1ères urines du matin ou si possible au moins 4h après miction
o
o
o
o
o
o
o
Se laver les mains.
Faire une toilette intime soigneuse (lingette désinfectante ou savon antiseptique).
Eliminer le premier jet dans les toilettes
Uriner ensuite dans le flacon stérile fourni par le laboratoire (sans toucher les parois ni l’intérieur
du couvercle) et le refermer soigneusement. Ne pas soulever l'opercule blanc.
Indiquer sur le flacon vos nom, prénom, date et heure d’émission.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans l’heure qui suit. En cas d’impossibilité, il peut
être conservé 12h au réfrigérateur (+4°C).
Le recueil doit être fait à distance de toute thérapeutique antibiotique et l’éventuel contrôle après
traitement doit être fait au moins 48 heures après l’arrêt du traitement.

Si recherche de Chlamydiae ou de mycoplasmes est demandée, recueillir le premier jet dans un
flacon distinct de celui utilisé pour le CBU

Pour la recherche de BK dans les urines, recueillir un échantillon des premières urines du matin, 3
jours consécutifs.

Recueil des urines par pose d’un urinocol :
o se laver les mains, mettre des gants et allonger l'enfant sur le dos
o Nettoyer soigneusement le méat urinaire et le périnée à l'aide de lingettes désinfectantes
(décalotter si possible le petit garçon). Rincer et sécher
o appliquer soigneusement l’urinocol afin qu’il n’y ait pas de fuite d’urine possible
o contrôler régulièrement : un urinocol resté en place 60 minutes doit être changé
o toute contamination même légère par des selles rend l’examen impraticable
o détacher l'urinocol de la peau et et le fermer en rabattant la zone collante sur l'urinocol.
o Introduire l’urinocol refermé dans le flacon à CBU et acheminer le tout au laboratoire dans l’heure
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 49/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recueil d’urines pour compte d’Addis
Hématies Leucocytes par Minute (HLM)
Intérêt :
Cette analyse consiste à mesurer le débit des hématies et des leucocytes passant dans les
urines. Ce recueil s’effectue sur la totalité des urines émises en 3 heures.
Préconisations pour le prélèvement :


3 heures avant le lever habituel :

Vider la totalité de la vessie dans les toilettes.

Boire un grand verre d’eau.

Noter l’heure sur le flacon fourni par le laboratoire (T0)

Se recoucher et rester allongé au repos pendant 3 heures.
3 heures après (le plus exactement possible):

Uriner dans le flacon fourni par le laboratoire pour recueillir la totalité des urines.

Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire le plus rapidement possible et au maximum dans
un délai de 4 heures.
Nb : Dans l'intervalle des trois heures, toutes les urines doivent être récupérées dans le flacon.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recueil des URINES DE 24 HEURES
Intérêt :
Ce recueil permet l'analyse de certains paramètres de biochimie ou d’hormonologie
urinaire.
Régimes alimentaires :
 pour sérotonine et 5HIA urinaires : éviter dans les 48 heures précédant le dosage la
consommation de banane, chocolat, fruits secs, agrumes, avocat, tomate.
 Pour Hydroxyprolinurie : éviter dans les 48 heures précédant le dosage la
consommation de viande, de gelée ou de gélatine.
 Pour Métanéphrines et catécholamines : régime alimentaire excluant chocolat,
banane, agrume et comprenant une consommation modérée de thé et de café
dans les 48 heures précédant le recueil. Le traitement par les bêta-bloquants peut
interférer dans le dosage.
 Pour acide homovanilique (HVA) et acide vanyl-mandélique (VMA) : éviter dans
les 48 heures précédant le dosage la consommation de banane, vanille, chocolat.
 Pour aldostérone urinaire : préciser le cas échéant, régime normosodé ou régime
sans sel.
 Pour les autres paramètres : pas de régime particulier
Préconisations pour le prélèvement :
 Au lever :
Vider la totalité de la vessie dans les toilettes et noter l’heure sur le flacon
 Pendant 24 heures :
Recueillir la totalité des urines dans le flacon jusqu’à l’heure indiquée au départ
y compris les dernières urines à l’heure indiquée. Conserver le flacon bouché au
frais à 4° C. Si le flacon s’avère insuffisant, recueillir le surplus d’urines dans un
flacon propre (bouteille d’eau minérale, par exemple).
 Identifier le(s) flacon(s) avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le
laboratoire.
La totalité des urines de 24 heures doit être acheminée au laboratoire le jour du
recueil des dernières urines dans un délai maximal de 4 heures.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 51/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recueil et fixation des urines pour étude
cytologique
Le recueil a lieu exclusivement au laboratoire.
L’échantillon à analyser doit être préalablement issu de la deuxième miction du matin, ou de
la fin de la première miction en éliminant le premier jet, après avoir fait boire et marcher le
patient 30 minutes à 1 heure auparavant.
Ne jamais examiner les urines des 24 heures et les urines de la première miction.
L’échantillon doit être transmis immédiatement en technique.
Questionnaire :
(il est indispensable de remplir ce questionnaire et de le rapporter au laboratoire)
NOM
:
PRENOM :

Signes d'infection urinaire : brûlures, fièvre...
OUI

NON


Présence de sang dans les urines
OUI

NON


Traitement en cours (chimiothérapie, radiothérapie)
OUI

NON


Antécédent de chirurgie de la prostate
OUI

NON


Antécédent de chirurgie de la vessie
OUI

NON

PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recueil des selles :Coproculture, Examen
parasitologique des selles, Clostridium difficile,
Adenovirus, Rotavirus.
NOM
:
PRENOM :
Intérêt :
La coproculture et l’examen parasitologique des selles ont pour objet de mettre en évidence
l'agent responsable d'une diarrhée infectieuse.(bactérie, parasite, virus,…)
Préconisations pour le prélèvement :
Cet examen est à effectuer, si possible, lors des épisodes diarrhéiques et de préférence le
matin. Il est préférable de faire cet examen à distance de tout traitement notamment
antibiotique ou au moins 48 heures après l’arrêt de la thérapeutique lors d’un contrôle après
traitement.

Recueillir un échantillon de selles (au minimum de la taille d’une noix) dans le flacon
fourni par le laboratoire.

Pour les nourrissons, éviter de transmettre la couche et, en cas de diarrhée, poser un
urinocol afin d’éviter toute contamination par les urines.

Identifier le flacon avec votre nom et prénom ainsi que cette fiche si cela n'a pas
été fait par le laboratoire.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les deux heures.
Questionnaire :
(il est indispensable de remplir ce questionnaire et de le rapporter au laboratoire)

Notion d’un voyage récent à l’étranger
OUI

NON

Si OUI date : __________________ et lieu : _________________________________

Douleurs abdominales, diarrhées
OUI

NON


Fièvre
OUI

NON


Contrôle après traitement
OUI

NON


Antibiotique en cours
OUI

NON


Contrôle dans le cadre de la Médecine du travail
OUI

NON

OUI
OUI


NON
NON



Notion de contamination alimentaire
(repas pris en collectivité, etc…)
 Antécédents parasitaires connus
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 53/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Scotch test
Intérêt :
Ce test permet de mettre en évidence les œufs d’Oxyures (vers intestinaux), très fréquents
chez les enfants et très contagieux, entraînant des démangeaisons et troubles du sommeil.
Préconisations pour le prélèvement :
A effectuer au lever AVANT la toilette et les premières selles.

Utiliser le matériel fourni par le laboratoire : lames et scotch transparent.

Appliquer le coté adhésif sur les plis de la marge anale et le maintenir en
appuyant quelques secondes.

Appliquer le morceau de scotch sur la lame en verre

Renouveler l’opération avec une seconde lame

Replacer les 2 lames dans l’étui.

Identifier l'étui avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.

Transmettre l’étui au laboratoire.
Recherche de sang dans les selles
Régime alimentaire :
Pas de régime alimentaire particulier
Contextes particuliers :
Ne pas faire le test en cas d'hémorroïdes sanglantes, de constipation sanglante, de règles ou de
sang dans les urines. Attendre la fin des saignements avant de réaliser l'examen
Préconisations :

Identifier les flacons à l’aide du nom et du prénom si cela n’a pas été fait par le
secrétariat du laboratoire

Recueillir les selles dans les flacons fournis par le laboratoire

Garder à température ambiante et transmettre au laboratoire dans les 2 heures.

Ou garder au réfrigérateur et transmettre au laboratoire dans les 8 heures.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
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LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recueil de sperme
NOM
:
PRENOM :
NOM DE LA PARTENAIRE : _______________________________
Intérêt :
Ce prélèvement permet l'étude de tous les paramètres du sperme. Il est effectué sur rendezvous impérativement au laboratoire aux horaires qui vous auront été indiqués ou
exceptionnellement au domicile du patient (dans le cas de contrôle de vasectomie par
exemple).
Matériel : réceptacle pour spermogramme à l’exclusion de tout autre dispositif y compris
pour les recueils exceptionnels au domicile du patient.
Préconisations pour le prélèvement :
Le prélèvement doit être effectué après une abstinence sexuelle de 3 à 5 jours. Ne pas utiliser
de préservatif si le prélèvement a lieu au domicile.
 Videz votre vessie
 Effectuez un lavage soigneux des mains au savon liquide.
 Se laver très soigneusement le gland avec les mains et le savon liquide ou avec une
lingette désinfectante remise par le laboratoire.

Recueillir la totalité de l’éjaculât dans le flacon stérile mis à disposition par le
laboratoire (Ne rien perdre du prélèvement ou le mentionner lors de l’enregistrement du
dossier).

Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
Noter impérativement l’heure du recueil en cas de recueil à domicile.

Si le flacon doit être acheminé au laboratoire, il doit être apporté dans un délai
inférieur à 30 minutes.
Questionnaire :
(il est indispensable de remplir ce questionnaire)

Combien de jours d’abstinence avez-vous respecté : ____________ ?

Cet examen fait il partie d’une exploration de stérilité
OUI

NON


Travaillez-vous en contact avec des produits toxiques
(plomb, pesticides, rayons X, …) ?
OUI

NON

 Avez vous eu de la fièvre ou un traitement antibiotique
dans les deux mois précédents cet examen ?
OUI

NON

 Avez vous des antécédents d’infections uro-génitales ou
d’interventions chirurgicales uro-génitales ?
OUI
 Contrôle de vasectomie
OUI


NON
NON


PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 55/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Spermoculture
Recueil au laboratoire avant aux horaires qui vous auront été indiqués ou au domicile du
patient.
Matériel : réceptacle stérile pour spermogramme
Le prélèvement doit être effectué après une abstinence sexuelle de 3 à 5 jours. Ne pas utiliser
de préservatif.
Le prélèvement doit être proscrit en cas de traitement antibiotique en cours.
 Videz votre vessie.
 Effectuez un lavage soigneux des mains au savon.

Se laver très soigneusement le gland avec les mains et le savon liquide ou avec
une lingette désinfectante remise par le laboratoire.
 Recueillir la totalité de l’éjaculât dans le flacon stérile mis à disposition par le
laboratoire
 Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n’a pas été fait par le
laboratoire. Noter impérativement l’heure du recueil en cas de recueil à domicile..
 Rapporter le flacon dans l’heure qui suit au laboratoire.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
Manuel de prélèvements-Version 4
56/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Préconisations pour la réalisation d'un test de
Hühner(test post-coïtal)
 L’objectif de ce test est d’étudier les capacités de mobilité et de survie des
spermatozoïdes dans le mucus cervical après un rapport sexuel, en période pré-ovulatoire.
 Ce test se fait sur rendez vous pris au laboratoire auprès du biologiste
Il nécessite :
 De respecter un délai d’abstinence sexuelle préalable de 3 à 5 jours précédant le test
 D’avoir un rapport sexuel la veille au soir tard ou le matin tôt du jour ou vous avez
rendez vous (8 à 12 heures de délai avant l’examen)
 De rester allongée au moins 30 minutes après le rapport
 Ne pas faire de toilette vaginale profonde et ne pas prendre de bain chaud entre le
rapport et le moment du prélèvement.
 De noter sa température, le matin de l’examen
 D’indiquer sa date des dernières règles ou le jour du cycle
 D’indiquer les thérapeutiques hormonales en cours.
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
p 57/79
LBM MEDIBIO
Manuel de Prélèvements – Version 4
Recherche de drogues urinaires
Protocole de dépistage des drogues suivantes :
 amphétamines,
 cannabis (THC),
 cocaïne,
 morphine/opiacés,
 benzodiazépines,
 barbituriques,
 métamphétamines,
 MDMA (ecstasy),
 méthadone,
 antidépresseurs tricycliques

le recueil des urines s’effectue exclusivement au laboratoire, selon un protocole de
recueil permettant de s’assurer de l’absence de fraude.

Le préleveur prendra en charge le patient et transmettra immédiatement en technique
le flacon, sitôt le recueil effectué.
EXPECTORATION
 - recueil exclusivement le matin (sauf dérogation ponctuelle) en l’absence de toute
thérapeutique antibiotique
 - émission de l’expectoration à l’occasion d’un effort de toux profonde spontanée ou
d’un effort de toux profonde provoquée (par kinésithérapie)
 - recueil dans le flacon stérile remis à cet effet.
 - Transmission du flacon au laboratoire dans un délai de 2 heures maximum à
température ambiante.
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Manuel de Prélèvements – Version 4
RECHERCHE DE BILHARZIOSE URINAIRE

Recueil des urines de fin de miction ou mieux totalité des urines après un effort
physique (sautillement)
Ne pas conserver au réfrigérateur, rapporter au laboratoire dans les 2 heures
Test HELIKIT (Test respiratoire pour le dépistage
d’Helicobacter pylori)
 prise de rendez vous au laboratoire de préférence entre 8 et 9 heures 30
 délivrance du kit en pharmacie
 patient à jeun et ne devant pas avoir fumé le matin de la réalisation de l’examen
 arrêt du traitement avant la réalisation du test :
- inhibiteurs pompe à protons (IPP) 2 semaines avant (Mopral®, Inexium®, Lanzor®,
Ogast®, Eupantol®, Inipomp®, Pariet®)
- antibiotique 4 semaines avant
 rester environ 45 minutes au laboratoire.
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Stéatorrhée, créatorrhée, examen fonctionnel de la
digestion
Intérêt :

dosage des lipides totaux : recherche de stéatorrhée

dosage de l’azote fécal : recherche de créatorrhée.
Régime :

pour stéatorrhée, ne pas consommer d’huile de paraffine
Préconisations :

recueillir la totalité des selles de 24 heures et transmettre le recueil au laboratoire dans
les meilleurs délais.
Legionella pneumophila : Recherche de l’antigène
urinaire
Recueillir un échantillon des urines et transmettre cet échantillon au laboratoire dans la
journée.
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TRP : Taux de reabsorption du Phosphore
sujet à jeûn depuis la veille
* vider la vessie et jeter les urines
* faire boire à 8 heures le matin 250 ml d’eau de Volvic
* 1 heure après l’ingestion, prélever un tube vert (2 ml de plasma)
* recueillir la totalité des urines entre 8 et 10 heures
* dosage de la créatinine et des phosphates dans le sérum et les urines.
ELASTASE DANS LES SELLES
Recueillir un échantillon de selles (environ 10 g)
Faire parvenir rapidement au laboratoire
Remboursé par la Sécurité Sociale
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Epreuves dynamiques
 Epreuve d’hyperglycémie provoquée (en dehors de la grossesse) :
ingestion de 75 grammes de glucose chez l’adulte, 1.75g de sucre/kg de poids chez l’enfant
sans dépasser 75 grammes, prises de sang et recueil des urines toutes les demi-heures sur 2 ou
3 heures selon la prescription médicale.
 Test de O’SULLIVAN (dépistage) :
ingestion de 50 grammes de glucose, prises de sang à T0 et 1 heure.
 Test de O’SULLIVAN (confirmation) :
ingestion de 75 grammes de glucose, prises de sang à T0 et 2 heures.
 Test de O’SULLIVAN (confirmation) :
ingestion de 75 grammes de glucose, prises de sang à T0, 1 et 2 heures.
 Epreuve d’hyperglycémie provoquée (femme enceinte) :
ingestion de 100 grammes de glucose, prises de sang et recueil d’urines à T0, 1, 2 et 3 heures.
 Test au SYNACTHENE : à réaliser à 8 heures du matin, prise de rendez vous
indispensable, injection intramusculaire (IM) de synacthène à apporter par le
patient sauf si est sous anti-coagulant (intra-veineuse IV). Prises de sang à T0, 30
et 60 minutes.
 Test à la LH RH : prise de rendez vous indispensable, entre J3 et J6 du cycle
chez la femme, en l’absence de traitement oestro-progestatif, à jeun, injection
intraveineuse de LH RH (délivrée en pharmacie hospitalière et apportée par le
patient), prélever aux temps indiqués sur l’ordonnance. En l’absence d’indication,
il est préférable de vérifier auprès du prescripteur les temps souhaités :
 LH-RH : temps classiques 0’-30’-60’
 Test à la TRH : prise de rendez vous indispensable, à jeun (risque de
vomissements), injection intraveineuse de TRH (délivrée en pharmacie
hospitalière et apportée par le patient), prélever aux temps indiqués sur
l'ordonnance. En l’absence d’indication, il est préférable de vérifier auprès du
prescripteur les temps souhaités :
 TRH : temps classiques si 2 temps : 0’ et 30’ / si 3 temps : 0’ – 30’ – 90’
 Possibilité pour le test au TRH d’injection d’une ampoule de Métoclopramide au
temps 90’ et dosages de la prolactine aux temps 0’ – 30’ -90’ - 120’ et 180’.
 Test au glucagon avec dosage du peptide C : A jeun, injection IV d'une
ampoule de 1 mg de glucagon et dosages de la glycémie et du peptide C aux
temps 0' - 10' - 30'. Si test long, dosages aux temps 0' - 10' - 30' - 60' - 120' - 180' 240'
 Dosages de la PROLACTINE poolée : prises de sang à T0, T15 et T30 minutes.
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Manuel de Prélèvements – Version 4
 Dosages de RENINE ou ALDOSTERONE debout et couché : le patient reste
allongé au laboratoire pendant 1 à 2 heures (selon ordonnance) puis on effectue la
1ère prise de sang. Le patient marche ensuite 1 heure et l’on effectue la seconde
prise de sang.
8.4.6 Classement et archivage
Les règles de classement et d’archivage des documents sont décrits dans la procédure
« Gestion des enregistrements et archivage ».
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8.5 Annexe : Fiche de prélèvement de biologie médicale
(arrêté du 20/06/2003)
MENTIONS
OBLIGATOIRES
PRELEVEMENT
Effectué le :
J J / M M / A A A A à 0 0 h 0 0 par :
Déposé le :
J J / M M /A A A A à 0 0 h0 0
PATIENT (étiquette possible)
 M.  Mme  Mlle
 Enfant   fille ou  garçon
NOM : ..................................................................................
Prénom :..................................................................................DDN : J J / M M / A A A A
NJF :
.................................................................................. (indispensable pour groupe et RAI)
Adresse :
n° : ........... Rue : ...............................................................................................
Code postal : ................. Ville : .............................................................................................
Téléphone :................
MEDECIN : .................................................................................. ordonnance  jointe ou  déjà transmise.
Il est indispensable de noter sur les tubes NOM, Prénom, DDN du patient
Retirer l'aiguille usagée de la boîte.
RENSEIGNEMENTS CONCERNANT L'ASSURE
 1ère prise en charge
 N° de SS :
X X X X X X X X X X X X X clé : X X
 Nom et adresse de la caisse de SS :
 ALD
 Invalidité
 Maternité (mois de grossesse : …..)
ANALYSES PRESCRITES (si ordonnance non jointe)
 AT
Nombre d'ordonnances :
...............................................................................................................................................................................
RENSEIGNEMENTS CLINIQUES (utiles à la validation et à l'interprétation des examens)
 Anticoagulant :  AVK  Héparine ou HBPM
 Médicament :
..........................................................................
 Posologie :
..........................................................................
 Dernière prise à : ......................................................
 Créatinine demandée  poids du patient :...............
 Dosage hormonal  date des dernières règles : J J / M M / A A A A
 Chimiothérapie en cours
 Autres renseignements cliniques : ...................................................................................................................
RESULTATS
 urgents 
 à téléphoner
 à faxer
 à poster
 dépôt en pharmacie
 laboratoire
CARACTERISTIQUES DU PRELEVEMENT
 Prélèvement difficile
 Patient à jeun
 Post-prandial
Nature des échantillons :
 Sang
 Urines
 Autre :
...........................................................Nbre d'échantillons :

PARTIE RESERVEE AU LABORATOIRE
Heure de réception : 0 0 h 0 0
Contrôlé par : ............................................
Prélèvement conforme :  oui  non
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8.6 Conservation des échantillons biologiques
8.6.1 Conservation pré-analytique
Les échantillons non centrifugés doivent être conservés à température ambiante selon les
recommandations ci-dessous.. Après centrifugation, le sérum ou le plasma doivent être
analysés dans le temps recommandé pour le sang total si l’échantillon n’est pas stocké en
utilisant un gel séparateur ou un filtre dans le tube primaire. Quand le plasma ou le sérum doit
être conservé au réfrigérateur ou congelé, il doit tout d’abord être décanté SAUF SI TUBE A
GEL.(1)
A
Chimie-enzymologie sanguine
Analytes
Amylase
Conservation
maximale
avant
centrifugation
(1)
Conservation maximale après centrifugation
Avec décantation
Sans
décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
4 jours
4 jours
7 jours
7 jours
1 an
CPK (2)
7 jours
7 jours
2 jours
7 jours
4 semaines
Gamma GT
1 jour
1 jour
7 jours
7 jours
1 an
LDH (5)
6 heures
6 heures
7 jours
7 jours
6 semaines
Lipase (2)
12heures
12 heures
7 jours
7 jours
1 an
Phosphatases
Alcalines (2)
4 jours
4 jours
7 jours
7 jours
2 mois
TGO (1)
7 jours
7 jours
4 jours
7 jours
3 mois
TGP (1)
4 jours
4 jours
3 jours
7 jours
7 jours
Acide urique
7 jours
7 jours
3 jours
7 jours
6 mois
6 jours
6 jours
2,5 mois
5 mois
5 mois
15 minutes en
EDTA
15 minutes en
EDTA
15 minutes
2 heures
3 semaines
cf préconisations
BPR
1 jour
3 jours
2 mois
1 jour
7 jours
6 mois
(2)
(1)
Albumine
(2)
Ammoniémie
(1)
Apolipoproté
ine a & b (1)
Bilirubines
1 jour
1 jour
(12,14)
PAS D'EXPOSITION PROLONGEE A LA LUMIERE
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Analytes
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Conservation
maximale
avant
centrifugation
Conservation maximale après centrifugation
Avec décantation
Sans
décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
2 heures
Cf préconisations
BPR
Calcium
ionisé(1)
15 minutes
15 minutes
Calcium
total(1)
2 jours
2 jours
7 jours
3 semaines
8 mois
Chlore (1)
1 jour
1 jour
7 jours
7 jours
1 an
Cholesterol
hdl(1)
2 jours
2 jours
2 jours
7 jours
3 mois
Cholesterol
ldl(1)
1 jour
1 jour
1 jour
7 jours
3 mois
Cholesterol
total(1)
7 jours
7 jours
7 jours
7 jours
3 mois
6 heures
6 heures
1 jour
7 jours
Deux semaines
Créatinine (1)
2 jours
2 jours
7 jours
7 jours
3 mois
CRP(2)
7 jours
7 jours
15 jours
2 mois
3 ans
Cuivre (2)
7 jours
7 jours
1 an
1an
1 an
Fer (6,7,14)
1 jour
1 jour
7 jours
3 semaines
1 an
Glucose sur
tube fluoré(2)
1 jour
1 jour
2 jours
7 jours
1 jour
Glucose sur
tube
hépariné ou
sec(12)
2h
2h
2 jours
7 jours
1 jour
1 jour
7 jours
7 jours
1 an
Phosphore(8)
6 heures
6 heures
1 jour
4 jours
1 an
Potassium
6 heures
6 heures
1 semaine
1 semaine
1 an
Protides (2)
1 jour
1 jour
1 jour pour
électrophorèse
6 jours pour
dosage
7 jours pour
électro.
4 semaines
pour dosage
3 semaines pour
électrophorèse
1 an pour dosage
Sodium (1)
4 jours
4 jours
2 semaine
2 semaines
1 an
CO2Bicarbonates(
1,14)
Magnésium
(1)
(5,7,14,18)
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Analytes
Conservation
maximale
avant
centrifugation
Triglycérides
Conservation maximale après centrifugation
Avec décantation
Sans
décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
7 jours
7 jours
2 jours
7 jours
1 an
1 jour
1 jour
7 jours
7 jours
1 an
(1)
Urée(1)
B
Hormones sanguines
Conservation
maximale
avant
centrifugation
Analytes
Conservation maximale après centrifugation
Sans
décantation
Avec décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
7 jours
3 mois
Cortisol(2)
7 jours
7 jours
7 jours
Erythropoietine(1)
6-24h
6-24h
2 semaines
FSH(1)
7 jours
7jours
2 semaines
2 semaines
1 an
FT3(14)
1 jour
1 jour
1 jour
2 semaines
3 mois
FT4(14)
1 jour
1 jour
2 jours
8 jours
3 mois
GH(1)
1 jour
1 jour
1 jour
8 jours
3 mois
1 jour
3 jours
1 an
HCG(2)
Insuline(11,14)
5 mois
6 heures
6 heures
6 heures
3 jours
6 mois
LH(2)
7 jours
7 jours
1 jour
3 jours
1 an
Oestradiol(1)
1 jour
1 jour
1 jour
3 jours
1 an
3 jours
3 jours
2 jours
3 jours
4 mois
6 heures
6 heures
2 jours
3 jours
2 mois
Progesterone(2)
7 jours
7 jours
1 jour
3 jours
1 an
Prolactine(1)
2 jours
2 jours
5 jours
6 jours
1 an
7 jours
1 j si femme
7 jours
1 j si femme
1 jour
3 jours
1 an
Thyroglobuline(1)
2 jours
2 jours
1 jour
3 jours
1 mois
TSH (1)
7 jours
7 jours
1 jours
3 jours
3 mois
Parathormone
(1,14)
Peptide c (1,14)
Testosterone(1)
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C
Marqueurs Protéines
Conservation
maximale
avant
centrifugation
(température
ambiante)
Sans
décantation
ACE(2)
3 jours
AFP(1)
7 jours
BNP(1)
5 heures
Analytes
Conservation maximale après centrifugation
avec décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
3 jours
7 jours
7 jours
6 mois
7 jours
3 jours
7 jours
3 mois
5 jours
5 jours
5 jours
8 jours
C3-complément(2)
1 jour
1 jour
4 jours
8 jours
C4-complement(2)
1 jour
1 jour
2 jours
2 jours
CA 125(2)
3 jours
3 jours
3 jours
5 jours
3 mois
CA 15-3(1)
7 jours
5 jours
3 mois
CA 19-9(2)
7 jours
7 jours
7 jours
1 mois
3 mois
CD tect(1)
3 jours
3 jours
7 jours
7 jours
1 an
CYFRA 21-1(1)
7 jours
7 jours
7 jours
1 mois
6 mois
Facteurs
rhumatoides(2)
1 jour
3 jours
1 mois
Ferritine(1)
7 jours
7 jours
1 an
Folates(14)
2 jours
2 jours
2 jours
3 jours
8 semaines
Fructosamine(1)
12 heures
12 heures
3 jours
2 semaines
2 mois
Haptoglobine(1)
8 jours
8 jours
3 mois
8 mois
3 mois
HBA1C(1)
3 jours
Immunoglobulines(1)
8 jours
8 jours
7 jours
7 jours
6 mois
Myoglobine(14)
1 jour
1 jour
2 jours
1 semaine
3 mois
2 heures
2 heures
2 jours
3 jours
3 mois
3 jours
6 jours
12 mois
NSE(1)
NT Pro BNP(2)
PSA libre (1, 15)
PSA total(1)
Troponine T(1)
5 heures 30
5 heures 30
23 heures
1 jour
1 mois
1 jour
1 jour
7 jours
30 jours
3 mois
8 heures
8 heures
1 jour
7 jour
3 mois
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Manuel de Prélèvements – Version 4
D
Hématologie
Conservation
maximale
Analytes
Sans décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
4 jours
4 jours
7 jours
12 heures
12 heures
Hémoglobine (2)
4 jours
4 jours
Leucocytes (2)
7 jours
7 jours
Plaquettes (2)
4 jours
Réticulocytes(2)
1 jour
Erythrocytes (2)
Formule leucocytaire (2)
E
-20°C
Ne pas conserver au réfrigérateur
7 jours
Ne pas conserver au réfrigérateur
7 jours
Hémostase
Conservation
maximale
avant
centrifugation
Analytes
TP INR, Fibrinogène,
AT3,
Facteur
II,
Facteurs V, Facteur X
Conservation maximaFle après centrifugation
Sans
décantation
avec décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
12 heures
12 heures
12 heures
12 heures
2 semaines
TCA14,3)
6 heures
6 heures
6 heures
6 heures
2 semaines
Autres
marqueurs
d’hémostase (3)
4 heures
4 heures
4 heures
4 heures
2 semaines
(14,3)
F
Immuno-hématologie
Conservation
maximale
avant
centrifugation
Analytes
GROUPE SANGUIN (16)
RAI (17)
Conservation maximale après centrifugation
Sans
décantation
avec décantation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
2 semaines
7 jours à +4°C
7 jours à +4°C
7 jours
72 heures
72 heures
72 heures
PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION
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G
Médicaments
Conservation
maximale
avant
centrifugation
Analytes
Conservation maximale après centrifugation
Température
ambiante
+2/+8°C
-20°C
Benzodiazépines(2)
1 jour
1 jour
5 mois
5 mois
Carbamazépine(2)
2 jours
2 jours
2 jours
7 jours
13 jours
13 jours
21 jours
13 jours
2 semaines
3 mois
6 mois
Ciclosporine
EDTA(2)
sur
Digoxine(2)
1 mois
Gentamicine(2)
4 heures
4 heures
4 heures
4 semaines
4 semaines
Lithium(2)
1 heure
1 heure
1 jour
7 heures
6 mois
Phenobarbital(2)
2 jours
2 jours
6 mois
6 mois
6 mois
3 mois
3 mois
3 mois
2 jours
7 jours
3 mois
Théophilline(2)
Acide valproïque(2)
2 jours
H
Analytes
Albumine(2)
Glucose LCR(2)
IgG(2)
2 jours
Biologie du LCR
Température ambiante
+2/+8°C
-20°C
1 jour
2mois
1an
5 heures
3 jours
1 mois
1 jour
7 jours
Instable
1-2 heures
3-5 heures
6 jours
1 an
Leucocytes(2)
Protides LCR(2)
1 jour
I
Analytes
Gazometrie arterielle
Conservation maximale
avant analyse
GAZ DU SANG (2)
15 minutes
CARBOXYHÉMOGLOBINE
15 minutes
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Manuel de Prélèvements – Version 4
J
Analytes
Chimie-enzymologie urinaire
Conservation
maximale
Température ambiante
+2/+8°C
-20°C
2 heures
2 jours
2 jours
4 jours si pH >8
Instable
Instable
Acide
vanylmandélique(2)
7 jours
7 jours
1 an
Albumine (1)
7 jours
1 mois
6 mois
Amylase (1)
2 jours
10 jours
3 semaines
Bandelettes (2)
1 heure
Calcium (1)
2 jours
4 jours
3 semaines
Catécholamines (2)
4 jours
4 jours
20 jours
Créatinine(1)
2 jours
6 jours
6 mois
Cuivre(1)
3 jours
7 jours
1 an
2 heures
2 heures
2 jours
Hydroxyproline(1)
5 jours
5 jours
5 jours
Magnesium (1)
3 jours
3 jours
1 an
Osmolalité(1)
3 heures
7 jours
3 mois
Phosphore (1)
2 jours à pH <5
4 jours
A l’abri de la
lumière
7 jours
A l’abri de la
lumière
1 mois
A l’abri de la
lumière
45 jours
2 mois
1 an
1 jour
7 jours
1 mois
5-HIA(1)
Acide urique(2)
Glucose (1)
Porphobilinogènes
PORPHYRINES(1)
Potassium (1)
Protides (1)
Instable à pH
<7
Sédiment urinaire(2)
1 heure
Sodium (1)
45 jours
45 jours
1 an
Urée (2)
2 jours
7 jours
4 semaines
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Manuel de Prélèvements – Version 4
K
Bactériologie
Conservation maximale
Prélèvements
HÉMOCULTURES(4)
LCR(4)
Température
ambiante
+2/+8°C
37°C
12 heures
NON
NON
Pas de conservation : URGENCE !!!! Transport à température
ambiante
ECBU
sur flacon non boraté(4)
2 heures
24 heures
NON
sur flacon boraté(4)
48 heures
48 heures
NON
BRONCHO
2 heures
NON
NON
SANS
12 heures
24 heures
NON
48 heures
24 heures pour le
gonocoque
NON
NON
écouvillon gélosé (4,19)
24 heures
NON
NON
écouvillon sec (4)
2 heures
NON
NON
8 heures sur milieu
UMMt
16 heures sur
milieu UMMt
NON
2 heures
NON
NON
E-Swab (4)
48 heures
NON
NON
écouvillon gélosé (4)
24 heures
NON
NON
écouvillon sec (4)
2 heures
NON
NON
PEAU ET PUS SUPERFICIELS(4)
6 heures
NON
NON
E-Swab (4)
48 heures
NON
NON
écouvillon gélosé (4)
24 heures
NON
NON
écouvillon sec (4)
2 heures
NON
NON
2 h sans milieu de
6 heures
NON
SÉCRÉTIONS
PULMONAIRES(4)
COPROCULTURES
PARASITO(4)
SÉCRÉTIONS ANO-GÉNITALES
E-Swab (4)
MYCOPLASMES UROGENITAUX
SPERMOCULTURE(4)
SÉCRÉTIONS
OCULAIRES
PUS PROFONDS(4)
ORL
OU
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transport
LIQUIDE ARTICULAIRE(4)
2 heures
NON
NON
LIQUIDE ASCITE PLEURAL(4)
2 heures
6 heures
NON
CATHÉTER(4)
2 heures
NON
NON
Plusieurs jours
MYCOLOGIE CUTANÉE(4)
PARASITOLOGIE DES SELLES
NON
2 heures sinon
préparation MIF
CHLAMYDIAE URINAIRES
24h
(1) World health organization : use of anticoagulants in diagnostic laboratory invesigations
(2) Reference Ranges for Adults and Children: Pre-Analytical Considerations 2008 -Roche
(3) Recommandations 2007: prélèvements destinés aux tests d'hémostase - GEHT
(4) REMIC: référentiel en microbiologie médicale 2010
(5) Boyanton 2002
(6) CLSI H18 A4
(7) Tanner 2008
(8) Portugal, 2010
(9) Gobinet, 2000
(10) German Society for Clinical Chemistry § Laboratory Medecine 2010
(11) M.J. Ellis et al./Clinical Biochemistry 36 (2003) 109-112
(12) Foucher, 2005
(13) Saunier, 2009, Feuillets de Biologie Clinique
(14) Portugal, 2012
(15) Pironeme
(16) G. Togni, C. Volken, G. Sabo, Forum Med Suisse n° 6, 6 février 2002
(17) Cahier Bioforma n°26 Immuno-hématologie et groupes sanguins
(18) Etude interne-2012 site de Vendôme
(19)
Préconisations fournisseurs : http://www.cml.fr/produits_cml/prelevement/pdf/2007/prelevementsbacteriologiques.pdf
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Manuel de Prélèvements – Version 4
8.6.2 Conservation post-analytique
Les échantillons sont conservés en respectant les conditions suivantes :
Réfrigérateur : 2 à 8°C
Secteur
(type d’analyse)
Hématologie
Congelé : < -18°C
Lieu de
conservation
Température
ambiante
Température ambiante : 15-25°C
Conditions de
conservation
Temps de
conservation
Tubes bouchés
48h après jour de
prélèvement
Lames: 1 semaine
Frottis sanguins
Boîte Paillasse
Hématologie
Température
ambiante
12 mois pour
lames diagnostic
ou suivi
Possibilité
d'effectuer un
contrôle
Selon conditions et
durée de
conservation des
prélèvements (cf cidesssus)
30 ans pour lames
diagnostic
moelle*
Coagulation
Réfrigérateur ou
température
Tubes bouchés
ambiante
Biochimie
Réfrigérateur ou
température
ambiante
Immunologie
Enzymologie
Tubes primaires
décantés ou
centrifugés avec gel
Divers
Groupes
Tubes en plus
Pré-identifiés
En sérothèque :
Congélateur
ou
Réfrigérateur
Tubes
rebouchés
Aliquote à
-20°C
ou
tubes
rebouchés
Réfrigérateur ou Tubes rebouchés
température
ambiante
Réfrigérateur ou
température
ambiante
Réfrigérateur ou
température
ambiante
48h après jour de
prélèvement
48h après jour de
prélèvement
24h pour tubes
fluorés
Un an pour la
sérothèque
48h après jour de
prélèvement le
reste
Voir plus bas
48h après jour de
prélèvement
6 jours
Tubes bouchés
Tubes bouchés
Mise en sérothèque
obligatoire** :
marqueurs tumoraux,
sérologie virale,
bactérienne et
parasitaire
Selon conditions et
durée de
conservation des
prélèvements (cf cidesssus)
48h après jour de
prélèvement
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Manuel de prélèvements-Version 4
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Secteur
(type d’analyse)
Lieu de
conservation
Bactériologie :
prélèvements,
Selon site
CBU, A, S
Échantillons urines
de 24H
Réfrigérateur
température
ambiante
Conditions de
conservation
Temps de
conservation
Température
ambiante
6 jours
ou
7 jours
écouvillons
Paillasse
bactériologie
Température
ambiante
7 jours
Spermogramme
Paillasse
bactériologie
Température
ambiante
7 jours
Liquides de ponction
Paillasse
bactériologie
Température
ambiante
7 jours
Expectorations
Paillasse
bactériologie
Température
ambiante
7 jours
Bactériologie
Cultures
Paillasse de
bactériologie
Température
ambiante
7 jours quand
identif/ATB
Lame coloration de
Gram
paillasse
bactériologie
Température
ambiante
Jusqu'au rendu
des résultats
Lame coloration de
Ziehl
Porte lame
cartonné
Température
ambiante
1 an
Lame coloration de
SHORR
(spermocytogramme
)
Porte lame
cartonné
Température
ambiante
1 an
Paillasse
bactériologie
Température
ambiante
10 jours
Mycologie
Température
ambiante
1 semaine
Concentration
parasitologie
Mycologie
BK par culture
de
Réfrigérateur
Possibilité
d'effectuer un
contrôle
Selon conditions et
durée de
conservation des
prélèvements (cf cidesssus)
1 semaine
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Manuel de Prélèvements – Version 4
Les échantillons en vue de diagnostics d’affections bactériennes, virales, parasitaires, les
marqueurs tumoraux ou les analyses transmises à des laboratoires spécialisés sont
cryoconservés en sérothèque selon les principes décrits dans la fiche d’instruction « gestion de
la
sérothèque »
ou
« conservation
des
souches
bactériennes ».
* Afaqap-Archivage_en_ACP_-_retour_d_enquete_2006
** Mise en sérothèque obligatoire :
Examens biologiques
Température de conservation
Durée
Marqueurs tumoraux
<- 18°C
1 an
Sérologie bactérienne
<- 18°C
1 an
Sérologie virale
<- 18°C
1 an
Sérologie parasitaire
<- 18°C
1 an
Biologie
moléculaire
: - 80°C
mycobactéries, hépatite B et C,
Chlamydia, VIH
•
1 an
GBEA, Annexe C, arrêté du 26 novembre 1999 relatif à la bonne exécution des
analyses de biologie médicale
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Manuel de prélèvements-Version 4
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Manuel de Prélèvements – Version 4
8.7 Annexe : élimination des déchets
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