Cours de 2 jours
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Cours de 2 jours
LA MODELISATION AU SERVICE DU TRAITEMENT DES EAUX USEES BIOWIN – FORMATION DE 2 JOURS WTSim SARL 15 impasse Fauré, 33000 Bordeaux, France Tel +33(0)650 255 157 fax +33(0)825 278 900 [email protected] Formation de 2 jours EnviroSim Associates Ltd. Bureau de Liaison France, 15 impasse Fauré 33000 Bordeaux, France [email protected] 1 Note Ce support de cours a été conçu par WTSim SARL à partir des cours proposés par EnviroSim1 Associates Ltd. Le contenu de ce support reflète l‟interprétation que WTSim SARL et EnviroSim Associates Ltd. ont pu faire des informations disponibles au moment de sa réalisation. Toute utilisation, référence ou décision faite à partir de ce support par un tiers est de la responsabilité de ce dernier. WTSim SARL et EnviroSim Associates Ltd. n‟acceptent aucune responsabilité quant à des dommages subis par un tiers et dont il serait considéré qu‟ils résultent d‟une décision ou d‟une action basée sur le contenu de ce support 2 Formation de 2 jours TABLE DES MATIERES LA MODELISATION AU SERVICE DU TRAITEMENT DES EAUX USEES.............. 1 BIOWIN – FORMATION DE 2 JOURS ............................................................................. 1 INTRODUCTION ............................................................................................................... 7 PREMIER JOUR ...................................................................................................................................... 7 JOUR DEUX ............................................................................................................................................. 7 MODELISATION ET SIMULATION ............................................................................... 9 CONTEXTE ............................................................................................................................................. 9 OBJECTIFS ............................................................................................................................................... 9 METHODES ............................................................................................................................................. 9 LES MODELES PUBLIES .................................................................................................................... 9 LE MODELE DE BIOWIN .................................................................................................................. 9 EXEMPLE ................................................................................................................................................. 9 CAS 1 – PRISE EN MAIN DE BIOWIN ............................................................................ 11 INTRODUCTION................................................................................................................................. 11 L‟INTERFACE ET LE CHARGEMENT D‟UN FICHIER ......................................................... 11 DONNEES PHYSIQUES ET OPERATIONNELLES................................................................. 12 VERIFICATION DES DONNES DE L‟EAU USEE ................................................................... 14 CONSULTER DES INFORMATIONS ET DES RESULTATS DE SIMULATION............. 14 EFFECTUER UNE SIMULATION EN REGIME PERMANENT........................................... 14 EFFECTUER UNE SIMULATION EN REGIME DYNAMIQUE .......................................... 15 MEMORISER DES INFORMATIONS ET GENERER DES RAPPORTS ............................. 17 PERSONALISER BIOWIN ................................................................................................................. 17 CAS 2A – CONSTRUCTION D’UN SCHEMA ................................................................ 19 INTRODUCTION................................................................................................................................. 19 LE CAS D‟ETUDE 2A.......................................................................................................................... 19 AJOUTER DES ELEMENTS SUR LE TABLEAU DE DESSIN............................................... 20 REORGANISATION ET DEPLACEMENT SUR LA ZONE DE DESSIN .......................... 21 POUR CHANGER UN ELEMENT DE PLACE: ...................................................................... 21 POUR CHANGER L‟ORIENTATION VERTICALE OU HORIZONTALE D‟UN ELEMENT : ...................................................................................................................................... 21 CONNECTER LES ELEMENTS AVEC DES CONDUITES .................................................... 21 SAISIR DES DONNEES DE DIMENSIONNEMENT ET DE GESTION ........................... 22 SPECIFIER LA/LES TEMPERATURE(S) ...................................................................................... 23 CHANGER LES PARAMETRES DU MODELE .......................................................................... 23 VERIFIER QUE DES DONNEES ONT ETE SPECIFIEES ..................................................... 23 AJOUTER DES TABLEAUX DANS L‟ALBUM............................................................................ 24 AJOUTER DES INFORMATIONS SUR LES ELEMENTS DANS LE TABLEAU ............. 26 L’ABATTEMENT DES NUTRIMENTS ......................................................................... 29 INTRODUCTION................................................................................................................................. 29 Formation de 2 jours 3 MODIFICATION D‟UNE ZONE DE CONTACT ANAEROBIE (AVEC TRAITEMENT DU PHOSPHORE) ............................................................................................................................... 29 SYSTEME DE TRAITEMENT POUSSE DU PHOSPHORE .................................................... 31 NITRIFICATION POUSSEE A TEMPERATURE ELEVEE..................................................... 31 CARACTERISATION DES EAUX USEES....................................................................... 33 FRATIONNEMENT DE LA DCO ................................................................................................... 33 FRATIONNEMENT DE L‟AZOTE ................................................................................................. 33 AUTRES COMPOSES DES ERU ...................................................................................................... 33 LA SEPARATION DE PHASE .......................................................................................... 37 INTRODUCTION ................................................................................................................................. 37 LE DIMENSIONNEMENT DU CAS 3 ........................................................................................... 37 ENREGISTREMENT DES RESULTATS / MODIFICATION DE L‟ALBUM ..................... 39 AFFICHAGE DU PROFIL DE CONCENTRATIONS DANS LE CLARIFICATEUR ....... 39 AFFICHAGE D‟UN GRAPHIQUE DE “POINT D‟EQUILIBRE” .......................................... 40 SIMULATIONS EN RÉGIME PERMANENT .............................................................................. 40 SIMULATIONS EN RÉGIME DYNAMIQUE .............................................................................. 40 MODELISATION DE L’AERATION............................................................................... 43 ETUDE DE CAS : SYSTEME D’AERATION .................................................................. 43 RAPPELS ................................................................................................................................................. 43 MODELISATION DE LA PHASE GAZEUSE.............................................................................. 44 PERFORMANCES DES DIFFUSEURS ........................................................................................... 45 DIFFUSEURS FINES BULLES....................................................................................................... 46 DIFFUSEUR GROSSES BULLES .................................................................................................. 47 FRACTION DE LA PROFONDEUR EFFECTIVE POUR LA SATURATION, FED ........... 47 CAS D‟ETUDE POUR L‟AERATION.............................................................................................. 48 CAS 4 -EXERCICE DE CALAGE D’UNE STATION ...................................................... 53 OBJECTIFS ............................................................................................................................................. 53 CAS 4 – SPECIFICATIONS DU SYSTEME ET DES DONNEES .......................................... 54 CONFIGURATION DU SCHEMA DE LA STATION................................................................ 55 ETAPES DE CALAGE ......................................................................................................................... 56 SAISIE DES FRACTIONS DE L‟EAU USEE ............................................................................. 56 CALAGE DU DÉCANTEUR PRIMAIRE ................................................................................... 56 CALAGE DU CLARIFICATEUR SECONDAIRE .................................................................... 57 TAUX DE CROISSANCE DES XAOB (AOB) POUR LE CALAGE DE L‟AZOTE AMMONIACAL EN SORTIE ....................................................................................................... 57 RESULTATS............................................................................................................................................ 58 AUTRES EXERCICES OPTIONNELS............................................................................................ 58 PARCOURS DES FONCTIONNALITES AVANCEES DE BIOWIN ............................ 63 L‟INTERFACE ....................................................................................................................................... 64 NOUVEAUX ELEMENTS DANS BIOWIN .................................................................................. 65 OPTIONS DU MODELE .................................................................................................................... 67 BILAN DE MASSE POUR UN ELEMENT SPECIFIQUE......................................................... 68 4 Formation de 2 jours INFORMATIONS CINETIQUES POUR UN ELEMENT SPECIFIQUE .............................. 68 PERSONNALISATION DE BIOWIN ............................................................................................. 69 REGLAGES DU SOLVEUR NUMERIQUE .................................................................................. 69 RECHERCHE LINEAIRE DECOUPLEE. ................................................................................. 69 PARAMETRES SECURITAIRES DU SOLVEUR...................................................................... 70 AJUSTEMENT DU PAS INITIAL DU SOLVEUR RLD ......................................................... 70 SOLUTION EN REGIME PERMANENT EN DEUX ETAPES .......................................... 71 FRACTION MINERALE DE LA BIOMASSE ............................................................................... 71 DENITRIFICATION PAR AJOUT DE MATIERE ORGANIQUE. EXEMPLE AVEC AJOUT DE METHANOL.................................................................................................. 73 CONSIDERATIONS SUR LE MODELE DANS LE CAS DE L‟AJOUT DE METHANOL ................................................................................................................................................................... 73 ATTENTES VIS A VIS DE L‟AJOUT DE METHANOL............................................................ 73 CAS D‟ETUDE : AJOUT DE METHANOL ................................................................................... 74 REPRESENTER L‟AJOUT DE METHANOL............................................................................ 75 MISE EN ROUTE DU SYSTEME ................................................................................................. 75 MODELISATION DU PH ................................................................................................ 77 INTRODUCTION................................................................................................................................. 77 EXAMPLE 1: TEST DE CHARGE MASSIQUE ÉLEVÉE (HIGHT F/M TEST) ................ 77 EXEMPLE 2 : CULTURE BIO-P ENSEMENCEE ....................................................................... 79 CAS D‟ETUDE : LA DIGESTION AEROBIE .............................................................................. 81 MODULE DE CONTROLE DE BIOWIN ...................................................................... 85 CAS D‟ETUDE : CONTROLE DE LA DIGESTION ANAEROBIE ...................................... 85 AUTRES FONCTIONNALITES DU CONTROLEUR ............................................................... 87 BIOREACTEURS A MEMBRANES................................................................................. 89 CONFIGURER UN SYSTEME BRM DANS BIOWIN ............................................................... 89 UN BRM SIMPLE .................................................................................................................................. 89 BRM AVEC ABATTEMENT DES NUTRIEMENTS .................................................................. 90 SIMULATIONS EN REGIME PERMANENT ........................................................................... 91 IMPACT DE L‟AJOUT DE CHLORURE FERRIQUE ............................................................ 92 IMPACT DES BOUCLES DE RECYCLAGE SUR LA GESTION DES SOLIDES .......... 92 MODELISATION DES BIOFILMS ................................................................................. 93 LE MODELE DE BIOFILM .............................................................................................................. 93 SYSTEME IFAS SIMPLE..................................................................................................................... 93 DIGESTION ANAEROBIE .............................................................................................. 97 INTRODUCTION................................................................................................................................. 97 DIGESTION ANAEROBIE DU GLUCOSE ................................................................................. 97 DIGESTION DES BOUES PRIMAIRES ET DES BOUES EXTRAITES .............................. 98 FERMENTATION DES BOUES PRIMAIRES............................................................................ 100 PRECIPITATION DE STRUVITE.................................................................................. 103 PRECIPITATION DE LA STRUVITE, DU HDP ET DU HAP .............................................. 103 Formation de 2 jours 5 PRINCIPE DE LA PRECIPITAION DE LA STRUVITE .........................................................103 CAS D‟ETUDE: FORMATION DE STRUVITE DANS ET APRES LE DIGESTEUR .....105 SYSTEMES SBR................................................................................................................ 107 LE MODULE SBR DANS BIOWIN ...............................................................................................107 CAS D‟ETUDE : SYSTEME SBR A DEUX BASSINS ................................................................108 REGLAGE DE L‟EXTRACTION POUR A=20 JOURS.........................................................109 MISE EN ROUTE DU SYSTEME ...............................................................................................109 FONCTIONNEMENT EN REGIME QUASI PERMANENT .............................................110 SYSTEMES DE CHENAUX D’EPURATION ................................................................ 111 INTRODUCTION ...............................................................................................................................111 CONFIGURATION D‟UN SYTEME DE CHENAL D‟EPURATION ..................................111 TAUX DE RECIRCULATION DANS LE CHENAL .................................................................112 CAS D‟ETUDE: NIT/DENIT SIMULTANEES DANS UN CHENAL D‟EPURATION..113 CAS D‟ETUDE: CHENAL D‟EPURAITON AVEC TRAITEMENT BIOLOGIQUE DES NUTRIMENTS ....................................................................................................................................115 PRECIPITATION CHIMIQUE DU PHOSPHORE...................................................... 117 CONSIDERATIONS SUR LE MODELE ......................................................................................117 CAS D‟ETUDE: AJOUT DE FER....................................................................................................118 TRAITEMENT DES RETOURS EN TETE (RETOURS DE DIGESTEUR) ............. 121 GENERALITES ...................................................................................................................................121 EXEMPLES INCLUS DANS BIOWIN ..........................................................................................122 CAS D‟ETUDE .....................................................................................................................................123 ANNEXES ......................................................................................................................... 125 PRESENTATIONS ..............................................................................................................................125 6 Formation de 2 jours INTRODUCTION PREMIER JOUR La première journée de formation est conçue sous la forme d‟exercices d‟application de BioWin à destination des ingénieurs. Il est considéré que la majorité des participants ont déjà une expérience de « BioWin » ; l‟objectif premier est donc de confirmer la connaissance du logiciel BioWin. Cet objectif sera atteint grâce à différents cas d‟étude portant aussi sur bien sur l‟application de procédés que sur des questions de dimensionnement et de gestion. Les cas d‟étude et les présentations PowerPoint rassemblés dans le support de formation abordent les sujets suivants : Principes généraux de la modélisation et de la simulation La prise en main de BioWin La construction d‟un schéma avec BioWin La caractérisation des eaux usées Le traitement des nutriments JOUR DEUX L‟objectif principal du deuxième jour est de mettre en lumière les fonctionnalités avancées de BioWin à travers des présentations et des discussions sur différents cas d‟études et sujets complexes. Il est donc considéré que les participants sont déjà familiers avec BioWin. Les sujets suivants sont abordés, notamment avec des cas d‟étude : La séparation de phases Parcours des fonctionnalités avancées de BioWin La modélisation de l‟aération Le calage d‟un schéma Les fonctionnalités avancées de BioWin Les sujets suivants sont optionnels et pourront remplacer ou compléter les sujets du jour 2 selon le choix des participants et l‟avancement du cours : Dénitrification par ajout de matière organique. Exemple avec ajout de méthanol La modélisation du pH Les bioréacteurs à membrane (BRM) La modélisation des biofilms (nitrification poussée avec le système « IFAS ») La digestion anaérobie Formation de 2 jours 7 8 La précipitation de struvite Les systèmes SBR (bassin unique) Les chenaux d‟épuration La précipitation chimique du phosphore Le traitement des effluents concentrés (retours de digesteur) Formation de 2 jours MODELISATION ET SIMULATION Voir présentation en annexe CONTEXTE OBJECTIFS METHODES LES MODELES PUBLIES LE MODELE DE BIOWIN EXEMPLE Formation de 2 jours 9 10 Formation de 2 jours CAS 1 – PRISE EN MAIN DE BIOWIN INTRODUCTION Cette étape de familiarisation avec le logiciel présente plusieurs fonctionnalités/aspects de BioWin, comme : l‟interface, le chargement d‟un fichier de configuration de BioWin, la spécification de données pour la configuration d‟un élément, et la réalisation de simulations en régimes permanent et dynamique. L‟INTERFACE ET LE CHARGEMENT D‟UN FICHIER Démarrer BioWin et observer la fenêtre de simulation principale. Tous les travaux de simulation sont effectués à partir de celle-ci. L‟interface est composée de menus, de barres d‟outils, d‟un tableau de dessin, de panneaux d‟informations et d‟une barre de statut. Pour une description plus approfondie, consulter le chapitre « Fenêtre de simulation principale ». A ce niveau, seul un parcours rapide est proposé. 1. A partir du menu Fichier, cliquer sur Ouvrir et sélectionner le fichier Un Exemple depuis le répertoire DATA de BioWin. L‟affichage sera similaire à celui présenté ci-dessous : FIGURE 1. LA CONFIGURATION EXEMPLE. Formation de 2 jours 11 2. Déplacer le curseur au dessus de la barre d‟outils. La définition des éléments apparait lorsque la souris est maintenue au-dessus. L‟outil Sélectionner/Déplacer/Modifier l‟élément doit être enfoncé (càd actif) pour poursuivre. Outil de sélection des élements 3. Une barre de statut au pied de la fenêtre affiche différentes informations. 4. Déplacer le curseur à travers le panneau de dessin. Ce dernier se transforme en main lorsqu‟un élément du panneau de dessin est survolé. S‟il est arrêté au-dessus d‟un élément, les informations concernant cet élément sont affichées dans les deux panneaux en dessous de la zone de dessin – les données physiques apparaissent dans le panneau de gauche et les performances sont affichées dans celui de droite. Cette fonction vous permet d‟avoir un aperçu rapide de l‟état du système. Curseur de sélection 5. Déplacer le curseur au dessus d‟un élément et cliquer sur le bouton droit de la souris. Un menu local s‟affiche [Ne pas sélectionner d‟option pour l‟instant]. Ainsi vous pouvez accéder à différentes types d‟options pour un élément (voir ci-dessous). Astuce: Une règle générale dans BioWin… cliquer sur le bouton droit de la souris peut souvent aider! DONNEES PHYSIQUES ET OPERATIONNELLES 1. Déplacer le curseur au-dessus de l‟élément Bassin d’aération (un bioréacteur aéré parfaitement mélangé) et double cliquer – ou faire un clic droit sur l‟élément – puis sélectionner la commande Propriétés. Une boîte de dialogue avec onglets apparaît (voir ci-dessous). Celle-ci présente toutes les données physiques et opérationnelles de cet élément. Observer les informations des onglets Dimensions et Fonctionnement [Ne pas changer les informations maintenant. Un dimensionnement du bassin d‟aération avec une concentration contrôlée en oxygène dissous avec une valeur cible de 2 mg/L sera accepté]. 12 Formation de 2 jours FIGURE 2. ONGLET DIMENSIONS DU BASSIN D’AERATION. FIGURE 3. ONGLET FONCTIONNEMENT DU BASSIN D’AERATION. 2. Maintenant, essayer de double-cliquer sur les autres éléments et observer leur configuration. 3. Cliquer sur un élément et garder le bouton gauche de la souris enfoncé. Il est ainsi possible de déplacer l‟élément à une nouvelle place et donc de réarranger le schéma. Astuce: Essayer de faire un clic droit sur la “flèche” d’un tuyau et sélectionner le menu Propriétés. Il y a plusieurs options qui permettent de modifier l’aspect de la conduite. Formation de 2 jours 13 VERIFICATION DES DONNES DE L‟EAU USEE 1. Double-cliquer sur l‟élément Eau Usée, puis cliquer sur le bouton Modifier les données. [A ce stade les données ne seront pas changées]. Astuce: Lors de la consultation des données de l’eau d’entrée, pointer le curseur sur l’entête d’une colonne et faire un clic-droit. Il y a plusieurs options pour la saisie et la manipulation des données. 2. Fermer la boîte de dialogue. Astuce: Le panneau en bas à droite affiche les concentrations moyennes de l’eau usée. CONSULTER DES INFORMATIONS ET DES RESULTATS DE SIMULATION Les panneaux en dessous de la zone de dessin proposent seulement une sélection des informations sur le système. Des informations complètes sont obtenues grâce aux deux outils suivants : l‟Explorateur et l‟Album. 1. Sélectionner l‟Explorateur à partir du menu Affichage – ou cliquer sur le bouton Explorateur sur la barre d‟outils – ou appuyer sur Ctrl + E. Ceci ouvre l‟Explorateur – un système d‟information sous forme d‟arbre. Le bouton Explorateur 2. Tester le déroulement des différents niveaux d‟arborescence. Astuce : Essayer de double-cliquer sur le nom d‟un élément ou sur un paramètre dans le panneau de droite. 3. Sélectionner l‟Album à partir du menu Affichage – ou cliquer sur le bouton Album sur la barre d‟outils – ou appuyer sur Ctrl + A. Ceci ouvre l‟Album. Il contient des informations mises en forme par l‟utilisateur, des éléments d‟information pré-formatés et des graphiques. L‟Album peut contenir un grand nombre de pages (onglets) et d‟informations. Le bouton Album 4. Cliquer sur le nom des pages (onglets) pour observer différents exemples. Astuce : Essayer de cliquer sur le bouton droit de la souris à différents endroits des pages de l‟Album (également sur le nom des onglets/pages). 5. Sélectionner Ajouter une page à partir du Menu Album, et choisissez une mise en page. Après avoir ajouté une page, cliquer sur le bouton droit de la souris sur le panneau blanc… tester les différentes options ! Des difficultés peuvent arriver à cette étape – des informations complémentaires seront données plus tard. EFFECTUER UNE SIMULATION EN REGIME PERMANENT Les simulations en régime permanent sont une solution efficace pour les systèmes basés sur une charge entrante moyenne et sur des moyennes temporelles pour ce qui concerne les données de fonctionnement telles qu‟une valeur cible de concentration en oxygène dissous dans un bassin d‟aération. 14 Formation de 2 jours 1. Sélectionner la commande Simulation en régime permanent dans le menu Simulation – ou cliquer sur le bouton Simulation en régime permanent dans la barre d‟outils. La boîte de dialogue “Analyse en régime permanent” est ainsi ouverte. Astuce : si cette boîte est déplacée par l‟utilisateur à un endroit précis de l‟écran, elle apparaitra à nouveau à cet endroit à sa prochaine ouverture. Bouton Régime Permanent 2. Appuyer sur le bouton “Démarrer”. Une boîte de dialogue apparaît lorsque BioWin a trouvé une solution. FIGURE 4. BOITE DE DIALOGUE REGIME PERMANENT. Note: La plus part des solutions en régime permanent sont trouvées avec environ dix itérations. Dans des circonstances inhabituelles le solveur peut se « bloquer » - càd que l’erreur n’évolue plus d’une itération à l’autre. Dans ce cas appuyer sur le bouton « Arrêt ». Souvent cela indique une difficulté avec les données d’eau usée notamment une déficience en nutriments (ou une déficience en alcalinité dans un digesteur aérobie par exemple). D’autre par il est aussi possible d’avoir un système « difficile à résoudre ». Une astuce est de tenter une simulation avec les paramètres « sécuritaires » de résolution. Pour le faire, cliquer sur Projet>Option du projet actif>Paramètres numériques (onglet) puis cliquer sur Options dans la rubrique Solveur en régime permanent. Au pied de la boîte de dialogue qui s’ouvre se trouve un grand bouton qui peut être cliqué pour appliquer les paramètres « sécuritaires » du solveur (voir Option du Solveur en Régime Permanent dans le chapitre Gestion de Projets). EFFECTUER UNE SIMULATION EN REGIME DYNAMIQUE Les simulations en régime permanent expriment la réponse temporelle d‟un système à une charge et/ou un débit d‟entrée variable dans le temps (et à tout autre paramètres opérationnel pouvant évoluer dans le temps, comme une consigne en oxygène dissous dans un bassin d‟aération). 1. Sélectionner la commande Simulation en régime dynamique dans le menu Simulation – ou cliquer sur le bouton Simulation en régime dynamique dans la barre d‟outils. Bouton Régime Dynamique 2. Cliquer sur le bouton “Démarrer”. Cela ouvre une boîte de dialogue avec différentes options, notamment la durée de la simulation. Cliquer sur “Démarrer” pour lancer la simulation dynamique. Formation de 2 jours 15 Bouton Démarrer FIGURE 5. BOITE DE DIALOGUE REGIME DYNAMIQUE. FIGURE 6. THE BOITE DE DIALOGUE « OPTION » REGIME DYNAMIQUE. Note: Même si vous n’êtes intéressés que par la réponse dynamique du système, il est généralement utile d’obtenir préalablement une solution en régime permanent pour pouvoir ensuite effectuer une simulation en régime dynamique avec l’option “valeurs actuelles” pour les conditions initiales. Note: Dans l’Album, un graphique dynamique basé sur 24h peut rester blanc ou ne pas afficher l’évolution que vous attendez. Il est alors sans doute nécessaire de changer l’échelle de l’axe du temps en fonction de la date de début de simulation qui a été spécifiée. 16 Formation de 2 jours MEMORISER DES INFORMATIONS ET GENERER DES RAPPORTS BioWin offre de nombreuses fonctionnalités pour aider à la rédaction de rapports professionnels attractifs, notamment un éditeur de notes intégré (voir ci-dessous) pour mémoriser des informations sur les projets. Pour accéder à cet éditeur cliquer sur Projet>Notes ou en cliquant sur le bouton « Notes ». Il est également très facile d‟obtenir les résultats de simulation de BioWin directement dans un éditeur ou un tableur externe. Les graphiques, les tableaux et la zone de dessins du schéma peuvent être copiés/collés dans un rapport. Les tableaux peuvent être exportés sous forme de texte tabulé. Bouton “Notes” FIGURE 7. EDITEUR INTERNE DE BIOWIN. PERSONALISER BIOWIN Il y a de nombreux éléments et fonctionnalités de BioWin qui peuvent être personnalisés et avoir l‟aspect désiré. Lorsque BioWin est « personnalisé », ce sont particulièrement les paramètres par défaut de l‟environnement de travail qui sont modifiés, ainsi tout nouveau projet bénéficie de ces nouveaux paramètres. Cette fonctionnalité est accessible depuis le menu Projet>Options des nouveaux projets. Une description détaillée des fonctionnalités de la boîte de dialogue correspondant à ce menu est proposée dans le chapitre « Personnalisation de BioWin ». Formation de 2 jours 17 FIGURE 8. BEAUCOUP D’OPTIONS DE BIOWIN PEUT ETRE PERSONNALISE. La commande Outils>Personnaliser permet de définir la configuration “par défaut” lorsqu‟un nouveau projet est ouvert, comme par exemple le choix des répertoires de travail. Des options générales peuvent également être sectionnées le menu Projet>Options des nouveaux projets, comme par exemple le système d‟unité. Ces préférences peuvent être modifiées ponctuellement pour un projet à travers le menu Projet>Options du projet actif. Les options d‟un projet sont enregistrées dans le fichier spécifique du projet. Elles sont donc conservées quelque soit la copie de BioWin avec laquelle vous ouvrez ce projet et restent prioritaires par rapport aux options « par défaut » de la copie de BioWin utilisée. 18 Formation de 2 jours CAS 2A – CONSTRUCTION D‟UN SCHEMA INTRODUCTION Ce cas d‟étude montre comment construire un nouveau schéma et comment ajouter des tableaux dans l‟Album. Les différents thèmes abordés couvrent : la configuration de BioWin, déplacer et raccorder des éléments sur la zone de dessin, la saisie de données pour un élément, la modification des paramètres d‟un modèle, et la mise en place de tableaux pour afficher les résultats de simulation. LE CAS D‟ETUDE 2A Une STEP d‟une ville des Etats-Unis a un système de nitrification/dénitrification – une configuration modifiée du principe Ludzack Ettinger. L‟abattement du phosphore est réalisé par un traitement tertiaire de précipitation chimique. Les clients font face à un problème à l‟étage tertiaire. Notre objectif est donc d‟observer la possibilité d‟un traitement biologique du phosphore avec les bassins existants. Le système a les caractéristiques suivantes : TABLEAU 1. CAS D’ETUDE 2A. Réacteurs non aérés: Quatre (chacun 3785 m3) Profondeur = 3.7 m Non aéré Réacteurs aérés: Deux (chacun 28386 m3) Profondeur = 3.7 m O2 = 2 mg/L Clarificateur (Idéal): Surface = 11427 m2 Profondeur = 4.3 m Eau usée: Débit moy = 333116 m3/d DCO = 246 mg/L NTK = 24 mgN/L PT = 5.4 mgP/L MMS = 15 mg/L Alcalinité = 6 mmol/L Fractions de l’eau usée: fBS = 0.12 (FS) fUP = 0.10 (fXI) fUS = 0.07 (fSI) fNA = 0.75 (fsnh) Recyclage boue: 166558 m3/d (50%) Retour Liqueurs Mixtes: 391498 m3/d (300%) Taux d’extraction: 8276 m3/j (constant) Température: 18°C Vitesse de nitrifcation (AOBs): 0.8 /d Formation de 2 jours 19 FIGURE 1. CONFIGURATION DU CAS D’ETUDE 2A. AJOUTER DES ELEMENTS SUR LE TABLEAU DE DESSIN. Note: Lors de la construction d’un schéma, attention à ne pas confondre les mélangeurs et les séparateurs. Note: Dans ce cas d’étude nous allons utiliser un clarificateur idéal. Le Cas 1 utilise un modèle de décantation. 1. Démarrer BioWin et vérifier le système d‟unité via Projet|Options du projet actif. 2. Ajouter chaque élément du schéma comme indiqué sur la figure audessus. [Les connexions des tuyaux seront faites ensuite]. Répéter les trois étapes suivantes au fur et à mesure de la construction du schéma sur le tableau de dessin: 20 Cliquer sur le bouton correspondant à l‟élément désiré dans la barre de configuration. Déplacer le curseur sur le tableau de dessin : ce dernier est transformé en « curseur de placement d‟élément ». Cliquer sur la zone de dessin à l‟endroit où l‟on veut placer l‟élément. Changer les noms des éléments pour correspondre au schéma proposé ci-dessus. (càd . Eau Usée, Zone #1, Zone #2,.Zone #3, Zone #4, Aérobie #1, Aérobie #2, Clarificateur, Eau usée, Boues). Faire un clicdroit et sélectionner la commande Nom… dans le menu. Curseur de placement des éléments Formation de 2 jours Note: Aucun nom n’apparaît pour les mélangeurs, les séparateurs et le clarificateur sur le schéma ci-dessus. Cela correspond à un choix personnalisable de BioWin qui se fait dans l’onglet Général du menu Outils>Personnaliser. Note: Votre schéma peut s’étendre au-delà de la partie visible du panneau de dessin. L’échelle du panneau de dessin peut être modifiée à partir du menu déroulant de la barre d’outils. Note: Cette configuration inclut un mélangeur pour le recyclage des boues en tête. Cependant il n’est pas forcément nécessaire de mettre ce mélangeur puisque plusieurs tuyaux peuvent être connectés à l’entrée d’un bioréacteur. REORGANISATION ET DEPLACEMENT SUR LA ZONE DE DESSIN Pour changer un élément de place: 1. Cliquer sur l‟outil de sélection d‟un élément à partir de la barre d‟outils Schéma. Outil de sélection d’un élément 2. Placer le curseur au-dessus de l‟élément qui doit être déplacé sur la zone de dessin. 3. Cliquer sur l‟élément et le déplacer en maintenant le bouton enfoncé. Note: Il est également possible déplacer plusieurs éléments simultanément. Pour cela, sélectionner le groupe d’éléments qui doit être déplacé, cliquer sur l’un d’eux et déplacer tout le groupe en gardant le bouton enfoncé jusqu’à l’endroit souhaité. Pour changer l‟orientation verticale ou horizontale d‟un élément : 1. Cliquer sur l‟outil de sélection d‟un élément à partir de la barre d‟outils Schéma. 2. Faire un clic-droit sur l‟élément et choisir Retourner Horizontalement ou Retourner verticalement à partir du menu qui apparaît (cette dernière option n‟est disponible que sur des éléments tels que les séparateurs ou les mélangeurs). CONNECTER LES ELEMENTS AVEC DES CONDUITES Formation de 2 jours 21 1. Cliquer sur l‟outil “conduite” à partir de la barre d‟outils Schéma. 2. Lorsque le curseur est placé sur la zone de dessin, il se transforme en curseur “début de conduite”. Outil conduite début de conduite 3. Placer le curseur par au-dessus de l‟élément d‟où la conduite doit débuter. 4. Si la situation du curseur est convenable, le curseur se transforme en début de conduite “ok”. 5. Si la situation du curseur n‟est pas convenable, le symbole “conduite non autorisée” apparaît. 6. Cliquer une fois sur le bouton gauche de la souris et déplacer le curseur jusqu‟à l‟élément où doit se terminer la conduite et cliquer à nouveau sur le bouton gauche. 7. Lorsque que la conduite est déplacée vers l‟élément qui doit la terminer, le curseur prend la forme du symbole “fin de conduite”. 8. Si la position de la terminaison de la conduite est convenable, le curseur restera affiché. début de conduite "OK" Conduite non autorisée Curseur de fin de conduite 9. Si la position n‟est pas convenable le curseur prendra la forme du symbole “conduite non autorisée”. 10. Répéter les étapes 3 à 9 jusqu‟à ce que tous éléments soient connectés par des conduites. Note: Pour réorganiser la position des conduites, cliquer une fois sur la flèche de tête d’une conduite. Plusieurs cercles apparaissent au long de la conduite. Essayer de les déplacer avec la souris. C’est une fonctionnalité importante pour organiser un schéma. Note: Essayer de faire un clic droit sur la flèche d’une conduite, et observer les propriétés. Diverses options permettent de modifier l’aspect de la conduite. SAISIR DES DONNEES DE DIMENSIONNEMENT ET DE GESTION Nous souhaitons maintenant entrer toutes les données physiques et opérationnelles présentées plus tôt. Chaque élément (mis à part l‟eau usée et les effluents) nécessite des données physiques qui sont disponibles sous la forme Volume/Profondeur ou Aire/Profondeur. Les données opérationnelles dépendent du type d‟élément. Par exemple, des unités telles que les bioréacteurs nécessitent des informations sur l‟aération et les niveaux d‟oxygène dissous alors que des unités telles que les séparateurs et les clarificateurs nécessitent des informations sur la répartition des débits. Note: Il y a plusieurs options pour saisir les données opérationnelles des unités d’un schéma dans BioWin. Avec la méthode énoncée nous ne pouvons accéder qu’à un nombre réduit d’options. Des informations plus complètes sur ces différentes options applicables à chaque type d’unité sont données dans le chapitre « Type d’éléments ». 22 Formation de 2 jours Pour saisir les données de chaque élément : 1. Faire un double clic sur l‟élément – ou un clic droit et sélectionner Propriétés. Saisir les informations à partir de la méthodologie proposée plus tôt. 2. Pour l‟élément Eau usée (Influent), spécifier le type Constant. Dans ce cas, seuls les résultats en régime permanent seront étudiés. Une fois terminé, utiliser la commande Fichier>Enregistrer sous… - ou cliquer sur le bouton “enregistrer” de la barre d‟outils – pour sauvegarder le schéma sous le nom “Cas 2A” dans le répertoire Data/Cours. Bouton enregistrer Note: Mélangeur et séparateurs peuvent être définis sans dimension, c’est à dire sans volume. Cette option est préférable à celle d’utiliser de très faibles volumes (en comparaison des bassins) car ils peuvent entrainer un ralentissement fort des simulations dynamiques. SPECIFIER LA/LES TEMPERATURE(S) Spécifier une température globale pour le projet (18°C) via le menu Projet>Température…. Note: Il est possible de spécifier une température locale pour chaque unité. Par exemple observer l’onglet Fonctionnement dans la boîte de dialogue d’un bioréacteur. CHANGER LES PARAMETRES DU MODELE Dans cet exemple nous devons spécifier un taux de croissance maximum pour les bactéries nitrifiantes à 20°C de 0.8/jour. Tous les paramètres du modèle dans ce projet peuvent être consultés et modifiés à partir du menu Projet>Paramètres… . Dans notre cas, nous souhaitons accéder au menu Cinétiques et modifier MuMax pour les nitrifiantes de la valeur par défaut (0.9/j) à 0.8/j. Note: Pour de nombreux éléments des paramètres locaux peuvent être spécifiés. Par exemple, voir l’onglet Fonctionnement dans la boîte de dialogue d’un bioréacteur et observer l’option à cocher Paramètres cinétiques locaux. VERIFIER QUE DES DONNEES ONT ETE SPECIFIEES Avant de démarrer une simulation avec BioWin, il faut vérifier que les données ont été saisies pour chaque élément. 1. Sélectionner Vérification des données de simulation partir du menu Simulation – ou cliquer sur le bouton vérification des données de la barre d‟outils. Une boîte de dialogue s‟affiche avec une liste d‟éléments pour lesquels les données n‟ont pas été saisies et/ou qui n‟ont pas les connexions (conduites) nécessaires. Bouton vérification des données Note: Même si l’étape de vérification des données est oubliée, BioWin lance un rappel si des données sont manquantes. Pour certaines données, comme celles des mélangeurs, il peut apparaître non nécessaire de les vérifier puisque les données par défaut sont généralement acceptées. Formation de 2 jours 23 AJOUTER DES TABLEAUX DANS L‟ALBUM La configuration du schéma est maintenant complète. Nous souhaitons alors ajouter un tableau dans l‟Album. Il s‟agit donc de définir un tableau similaire à celui montré ci-dessous sur la Page 1 de l‟Album. Les lignes correspondent à l‟Eau usée, tous les bioréacteurs (Zone & Aérobie), l‟Eau Traitée et les Boues extraites et les colonnes correspondent au composés suivants : NH3-N, NO2-N, NO3-N, PO4-P soluble, MMS, MVS and MES. FIGURE 2. TABLEAU DU CAS D’ETUDE 2A. 1. Sélectionner Album à partir du menu Affichage – Ou cliquer sur le bouton Album de la barre d‟outils – ou appuyer sur Ctrl+A. Ceci ouvre l‟Album qui est actuellement blanc. Bouton Album 2. Sélectionner Ajouter une page à partir du menu Album et cliquer OK. 3. Faire clic-droit sur la page de l‟Album. 4. Sélectionner Tableau dans menu qui apparaît. 24 Formation de 2 jours FIGURE 3. BOITE DE DIALOGUE POUR LA SELECTION DES ELEMENTS DU TABLEAU. 5. Une boîte de dialogue s‟ouvre avec l‟onglet Choisir des éléments. A partir de l‟arbre de la fenêtre Eléments disponibles, sélectionner les éléments que vous souhaitez inclure dans le tableau. 6. Pour inclure tous les éléments d‟un groupe (par exemple tous les bioréacteurs), cliquer sur la racine du groupe puis sur la flèche pointant vers la droite entre la fenêtre Eléments disponibles et la fenêtre Eléments sélectionnés. 7. Pour n‟inclure que certains éléments d‟un groupe, cliquer sur le signe plus à côté de la racine de ce groupe pour étendre l‟arbre. Cliquer ensuite sur l‟élément spécifique qui est à inclure puis sur la flèche pointant vers la droite entre la fenêtre Eléments disponibles et la fenêtre Eléments sélectionnés. 8. Pour changer l‟ordre des éléments dans la fenêtre Eléments sélectionnés (c‟est à dire l‟ordre dans lequel ils apparaîtront dans le tableau), déplacer les éléments à partir des flèches haut et bas sur le côté droit de la fenêtre. 9. Cliquer ensuite sur l‟onglet Choisir des composés. Dans la fenêtre Composés, sélectionner les composés qui doivent apparaître dans le tableau et les ajouter dans la fenêtre Composés sélectionnés en cliquant sur la flèche pointant vers la droite. Pour sélectionner plusieurs composés à la fois : 10. Sélectionner plusieurs composés contigus en cliquant sur le premier, en maintenant le bouton Shift enfoncé et en cliquant sur le dernier composé à sélectionner. Pour des composés non contigus, maintenir le bouton Ctrl enfoncé et sélectionner chaque composé en cliquant dessus. Dans chaque cas terminer la sélection en cliquant sur la flèche pointant vers la droite. Formation de 2 jours 25 FIGURE 4. BOITE DE DIALOGUE POUR LA SELECTION DES COMPOSES DU TABLEAU. 11. Pour ajouter plusieurs fois un certain composé, cocher la case Doublons autorisés, et ré-ajouter ces composés. 12. Cliquer Ok pour finir. Note: L’ordre des colonnes et des lignes peut être modifié très facilement à partir du tableau. Faire clic-droit sur le tableau, sélectionner Modifier le tableau et utiliser les flèches haut/bas. Note: Essayer de cliquer sur le bouton droit de la souris à différents endroits des pages de l’Album (notamment les onglets du bas – les noms des onglets peuvent être changés). Note: Déplacer le curseur au-dessus des éléments sur la zone de dessin permet d’obtenir un aperçu rapide des données dans les panneaux en dessous de la zone de dessin. AJOUTER DES INFORMATIONS SUR LES ELEMENTS DANS LE TABLEAU La section précédente a permis de montrer la mise en place d‟un tableau dans l‟Album. Il est aussi possible d‟ajouter des informations pré-formatées et spécifiques à un élément dans l‟Album. Ajoutons par exemple des informations sur le dernier bioréacteur aéré (Aérobie #2) sur la page 2 et sur le clarificateur sur une nouvelle page de l‟Album. 26 Formation de 2 jours Nous allons le faire avec deux méthodes différentes. 1. Sélectionner Album à partir du menu Affichage – ou cliquer sur le bouton Album dans la barre d‟outils – ou appuyer sur Ctrl+A Bouton Album 2. Sélectionner Ajouter une page à partir du menu Album et cliquer sur OK. 3. Faire un clic-droit sur la page de l‟Album. 4. Sélectionner Infos Elément dans le menu qui apparaît. 5. Sélectionner Aérobie #2 dans la liste déroulante des éléments et sélectionner Vue des variables composés dans la rubrique type de vue. Nous allons Ajouter une page pour le clarificateur avec une autre méthode. 1. Fermer l‟Album, et déplacer le curseur au dessus du clarificateur dans le panneau de dessin. 2. Faire un clic-droit et sélectionner Ajouter à l’Album>Infos Elément (var. composites). 3. Sélectionner Album à partir du menu Affichage – ou cliquer sur le bouton Album dans la barre d‟outils – ou appuyer sur Ctrl+A. Le nouveau tableau apparaît comme un nouvelle page dans l‟Album. Bouton Album Note: Les tableaux de variables composites diffèrent selon le type d’élément. Par exemple, nous pouvons observer un débit de débordement pour un clarificateur et un taux de consommation de l’oxygène pour un bioréacteur. Pour plus de détails, parcourir la rubrique sur l’Affichage des Informations sur un Elément dans l’Album dans le chapitre « L’Album dans BioWin ». Formation de 2 jours 27 28 Formation de 2 jours L‟ABATTEMENT DES NUTRIMENTS Voir présentation en annexe INTRODUCTION Ce cas montre une application de BioWin avec le système construit pour le Cas 2A. Cette application inclut la problématique du traitement du phosphore avec une zone de contact, l‟abattement du phosphore, et la nitrification poussée à température élevée. MODIFICATION D‟UNE ZONE DE CONTACT ANAEROBIE (AVEC TRAITEMENT DU PHOSPHORE) Formation de 2 jours 29 1. Si BioWin a été redémarré, ouvrir le fichier Cas 2 avec la commande Fichier|Ouvrir… - ou cliquez sur le bouton Ouvrir de la barre d‟outils – ou utiliser le raccourci CTRL+O. Bouton Ouvrir 2. Le tableau ci-dessous servira à l‟enregistrement des résultats : TABLEAU 1. MODIFICATION DE LA ZONE DE CONTACT ANAEROBIE. Temp Xaob µMAX % Liqueurs Mixtes Age de boue Effluent N Ammoniacal Nitrites Effluent Nitrates Effluent PO4-P Effluent 3. Réaliser une simulation en régime permanent. Reporter les résultats dans le tableau en observant les performances de nitrification, dénitrification et de traitement du phosphore. 4. L‟âge de boue doit également être enregistré. Cliquer sur Projet|Age de boue actif … - Ou cliquer sur le bouton Age de boue actif de la barre d‟outils. Cet âge de boue peut avoir un nom (pour pouvoir le distinguer d‟autres âges de boue observés dans différents scénarios, par exemple en incluant la masse de boue présente dans le décanteur). A partir du bouton Sélection des éléments pour la masse de boue tot. …, ajouter tout les réacteurs biologiques. Cliquer ensuite sur Sélection des éléments pour l’extraction … et dérouler le menu Boue pour sélectionner l‟élément Extraction (Wastage). L‟âge de boue (A) apparaîtra ainsi dans la barre de statut en bas de l‟écran. 5. Discuter les options possibles pour réaliser un traitement biologique du phosphore avec le dimensionnement existant des ouvrages. 6. Essayer de réduire le taux de recyclage des liqueurs mixtes (à zéro). Note: En spécifiant les éléments d’extraction pour le calcul de l’âge de boue nous avons sélectionné l’élément Boue. Il aurait également été possible de sélectionner le flux latéral du répartiteur de débit. Cependant, il ne faut pas sélectionner les deux éléments sinon le débit d’extraction sera compté deux fois ! Note: Nous calculons un âge de boue de base sur la masse de boue dans les réacteurs biologiques. Il aurait été possible d’inclure la boue du clarificateur. Note: Si le clarificateur secondaire est inclus dans le calcul de l’âge de boue, il faut alors également considérer les solides perdus par l’effluent. 30 Formation de 2 jours SYSTEME DE TRAITEMENT POUSSE DU PHOSPHORE 1. Nous désirons maintenant modifier le système pour obtenir l‟abattement du phosphore sans nitrification (avec un recyclage des liqueurs mixtes maintenu à zéro). Pour réaliser cela le débit d‟extraction est augmenté pour réduire l‟âge de boue et empêcher le développement des nitrifiantes. BioWin propose une méthode efficace pour maintenir l‟âge de boue à une valeur spécifique et calculer le taux d‟extraction requis. 2. Cliquer sur Projet|Age de boue actif … - ou cliquer sur Age de boue actif dans la barre d‟outils. Cocher la case A contrôlé – de nouvelles options apparaissent en bas de la boite de dialogue. 3. Sélectionner Extraction (WAS splitter) à partir de la liste déroulante des répartiteurs et spécifier le dernier âge de boue enregistré dans le tableau. Relancer une simulation et vérifier que le débit d‟extraction est bien 3750 m3/jours. Calcul/Contrôle de A 4. Réaliser à nouveau une simulation avec un âge de boue contrôlé à 5 jours et reporter les résultats. Réduire à nouveau l‟âge de boue à 4 jours. Sommes nous débarrassés des nitrifiantes ? NITRIFICATION POUSSEE A TEMPERATURE ELEVEE Nous rencontrons maintenant une température d‟été anormalement élevée. Que se passe-t-il si le taux de nitrification est élevé? 5. Changer le taux de croissance des nitritantes (Xaob) de 0.8 à 1.0/jours. 6. Changer la température à 24°C. 7. Répéter la simulation avec un âge de boue de 4 jours, et vérifier si les nitrifiantes peuvent ou non se développer. 1. Diminuer l‟âge de boue à 3 jours. Est-ce que le traitement du phosphore est toujours performant ? Formation de 2 jours 31 32 Formation de 2 jours CARACTERISATION DES EAUX USEES Voir présentation en annexe. FRATIONNEMENT DE LA DCO FRATIONNEMENT DE L‟AZOTE AUTRES COMPOSES DES ERU Formation de 2 jours 33 Formation de 2 jours 35 LA SEPARATION DE PHASE INTRODUCTION Après une présentation générale sur la séparation de phase un exercice basé sur la cas d‟étude 3 explore différents aspects de la modélisation du comportement d‟un clarificateur secondaire avec un modèle de décantation à une dimension. Nous étudierons le fonctionnement du modèle en régimes permanent et dynamique. Voir en annexe le détail de la présentation LE DIMENSIONNEMENT DU CAS 3 Construire un schéma avec un réacteur unique et un clarificateur secondaire avec modèle de décantation tel que montré sur l‟écran BioWin ci-dessous. Le système a les caractéristiques suivantes : Formation de 2 jours 37 TABLEAU 1. CONFIGURATION DU CAS 3. Bioréacteur: 30 ML Profondeur = 4.5 m Clarificateur (modèle): Aire = 4,000 m2 Profondeur = 4.0 m Recyclage des boues: Initialement 100 ML/d (100%) Taux d’extraction: 6 ML/j (taux constant) O2 = 2 mg/L FIGURE 1. SCHÉMA DU CAS 3. 1. Convertir au système d‟unité SI (ML et ML/jour) et construire le schéma. 2. Double cliquer sur l‟élément eaux suées, et cliquer sur le bouton A partir du fichier, et charger le fichier Exemple.idf (Example.idf) à partir du répertoire Data. 3. Réaliser une simulation en régime permanent pour vérifier que toutes les données nécessaires ont été spécifiées. 4. Utiliser la commande Fichier|Enregistrer sous … pour enregistrer le schéma Cas 3 dans le répertoire Data/Cours. Note: Dans cet exemple l’extraction se fait à partir du réacteur biologique et non du fond du clarificateur. Cette configuration est appelée « Contrôle hydraulique de l’âge de boue ». La raison d’un tel choix est qu’indépendamment du taux de recyclage et de la concentration en MES du recyclage, la concentration en MES dans le réacteur reste relativement constante. En extrayant les liqueurs mixtes à partir du réacteur, on peut ainsi maintenant un âge de boue relativement constant lorsque le débit de recyclage varie. Dans ce cas, extraire 6 ML/jour à partir du réacteur d’un volume de 30 ML se traduit par un âge de boue de 5 jours (attention la boue contenue dans le clarificateur secondaire n’est pas prise en compte dans ce calcul de l’âge de boue). 38 Formation de 2 jours ENREGISTREMENT DES RESULTATS / MODIFICATION DE L‟ALBUM 1. Ajouter une page à l‟album avec deux panneaux verticaux. Afficher les informations (Infos Eléments – Variables composites) pour le réacteur biologique et le clarificateur. Note : cette étape n‟est pas forcément nécessaire puisqu‟il est également possible d‟obtenir toutes les informations à partir de la fenêtre de simulation principale (valeurs de MES, Vitesse ascensionnelle (SLR), Flux surfacique (SOR), … ). 2. Les résultats de simulation seront reportés dans le tableau ci-dessous. Ces informations peuvent être obtenues aussi bien à partir de la page à deux panneaux de l‟album qu‟à partir de l‟affichage dans la fenêtre principale par le survol des éléments avec le curseur. TABLEAU 2 CAS 3 – RÉSULTATS OBTENUS. Débit recyclage Compacité maximale Vitesse ascen. Flux surfacique MES Effluent MES réacteur MES recyclage AFFICHAGE DU PROFIL DE CONCENTRATIONS DANS LE CLARIFICATEUR 1. Nous souhaitons obtenir un profil des concentrations en MES dans le clarificateur. Déplacer le curseur au dessus du clarificateur sur le panneau de dessin, faire un clic-droit, et sélectionner la commande Ajouter à l’album. Sélectionner Graphique de profil de conc. … à partir du menu. Dans la boite de dialogue cliquer sur Matière volatiles en suspension dans la colonne de droite (liste des variables composites). Dans le champ Type de profil, choisir Valeurs instantanées et Concentration sur X dans le champ Orientation. Cliquer sur Tracer les param. .Sélectionner Ligne à partir de la galerie générale des séries, puis fermer la boite de dialogue. 2. L‟étape précédente a généré une nouvelle courbe dans l‟album. Ouvrir l‟album – la nouvelle page doit apparaître. 3. Si vous souhaitez avoir une vue en 3-D : faire un clic-droit sur le graphique et sélectionner la commande Modifier les options… . L‟onglet 3D permet de cocher la case 3 Dimensions. Note: Dans ce cas nous simulons un clarificateur avec 10 couches horizontales – numérotées de 0 à 9. 4. L‟axe du bas (concentrations) va également être modifié pour obtenir un minimum et un maximum respectifs de 0 et 15000 mg/L. Faire un clic-droit sur le graphique et sélectionner la commande Modifier les axes … . Pour l‟axe du bas, dans l‟onglet Echelles, décocher l‟option Automatique, et cliquer sur le bouton Modifier… pour spécifier les valeurs Maximum et Minimum. Cliquer sur fermer pour quitter. Formation de 2 jours 39 AFFICHAGE D‟UN GRAPHIQUE DE “POINT D‟EQUILIBRE” 1. Nous souhaitons ajouter un graphique de “Point d‟équilibre” (State Point Analysis diagram – SPA) à l‟album. Déplacer le curseur au dessus du clarificateur sur le panneau de dessin, faire un clic-droit et sélectionner la commande Ajouter à l’album. Sélectionner Graphique à partir du menu. Dans la boite de dialogue, sélectionner l‟onglet Point d’équilibre et cliquer sur Tracer les param. Sélectionnés. 2. L‟étape précédente a généré une nouvelle page dans l‟Album. Ouvrir l‟album – la nouvelle page doit apparaître. Modifier le graphique pour améliorer la présentation initiale. SIMULATIONS EN RÉGIME PERMANENT 1. Réaliser une simulation en régime permanent. Noter le débit de recyclage, la vitesse ascensionnelle et le flux surfacique. Observer le profil de MES dans le clarificateur. 2. Modifier le débit de recyclage à 50 ML/jour en double cliquant sur le clarificateur dans le panneau de dessin en allant dans l‟onglet Répartition de débit. Répéter la simulation en régime permanent et noter les résultats. 3. Modifier le débit de recyclage à 33 ML/jour en double cliquant sur le clarificateur dans le panneau de dessin en allant dans l‟onglet Répartition de débit. Répéter la simulation en régime permanent et noter les résultats. SIMULATIONS EN RÉGIME DYNAMIQUE 1. Ajouter une page à l‟Album avec deux panneaux horizontaux. Dans le panneau du haut configurer un graphique avec une série temporelle (du type Ligne) pour la vitesse ascensionnelle (settler specific overflow rate, SOR). Les valeurs minimum et maximum sont respectivement 0 et 20. Dans le panneau du bas ajouter un graphique avec une série temporelle (du type Ligne) pour la charge au radier (settler solids loading rate, SLR). Les valeurs minimum et maximum sont respectivement 0 et 200. Note: Initialement les graphiques seront blancs car aucune simulation dynamique n’a encore été effectuée 2. Ajouter une autre page à l‟Album avec deux panneaux horizontaux. Le panneau du haut doit présenter un graphique avec une série temporelle (du type Ligne) pour la concentration en MES de l‟effluent. Les valeurs minimum et maximum sont respectivement 0 et 30. Dans le panneau du bas ajouter un graphique avec une série temporelle (du type Ligne) pour la concentration en MES du flux recyclé. Les valeurs minimum et maximum sont respectivement 0 et 16000. 3. Démarrer une simulation dynamique de deux jours. Observer les performances annoncées par le modèle de décantation dans l‟Album. Astuce: Si vous démarrer une simulation à partir de la fenêtre principale de BioWin, l’Album disparait. Vous pouvez maintenir l’Album ouvert en démarrant la simulation à partir de la touche F7. 4. Lorsque la simulation s‟arrête modifier le débit de recyclage à 100 ML/jour. Continuer la simulation pour 3 autres jours. 5. Lorsque la simulation s‟arrête modifier à nouveau le débit de recyclage en l‟asservissant à 33% du débit d‟entrée. Continuer avec une simulation dynamique de 3 jours. 40 Formation de 2 jours 6. A partir du menu Projet|Paramètres|Décantation … et de l‟onglet Modèle de Vesilind Modifié, changer la constante de compaction max à 8000 mg/L. Continuer avec une simulation dynamique de 6 jours. Observer le profil de concentrations en MES dans le clarificateur à partir de l‟Album. 7. Essayer d‟autres situations en modifiant l‟aire de la surface du clarificateur, et en changement les paramètres de décantation de la boue. Note: Entrer une constante de compaction faible peut entrainer des difficultés, notamment des problèmes de convergences pour les simulations en régime permanent. C’est une conséquence d’un problème de solveur numérique puisqu’il peut obtenir différentes solutions pour les équations de bilan de masse. Dans ce cas une solution alternative est de réaliser une simulation dynamique long terme (3 à 4 âges de boue), ce qui devrait conduire à un régime quasi permanent. Formation de 2 jours 41 42 Formation de 2 jours MODELISATION DE L‟AERATION Voir présentation en annexe. ETUDE DE CAS : SYSTEME D‟AERATION RAPPELS Le modèle de base pour le transfère d‟oxygène de la phase gazeuse vers la phase liquide est le modèle standard [ex. EPA Design Manual for Fine Pore Aeration Systems (EPA/625/1-89/023)] : Formation de 2 jours 43 C OTR F K L a 20 T 20 C * C V F K L a 20 T 20 * 20 C V MODELISATION DE LA PHASE GAZEUSE La modélisation de la phase gazeuse a été introduite à partir de la version 2 de BioWin (càd la modélisation des concentrations dans la phase gazeuse). BioWin considère six gaz différents : l‟oxygène (O2), le dioxyde de carbone (CO2), ammoniac (NH3), hydrogène (H2), azote (N2) and méthane (CH4). Pour ces six gaz les transferts de masse entre phases liquide et gazeuse sont pris en compte. La composition de la phase gazeuse est critique pour la détermination du pH dans les digesteurs anaérobie puisque la quantité de dioxyde de carbone dans le digesteur influence fortement la concentration de carbone dioxyde dissous dans la phase liquide. La connaissance des concentrations la phase gazeuse est également importante pour déterminer les taux de production des gaz. Dans les digesteurs anaérobies, la composition de la phase gazeuse est toujours modélisée. Dans les autres unités aérées (bioréacteurs, digesteurs aérobies, SBR), la composition du gaz émis/sortant est presque toujours la même. Dans ces unités, si la modélisation de la phase gazeuse est désactivée (elle l‟est par défaut), la composition de ce gaz est considérée constante. Dans ce cas, la composition du gaz sortant peut être spécifiée grâce au menu Paramètres/Autres …/Aération (voir ci-dessous). Les valeurs par défaut sont typiques d‟un gaz sortant d‟un bioréacteur. Ces valeurs sont utilisées pour déterminer la concentration de saturation en phase liquide pour chacun des composés (ex : la saturation de l‟O2 qui influence le comportement du transfert d‟oxygène). Ces concentrations de saturations sont utilisées comme base pour la modélisation des transferts de masse des gaz entre phases gazeuses et liquides. Dans certaines circonstances, la composition de la phase gazeuse peut être différente de celle proposée par les fractions ci-dessus. Par exemple, lorsqu‟il y a des variations fortes dans la charge ou le pH de l‟eau usée. Ces différences peuvent influencer le pH et le transfert d‟oxygène (car la teneur en oxygène de l‟air varie durant l‟aération). L‟utilisateur peut choisir de modélisation la phase gazeuse en sélectionnant Modéliser la phase gazeuse à partir du menu Elément/Propriétés/Fonctionnement (voir ci-dessous). Dans ce cas BioWin simule les changements dans la phase gazeuse et leurs impacts sur des facteurs tels que la 44 Formation de 2 jours concentration d‟O2 a saturation, le transfert d‟oxygène, le pH… [Par défaut cette option est désactivée, ainsi BioWin utilise les fractions de gaz spécifiées dans l‟onglet aération – voir ci-dessus]. Pour l‟aération de surface, BioWin utilise la concentration en « air insufflé » pour déterminer la concentration de saturation. La modélisation de la phase gazeuse dans les réacteurs aérés ralentie la simulation et elle n‟est généralement pas requise. Voici les raisons qui peuvent motiver à l‟utiliser : Pour une étude en détails de la modélisation du pH ou du transfert d‟oxygène. Une charge variable pouvant conduire à des modifications dans la composition du gaz sortant. Des conditions de pH inhabituelles pouvant conduire à du stripping et des variations notables de la composition de la phase gazeuse. Des concentrations de gaz sortant qui varient ou différent significativement des défauts proposés dans l‟onglet Paramètres/Autres …/Aération. Un besoin en précision maximale pour le modèle. PERFORMANCES DES DIFFUSEURS Les paramètres de corrélation pour le coefficient de transfert de masse, KLa, dans BioWin sont accessibles à partir du bouton Paramètres du modèle … à partir de l‟onglet Fonctionnement des bioréacteurs. Cette corrélation lie le KLa à la vélocité du gaz de surface (càd le débit d‟air par unité de volume de bioréacteur par unité de surface de section transversale) et à la densité des diffuseurs. K L a C U SG /jour Y C k1 DD0.25 k2 où k1 = 2.5656 /day (défaut) k2 = 0.0432 /day (défaut) Y = 0.82 (défaut) [USG en unités de m3/m2/jour] Formation de 2 jours 45 DD = couverture en diffuseurs (%) = 100 / ATAD USG = Vélocité surfacique du gaz (m3/m2/jour) = QAIR / Aire du bioréacteur = Débit d‟air (m3/day) QAIR Les paramètres des diffuseurs (k1, k2, Y) sont spécifiques du type de diffuseurs. Des tableurs doivent être utilisés pour déterminer ces paramètres à partir des données du constructeur provenant de ses tests de débit en eau claire avec différentes densités de diffuseurs. DIFFUSEURS FINES BULLES 3.0 DD = 35% DD = 25% DD = 25% 2.5 DD = 10% SOTE (%/ft) DD = 4% DD = 4% DD = 2% 2.0 1.5 1.0 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 3.5 4.0 4.5 5.0 AIR FLOW PER DIFFUSER (SCFM/diffuser) FIGURE 1. DONNEES DE PERFORMANCES D’UN DIFFUSEUR FINES BULLES. 46 Formation de 2 jours DIFFUSEUR GROSSES BULLES 1.50 DD = 35.0% 1.25 DD = 25.0% DD = 10.0% DD = 10.0% SOTE (%/ft) 1.00 DD = 4.0% DD = 2.0% 0.75 0.50 0.25 0.00 0 5 10 15 20 25 30 AIR FLOW PER DIFFUSER (SCFM/diffuser) FIGURE 2. DONNEES DE PERFORMANCE D’UN DIFFUSEUR GROSSES BULLES. FRACTION DE LA PROFONDEUR EFFECTIVE POUR LA SATURATION, fED La profondeur effective pour la saturation est la profondeur à laquelle la pression totale (hydrostatique et atmosphérique) permet de produire une pression égale à la concentration en régime permanent du système. La fraction de profondeur, fED, correspond à cette profondeur rapportée sur la profondeur en liquide totale. Ce facteur tend à représenter le fait qu‟à différentes profondeurs, les bulles sont soumises à différentes pressions. Ceci affecte la concentration d‟O2 à saturation calculée et la qualité du transfert d‟oxygène. Formation de 2 jours 47 TABLEAU 1. FRACTION DE LA PROFONDEUR EFFECTIVE POUR LA SATURATION. Possible fed look-up table Depth fED ft m 3.1 0.9 0.000 4.6 1.4 0.147 6.1 1.9 0.219 8.6 2.6 0.282 11.1 3.4 0.316 13.6 4.1 0.337 16.1 4.9 0.352 18.6 5.7 0.362 21.1 6.4 0.370 23.6 7.2 0.377 26.1 8.0 0.382 28.6 8.7 0.386 31.1 9.5 0.390 fED Factor versus Bioreactor Depth (ft) 0.40 0.35 0.30 fED 0.25 0.20 0.15 0.10 0.05 0.00 0 5 10 15 20 25 30 DEPTH (ft) FIGURE 3. FRACTION DE LA PROFONDEUR EFFECTIVE POUR LA SATURATION. CAS D‟ETUDE POUR L‟AERATION La configuration proposée ci-dessous est utilisée pour présenter certains aspects de la modélisation de l‟aération dans BioWin et pour comparer des diffuseurs fines bulles et grosses bulles. Nous allons utiliser ce schéma pour : 48 Appliquer différents paramètres de performances pour des diffuseurs fines et grosses bulles. Formation de 2 jours Réaliser des courbes de test d‟aération en eau claire avec BioWin. Etudier les différences en termes de besoin en fourniture d‟oxygène pour les différents types de diffuseurs. Etudier la composition du gaz sortant et son impact sur la concentration en O2 à saturation et par conséquence sur le besoin en fourniture d‟oxygène. FIGURE 4. SCHEMA DU CAS D’ETUDE POUR L’AERATION. Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : Profil journalier pour le débit, la DCO, le NTK, le PT [moyennes: Q = 26 mgd; DCO = 500 mg/L; NTK = 40 mgN/L; PT = 8 mgP/L]. Le débit se répartit également entre les deux filières du schéma. Chaque réacteur fait 3 millions de gallons. La profondeur de tous les réacteurs est de 15 ft. L‟âge de boue sur chaque file est de 7.7 jours. Les valeurs de F pour la filière fines bulles sont respectivement 0.5 et 0.6 Les valeurs de F pour la filière grosses bulles sont respectivement 0.75 et 0.85 La fraction de profondeur effective pour tous les réacteurs (d‟une profondeur de 15 ft) est 0.345 (voir la figure 11.3) Il faut également spécifier les paramètres de transfert de masse pour les différents diffuseurs. Dans ce cas nous utilisons les données suivantes : Fines bulles : Formation de 2 jours k1 = 2.5656 /jour (défaut) k2 = 0.0432 /jour (défaut) 49 Y = 0.82 (défaut) Grosse bulles : k1 = 0.05 /jour k2 = 0.38 /jour Y = 1.05 NOTE IMPORTANTE n°1 : Dans les systèmes de diffusion de l‟air la teneur en oxygène diminue lorsque la teneur en CO2 augmente. Dans les systèmes classiques la diminution de la teneur en oxygène est approximativement égale à l‟augmentation en CO2, ainsi le flux volumique ne change pas de façon significative. Cependant, la diminution de la teneur en oxygène a un impact sur la concentration de saturation observée de l‟O2 ; la valeur de saturation sera éventuellement plus basse que celle prévue pour la composition du gaz entrant. Cet aspect est important pour l‟estimation des débits d‟air puisque une concentration à saturation plus basse implique nécessairement une force de transfert plus faible et une augmentation du débit d‟air nécessaire pour couvrir la demande en oxygène. NOTE IMPORTANTE n°2 : BioWin peut modéliser la composition de la phase gazeuse, càd la teneur en O2 et en CO2 du gaz sortant. L‟utilisateur doit activer l‟option Modéliser la phase gazeuse dans l‟onglet Fonctionnement des bioréacteurs. Dans les systèmes d‟aération fines bulles, la teneur en oxygène des gaz sortant est d‟environ 18.8% contre environ 2% de CO2. Ces valeurs sont appliquées par défaut dans BioWin si la modélisation de la phase gazeuse n‟est pas activée. L‟utilisateur peut spécifier des valeurs différentes. Dans cet exemple la composition du gaz sortant pour les réacteurs grosses bulles (lorsque que la modélisation de la phase gazeuse n‟est pas activée) a été ajustée pour rendre compte de la réduction de l‟efficacité du transfert (càd une teneur plus élevée en O2 et une teneur plus basse en CO2 [Oxygène= 19.9%; CO2 = 1.2%]. Réaliser les étapes suivantes : Go through the following sequence of steps: 1. Ouvrir le fichier Aeration - Fine vs Coarse - US.bwc. 2. Parcourir les paramètres d‟aération (locaux) pour chacun des réacteurs du système. 3. Vérifier la désactivation de l‟option modélisation de la phase gazeuse pour chaque réacteur. 4. Simuler un régime permanent et entrer les résultats pour le premier réacteur de chaque filière dans le tableau 11.2. 5. Refaire la même simulation avec l‟activation de l‟option modélisation de la phase gazeuse et noter à nouveau les résultats dans le tableau 11.2. 6. Désactiver à nouveau l‟option modélisation de la phase gazeuse pour tous les réacteurs. Modifier la teneur en oxygène du gaz sortant à 20.95%. Réaliser une simulation en régime permanent et entrer les résultats pour le premier réacteur de chaque file dans le tableau 11.2. [Quelle teneur en gaz sortant est habituellement utilisée pour l‟analyse des systèmes d‟aération ?] 7. Remettre les valeurs par défaut de teneur en gaz (ou ré-ouvrir le fichier d‟origine) : [Fines bulles : O2 = 18.8%; CO2 = 2.0%] [Grosses bulles : O2 = 19.9%; CO2 = 1.2%]. Faire une simulation en régime permanent et poursuivre par une simulation dynamique de 2 jours. Observer les résultats dans l‟Album. 50 Formation de 2 jours TABLEAU 2. DONNÉES D’AÉRATION. Modèle phase gazeuse (On/Off) Grosses bulles 1 Fines bulles 1 OUR (resp.) Rdt Oxygè nation % O2 % Qair Gaz sortant O2 sat. OUR (resp.) Rdt Oxygè nation % O2 % Qair Gaz sortant O2 sat. Off On Off Formation de 2 jours 51 52 Formation de 2 jours CAS 4 -EXERCICE DE CALAGE D‟UNE STATION Voir présentation en Annexe OBJECTIFS Les objectifs de cet exercice de calage sont : 1. D‟aider l‟utilisateur à acquérir de l‟expérience en tant que modélisateur avec BioWin ; 2. D‟expliquer comment BioWin utilise les données disponibles à partir des sites réels ; 3. D‟offrir un cas d‟étude où BioWin permet de vérifier l‟intégrité des données disponibles (càd permet de déceler des erreurs de mesure) ; 4. De montrer comment les données peuvent être utilisées pour calculer les paramètres d‟entrée nécessaires au modèle (notamment les fractions de l‟eau usée) ; 5. De familiariser l‟utilisateur avec une approche de calage pas à pas. Formation de 2 jours 53 CAS 4 – SPECIFICATIONS DU SYSTEME ET DES DONNEES Cette station municipale a une filière qui consiste en un décanteur primaire (représentée par un Décanteur primaire idéal), deux réacteurs biologiques en série, et un clarificateur final (Clarificateur idéal), une boucle de recyclage de la boue vers le premier réacteur biologique, et une extraction des boues à partir du recyclage. La station peut être opérée avec un mode de nitrification simple (les deux réacteurs sont aérés), ou avec un mode de dénitrification, en convertissant le premier réacteur en zone anoxie. TABLEAU 1. DIMENSIONNEMENT DE LA STATION. Ouvrage Surface m2 Décanteur primaire 604 Volume m3 Profondeur m 3.7 Réacteur #1 4 164 4 Réacteur #2 6 056 4 Clarificateur final 1 198 4.3 La station a été opérée en mode complètement aérobie (nitrification simple). Des données long terme moyennées ont été extraites des fichiers de fonctionnement de la station. Les données présentent des valeurs journalières sur 3 mois dont les épisodes d‟orage ou de disfonctionnement ont été retirées. Les débits sont donnés dans le tableau ci-dessous. TABLEAU 2. DEBITS ET DONNEES OPERATIONNELLES DE LA STATION. Ouvrage/Site Eau d‟entrée Boues primaires Recyclage des boues Extraction O2 réacteur #1 O2 réacteur #2 Température process 54 Valeurs Unités 28387 114 21310 946 1.8 2.2 18 m3/j m3/j m3/j m3/j gO2/m3 gO2/m3 °C Formation de 2 jours TABLEAU 3. CONCENTRATION DE L’EFFLUENT BRUT. Paramètre Valeur Unités Note DCO total 467 mgDCO/L Donnée eau usée DCOs (GFC) 210 mgDCO/L A utiliser pour le fractionnement FF DCOs 92 mgDCO/L A utiliser pour le fractionnement NTK 30.5 mgN/L Donnée eau usée PT 6.1 mgP/L Donnée eau usée PO4-P 2.5 mgP/L A utiliser pour le fractionnement Alcalinité 265/5.3 mgCaCO3/L mmol/L Donnée eau usée pH 7.0 Unité pH Donnée eau usée MES 204 mgTSS/L A utiliser pour le fractionnement MVS 171 mgVSS/L A utiliser pour le fractionnement N Ammoniacal 23.6 mgN/L A utiliser pour le fractionnement cDBO5 234 mgO2/L A utiliser pour le fractionnement CONFIGURATION DU SCHEMA DE LA STATION Configurer le schéma suivant dans BioWin. FIGURE 1. SCHEMA DE LA STATION. Entrer les données physiques, opérationnelles et les concentrations des eaux usées. Ne pas encore rentrer les autres paramètres comme les fractions des eaux usées à ce niveau. Faire une simulation en régime permanent. Comparer les résultats avec ceux du tableau présenté à la fin de cet exercice. Attention des erreurs de mesures expérimentales (deux dans ce cas) sont suspectées, ce qui implique des erreurs dans les résultats de simulation. Discuter avec le groupe en confirmant vos résultats pour ce Simu 1. Formation de 2 jours 55 ETAPES DE CALAGE Saisie des fractions de l‟eau usée Utiliser le tableur Specifier (Raw) 3_0.xls (fourni dans le répertoire « Tools » de BioWin – faire éventuellement une copie dans votre répertoire de travail pour ne pas altérer l‟original) 1. Sur l‟onglet « Step 1 – Input Measurements » (Etape 1 – Mesures d‟entrée), entrer les données mesurées disponibles (couleur rouge) à partir du tableau 9.3. Observer les fractions calculées dans le tableau de droite du même onglet. On peut ainsi comprendre quelles mesures impactent quelles fractions. 2. Sur l‟onglet « Step 2 – Estimate COD fraction » (Etape 2 – Estimation des fractions de DCO », changer les fractions (couleur rouge) jusqu‟à ce que vous obtenez un niveau de correspondance excellent ou acceptable avec les mesures. 3. Aller sur l‟onglet « Step 3 – Copy to BioWin » (Etape 3 – Copier vers BioWin) et faire un copiercoller des fractions dans le tableau d‟eau usée de BioWin. 4. Réaliser une simulation en régime permanent (F6). Reporter les fractions utilisées ci-dessous. 5. Discuter les résultats avec le groupe [Simu 2]. TABLEAU 4. FRACTION D’EAU USEE DANS BIOWIN. Paramètre Défaut Utilisé Explication/Origine FS (Fbs) 0.16 Influent Specifier (FFCOD-Sus)/TCOD) FSac (Fac) 0.15 AGV, important pour traitement Bio des nutriments. Utiliser défaut ou zéro FXs (Fxsp) 0.75 Influent Specifier – correspondance avec les solides et FFCOD FSi (Fus) 0.05 DCOs effluent / CODt eau usée FXi (Fup) 0.13 Influent Specifier Fsnh (Fna) 0.66 N-NH3 / NK FNp (Fnox) 0.50 Paramètre non sensible, laisser par défaut FSni (Fnus) 0.02 Basse concentration – laisser par défaut FXni (FupN) 0.035 Laisser par défaut Fpo4 0.50 P-PO4 / PT FXpi (FupP) 0.011 Laisser par défaut Calage du décanteur primaire 1. Les caractéristiques de l‟effluent du décanteur primaire vont influencer le traitement biologique, cet ouvrage doit donc être correctement « calé » avant d‟aller plus loin sur la filière. 2. Calculer le pourcentage de rendement d‟élimination des solides du décanteur primaire et le reporter dans BioWin. 3. Vérifier la concentration de l‟effluent du décanteur primaire. Ajuster si nécessaire pour obtenir des résultats corrects [Simu 3]. 56 Formation de 2 jours 4. Comparer les concentrations de boue primaire mesurées et simulées. S‟il y a une erreur importante, faire un bilan de masse autour du décanteur primaire en utilisant les données mesurées, puis ajuster le flux de boues primaires pour boucler le bilan de masse en utilisant le tableau 5 comme aide. (Astuce : alternativement, pour une approximation rapide, le ratio de concentrations simulées/mesurées peut être utilisé pour ajuster le flux de boue primaire) [Simu 4]. TABLEAU 5. BILAN DE MASSE AUTOUR DU CLARIFICATEUR PRIMAIRE. Flux Débit m3/j MES mg/L Flux massique kg/jour (Mesuré) Flux massique kg/jour (débit ajusté = ? m3/j) Note Eau usée Effluent primaire Boues primaires Bilan* * Bilan = Eau usée – (Effluent + Boue Primaire) Calage du clarificateur secondaire 1. Ajuster le pourcentage de rendement d‟élimination des solides du clarificateur secondaire en comparant les MES de l‟effluent simulées et mesurées [Simu 5]. 2. Vérification des MES des liqueurs mixtes. Si le calage n‟est pas encore satisfaisant, on peut suspecter une erreur de la mesure du débit d‟extraction – il faut dans ce cas l‟ajuster pour obtenir une concentration en MES correspondant à celle mesurée. (une façon plus rigoureuse de vérifier le débit d‟extraction est de réaliser un bilan de masse au niveau des MMS (Matières minérales en suspension, ISS) au niveau de l‟étage « boues activées » (avec l‟hypothèse qu‟il n‟y a pas de source complémentaire de MMS comme la précipitation ou les Poly-P) [Simu 6]. 3. Vérification de la qualité de l‟effluent. Si le modèle est construit convenablement, la DBO de l‟effluent doit être faible. Réitérer toute cette étape d‟ajustement des solides de l‟effluent si nécessaire [Simu 7]. Taux de croissance des Xaob (AOB) pour le calage de l‟azote ammoniacal en sortie 1. La station est en saison estivale (18°C), et seules les mesures de l‟azote ammoniacal sont disponibles. L‟effluent est complètement nitrifié durant l‟été, il ne contient donc pas assez d‟information pour déterminer le taux de croissance des nitrifiantes. Essayer différents taux de croissance et observer de quelle façon ils affectent l‟azote ammoniacal de l‟effluent dans ces conditions. Utiliser le tableau 6 pour enregistrer les taux de croissances et les résultats de simulation. 2. Maintenant nous avons des données disponibles à 10°C : l‟azote ammoniacal dans le Bassin 1 (Tank 1) et dans l‟effluent. Dans ces conditions la station nitrifie partiellement et le taux de croissance peut Formation de 2 jours 57 alors être déterminé en utilisant un coefficient de correction en température (le laisser par défaut à 1.072). 3. Si nous avions des informations dynamiques, la précision/qualité de l‟estimation de ce taux pourrait être améliorée. La meilleure solution est de réaliser un test de mesure vitesse de nitrification maximale (méthodes en réacteur avec mesures chimiques ou par respirométrie). TABLEAU 6. CALAGE DU TAUX DE NITRIFICATION. Paramètre Unités Test #1 Test #2 Test #3 Test #4 Test #5 Taux de croissance Xaob (AOB) 1/j Température °C 18 18 18 10 10 N-NH3 effluent mesuré mgN/L 0.2 0.2 0.2 3.7 3.7 N-NH3 effluent simulé mgN/L RESULTATS Reporter les résultats finaux des simulations dans le tableau 8 [Simu 8]. Reporter les valeurs des paramètres calés dans le tableau ci-dessous. TABLEAU 7. RESULTATS DE CALAGE – VALEURS INITIALES ET FINALES. Paramètres Unités Valeur initiale Rendement d‟élimination primaire % Débit d‟extraction primaire m3/j 0.03 Rendement d‟élimination secondaire % 99.8 Débit d‟extraction secondaire m3/j 0.25 Taux de croissance des Xaob (AOB) 1/j 0.9 Valeur calée 65 AUTRES EXERCICES OPTIONNELS Cette section propose des exercices avancés qui aide à améliorer la compréhension du modèle et de sa sensibilité aux paramètres d‟entrée. 1. Dénitrification : Modifier le Bassin 1 (Tank #1) en mode anoxie. Explorer les changements dans la qualité de l‟effluent et la sensibilité de la dénitrification à/au : 1. Volume en anoxie, 2. La fraction soluble biodégradable de la DCO (FS - FBS), 58 Formation de 2 jours 3. Le facteur d‟hydrolyse en anoxie (Neta Anox Hyd), 4. Le rendement en anoxie. 5. Différents recyclages des nitrates à partir des Bassin 1 et 2 (Tank #1 et Tank #2). 2. Profil journalier. Utiliser un profil journalier et réaliser une simulation dynamique de plusieurs jours après avoir obtenu un régime permanent. Observer l‟écart entre les valeurs de l‟effluent en régime permanent avec les pics et les moyennes journalières. 3. Limitation par l’alcalinité. Dans les simulations précédentes il y avait assez d‟alcalinité dans l‟eau usée pour permettre une nitrification complète. Baisser l‟alcalinité de l‟eau usée avec la configuration d‟une station entièrement aérobie (nitrifiante) et observer comment l‟azote ammoniacal de l‟effluent est affecté. Est-ce que l‟alcalinité produite par la dénitrification améliore la nitrification ? Formation de 2 jours 59 Unités Mesuré Paramètres Modifiés Nouvelle valeur MES effluent primaire mg/L 84.1 DBO effluent primaire mgO2/L 164.0 Concentration boue prim. mg/L 17700 MES liqueurs mixtes mg/L 1910 MVS liqueurs mixtes mg/L 1580 MES effluent mg/L 14.2 DCOt effluent mgCOD/L 48.1 DCOs effluent mgCOD/L 31.0 DBO effluent mgO2/L 6.0 NH4 effluent mgN/L 0.2 NO3 effluent mgN/L 14.5 P-PO4 effluent mgP/L 2.4 mgCaCO3/L 123 mg/L 4510 Alkalinité effluent MES Extraction/Recyclage TSS Simu #1 Simu #2 Simu #3 Simu #4 Simu #5 Simu #6 Défaut parameters Fractions E.U Primaire % removal QBoue prim Secondaire % removal Extraction (Tableau 5) TABLEAU 8. TABLEAU DE CALAGE Cours de 2 jours 61 Simu #7 Simu #8 Secondaire % Résult. finaux removal 62 Cours de 2 jours PARCOURS DES FONCTIONNALITES AVANCEES DE BIOWIN Voir présentation en annexe La dernière version de BioWin propose une multitude de compléments et d‟améliorations qui étendent ses capacités de modélisation des systèmes de traitement des eaux usées. Les principaux ajouts de la version 3 en termes de modélisation sont : Le modèle de Biofilm La nitrification et la dénitrification en deux étapes Les bactéries Anammox L‟incorporation de la nitrification et de la dénitrification en deux étapes ainsi que la croissance des bactéries Anammox offre à BioWin la capacité de modéliser en détails les différents processus de traitement des retours en tête qui ont été développés durant les dernières années (ex : digesteur). Cette section parcours brièvement certaines des fonctionnalités importantes de BioWin. Cours de 2 jours 63 L‟INTERFACE L‟interface de BioWin est très semblable à celle de la version 2. Les raccourcis affichés dans la barre de menu changent en fonction de l‟onglet sélectionné. Onglet “Principale” : Les simulations sont effectuées à partir de l‟onglet Principale. Onglet “Schéma” : Cet onglet permet la construction du schéma. Onglet “Calculateur” : Plusieurs “Ages de boue” (A) peuvent être définis et calculés à partir de cet onglet. Celui qui est désigné comme « actif » est affiché dans la barre de statut en bas de la fenêtre de BioWin. FIGURE 1. L’INTERFACE DE BIOWIN. Une fonctionnalité utile qui a été ajoutée à l‟interface de BioWin est l‟affichage d‟informations sur les concentrations et les flux massiques lors du survol avec la souris d‟une conduite (voir le panneau d‟affichage en bas à droite de la fenêtre de BioWin : BioWin est installé avec une série de schémas préconfigurés (ainsi que leurs albums). Ils sont accessibles à partir du bouton « Classeur » de l‟onglet « Principale ». 64 Cours de 2 jours FIGURE 2. OUVERTURE DU CLASSEUR DES SCHEMAS PRECONFIGURES. NOUVEAUX ELEMENTS DANS BIOWIN Parmi les nouveaux éléments inclus dans BioWin : Ajout de Méthanol Une biomasse spécifique, les Méthanogènes (ZBMETH), est incluse dans le modèle. Réacteur de traitement des retours en tête Note : L’élément Réacteur de traitement des retours en tête a été ajouté à la liste des éléments pour permettre de le distinguer facilement du Bioréacteur sur le panneau de dessin. Cependant le modèle appliqué au Réacteur de traitement des retours en tête est identique à celui des autres éléments. BioWin est basé sur l’intégration d’un unique modèle biologique et chimique appliqué à tous les étages d’un schéma. La seule véritable différence du réacteur de traitement des retours en tête repose sur les valeurs d’ensemencement pour débuter une simulation, puisqu’elles différent de celles du Bioréacteur classique. Bioréacteur à support (pour systèmes IFAS et MBBR) Cours de 2 jours 65 Ajout de coagulant métallique (pour l‟ajout de chlorure ferrique ou d‟alum) Boue Bioréacteur avec aération à brosses Bioréacteur avec aération de surface Mélangeur général (pour combiner plusieurs conduites) Clarificateur sans volume (point) Cet élément, utilisé pour la séparation de phases, est une simplification du clarificateur idéal – il n‟a pas de volume. Un rendement d‟élimination des solides est appliqué et la fraction restante des solides est retournée instantanément dans le flux recyclé. Application les plus courantes de cet élément sont : - Les bioréacteurs à membrane. - Les unités de déshydratation et les autres éléments de séparation de phase qui ont un volume négligeable. L‟utilisation de cet élément permet un gain de temps en termes de simulation en comparaison de l‟unité de déshydratation proposée dans la version 1.2. Dans la version 2.1 le volume de cette unité est devenu nul. - Les simulations simples (modèle rapide qui néglige le volume de boue du clarificateur). - La comparaison/vérification avec des simulations réalisées avec d‟autres packages ou en utilisant les modèles standard internationaux (SSSP et les modèles ASM). 66 Cours de 2 jours OPTIONS DU MODELE Les options du modèle peuvent être activées ou non selon les spécificités du schéma. Par exemple, s‟il n‟y a pas d‟ajout de chlorure ferrique ou d‟alum pour un système donné, alors il n‟est pas nécessaire d‟inclure la modélisation de ces composés pour la simulation. L‟état des options du modèle est affiché dans une barre au bas de la fenêtre de BioWin, juste au dessus de la barre de statut. En cliquant sur le bouton Options du modèle … (à gauche de la barre), l‟utilisateur peut consulter une boîte de dialogue permettant d‟activer ou non les options du modèle. Utiliser le modèle intégré de BioWin (boues activées/digestion anaérobie) : Permet d‟activer le modèle de boues activées et de digestion anaérobie par défaut de BioWin. Utiliser le modèle personnalisé du projet : Cette option est à activer si (a) un modèle complémentaire à celui de BioWin doit être utilisé ou si (b) le modèle de BioWin doit être entièrement remplacé par un modèle du type ASM1, ASM2d ou ASM3. Utiliser la modélisation de l’oxygène : Si cette option n‟est pas activée, il est alors supposé une réponse instantanée à un changement de consigne en O2. Selon que cette option est active ou non, BioWin prendra en compte la fourniture d‟oxygène additionnelle pour l‟augmentation de la concentration en O2. Inclure le calcul du pH: En tout point du système le pH est calculé lorsque cette option est active; sinon il est supposé que le pH est de 7.0 (le pH dans les digesteurs peut être appliqué de manière séparée). Appliquer la limitation par le pH dans les équations cinétiques des boues activées : Lorsque cette option est active, la dépendance au pH des cinétiques des boues activées est considérée. Dans les digesteurs en anaérobie cette dépendance est toujours considérée. Inclure les réactions chimiques de précipitation pour la struvite, l’HAP et le HPC : Cette option doit être sélectionnée pour les schémas où les précipités suivants peuvent être attendus : struvite (MgNH4PO4.6H2O), HAP (hydroxy-apatite – Ca5(PO4)2OH) et HPC (hydroxy- phosphate (di)calcium – Ca2HPO4(OH)2). Le calcul du pH doit alors être actif. Inclure les réactions chimiques de précipitation pour les hydroxydes et les phosphates de métal : Cette option doit être sélectionnée pour la précipitation chimique du phosphore avec l‟ajout de chlorure ferrique ou l‟alum. Le calcul du pH doit alors être actif. Modèle de décantation (décanteurs et SBR) : Choix entre le modèle de Vesilind modifié (avec compaction max. et demi-saturation pour la clarification) et le modèle en double-exponentielle. Cours de 2 jours 67 BILAN DE MASSE POUR UN ELEMENT SPECIFIQUE Faire un clique-droit sur un élément et sélectionner l‟option Bilan de masse … INFORMATIONS CINETIQUES POUR UN ELEMENT SPECIFIQUE Faire un clique-droit sur un élément et sélectionner l‟option Cinétiques ... 68 Cours de 2 jours PERSONNALISATION DE BIOWIN Différents éléments de BioWin peuvent être personnalisés à partir des menus Outils/Personnaliser … et Projet/Options des nouveaux projets … Par exemple, il est possible de choisir entre noms complets et noms abrégés (cryptiques) pour la description des nombreux paramètres. Ces choix restent valables après redémarrage de BioWin. Certains éléments peuvent également être personnalisés uniquement pour le projet en cours à partir du menu Projet/Options du projet actif … REGLAGES DU SOLVEUR NUMERIQUE Le solveur pour le régime permanent a été affiné. Le solveur par défaut (Hybride BioWin) utilise une combinaison des méthodes numériques Newton-Raphson et de la méthode dite de « recherche linéaire découplée » (RLD/DLS). Généralement une solution en régime permanent doit être trouvée avec 5 à 12 itérations. Cependant, avec certaines configurations le solveur peuvent avoir des difficultés à converger vers une solution. L‟aide en ligne et le manuel incluent une section intitulée : Managing BioWin Projects/ Numerical parameters/ Tips for systems that are difficult to solve. Quatre approches pour la résolution de situations de non convergences sont proposées ci-dessous. RECHERCHE LINEAIRE DECOUPLEE. Pour les très grands systèmes (notamment ceux qui incluent plusieurs unités de clarification), essayer la Recherche linéaire découplée (RLD/DLS) à partir du menu Projet/Options du projet actif …/Paramètres numériques. Cours de 2 jours 69 PARAMETRES SECURITAIRES DU SOLVEUR Si la valeur de l‟erreur affichée dans la fenêtre Analyse en régime permanent ne diminue pas d‟une itération à l‟autre après 15 à 20 itérations, essayer de sélectionner les paramètres sécuritaires du solveur. A partir du menu Projet/Options du projet actif …/Paramètres numériques, cliquer sur le bouton Options … dans le cadre Solveur en régime permanent puis cliquer sur le bouton Restaurer les valeurs par défaut sécuritaires. AJUSTEMENT DU PAS INITIAL DU SOLVEUR RLD Pour les systèmes ayant des taux de recyclage élevés (par exemple les chenaux d‟oxydation) ou les systèmes avec des « boules dans les boucles », essayer d‟ajuster les paramètres du solveur RLD (DLS). A partir du menu Projet/Options du projet actif …/Paramètres numériques, cliquer sur le bouton Options … dans le cadre Solveur en régime permanent puis changer le paramètre Pas initial dans le cadre Recherche linéaire découplée (RLD) (la valeur par défaut étant 5). 70 Cours de 2 jours SOLUTION EN REGIME PERMANENT EN DEUX ETAPES S‟il apparaît que le solveur rencontre des difficultés avec le calcul du pH (par exemple avec des oscillations significatives du pH d‟une itération à l‟autre), une approche en deux étapes peut permettre de résoudre ce problème. A partir du menu Projet/Options du projet actif …/Modèle (ou en cliquant directement sur le bouton Options du modèle …), désélectionner l‟option Inclure le calcul du pH. Lancer une simulation en régime permanent, avec des conditions initiales « ensemencement ». Cela devrait permettre de converger vers une solution (avec un pH de 7.0 dans toutes les unités). Ensuite retourner aux Options du modèle … et réactiver le calcul du pH et relancer une simulation, avec les conditions initiales « valeurs actuelles ». FRACTION MINERALE DE LA BIOMASSE Dans les systèmes recevant des eaux usées synthétiques, avec par exemple du glucose, la concentration en MES des liqueurs mixtes est légèrement supérieure à la concentration en MVS même si l‟eau usée ne contient pas de MMS. Ceci est du probablement à des sels dissous inorganiques qui sont inclus dans les organismes lors du processus de croissance. Pour prendre en compte cette situation, BioWin permet maintenant de considérer une fraction minérale de la biomasse (et un résidu endogène) qui peut être spécifié à partir du menu Projet/Paramètres/Autres …/Général. Note : lors du chargement d‟un fichier provenant d‟une version « ancienne » de BioWin, la valeur de cette fraction sera par défaut à zéro. Dans le cas d‟un nouveau schéma la valeur par défaut est de 8%. Considérer le système ci-dessous. Réaliser une simulation en régime permanent et ouvrir l‟Album (voir cidessous). La différence entre MES et MVS est de 9.18 mg/L. Il n‟y a pas de MMS dans l‟eau usée, donc la différence doit provenir d‟une synthèse de MMS. La somme des composés de la biomasse [hétérotrophes, autotrophes (XAOB and XNOB) et résidu endogène] est : 98.49 + 1.69 + 1.08 + 48.58 = 149.84 mgDCO/L. Tous ces composés ont un ratio DCO/MVS de 1.42, donc la contribution au MVS de la biomasse est de Cours de 2 jours 71 149.84/1.42 = 105.52 mgMVS/L. Dans ce cas la synthèse d‟une fraction inerte est fixé à 8% ; càd que si X est la concentration en matière minérale en mg/L : X 0.08 105.52 X La résolution donne : X = 9.18 mg/L FIGURE 3. EXEMPLE DEMONTRANT LA FRACTION MINERALE DE LA BIOMASS 72 Cours de 2 jours DENITRIFICATION PAR AJOUT DE MATIERE ORGANIQUE. EXEMPLE AVEC AJOUT DE METHANOL CONSIDERATIONS SUR LE MODELE DANS LE CAS DE L‟AJOUT DE METHANOL Une biomasse utilisant spécifiquement le méthanol, les méthylotrophes XMETH (XMETH), a été incluse dans BioWin. Cette biomasse : Utilise le méthanol pour sa croissance dans les zones non aérées. A un rendement en anoxie de 0.4, donc plus bas que celui des hétérotrophes. N‟est pas capable d‟utiliser d‟autres substrats. ATTENTES VIS A VIS DE L‟AJOUT DE METHANOL Dans les systèmes où le méthanol est ajouté pour la dénitrification, on peut s‟attendre à un besoin de 3.2 unités de masse de méthanol pour l‟abattement d‟une unité de masse de N-nitrates. Si la concentration en oxygène du flux entrant dans le réacteur est élevée, alors l‟ajout de méthanol permet le stripping de l‟oxygène. Le ratio DCO du méthanol/N provient directement de la stœchiométrie suivante : DCO / N Cours de 2 jours 2.86 2.86 4.77 gDCO/gN 1 YMeOH , AX 1 0.4 73 La masse de méthanol est alors déduite du ratio DCO/masse obtenu comme suivant : CH3 OH 3 O 2 CO 2 2H2 O 2 32 g 1.5 x 32 g = 48 g Ainsi le méthanol a un ratio DCO/masse de 48/32 = 1.5 gDCO/gMeOH. Le ratio MeOH/N est : MeOH / N 4.77 mgDCO gMeOH 3.18 gMeOH/gN gN 1.5 gDCO CAS D‟ETUDE : AJOUT DE METHANOL Ce cas d‟étude montre : Comment un ajout de méthanol dans un système de boues activées rentre en compte dans la dénitrification Comment évaluer la mise en route de ce même système avec l‟ajout de méthanol. Nous considérons un système à deux étages avec un réacteur biologique suivi d‟un réacteur post-anoxique, càd une configuration Wuhrman. Le système fonctionne à un âge de boue de 10 jours. FIGURE 1. SCHEMA AVEC AJOUT DE METHANOL. Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : 74 Un profil journalier de débit, de DCO, the NTK et de TP [moyennes: Q = 100 ML/j; DCO = 500 mg/L; NTK = 40 mgN/L; PT = 8 mgP/L]. Le volume du réacteur aérobie : 20 000 m3 Le volume du réacteur anoxique : 10 000 m3 Cours de 2 jours Un âge de boue total de 9.65 jours. Un âge de boue anoxique de 2.5 jours. REPRESENTER L‟AJOUT DE METHANOL Réaliser la séquence d‟étape suivante : 1. Ouvrir le fichier Methanol - Post-anoxic.bwc. 2. Vérifier que le débit de méthanol est à zéro. 3. Réaliser une simulation en régime permanent pour le cas sans méthanol. Reporter les résultats dans le tableau 12.1 [Voir l‟Album pour les flux massiques]. Le flux massique de N-NOX dans l‟effluent est d‟environ 1050 kgN/j. L‟objectif est de diviser par deux ce flux par l‟ajout de méthanol. Quel flux de méthanol à 100% est alors nécessaire ? MeOH flow (L/j) 1050 / 2 kgN 4.77 kgDCO L 106 mg 2,108 L MeOH/j kgN 1,188,000 mgDCO kg 4. Augmenter le débit de méthanol (1000 puis 2000 L/j), et simuler un régime permanent pour chacun de ces cas. Reporter les résultats dans le tableau 12.1. Astuce : Ouvrir une fenêtre de bilan de masse pour le réacteur anoxique et sélectionner l‟option azote. Observer alors le changement dans le flux massique de gaz N2 sortant. Comparer cette quantité à la quantité de « DCO méthanol » ajoutée. Vérifier également si tout le méthanol est utilisé. TABLEAU 1. AJOUT DE METHANOL POUR LA DENITRIFICATION. MeOH débit (L/j 0 MeOH MeOH Masse ajoutée (kgDCO/j) Masse non utilisée 0 0 (kgDCO/j) Effluent N-NOX (mgN/L) Effluent N-NOX (kgN/d) Gaz sortant N (kgN/d) DOC/N (kgDCO/kgN) - 1000 2000 MISE EN ROUTE DU SYSTEME Réaliser la mise en route du système comme suivant : 1. Mettre le débit de méthanol à zéro. 2. Faire une simulation en régime permanent. 3. Mettre le débit de méthanol à 2100 L/j. 4. Faire une simulation en régime dynamique pour une durée de 20 jours (soir 2 âges de boue), et observer la concentration en nitrates de l‟effluent ainsi que la concentration en méthylotrophes dans le réacteur anoxique. Le système a-t-il atteint un régime permanent ? Cours de 2 jours 75 5. Continuer la simulation dynamique pour encore 20 jours (soit 4 âges de boue). 76 Cours de 2 jours MODELISATION DU PH INTRODUCTION Le pH joue un rôle fondamental dans tous les processus biologiques, notamment pour les processus de boues activées et de digestion anaérobie. A cause de la complexité du calcul du pH dans les eaux usées, BioWin avait d‟abord utilisé l‟alcalinité comme indicateur d‟instabilité du pH. Si l‟alcalinité est basse, des changements rapides de pH peuvent survenir. Cependant, cette corrélation est faible et ne prend pas en compte les cas d‟inhibition par pH élevé. Un modèle général de pH a été implémenté à partir de la version 2.1 de BioWin à fin d‟inclure tous les principaux systèmes acide-base généralement présents dans les eaux usées municipales. L‟objectif du modèle est de calculer le pH tout au long de la station, y compris dans les filières liquides et solides. Certains développements ont rendu possible et/ou nécessaire de modéliser le pH, notamment : La modélisation de la phase gazeuse qui est importante pour la modélisation de la digestion anaérobie et pour les processus de précipitation. Le calcul des taux de transfert des gaz (par exemple du CO2 et du NH3) nécessitent de connaître l‟état d‟ionisation des espèces et par conséquent le pH du système. La prise en compte de l‟inhibition de l‟activité biologique à des pH bas ou élevés. La modélisation du pH est influencée par la précipitation du phosphore pour ajout d‟aluminium ou de fer, également par la formation des hydroxydes. La modélisation du pH est influencée par la précipitation spontanée de la struvite et des phosphates de calcium, qui sont intégrés à la matrice biologique du modèle. La prédiction précise de la précipitation de la struvite nécessite également la modélisation des concentrations en magnésium, qu‟il soit soluble ou stocké dans les organismes. La partie “équilibre” du modèle de pH ne requiert pas de calage de paramètres, les constantes d‟ionisation étant connues par la littérature. Une estimation du coefficient du transfert de masse du CO2 est nécessaire, sur la base d‟une aire commune avec le modèle de transfert d‟oxygène. EXAMPLE 1: TEST DE CHARGE MASSIQUE ÉLEVÉE (HIGHT F/M TEST) Un protocole expérimental a été suivi pour mesurer le taux de croissance des nitrifiantes issues d‟un échantillon de boues activées prélevé à la station d‟épuration de Dundas en Ontario, Canada entre le 4 et le 8 juin 2001 (WERF, 2003). Dans le test à charge massique élevée (high F/M bioassay), une concentration relativement faible de nitrifiantes reçoit de l‟ammoniaque, et l‟augmentation des concentrations en nitrites et en nitrates est suivie durant une période d‟environ 4 jours. Ces tests ont été réalisés par paires dans des béchers de 4 L mélangés avec un volume liquide de 3 L. Un échantillon de liqueur mixte prélevé à la station de Dundas sert d‟ensemencement. Ce dernier a été dilué avec l‟effluent secondaire pour obtenir une concentration initiale d‟ensemencement de 30 à 35 mgMVS/L. Au début du test, l‟effluent, la boue et les réactifs ont été ajoutés simultanément dans chaque réacteur. Les réactifs étaient du chlorure d‟ammonium avec 1 g de bicarbonate de sodium (pour équilibrer l‟alcalinité). Cours de 2 jours 77 150 150 NOx-N measured NOx-N predicted 125 NH4-N 100 100 75 75 50 50 25 25 0 NH4-N (mg/L) NOx-N (mg/L) 125 0 0 1 2 3 4 5 TIME (days) FIGURE 1. REPONSE DU TEST A FORTE CHARGE MASSIQUE (HIGH F/M TEST). La quantité de chlorure d‟ammonium ajoutée a été calculée pour obtenir une concentration initiale en ammoniaque de 120 mgN/L. Les réacteurs ont été mélangés durant toute la durée du test. Le pH a été suivi en continu et reporté sur un graphique. Des échantillons ont été prélevés de manière intermittente pour analyse des N-NO3, N-NO2 et de l‟azote ammoniacal total. Les ajouts d‟alcalinité ont été réalisés sous forme de bicarbonate de sodium lorsque le pH atteignait environ 7.5. L‟aération dans le réacteur a été contrôlée avec un oxymètre relié à un bulleur d‟aquarium fonctionnant en mode marche/arrêt pour maintenir une concentration en oxygène comprise entre 4 et 6 mgO2/L. Un exemple de résultat du test à forte charge massique est donné sur la figure ci-dessus. Une régression non linéraire par la méthode des moindres carrés a été appliquée pour déterminer l‟équation exprimant la production de nitrate à partir des N-NOX mesurés. Le taux de croissance obtenu pour les nitrifiante a été utilisé pour la simulation de ce test. La figure ci-dessous montre, les réponses mesurées et simulées du pH durant le test. Les quatre périodes de forte augmentation du pH sont été causées par l‟ajout du bicarbonate de sodium. L‟observation de la courbe de pH montre que le bicarbonate a été consommé de plus en plus rapidement au fur et à mesure du test, ce qui s‟explique par l‟accélération de la nitrification. Les points de données donnent les valeurs extrêmes des variations de pH causées par l‟aération marche/arrêt. De manière générale l‟aération était en marche pour 1 à 1.5 minutes, ce qui entrainait le stripping du CO2 et par conséquence une augmentation du pH pendant une courte période. L‟aération marche/arrêt n‟a pas été simulée puisque les temps d‟aération exacts n‟ont pas été enregistrés. Une concentration moyenne en oxygène dissous de 5 mgO2/L a été utilisée pour la simulation, ce qui est revenu a appliquer une augmentation progressive de la fourniture d‟oxygène (avec l‟augmentation de l‟activité biologique). Le modèle représente précisément la tendance et les valeurs absolues du pH (avec une erreur d‟environ 0.1). Ce modèle offre donc une bonne estimation de toutes les variables importantes du process. 78 Cours de 2 jours FIGURE 2. PH DANS UN TEST A FORTE CHARGE MASSIQUE (MODEL – LIGNE CONTINUE). 8.4 8.2 8.0 7.8 pH 7.6 7.4 7.2 7.0 June 04 June 05 June 06 June 07 June 08 EXEMPLE 2 : CULTURE BIO-P ENSEMENCEE Wentzel et al. (1989) ont réalisé plusieurs tests en laboratoire d‟ensemencement de culture avec de l‟acétate dans des conditions de régime permanent et à différents âges de boue. Les auteurs ont enregistré le pH et mesuré les concentrations en PO4-, NH3, NO3- dans chacun des réacteurs anaérobie, anoxique et aérobie durant les tests. Quatre de ces installations ont été simulées en utilisant un modèle combiné ASDM-pH. Le modèle prédit avec pertinence toutes les variables du process à partir des mêmes paramètres de test. Il y a une bonne correspondance entre les profils de nutriment mesurés et simulés, tel que montré par la figure 13.3 pour les orthophosphates. Le développement d‟un modèle de traitement biologique des nutriments était l‟objectif initial de ce test. La figure 4 montre les profils de pH simulés et mesurés pour des tests identiques (voir figure 13.3). En plus de la nitrification/dénitrification et du transfert du CO2, le pH est également sensible à la consommation et au relargage du phosphore et des cations tels que le magnésium et le potassium. Si ces phénomènes ne sont pas pris en compte, il n‟est pas possible de modéliser le pH avec précision. Cours de 2 jours 79 FIGURE 3. PROFILS DE PO4 A TRAVERS LES REACTEURS DU TEST. UCT 10 d SRT System Bardenpho 20 d SRT System 180 160 180 PO4 (mgP/L) PO4 (mgP/L) 140 120 160 140 Model Observed 100 80 60 40 120 100 80 60 40 20 20 0 0 Reactor 1 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 5 Reactor 1 Bardenpho 10 d SRT System Reactor 4 Reactor 5 Bardenpho 7.5 d SRT System 140 120 100 PO4 (mgP/L) 160 140 PO4 (mgP/L) Reactor 3 180 160 180 120 100 80 60 40 20 80 60 40 20 0 0 Reactor 1 ` Reactor 2 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 1 Reactor 5 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 5 FIGURE 4. PROFIL DE PO4 A TRAVERS LES REACTEURS DU TEST. Bardenpho 20 d SRT System UCT 10 d SRT System 8.0 8.0 7.8 7.8 7.6 7.6 pH pH 7.4 7.4 7.2 7.2 7.0 7.0 Reactor 1 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 5 Reactor 1 7.6 Reactor 4 Reactor 5 8.0 7.8 Model Observed 7.6 pH pH 7.4 7.4 7.2 7.2 7.0 7.0 Reactor 1 80 Reactor 3 Bardenpho 7.5 d SRT System Bardenpho 10 d SRT System 8.0 7.8 Reactor 2 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 5 Reactor 1 Reactor 2 Reactor 3 Reactor 4 Reactor 5 Cours de 2 jours CAS D‟ETUDE : LA DIGESTION AEROBIE Ce cas d‟étude explore : La modélisation du pH; L‟ajout d‟une variable d‟état pour représenter l‟ajout de chaux dans le système. Le système considéré fonctionne à un âge de boue de 15 jours avec un acheminement direct des boues extraites vers un digesteur anaérobie ayant un temps de séjour hydraulique (dans ce cas égal à l‟âge de boue) de 10 jours. FIGURE 4. CONTROLE DU PH DANS UN DIGESTEUR AVEC AJOUT DE CHAUX. Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : Débit d‟entrée = 24 000 m3/j (DCO = 500 mgO2/L ; NTK = 40 mgN/L; Alcalinité = 6 meq/L = 300 mg/L sous forme de CaCO3). Le volume du réacteur biologique = 15 000 m3/j (Temps de séjour hydraulique = 15 heures). Recyclage des boues = 50 % du début d‟entrée (12 000 m3/j) Extraction = 350 m3/j à partir du recyclage, âge de boue de 15 jours Volume du digesteur aérobie = 3 500 m3 (temps de séjour hydraulique = âge de boue = 10 jours). La concentration en MES de la liqueur mixte est d‟environ 3 6000 mgMES/L, avec une concentration au niveau du recyclage/extraction de 10 000 mgMES/L. Le ratio MVS/MES de la boue extraite est d‟environ 70%. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier Extended aeration + aerobic digester.bwc. 2. Vérifier que le débit d‟ajout de chaux est à zéro. Cours de 2 jours 81 3. Réaliser une simulation en régime permanent. BioWin rencontre-t-il des difficultés à trouver une solution ? Est-ce que des alarmes apparaissent ? 4. Entrer les résultats dans le tableau 13. 1. Il n‟est pas surprenant que BioWin rencontre des difficultés. Le pH dans le digesteur est d‟environ 4.3, ce qui résulte de la consommation d‟alcalinité associée à la nitrification. Le pH bas conduit à une nitrification incomplète, avec une concentration résiduelle d‟azote ammoniacal de 70 mgN/L. Combien de chaux doit être ajoutée pour augmenter le pH dans le digesteur? La concentration d‟entrée en MVS est d‟environ 7 500 mg/L. L‟objectif est une réduction d‟environ 22% à un âge de boue de 10 jours (càd une réduction de 1 650 mg/L). Etant accepté que la teneur en azote des boues extraites est d‟environ 0.1 mgN/gMVS, la quantité potentielle de nitrate pouvant être générée est donc de 165 mgN/L. La consommation d‟alcalinité associée sera alors approximativement de 165 x 7.14 = 1 180 mg/L sous forme de CaCO3. Cependant, l‟ammoniaque destiné à la nitrification provient du décès de la biomasse ; càd que l‟azote organique est hydrolysé puis converti en azote ammoniacal par le processus d‟ammonification. Au cours de processus l‟azote est lysé sous forme de NH3 puis prend un proton lors qu‟il est converti sous forme de NH4. Ceci contribue à conserver l‟alcalinité du digesteur. Pour la lyse d‟1 mole (14 gN) d‟ammoniaque, 1 mole de protons est retirée de la solution ; ce qui offre un gain d‟alcalinité de 50/14 = 3.57 mg/L sous forme de CaCO3 par mgN. Ainsi, une baisse d‟alcalinité de 165 x(7.14 -3.57) = 590 mgL sous forme de CaCO3 peut être attendue dans le digesteur. Ce qui correspond à un débit de 590/50 = 11.8 meq/L dans le digesteur. Une solution 3M de chaux (soit 3000 mmol/L) est ajoutée pour ajuster le pH du digesteur. La formule de la chaux est Ca(OH)2. Chaque mole de chaux contient 2 équivalents d‟alcalinité. Ainsi, une solution 3M de chaux a une alcalinité de 6 000 meq/L. Il faut ajouter 350 m3/j x 1000 L/m3 x 11.8 meq/L = 4 130 000 meq/j. A une concentration de 6000 meq/L, cela correspond à un débit de chaux 3M de : 4 130 000 meq/j/(6000 meq/L x 1000 L/m3) = 0.69 m3/j. La chaux est ajoutée au digesteur sous forme de variable d’état d‟entrée. Le calcium a une masse atomique de 40, donc la chaux 3M a une teneur en calcium de 3 x 40 000 = 120 000 mgCa/L. Le calcium est une des variables d‟état de BioWin. Ouvrir les l‟élément « ajout de chaux » (lime input) et observer que la seule valeur de concentration est celle du calcium à 120 000 mg/L. [Il peut être souhaitable de mettre la teneur en CO2 Total à 6 mmol/L pour rendre compte de l‟équilibre de la solution de chaux avec l‟atmosphère. Cependant cela n‟aura pas d‟impact significatif pour ce cas]. La seule entrée nécessaire ici est la concentration en calcium. BioWin va calculer le pH et la composition de la solution de chaux. Maintenant : 1. Incrémenter le débit de chaux (0.25, 0.50 and 0.75 m3/j), et réaliser une simulation en régime permanent à chaque fois. Entrer les résultats dans le tableau 1 82 Cours de 2 jours TABLEAU 1. AJOUT DE CHAUX POUR LE CONTROLE DU PH. Débit de chaux (m3/j) Digesteur pH Digesteur N-NH3 (mg/L) Digesteur N-NO3 (mg/L) Digesteur MVS OUR - respi boues extrac (mg/L/h) (mg/L) Digesteur MVS (mg/L) 0 0.25 - 0.50 - 0.75 - Y a-t-il une meilleure façon de contrôler le pH ? Que donnerait une aération marche/arrêt dans le digesteur ? Cette méthode pourrait permettre une nitrification/dénitrification séquentielle avec une récupération d‟alcalinité grâce à la dénitrification. Essayer la procédure suivante : 1. Mettre le débit de chaux à zéro. 2. Entrer une programmation Marche/Arrêt pour l‟aération du digesteur avec un cycle de 2 heures et une consigne en O2 de 2 mg/L pendant 1 heure (à zéro le reste du temps). 3. A partir du menu Projet/Base de données/Pas de temps de lecture … réduire l‟intervalle d‟affichage à 5 minutes pour pouvoir mieux suivre les changements dynamiques dans le digesteur. 4. Réaliser une simulation en dynamique (en démarrant avec les valeurs actuelles) pour une durée de 25 jours, et observer les nitrates, l‟alcalinité et le pH dans le digesteur. 5. Démarrer à nouveau une simulation dynamique pour 1 journée à partir des valeurs actuelles. Modifier les échelles des axes dans l‟album si nécessaire. 6. L‟ajout de chaux est-il nécessaire ? Vérifier l‟alcalinité dans le digesteur. Est-ce plus élevé que dans le flux de boues extraites ? Toute l‟alcalinité de la chaux a été utilisée. La simulation a duré 2.1 âges de boue depuis l‟arrêt de l‟ajout de chaux. Une simulation de 4 âges de boue serait nécessaire pour atteindre un véritable régime permanent. Observer la réponse en oxygène dissous (càd le passage instantané de la consigne entre 0 et 2 mgO2/L) et débit en oxygène. Est-ce raisonnable ? 1. Basculer sur le mode Utiliser la modélisation de l’oxygène et poursuivre une simulation dynamique sur 2 jours. Observer à nouveau la réponse en oxygène dissous et la fourniture d‟oxygène. D‟un point de vu pratique, quelle quantité d‟air doit être fournie par les suppresseurs ? 2. Dans le digesteur anaérobie, spécifier la capacité maximale des suppresseurs. Alternativement, changer le contrôle de l‟aération en appliquant une consigne en débit d‟air. Réaliser à nouveau une simulation dynamique. Cours de 2 jours 83 84 Cours de 2 jours MODULE DE CONTROLE DE BIOWIN Plusieurs modules de contrôle sont intégrés à BioWin. Par exemple, la saisie d‟une consigne en oxygène dans un réacteur aéré ou d‟un taux de répartition de débit dans un répartiteur font appel à des contrôleurs. Ces fonctionnalités sont très utiles pour réaliser des simulations. Cependant, il n‟est pas possible de simuler tout type de contrôle pour représenter le fonctionnement d‟une station d‟épuration : Asservissement du débit de recyclage de la liqueur mixte en fonction de la concentration en nitrates de l‟effluent. Asservissement du débit d‟air en fonction de la concentration en ammoniaque dans le réacteur. Marche/arrêt du débit d‟air en fonction de la concentration en nitrates. EnviroSim a développé un module de contrôle (BioWin Controller) pour BioWin pour permettre ces contrôles. Le module fonctionne comme une application Windows séparée et échange avec BioWin via le protocole COM (protocole standard pour le transfert d‟informations entre des applications Windows). Ce module de contrôle inclus : Contrôle Marche/arrêt – pour maintenir la variable contrôlée entre des limites hautes et basses. Contrôle Marche/arrêt – pour maintenir une variable contrôlée à une valeur cible (avec bande morte). Contrôle Haut/bas – identique au contrôle Marche/arrêt, mais avec une valeur de consigne pour la variable manipulée pouvant être supérieure à zéro dans l‟état arrêt (bas). Boucle de contrôle proportionnelle (P) Boucle de contrôle intégrale-proportionnelle (PI) Boucle de contrôle dérivée-intégrale-proportionnelle (PID) Au-delà de sa capacité à élargir considérablement les capacités de BioWin, le module contrôle dispose également d‟une fonction de réglage (tuning) des paramètres des contrôle. CAS D‟ETUDE : CONTROLE DE LA DIGESTION ANAEROBIE Ce cas d‟étude montre l‟intérêt de l‟application du module de contrôle de BioWin (BioWin Controller) pour la simulation du fonctionnement d‟un digesteur aérobie. Cours de 2 jours 85 L‟approche de contrôle consiste à supposer que la concentration en nitrates dans le digesteur sera suivie en continu. L‟objectif du contrôle est de réaliser un fonctionnement marche/arrêt pour maintenir la concentration en nitrates entre une valeur basse 0.5 et une valeur haute 3.0 mgN/L. L‟aération est donc mise en marche lorsque la concentration diminue à 0.5 mg/L puis s‟arrête lorsqu‟elle dépasse 3.0 mg/L. Pendant l‟aération le débit d‟air est de 43 200 m3/d (soit 1 800 m3/jour). Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Démarrer le module de contrôle (BioWin Controller). 2. Cliquer sur File/Link to BioWin file …, puis choisir le fichier Extended aeration + aerobic digester - controller.bwc. Attendre le temps que le module de contrôle rassemble toutes les informations de BioWin. 3. Dans BioWin, double-cliquer sur le digesteur aérobie et vérifier que la méthode d‟aération est bien en mode Débit d’air insufflé. 4. Vérifier que l‟option Utiliser la modélisation de l’oxygène est activée. 5. Modifier le Pas de temps de lecture de BioWin à 5 minutes (pour pouvoir mieux observer les dynamiques). 6. Vérifier que le débit de chaux est à zéro. 7. Dans la fenêtre du « BioWin Controller », cliquer sur le bouton Add pour mettre en place un contrôleur intitulé Marche/Arrêt Aération. 8. Cliquer sur le bouton Select Measured Variable puis sélectionner les Nitrates (N) du digesteur aérobie. 9. Cliquer sur le bouton Select Manipulated Variable puis sélectionner le débit d‟air du digesteur anaérobie. 10. Spécifier le type de contrôle (Control Type) : On/Off. 11. Spécifier les valeurs haute et basse pour les nitrates : 3.0 et 0.5 mgN/L. 12. Spécifier la valeur de fonctionnement pour l‟aération à 43 200 m3/j (1800 m3/h) 13. Laisser l‟intervalle du contrôleur à 1 minute pour ce cas. 14. Laisser le contrôleur en mode inversé (Reverse controller action) non activé ; càd que la mise en marche de l‟aération se fait lorsque la concentration atteint la limite basse et s‟arrête lorsque la limite haute est dépassée. 15. Démarrer une simulation dynamique pour 1 jour. 16. Basculer sur BioWin et ouvrir l‟Album pour observer ce qu‟il advient des nitrates, du débit d‟air et du pH dans le digesteur. 86 Cours de 2 jours FIGURE 1. INTERFACE DU CONTROLEUR DE BIOWIN POUR UNE AERATION ON/OFF. AUTRES FONCTIONNALITES DU CONTROLEUR La stratégie de contrôle appliquée dans la section précédente a permis de maintenir la concentration de nitrate dans le digesteur entre 0.5 et 3.0 mgN/L. Cependant, le la concentration en oxygène a dépassé 2 mgO2/L lors des phases d‟aération. Nous allons maintenant considérer la même stratégie de contrôle à laquelle s‟ajoute une contrainte sur la valeur de la concentration en oxygène lors des phases d‟aération. Une valeur de consigne sera donc imposée lors que l‟aération sera en marche. La valeur « on setting » du contrôleur Marche/arrêt (on/off) devra donc être ajustée en fonction des valeurs de concentration en oxygène dissous. Ce principe est appelé un contrôle en cascade. Un contrôleur intégrale-proportionnel (PI) sera utilisé pour asservir le débit d‟air au point de consigne en oxygène (2 mgO2/L) dans le digesteur. Réaliser la séquence d‟étapes suivantes : 1. Installer le contrôleur marche/arrêt pour l‟aération (On/Off aeration) tel que spécifié dans la section précédente. 2. Cliquer sur le bouton ajouter pour mettre en place le contrôleur nom Consigne O2 (DO setpoint). 3. Cliquer sur le bouton Select Measured Variable (Sélection de la variable mesurée) et sélectionner l‟oxygène dissous dans le digesteur. 4. Cliquer sur le bouton Select Manipulated Variable (Sélection de la variable asservie) et choisir On setting du contrôle Marche/arrêt de l’aération (On/off aeration) [Auparavant le contrôleur marche arrêt imposait une valeur fixe au débit d‟air insufflé, maintenant il s‟agit de rendre variable la consigne sur ce débit pour maintenir l‟oxygène à sa valeur de consigne]. 5. Spécifier le type de contrôle (Control Type) : intégrale-proportionnel (PI). 6. Saisir la valeur de la consigne en oxygène dissous à 2 mgO2/L. Cours de 2 jours 87 7. Spécifier un gain proportionnel de 10 000 (m3/d)/(mg/L). 8. Entrer la valeur 10 minutes pour le paramètres « reset time ». 9. Laisser le paramètre « offset » à 0 m3/d. 10. Spécifier les valeurs limites pour le débit d‟air à 0 et 50 000 m3/d. 11. Laisser l‟intervalle du contrôleur à 1 minute pour coïncider avec l‟intervalle du contrôleur Marche/arrêt de l‟aération. 12. Cliquer sur « Start Simulation » pour réaliser une simulation d‟une journée. 13. Basculer sur BioWin et ouvrir l‟Album pour observer ce qu‟il advient du débit d‟air et de la concentration en oxygène dans le digesteur. 14. Essayer de changer les paramètres du contrôleur PI. Est-ce que le contrôleur est bien paramétré ? FIGURE 2. CONTROLEUR DE BIOWIN AVEC CONTROLES EN CASCADE : ON/OFF ET PI. 88 Cours de 2 jours BIOREACTEURS A MEMBRANES CONFIGURER UN SYSTEME BRM DANS BIOWIN Cette section montre comment simuler un système de bioréacteur à membranes (BRM). Deux cas seront étudiés : Un BRM simple. Un BRM avec abattement des nutriments. UN BRM SIMPLE Pour cet exemple, un bioréacteur est associé à une unité de séparation de phase (élément « déshydratation » tel que présenté dans le schéma BioWin ci-dessous). Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : Bioréacteur : Volume = 2.68 million US gallons; profondeur = 16.4 ft; Consigne O2 = 2 mg/L. Unité de séparation de phase (élément déshydratation) : Soutirage [B]= 10 mg/j (constant) ; Rendement d‟élimination (des solides) 99.75%. Débit dérivé du séparateur : 1.072 mg/j. Température hivernale : 14°C. FIGURE 1. SCHÉMA BRM SIMPLE. Cours de 2 jours 89 1. Basculer sur le système d‟unité US (Million Gallons and mg/j via le menu Projet/Options du projet actif … ) et construire le schéma tel que montré ci-dessus. 2. Double cliquer sur l‟élément eaux usées et cliquer sur le bouton Modifier les données pour ouvrir le tableau d‟entrée des données. Entrer les données ci-dessous (conserver la valeur par défaut pour les données qui ne sont pas spécifiées ci-dessous) : Débit 9.87 DCOt 755 NTKt 56 P Total 8 N-NO3 0 Alcalinité 6 MMS 43 O2 0 3. Faire une simulation en régime permanent pour vérifier que toutes les données nécessaires ont été spécifiées. 4. Utiliser la commande Fichier/Enregistrer Sous … pour sauvegarder ce schéma sous le nom BRM simple.bwc. 5. Ajouter un tableau à l‟Album avec : Eléments : Eaux usées, Bioréacteur, Séparation. Paramètres : MVS, MES, NO3 NH3, PO4, Alcalinité. 6. Réaliser une simulation en régime permanent. Noter les MES du bioréacteur. 7. Ajouter un calculateur d‟âge de boue. Cliquer sur Projet puis sur Age de boue Actif … , Sélection des éléments pour la masse de boue tot. et sélectionner le bioréacteur. Cliquer sur sélection des éléments pour l‟extraction … et sélectionner l‟élément boue. Au bas de la section gauche de la barre de statut de la fenêtre principale, vérifier que l‟âge de boue du système est bien apparent. Quel est cet âge de boue ? 8. Le système peut-il nitrifier à cet âge de boue ? Que donnerait la conversion de ce système en un BRM ? 9. Double cliquer sur l‟unité de séparation solide/liquide et accéder à l‟onglet Fonctionnement pour changer le rendement d‟élimination à 100%. Modifier le débit de soutirage à 200 mg/j sur l‟onglet répartition du débit. 10. Dans une configuration BRM, il sera possible d‟atteindre une concentration en MVS plus haute et l‟extraction de boue déterminera l‟âge de boue. Double cliquer sur le séparateur et accéder à l‟onglet répartition du débit et changer le taux d‟extraction à 0.2233 mg/j. Répéter la simulation en régime permanent et noter la concentration en MES du bioréacteur, l‟âge de boue du système et la concentration en NH3 de l‟effluent. Est-ce que le système nitrifie ? BRM AVEC ABATTEMENT DES NUTRIEMENTS Dans ce cas, le BRM considéré inclus un abattement biologique des nutriments avec précipitation chimique pour la réduction du phosphore de l‟effluent. Ouvrir le fichier BNR MBR.bwc et parcourir la configuration du système. 90 Cours de 2 jours FIGURE 2. BRM AVEC ABATTEMENT DES NUTRIMENTS. SIMULATIONS EN REGIME PERMANENT L‟objectif de cet exercice est de réaliser des simulations en régime permanent et d‟observer les interactions intéressantes entre les processus. Réaliser la séquence d‟étapes suivantes : 1. Réaliser une simulation en régime permanent. Ouvrir l‟Album et observer le profil de concentration de MES à travers les ouvrages (onglet TSS Profile). Observer également les concentrations en PO4, NO3 et NH3 de l‟effluent. D’où vient la consommation d’oxygène (OUR) dans l’ouvrage non aéré RAS-DeOX DeNite ? 2. Double cliquer sur le séparateur intitulé Aerobic Recycle (juste en dessous de l‟élément ZW Tank), puis aller sur l‟onglet Répartition du débit et modifier l‟asservissement du débit à 600% du débit d‟entrée (influent). Lancer une simulation en régime permanent et observer les paramètres suivants : a. PO4 de l‟effluent b. NO3 de l‟effluent c. Consommation d‟oxygène (OUR) dans l‟élément RAS-DeOx DeNite 3. Comment expliquer ces changements ? 4. Répéter les étapes ci-dessous mais cette fois en diminuant l‟asservissement du débit (qui était à l‟origine de 400%) à 200%. Qu’advient-il des concentrations en PO4 et NO3 de l’effluent ? Quelles informations cela apporte-t-il sur le traitement de l’azote et du phosphore ? 5. Remettre l‟asservissement du débit du répartiteur à 400% du débit d‟entrée et observons le séparateur RAS splitter : il recycle actuellement 85% des boues (RAS) vers la zone Swing et 15% vers la zone RAS-DeOx DeNite. Vérifier ces informations en survolant le séparateur avec la souris notamment au niveau de son entrée, et de ses sorties principale et latérale. Cours de 2 jours 91 6. Modifier la répartition de débit du séparateur RAS splitter de sorte que toute la boue (RAS) soit dirigée vers la zone RAS-DeOx DeNite. Double cliquer sur cet élément et mettre la fraction [D/(D+P)] à zéro. Réaliser une simulation en régime permanent et observer les concentrations en PO4, NO3 et NH3 de l‟effluent ainsi que le profil de concentrations des solides et des phosphates à travers les ouvrages. TABLEAU 1. CARACTERISTIQUES D’UN SYSTEME BRM AVEC TRAITEMENT DES NUTRIMENTS. Recyclage (%) Séparateur RAS DeOx / Swing (% / %) 400 15 / 85 600 15 / 85 200 15 / 85 400 100 / 0 Effluent N-NH3 (mgN/L) Effluent N-NO3 (mgN/L) Effluent P-PO4 (mgP/L) OUR dans RAS DeOx (mg/L/hr) IMPACT DE L‟AJOUT DE CHLORURE FERRIQUE 1. Remettre la fraction de débit latéral du séparateur RAS splitter à 0.85. 2. Augmenter le dosage du Fer de 50 à 100 gallons pour jour. Simuler un régime permanent et observer les changements éventuels en termes concentrations d‟azote ou de phosphore de l‟effluent. L’abattement biologique du phosphore a-t-il encore lieu ? 3. Augmenter à nouveau le dosage de 100 à 150 gallons par jour. Simuler à un régime permanent dans ce contexte de surdosage et observer les changements éventuels en termes concentrations d‟azote ou de phosphore de l‟effluent. L’abattement biologique du phosphore a-t-il encore lieu ? IMPACT DES BOUCLES DE RECYCLAGE SUR LA GESTION DES SOLIDES 1. Remettre le dosage du fer à 50 gallons par jour. 2. Le flux « solids train recycle » provient d‟un digesteur : l‟ajout de produits chimiques en amont a déjà permis réduit le phosphore de cet effluent. Observons ce qu‟il advient de l‟effluent du BRM lors que réduction n‟est pas opérée. 3. Ouvrir l‟élément Solidstrain recycle et cliquer sur le bouton modifier les données pour augmenter la concentration en phosphore total PT de 50 à 700 mgP/L. Que devient la concentration en PT du perméat dans ces conditions ? Survoler la canalisation entre la zone ZeeWeed et Permeate. Noter le flux massique de phosphore total PT. Survoler ensuite la canalisation venant de l‟élément Solids train recycle et noter aussi le flux massique de PT. Comment cette quantité peut être comparée à celle du PT du perméat ? 92 Cours de 2 jours MODELISATION DES BIOFILMS LE MODELE DE BIOFILM BioWin dispose d‟un modèle avancé de biofilm. Dans la version 3 de BioWin ce modèle a été implémenté uniquement pour l‟élément Bioréacteur à support (Media Biorecator) ; ce qui représente ainsi les réacteurs dont la liqueur mixte en suspension contient des supports en liberté (par exemple le système IFAS : integrated fixed-film activated sludge ; ou MBBR : moving bed bioreactor/réacteur biologique à lit mobile). L‟élément Bioréacteur à support peut également être utilisé pour modéliser convenablement d‟autres types de système de biofilms tels que les « lits ruisselants » (trickling filters), les filtres biologique aérés (biological aerated filters) ou les filtres/lits de dénitrification tertiaire. Pour plus d‟informations sur le modèle biofilm consulter le chapitre de la rubrique Aide (Help). Cette section propose une application du modèle de biofilm à un système IFAS où l‟objectif est d‟améliorer les performances de dénitrification. SYSTEME IFAS SIMPLE Le but est d‟évaluer l‟impact du recyclage sur un système de boues activées « 3-pass » avec un support IFAS pour pousser les performances de nitrification. La mise à jour de ce système inclut l‟ajout de supports dans les deuxième et troisième « passes ». La moitié du premier « pass » restera non aérée pour obtenir un certain niveau de dénitrification. Le système est présenté dans la fenêtre BioWin ci-dessous. Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : Débit d‟entrée = 14,000 m3/j Taux d‟élimination des solides PST = 55%. Bioréacteur : volume = 3 456 m3, profondeur = 4.5 m. Consigne en O2 =2 mg/L dans la partie aérée du Pass 1 ; 3 mg/L dans les zones IFAS. Recyclage des liqueurs mixtes = 14400 m3/j. Age de boue = 6.3 jours. Température : Eté = 20°C ; Hiver = 11°C. Air spécifique des supports = 375 m2/m3. Volume spécifique des supports = 0.1 m3/m3. Remplissage du réacteur IFAS = 30%. Cours de 2 jours 93 FIGURE 1. SYSTEME 3-PASS AVEC SUPPORT IFAS. Le modèle de biofilm requiert des calculs intensifs; les itérations pour le régime permanent pour ce système peuvent prendre environ 60 secondes entre chaque. Pour accélérer cette démonstration, la configuration est simplifiée. Les quatre zones IFAS des « passes » 2 et 3 peuvent être combinées en une seule zone IFAS comme montré sur le schéma ci-dessous. FIGURE 2. SIMPLIFIED SYSTEME 3-PASS AVEC SUPPORT IFAS SIMPLIFIE. 1. A partir du classeur d‟exemples de BioWin, sélectionner le schéma IFAS simplified. Sauvegarder ce schéma dans le répertoire de travail créé pour la formation. 94 Cours de 2 jours 2. Vérifier que la température du système est bien 20°C (été) et simuler un régime permanent (à partir des Valeurs actuelles). 3. Survoler le réacteur IFAS et observer les informations disponibles dans les tableaux de l‟interface de BioWin. Reporter les concentrations des espèces azotées de l‟effluent dans le tableau 16.1. 4. Baisser la température à 11°C (hiver) et simuler à nouveau un régime permanent (à partir des Valeurs actuelles). Reporter les concentrations des espèces azotées de l‟effluent dans le tableau 16.1. 5. Evaluer à quel point le système pourrait fonctionner en hiver sans les supports IFAS. Double cliquer sur chaque réacteur IFAS et sur l‟onglet Spécification du support et du modèle, décocher l‟option inclure le support. 6. Simuler un régime permanent (à partir des Valeurs actuelles), et reporter les concentrations des espèces azotées de l‟effluent dans le tableau 16.1. TABLEAU 1. PERFORMANCES DU SYSTEME IFAS. Remplissage (%) Température (°C) 30 20 30 11 0 11 Cours de 2 jours Effluent N-NH3 (mgN/L) Effluent N-NO2 (mgN/L) Effluent N-NO3 (mgN/L) 95 96 Cours de 2 jours DIGESTION ANAEROBIE INTRODUCTION Dans les versions précédentes de BioWin, le pH de fonctionnement du digesteur était spécifié par l‟utilisateur. Ce n‟est plus nécessaire maintenant que le pH est calculé. Cependant, l‟utilisateur peut toujours forcer la valeur du pH à une autre (fixe notamment) que celle calculée. Trois exemples de digestion anaérobie vont être considérés : La digestion anaérobie du glucose La digestion d‟un mélange de boues primaires et de boues activées extraites La fermentation de la boue primaire pour l‟amélioration du traitement biologique du phosphore. DIGESTION ANAEROBIE DU GLUCOSE La stœchiométrie par défaut de BioWin correspond aux systèmes de traitement des eaux uses municipales. Dans le cas d‟eaux usées synthétiques telles que le glucose, il est nécessaire de modifier une de ces valeurs par défaut : le rendement de production de CO2 (lors de la fermentation à basse pression partielle d‟H2) qui passe de 0.7 à 1.0. Dans le cas de cet exemple, un digesteur anaérobie est opéré avec temps de rétention hydraulique de 10 jours avec du glucose comme influent. Le flux de glucose, avec une DCO de 10 000 mg/L est spécifiée en tant que variable d‟état d‟entrée (State Variable SV) [SBSC = 10,000 mg/L]. FIGURE 1. DIGESTION ANAEROBIE DU GLUCOSE. De l‟azote et du phosphore doivent être ajoutés à l‟effluent pour les besoins de synthèse de la biomasse. Cours de 2 jours 97 Note : BioWin prendre en compte les paramètres suivants en tant que variables d‟état : Les carbonates (CO2, HCO3-, CO32-) L‟azote ammoniacal (NH3, NH4+) Les phosphates (H3PO4, H2PO4-, HPO42-, PO43- and PO4 in metal complexes) Le fer et l‟aluminum Le calcium and magnesium Le calcul du pH et de la distribution des espèces inclut l‟équilibre de charges, ainsi les concentrations des autres cations et anions doivent aussi être spécifiées. Ceci est réalisé par la définition de deux autres variables d‟état qui rassemblent les concentrations de ces autres espèces d‟ions : Les autres cations (e.g. K, Na, …) Les autres anions (e.g. Cl, …) Pour cet exemple, il est admis que l‟ajout d‟azote pour la synthèse de la biomasse se fait sous forme de NH4Cl à une concentration de 500 mgN/L. N-NH4 = 500/14 = 35.7 meq/L anions Cl = 35.7 meq/L L‟ajout de phosphore pour la synthèse de la biomasse est réalisée avec du K2HPO4 à une concentration de 100 mgP/L. P-PO4 = 100/31 = 3.2 meq/L Cations K = 6.4 meq/L Une solution tampon est également nécessaire : Càd une ajout de 45 meq/L of NaHCO3 Cations Na = 45 meq/L CO2 = 45 meq/L Total „Autres‟ Anions = 35.7 meq/L Total „Autres‟ Cations = 6.4 + 45 = 51.4 meq/L Un principe de base pour la production est qu‟environ 0.35 m3 de méthane est produit par kg de DCO consommée. Dans cet exemple le taux de production est de 5.38 m3/j à 55.66% de méthane = 2.99 m3/j de méthane. Le « delta » de DCO est 10.0 – 1.66 = 8.34 kgDCO/j. Ce qui correspond à 0.36 m3 de méthane par kg de DCO. DIGESTION DES BOUES PRIMAIRES ET DES BOUES EXTRAITES Dans cet exemple les boues primaires et les boues activées extraites sont combinées pour un traitement de digestion anaérobie. Le système traite les nutriments avec abattement biologique du phosphore. Les caractéristiques utiles du système sont données ci-dessous : 98 Débit d‟eaux usées constant 10 ML/d [DCO = 600 mg/L; NTK = 40 mgN/L; PT = 8 mgP/L]. Cours de 2 jours Rendement d‟élimination des solides du décanteur primaire : 60% avec soutirage de 1% du débit d‟entrée = 100 m3/j. Le process Three-stage Bardenpho est opéré à un âge de boue de 10 jours. L‟extraction des boues recyclées est dirigée vers un épaississeur gravitaire ; le débit d‟extraction est 150 m3/j. Le soutirage de l‟épaisseur (45 m3/d) est combiné avec la boue primaire pour être dirigé vers le digesteur anaérobie. Ce digesteur anaérobie est opéré à 36°C avec un temps de résidence hydraulique de 20 jours. FIGURE 2. DIGESTEUR ANAEROBIE DE BOUES PRIMAIRES ET DE BOUES ACTIVEES EXTRAITES. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier WAS and Primary Digestion.bwc. 2. Parcourir les conditions de fonctionnement du système de boues activées et du digesteur anaérobie. 3. Réaliser une simulation en régime permanent. Observer les performances. Ouvrir l‟Album et parcourir les détails spécifiques au digesteur anaérobie. 4. Utiliser l‟explorateur pour relever les concentrations des variables d‟état dans le digesteur. En particulier pour le Mg, l‟azote ammoniacal et les phosphates. Que se passe-t-il ? 5. Avec l‟objectif de calibrer le digesteur anaérobie à partir des données du système, il serait souhaitable d‟ajuster le taux de « destruction » des matières volatiles en suspension. Ce processus est majoritairement contrôlé par le taux d‟hydrolyse de la DCO particulaire biodégradable. Utiliser l‟explorateur pour observer la concentration en DCO particulaire biodégradable. A partir du menu Projet/Paramètres/Cinétiques … augmenter la vitesse d’hydrolyse (BA) [onglet Xhet Hétérotrophes]. Noter l‟impacter de ce changement sur la concentration en DCO soluble biodégradable et la « destruction » des MVS. Cours de 2 jours 99 FERMENTATION DES BOUES PRIMAIRES Cet exemple présente un système de fermentation des boues primaires. Les boues primaires sont acheminées vers un système fermenteur/clarificateur avec une extraction à partir du clarificateur pour permettre un maintien de l‟âge de boue à environ 6.4 jours dans le fermenteur. Un séparateur est inclus dans le schéma pour permettre aux produits de fermentation d‟être dirigés vers le système de boues activées ou d‟être extraits. FIGURE 3. FERMENTATION DE BOUES PRIMAIRES POUR AMELIORER UN SYSTEME BIOP. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier Primary fermentation for bioP.bwc. 2. Parcourir les conditions de fonctionnement du système de boues activées et du fermenteur. 3. Remarquer les deux âges de boue calculés à partir de l‟onglet Calculateurs ; un pour le système de boues activées et l‟autre pour le fermenteur. 4. Pour le cas de base, extraire tous les effluents du fermenteur (aucun retour dans le système de boues activées) et réaliser une simulation en régime permanent. Observer les performances en termes de formation d‟acides gras volatiles (AGV), de pH du fermenteur, et d‟abattement du phosphore et de l‟azote. Reporter les résultats dans le tableau 1 [Voir l‟album]. 5. Réaliser trois simulations en régime permanent en ajoutant respectivement, 1/3, 2/3 et la totalité de l‟effluent du fermenteur vers le système de boues activées. Entrer les résultats dans le tableau 17.1. 100 Cours de 2 jours TABLEAU 1. FERMENTATION DES BOUES PRIMAIRES POUR L’AMELIORATION D’UN SYSTEME BIOP. Débit Fermenteur -> Boues activées (L/j) 0 AGV fermenteur (mgDCO/L) AGV vers boues activées (mgCOD/L) NTK vers boues activées (mgN/L) PT vers boues activées (mgP/L) Effluent N-NO3 (mgN/L) Effluent P-PO4 (mgP/L) - 44.6 (0.33) 90.5 (0.67) 135 Cours de 2 jours 101 102 Cours de 2 jours PRECIPITATION DE STRUVITE PRECIPITATION DE LA STRUVITE, DU HDP ET DU HAP Le modèle inclus les réactions de précipitation spontanée de la struvite ((NH4)MgPO4·6(H2O)), de la HDP (hydroxy-dicalcium-phosphate – Ca2HPO4(OH)2) et de l‟HAP (hydroxy-apatite – Ca5(PO4)2OH). Cette section présente brièvement les principes de la modélisation de la formation de la struvite. PRINCIPE DE LA PRECIPITAION DE LA STRUVITE BioWin est basé sur un modèle intégré boues activées/digestion anaérobie (ASDM) complété par la chimie de l‟eau, la simulation du pH et différentes réactions chimiques. La formation de struvite apparaît généralement dans les digesteurs ou dans leurs effluents (en particulier lorsqu‟il y a une augmentation du pH). La condition nécessaire pour la formation de struvite est la présence des ions magnésium, ammonium et phosphate à un pH qui favorisent la précipitation. Ces conditions peuvent être rencontrées dans les boues extraites des systèmes traitant l‟azote biologiquement. Par exemple : 1. Abattement du magnésium, de l’ammoniaque et du phosphore Processus bioP : le modèle prédit l‟abattement du phosphore et le stockage/relargage des polyphosphates (poly-P) à travers les réacteurs anaérobies, anoxies et aérobies. En parallèle de la formation des poly-P, le magnésium et les autres cations sont stockés par la biomasse selon un coefficient stœchiométrique déterminé expérimentalement. L‟assimilation de l‟azote est basée sur la teneur en N de la biomasse. La biomasse contenant un stockage de phosphore et de cations (notamment le magnésium) ainsi que l‟azote est retirée du système via l‟extraction des boues puis dirigée vers le digesteur anaérobie. 2. Transport vers le digesteur : le modèle intégré ASDM est basé sur une matrice unique ; ainsi la continuité et l‟équilibre de masse sont maintenus automatiquement en terme de Mg, N, P et de tous les autres composés. 3. Relargage du magnésium, en ammoniaque et en phosphore dans le digesteur : les processus de dégradation anaérobie sont inclus dans un modèle de digestion anaérobie à quatre populations. Ce qui résulte en un relargage de phosphates, de cations associés aux PolyP (notamment le magnésium) et d‟azote organique qui est converti en ammoniaque. 4. Système acide-base (faibles) dans le digesteur : Le modèle d‟équilibre du pH prend en compte les différentes espèces dans le digesteur (phosphates, carbonates, ammoniaque, nitrates, acétate, propionate, calcium, magnésium et autres acides et bases), ainsi que les transferts de gaz du CO2 et de l‟ammoniaque. Ce module calcule le pH actuel et les variations de pH dans le digesteur (ainsi que dans toute la station). 5. La formation de struvite : la précipitation de la struvite est décrite selon l‟équation de solubilité de l‟équilibre chimique [l‟implémentation est cinétique pour des raisons de contrainte numériques, Cours de 2 jours 103 voir la référence Musvoto et al., (2000)]. Ce processus est sensible au pH car il impacte la spéciation de l‟ammoniaque et des phosphates. L‟équation d‟équilibre de solubilité est : [Mg2+][NH4+][PO4 3-] = KspStruvite Selon cette équation d‟équilibre, si les concentrations en ammoniaque, phosphates et magnésium sont présentes, la struvite peut même se former à un pH inférieur à 7.0. Par exemple, dans le système présenté sur la figure 18.1 ci-dessous avec des concentrations d‟ammoniaque de 130 mgN/L, d‟ortho-phosphate de 140 mgP et de magnésium de 110 mgMg/L. Dans ces conditions la formation de struvite intervient à partir d‟un pH de 6.6. D‟autre part, si l‟un ou plusieurs des ions est/sont présent(s) à faible concentration, un pH plus élevé sera alors nécessaire pour la formation de struvite. L‟exemple montré sur la figure 18.2 ci-dessous correspond à des concentrations d‟ammoniaque de 30 mgN/L, d‟ortho-phosphate de 50 mgP et de magnésium de 20 mgMg/L. Dans ces conditions la formation de struvite intervient à partir d‟un pH de 8.0. FIGURE 1. STRUVITE (MGTSS/L) / PH CONCENTRATIONS ELEVEES DE N,P,MG. 104 Cours de 2 jours FIGURE 2. STRUVITE . STRUVITE (MGTSS/L) / PH CONCENTRATIONS ELEVEES DE N,P,MG. CAS D‟ETUDE: FORMATION DE STRUVITE DANS ET APRES LE DIGESTEUR Cet exemple poursuit le cas d‟étude présenté pour la digestion anaérobie des boues primaires et des boues activées extraites à partir d‟un système bioP. L‟objectif est de rendre compte des conditions menant à la précipitation de struvite dans et après le digesteur (où une augmentation de pH est attendue). L‟effluent du digesteur est aéré dans un bioréacteur pour un court temps de résidence, ce qui cause une augmentation de pH due au stripping du CO2. L‟objectif est de démontrer la précipitation potentielle de struvite lorsque le flux sortant du digesteur est traité (ou déshydraté). FIGURE 3. AERATION DE L’EFFLUENT D’UN DIGESTEUR POUR AUGMENTER LE PH. Cours de 2 jours 105 Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier WAS and Primary Digestion + Struvite.bwc. 2. Réaliser une simulation en régime permanent [noter que l‟option de modélisation de la struvite n‟est pas encore activée]. Entrer les résultats dans le tableau 1. 3. Activer l‟option de modélisation de la précipitation de la struvite. Réaliser à nouveau une simulation en régime permanent à partir des valeurs d‟ensemencement. Les résultats du modèle semblent-ils raisonnables ? Est-ce que l‟abattement biologique du phosphore semble avoir lieu ? Entrer les résultats dans le tableau 1. Note: La constante représentant le taux de précipitation de la struvite a une valeur par défaut de 3 x 1010, cependant le taux reporté dans la littérature est 3 x 1015. La valeur par défaut de BioWin est beaucoup plus basse car les grands nombres causent un fort ralentissement des simulations dynamiques. Ainsi, pour le calage de systèmes complexes il est recommandé d‟utiliser une valeur encore plus basse. 4. Appliquer un taux de précipitation de la struvite de 3 x 1015. Réaliser une simulation en régime permanent et reporter les résultats dans le tableau 1. TABLEAU 1. RESULTATS DE PRECIPITATION DE LA STRUVITE (CONCENTRATIONS EN MG/L) Modèle Struvite (On/Off) Zone aérée (pour augementation du pH) Digesteur anaérobie Mg NH3 PO4 Struv pH Mg NH3 PO4 Struv pH Off On On On 106 Cours de 2 jours SYSTEMES SBR LE MODULE SBR DANS BIOWIN BioWin inclut cinq types de réacteurs biologiques séquentiels (SBR – Single batch reactor) : Un SBR à zone unique où l‟alimentation est introduite dans la zone décantation. Un SBR où l‟alimentation est réalisée dans une pré-zone séparée de la zone de décantation mais reliée hydrauliquement. Dans ce cas la pré-zone est non mélangée (càd qu‟elle est en mode décantation lors que la zone de décantation l‟est aussi). Un SBR où l‟alimentation est réalisée dans une pré-zone séparée de la zone de décantation mais reliée hydrauliquement. Dans ce cas la pré-zone est toujours mélangée. Un SBR avec deux pré-zones séparées de la zone de décantation mais reliées hydrauliquement. Dans ce cas les pré-zones sont non mélangées (càd qu‟elles sont en mode décantation lors que la zone de décantation l‟est aussi). BioWin permet des recyclages inter-zones. Un SBR avec deux pré-zones séparées de la zone de décantation mais reliées hydrauliquement. Dans ce cas les pré-zones sont toujours mélangées. BioWin permet des recyclages inter-zones. Cours de 2 jours 107 CAS D‟ETUDE : SYSTEME SBR A DEUX BASSINS Ce cas d‟étude présente la mise en place d‟un système SBR composé de deux réacteurs SBR en parallèles. Les informations utiles de ce système sont les suivantes : Pour SBR : surface carrée (80 ft x 80 ft); niveau haut de remplissage 21.1 ft. Niveau minimum de décantation : 14 ft (soit 66% de la profondeur). Cycles SBR : Durée du cycl 6 heures (4 cycles par jour) Eaux usées 3 hours (alterné) remplissage/réact 3 h 56 min (226 min) Début de decant 4 h 56 min Aération Arrêté en début de remplissage Consigne O2 = 2 mg/L de 56 min à 3 h 56 min Age de boue (A) environ 20 jours Température 15°C FIGURE 1. SYSTEME SBR A DEUX BASSINS. 108 Cours de 2 jours REGLAGE DE L‟EXTRACTION POUR A=20 JOURS Consulter l‟aide de BioWin sur ce sujet (BioWin Examples/SBR examples/...Considerations). En pratique, l‟extraction de la boue se fait à la fin du cycle de décantation, lorsque la boue est épaisse et qu‟il suffit de prélever un petit volume. Cependant cela peut conduire à une certaine confusion concernant la masse de boue extraite et donc dans le calcul de l‟âge de boue s‟il n‟y a pas d‟information sur la compacité de la boue. Pour simuler la gestion du SBR à un âge de boue ciblé, l‟approche suivante peut être utilisée : 15 minutes d‟extraction durant la période mélange (de la minute 221 à 236 dans ce cas). Chaque SBR a un volume max de 1 million de gallons, qui baisse à 0.66 mgal durant la décantation. En période normale le volume du SBR à la fin de chaque cycle est en moyenne d‟environ 0.8 mgal (cela pourra être affiné plus tard). L‟âge de boue cible est de 20 jours. Il faut donc extraire un 1/20ième du volume mélangé par jour ; soit 0.8/20 = 0.04 mgal/jour. Il y a 4 cycles par jour, il faut donc extraire 0.01 mgal par cycle. Pour une extraction de 15 minutes, le débit durant cette période doit donc être: (0.01mgal/15min) x 60 min/hr x 24 hr/jour = 0.96 mgd pour 15 minutes de 3h 41min à 3h 56min (221 min to 236 min). MISE EN ROUTE DU SYSTEME Les systèmes SBR ne fonctionnent jamais en régime permanent, cependant on peut envisager un système atteignant un régime quasi permanent avec des cycles qui se répètent à l‟identique pour un profil de débit charge entrante donné. L‟approche de mise en route d‟un SBR est proposée ainsi : Simuler d‟abord 1 journée et vérifier que les volumes changent correctement. Simuler ensuite pour une durée de 3 à 4 âges de boue (càd 60 à 80 dans le cas présent) en débutant avec des Valeurs d’ensemencement. Cela permet au système d‟atteindre un régime quasi permanent. Suivre les MES et observer le processus de décantation. Enfin simuler 1 journée, en débutant avec les Valeurs actuelles (càd avec les valeurs obtenues après au moins 60 jours de simulation). Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier Two tank SBR.bwc. 2. Parcourir la configuration du système. 3. Noter le décalage de cycle du SBR n°2. Ce décalage doit être perçu comme « A quel étape est le SBR à t = 0 ». Dans cas à t = 0, le SBR n°1 commence sont remplissage et donc le SBR n°2 a fini son propre remplissage et doit donc être avancé de 3 heures dans son cycle. 4. Réaliser une simulation en régime dynamique pour 1 journée en commençant avec Valeurs d’ensemencement. 5. Ouvrir l‟Album et vérifier les variations de volume dans les deux SBR. 6. Réaliser une simulation dynamique de 60 jours. 7. Suivre la concentration en MES dans les SBR pour observer la décantation. 8. Partir manger ! Cours de 2 jours 109 FONCTIONNEMENT EN REGIME QUASI PERMANENT Le schéma Two tank SBR.bwc a été utilisé pour une simulation de 60 jours. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Arrêter la simulation et ré-ouvrir le fichier Two tank SBR.bwc. 2. Regarder la réponse du système dans l‟Album. 3. Observer le comportement du traitement de l‟azote. Peut-il être amélioré ? 4. Est-ce que l‟abattement biologique du phosphore a lieu dans le système ? 5. Tracer les courbes de concentrations des phosphates solubles dans les unités SBR et dans les sorties « decants ». Relancer la simulation pour 1 journée à partir des Valeurs actuelles. 110 Cours de 2 jours SYSTEMES DE CHENAUX D‟EPURATION INTRODUCTION La simulation des chenaux d‟épuration/d‟oxydation requiert une attention particulière sur les points suivants : L‟approche générale de la configuration d‟un chenal d‟épuration dans BioWin. La détermination du taux de recirculation dans le chenal. Les flux d‟oxygène (notamment « comment l‟oxygène circule dans le chenal »). La nitrification-dénitrification simultanée (SND) Ces aspects sont explorés dans deux cas d‟étude sur les chenaux d‟épuration. Note : la modélisation de l‟oxygène doit toujours être active dans le cas des chenaux d‟épuration. CONFIGURATION D‟UN SYTEME DE CHENAL D‟EPURATION L‟approche employée dans BioWin pour simuler ces systèmes est de diviser le chenal en une série de réacteurs parfaitement mélangés. Pour configurer ce genre de système dans BioWin, des éléments « bioréacteur » sont placés en série et correspondent à un schéma conceptuel de zones numérotées. Deux exemples sont présentés ci-dessous : FIGURE.1. SCHEMA BIOWIN POUR UN CHENAL D’EPURATION SIMPLE. Cours de 2 jours 111 FIGURE 2. SCHEMA BIOWIN POUR UN CHENAL D’EPURATION DU TYPE HALO. TAUX DE RECIRCULATION DANS LE CHENAL Un taux de recirculation de la liqueur mixte doit être appliqué lors de la mise en place d‟une telle configuration dans BioWin. Habituellement, il faut raisonner en termes de fraction recyclée : rapport entre le débit dans le chenal et le débit d‟eaux usées entrant. Cela permet de représenter la vélocité du flux linéaire dans le chenal. Généralement un chenal est dimensionné sur la base d‟une vélocité linéaire d‟environ 1 ft/sec (0.3 m/s). Des exemples d‟estimation sont proposés ci-dessous. Si le chenal d‟épuration existe, il faut considérer les dimensions réelles du chenal. Dans le cas de cet exemple la profondeur est de 4 m et la largeur de 5 m ; la vélocité linéaire est de 0.3 m/s [Cette dernière peut être mesurée]. Pour obtenir cette vélocité de 0.3 m/s dans le chenal, le débit requis dans le chenal est calculé comme suivant : Aire de calcul du débit 5 m 4 m 20 m 2 Débit dans le chenal Aire de calc. du débit Vélocité Linéaire (dimens.) 20 m 2 0.3 m/s 60 s 60 min 24 h min h j 518,400 m 3 / j Alternativement, on peut considérer le dimensionnement d‟un nouveau chenal avec un rapport longueur sur largeur de 6/1, tel que ci-dessous: 112 Cours de 2 jours 6W 0.5W W * * 0.5W Avec les hypothèses suivantes : TempsRésidenceHydraulique 18 hours Débit Entrant 10,000 m 3 / d Profondeur 4 m Vélocité Linéaire (dimens.) 0.3 m/s Ce qui permet le raisonnement suivant : Volume du chenal 7,500 m 3 7,500 m 3 6 W 2 4m Soit, W 17.68 m Aire du chenal Largeur du chenal 8.84 m Aire pour le calcul du débit 8.84 m 4 m 35.36 m 2 Débit dans le chenal Aire Calc. Débit Vélocité Linéaire (dimens.) 35.36 m 2 0.3 m/s 60 s 60 min 24 h min h j 916,530 m 3 / j Soit la fraction de recyclage 91.6 Pour appliquer la vélocité de débit requise dans le chenal, il faut spécifier le débit dans le flux principal (Débit Principal Fixe [P]) au niveau du séparateur où le flux quitte le chenal vers le clarificateur. CAS D‟ETUDE: NIT/DENIT SIMULTANEES DANS UN CHENAL D‟EPURATION L‟hypothèse dans BioWin est que les bioréacteurs sont parfaitement mélangés et que les concentrations de tous les composés (notamment l‟oxygène) sont uniformes partout dans le réacteur. Cette hypothèse n‟est pas valable dans les chenaux d‟épuration. En tout point du chenal il est probable que (a) la concentration en solides augmente entre la surface et le fond et (b) qu‟il y ait une concentration décroissance en oxygène Cours de 2 jours 113 de la surface vers la base. Ce ne sont donc pas des conditions de mélange idéal, ce qui résulte en un phénomène de nitrification/dénitrification simultanée (SND) significatif dans le système. Dans BioWin la transition entre les processus aérobies et anoxiques est contrôlée par des fonctions de bascule (« switching function »). Par exemple : Taux AEROBIE Taux ANOXIE O2 S Z KS S K O 2 O2 O2 S Z 1 KS S K O 2 O2 TauxTOTAL Taux AEROBIE Taux ANOXIE Dans BioWin la valeur par défaut de KO2 pour la croissance de la biomasse hétérotrophe est 0.05 mgO2/L. Pour une concentration de 2 mgO2/L, le taux aérobie est « actif » à 98% et le taux anoxie est « actif » à 2%. Ainsi, avec les valeurs par défaut à une concentration en oxygène de 2 mgO2/L, il n‟y a quasiment pas de croissance anoxie (et donc pas de dénitrification simultanée). Dans les chenaux d‟épuration, la valeur de KO2 peut être adaptée (augmentée) pour permettre la nit/dénit simultanée. Cependant, il faut noter que les chenaux d‟épuration sont très « interactifs », et que KO2 doit être modifié avec prudence. Il y a principalement trois facteurs principaux qui interagissent : 1. La concentration en oxygène au niveau de l‟aérateur : avec le taux de recirculation, ce paramètre détermine le profil et le taux de perte tout au long du chenal. Modifier la concentration en oxygène au niveau de l‟aérateur modifie le profil de concentration dans le chenal et donc le potentiel de dénitrification. 2. Le taux de recirculation : les chenaux ont habituellement un taux de recirculation d‟environ 50 à 150 :1 (dimensionnement typique pour une vélocité de 0.3 m/sec). S‟il y a une valeur de consigne en oxygène au niveau de l‟aérateur, alors le profil de concentration en oxygène (et la nit/denit simultanée potentielle) sera affectée si le taux de recirculation change. [Pour appliquer la vélocité de débit requise dans le chenal, il faut spécifier le débit dans le flux principal (Débit Principal Fixe [P]) au niveau du séparateur où le flux quitte le chenal vers le clarificateur]. 3. La constante de demi-saturation KO2 : sa valeur est un « degré de liberté » pour forcer le calage sur les nitrates de l‟effluent. Augmenter KO2 augmente le taux de nit/denit simultanée et diminue par conséquent les nitrates dans l‟effluent. Ainsi il est possible de réduire les nitrates autant que nécessaire par nit/denit simultanée. En général, l‟approche doit consister à appliquer un taux de recirculation aussi précis que possible (de même que pour la capacité de transfert d‟oxygène des aérateurs), de façon à ce que le profil en oxygène soit correct et ensuite seulement on peut « jouer » sur KO2. Une valeur suggérée pour KO2 dans les systèmes de chenaux d‟épuration est 0.45 mgO2/L. On peut également trouver la valeur 0.3 mgO2/L dans la littérature [Au cours de la journée, si la puissance des aérateurs change, il peut être souhaitable de spécifier une variation journalière du taux de recirculation dans le chenal]. Nous allons maintenant illustrer certains de ces effets. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Un exemple issu du “classeur de BioWin” sera utilisé. Sélectionner le schéma One pass oxidation ditch with surface aeration.bwc (voir la figure 20.1). 2. Consulter la valeur du Coef de demi sat. de l’O2 pour la dénit aérobie (KO2) dans le menu des paramètres cinétiques. Remettre la valeur par défaut et réaliser une simulation en régime permanent. 114 Cours de 2 jours 3. Ouvrir l‟Album et observer le profil de concentration en oxygène dans le chenal. Noter la concentration d‟oxygène dans le réacteur 4. 4. Mettre en place l‟affiche du profil des nitrates dans l‟Album. Quelle concentration en nitrate peut être attendue dans l‟effluent? 5. Modifier la consigne en oxygène au niveau des aérateurs en l‟augmentant de 1.5 à 2.0 mg/L. Simuler à nouveau un régime permanent, et noter le profil de concentrations d‟oxygène dans le chenal et notamment la concentration dans le réacteur 4. 6. La concentration en nitrates dans l‟effluent a-t-elle changé ? 7. Réduire le taux de recirculation de 100 :1 à 50 :1 et noter l‟impact sur le profil de concentrations d‟oxygène et sur la concentration en nitrates de l‟effluent. (même si le paramètres KO2 est toujours à 0.05 mg/L… une portion importante du chenal est en anoxie, ce qui implique une véritable dénitrification – qui n‟est pas de la Nit/dénit simultanée). 8. Remettre la circulation à un taux de 100 :1. Augmenter la valeur de KO2 à 0.45 et noter le changement en termes de concentration de nitrates dans l‟effluent.[La nit/dénit simultanée est liée à la concentration en oxygène. Noter la concentration dans le réacteur 4 : plus de dénitrification conduit à une moindre demande en oxygène !]. Tous ces résultats ont été obtenus en régime permanent. Le comportement dynamique ajoute une complexité supplémentaire. Habituellement, on affecterait une puissance donnée à l‟aérateur (et une valeur de transfert, par exemple 2.5 lb/hr(rappel 2.21 lb = 1 kg)), ainsi cela laisse à la concentration en oxygène la possibilité de varier au cours de la journée. [Beaucoup d‟aérateurs ont deux vitesses/puissances (plutôt que vitesse/puissance variable), ce type de fonctionnement peut être spécifié dans BioWin]. CAS D‟ETUDE: CHENAL D‟EPURAITON AVEC TRAITEMENT BIOLOGIQUE DES NUTRIMENTS Un exemple du « classeur » de BioWin sera utilisé. Sélectionner le système Two pass BNR oxidation ditch. FIGURE 3. CHENAL D’EPURATION”T WO-PASS BNR” DU CLASSEUR DE BIOWIN. Cours de 2 jours 115 Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Lancer une simulation en régime permanent à partir des Valeurs d’ensemencement. …inutile d‟attendre trop long temps avant d‟annuler la simulation ! 2. Modifier les paramètres du solveur Hybride de BioWin vers les Paramètres sécuritaires. Relancer la simulation en régime permanent à partir des Valeurs d’ensemencement. Combien d‟itérations sont nécessaires pour trouver la solution ? 3. Ouvrir l‟Album et observer le profil de concentrations en oxygène dans le chenal. 4. Est-ce que la concentration en nitrates de l‟effluent semble basse ? Qu‟est-il arrivé aux nitrates ? Discuter de la nit/dénit simultanée. 5. Observer la valeur du paramètre Coef. de demi sat. O2 pour la dénit aérobie (fonction de demie saturation – paramètres cinétiques). Remettre ce paramètre à sa valeur par défaut (0.05 mg/L) et réaliser à nouveau une simulation en régime permanent à partir des Valeurs d’ensemencement. 6. Modifier la consigne en oxygène des aérateurs de 1.5 à 2.0 mg/L. Observer les résultats obtenus. 7. Essayer maintenant de changer la consigne en oxygène en une puissance d‟aération (débit d‟air). Est-ce que le système arrive à réaliser un traitement biologique du phosphore ? 116 Cours de 2 jours PRECIPITATION CHIMIQUE DU PHOSPHORE CONSIDERATIONS SUR LE MODELE La précipitation chimique du phosphore avec du fer ou de l‟aluminium fait partie du modèle. Ces deux méthodes peuvent être activées en option, mais pas utilisées de manière simultanée. Puisque la précipitation correspond à des vitesses de réaction plus rapides que les réactions biologiques, les équations du modèle sont exprimées et développées sous forme d‟équation d‟équilibre. Les métaux ajoutés forment des complexe hydroxo-phosphate (Fe1.6H2PO4OH3.8 ou Al0.8H2PO4OH1.4), un complexe métalphosphate soluble (FeH2PO42+ or AlHPO4+) et des résidus métalliques qui seront majoritairement des précipités d‟hydroxyde de métal (Fe(OH)3 or Al(OH)3). Pour un équilibre il faut toujours une faible concentration en ions métalliques libres et différentes espèces de phosphates (dissociées ou non : PO43-, HPO42-, H2PO4-, H3PO4). Ces espèces de phosphates avec les complexes solubles métal/phosphate sont responsables de la concentration en phosphore soluble résiduelle de l‟effluent. Ces réactions sont prises en compte avec des équations de solubilité et de dissociation adaptées. La distribution et les concentrations résiduelles de ces composés dépendent du pH et de leur dosage. Lors d‟une forte surdose de métal, la figure ci-dessous montre la relation entre les concentrations des espèces solubles résiduelles du phosphore avec le pH. La réaction principale pour les deux métaux est (en utilisant l‟Aluminium comme exemple) : 1. Formation du précipité (solide) de phosphate d‟aluminium (r=0.8 pour Al, 1.6 pour Fe): Al H PO OH 3 r 2 3r 1 4 K sp,AlP 2. Formation d‟un hydroxyde d‟aluminium avec un excès de métal : Al3 3H2O Al(OH)3 3H 3. Formation d‟un complexe soluble de phosphate d‟aluminium, contribuant à la concentration résiduelle en PO4 : Al HPO K AlHPO 3 2 4 4 Cours de 2 jours iAlHPO 4 117 residual P vs. pH 0.5 mgP/L 0.4 0.3 0.2 0.1 0 5.5 6 6.5 7 7.5 8 pH Fe dose Al dose FIGURE 21.1. P RESIDUEL EN FONCTION DU PH DANS LE CAS D’UNE FORTE SURDOSE DE METAL. CAS D‟ETUDE: AJOUT DE FER Cet exemple présente l‟ajout de chlorure ferrique à un système de boues activées destiné à l‟élimination du phosphore. Pour permettre une comparaison simple, deux filières boues activées identiques sont utilisées et le chlorure ferrique est dosé dans l‟une d‟elle. Les caractéristiques utiles du système sont les suivantes : 118 Débit d‟entrée constant de 24 ML/j dans chaque file [DOC = 500 mg/L; NTK = 40 mgN/L; PT = 10 mgP/L]. Age de boue = 12 jours. Ajout de chlorure ferrique sur une file dans la conduite entre le bioréacteur et le clarificateur secondaire. La solution chlorure ferrique est donnée à 33% (masse FeCl3 – soit 150,000 mgFe/L). Il est prévu d‟ajouter une solution 3M de chaux pour maintenir le pH à haut dosage de métal. L‟alcalinité de l‟effluent est de 6 meq/L (300 mgCaCO3/L) Cours de 2 jours FIGURE 2. AJOUT DE CHLORURE FERRIQUE POUR LA PRECIPITATION DU PHOSPHORE. Réaliser la séquence d‟étapes suivante : 1. Ouvrir le fichier Ferric Example.bwc. 2. Activer l‟option de modélisation de la précipitation pour le dosage de métaux et sélectionner le fer ferrique comme sel métallique. 3. Vérifier que les débits de chlorure ferrique et de chaux sont à zéro. 4. Réaliser une simulation en régime permanent et vérifier que les résultats sont les mêmes pour les deux files (càd que les systèmes sont identiques). Entrer les résultats pour la file B dans le tableau 21.1. 5. Simuler des régimes permanents en incrémentant le débit du chlorure ferrique (1000, 2000, 3000, 4000 L/jour). Entrer les résultats dans le tableau 21.1. 6. Diminuer l‟alcalinité de l‟eau usée de 6 à 4 meq/L (300 à 200 mgCaCO3/L). Réaliser une simulation en régime permanent et reporter les resultats dans le tableau 21.1. 7. Observer l‟effet de l‟ajout de chaux pour ajuster le pH. Cours de 2 jours 119 TABLEAU 1. DONNEES POUR L’AJOUT DE CHLORURE FERRIQUE. Débit de Chlorure Ferrique (L/j) Alcalinité Eau usée (meq/L) 0 6 1000 6 2000 6 3000 6 4000 6 4000 4 120 P-PO4 Effluent (mg/L pH du réacteur MVS du réacteur (mg/L) MES du réacteur (mg/L) MVS/MES Cours de 2 jours TRAITEMENT DES RETOURS EN TETE (RETOURS DE DIGESTEUR) GENERALITES La digestion anaérobie des boues activées extraites conduit à libération d‟azote sous forme ammoniacale. Généralement, les boues digérées sont déshydratées et le flux liquide est retourné en tête de la filière boue. La charge en nutriment de ce rejet est considérable ; elle peut conduire à une augmentation de la charge entrante en azote de 15 à 25 %. Différents procédés biologiques de traitement des retours en tête ont été développés pour traiter l‟azote ammoniacal (InNitri, BABE, SHARON, ANAMOX, CANON, DEMON…). Ces systèmes impliquent une ou plusieurs des transformations biologiques suivantes : Une nitritation, éventuellement partielle, réalisée par des bactéries autotrophes oxydant l‟azote ammoniacal en nitrites (dit « AOBs » : ammonia oxidizing bacteria) ; Une nitratation réalisée par des bactéries autotrophes oxydant les nitrites en nitrates (dit « NOBs » : nitrate oxydizing bacteria) ; Une dénitritation réalisée par des bactéries hétérotrophes qui utilisent les nitrites comme accepteur d‟électron avec l‟addition de substrat organique (généralement de DCO facilement biodégradable), ce qui produit de l‟azote gazeux ; Une dénitratation réalisée par des bactéries hétérotrophes utilisant les nitrates comme accepteur d‟électron avec l‟addition de substrat organique (généralement de la DCO facilement biodégradable), ce qui produit des nitrites ; L‟abattement de l‟azote par des bactéries anammox autotrophes (anammox : ANaerobic AMMonia OXidation). Ce procédé convertit directement l‟azote ammoniacal en azote gazeux dans des conditions de non aération, et en utilisant les nitrites comme accepteur d‟électron. La stœchiométrie de cette réaction biologique mène à des quantités quasi égales d‟azote ammoniacal et de nitrites consommées. La terminologie suivante est utilisée pour décrire les différentes combinaisons de transformations biologiques Nitrification : nitritation suivie de nitratation (càd conversion de l‟azote ammoniacal en nitrites puis en nitrates); Dénitrification : dénitratation suivie de dénitritation (càd conversion des nitrates en nitrites puis en azote gazeux) ; Déammonification : nitritation partielle (càd conversion d‟une partie de l‟azote ammoniacal en nitrites) suivie d‟une réaction anammox (càd conversion de l‟azote ammoniacal et des nitrites en azote gazeux) ; Cours de 2 jours 121 Plusieurs intérêts ont été identifiés pour les différents systèmes de traitement des retours en tête ; par exemple : L‟ensemencement de la filière boues activées avec des AOBs et des NOBs qui ont fait leur croissance au niveau du système de traitement des retours en tête, ce qui permet de réduire l‟âge de boue (bioaugmentation). Une quantité plus réduite de carbone est nécessaire pour la dénitrification à partir des nitrites qu‟à partir des nitrates en comparaison de la nitrification d‟un flux « entièrement nitrifié ». L‟intérêt majeur d‟un procédé ANAMMOX par rapport à un système de dénitrification conventionnel est qu‟il n‟y a pas d‟ajout de carbone organique pour la dénitrification, et par conséquence pas d‟augmentation de la production de biosolides ou d‟émission de CO2. Les systèmes de traitement des retours en tête axés sur l‟abattement de l‟azote ammoniacal ont été conçus avec plusieurs configurations de réacteurs ; par exemple, un ou plusieurs réacteurs continus mélangés, un réacteur-clarificateur avec un recyclage des boues, des SBR, des systèmes à biomasse fixée. Les conditions opérationnelles appliquées pour les retours en tête sont très différentes de celles appliquées pour la filière principale. Cela implique donc des considérations particulières pour le fonctionnement et le contrôle de ces systèmes : Arrêter la nitrification à l‟étape des nitrites et prévenir la formation de nitrate repose sur les différents taux de croissance entre les bactéries nitritantes et les bactéries nitratantes, ainsi que sur leur différence de sensibilité à la température. Les concentrations élevées en substrat et substances produites comme l‟azote ammoniacal et l‟acide nitreux peuvent conduire à des conditions d‟inhibition. Dans certains cas l‟obtention de bons résultats dépend de l‟inhibition de certaines réactions. Un contrôle attentif du pH est souvent requis pour la réussite de l‟opération. Les organismes anammox ont un taux de croissance très faible qui nécessite un long âge de boue, une longue mise en route du système. Le modèle de BioWin a été développé pour permettre la simulation du traitement des retours en tête ; il inclut donc les éléments suivants : Des taux de croissance et de mortalité différenciés pour les nitritantes et les nitratantes. Une dénitrification hétérotrophe utilisant aussi bien les nitrates que les nitrites comme accepteur d‟électron, en leur affectant des rendements différenciés. L‟ajout de taux de croissance et de mortalité pour les anammox, avec la prise en considération des limitations et inhibitions auxquelles elles sont soumises. La modélisation du pH est essentielle et doit inclure toutes les équations d‟équilibres significatives avec des composés tels que les acides nitriques et nitreux, l‟azote ammoniacal, et les carbonates. Les interactions gaz-liquide pour permettre la prédiction du stripping de l‟azote ammoniacal et du CO2 doivent être prises en considération pour représenter correctement le système de pH et, dans certains cas, pour représenter correctement les conditions de limitation de croissance. EXEMPLES INCLUS DANS BIOWIN Plusieurs exemples de procédés de traitement des retours en tête sont inclus dans BioWin : 122 Cours de 2 jours * Nitritation – dénitritation * Pré-dénitritation – nitritation * Nitritation – déammonification * Bioaugmentation #1 CAS D‟ETUDE Un système de traitement des retours en tête est inclus dans une station de traitement de l‟azote tel que montré sur la Figure 13.1. Le procédé boues activées n‟est pas spécifiquement dimensionné pour le traitement biologique du phosphore (P), mais l‟objectif est d‟atteindre un certain niveau d‟abattement du phosphore. Tout recyclage d‟azote (qu‟il soit sous forme ammoniacale, nitrites ou nitrates) à partir des retours du digesteur aura un impact sur le potentiel d‟abattement du phosphore ; ce qui offre une motivation supplémentaire à l‟installation d‟un système de traitement des retours en tête. La configuration du système de traitement des retours en tête consiste en un réacteur pour la nitritation suivi par un réacteur pour la dénitritation, avec un recyclage des liqueurs concentrées en nitrites vers le réacteur de dénitritation. Du méthanol est ajouté pour l‟abattement des nitrites, et une solution de chaux 3M peut être ajoutée pour l‟ajustement du pH dans le réacteur de nitritation. FIGURE 1. STATION DE TRAITEMENT DES NUTRIMENTS AVEC TRAITEMENT DES EFFLUENT DU DIGESTEUR. Réaliser les étapes suivantes : 1. Ouvrir le ficher “ Full plant with sidestream N removal ” à partir des exemples de BioWin. Le fichier peut être ensuite sauvegardé dans le répertoire de travail utilisé pour le cours. 2. Etudier la configuration du schéma. 3. Réaliser une simulation en régime permanent. 4. Observer la qualité de l‟effluent (en termes de N et P). Est-ce que le système réalise un traitement biologique du phosphore ? Cours de 2 jours 123 5. Observer les concentrations de nitrites et de nitrates dans les deux réacteurs de traitement des retours en tête, ainsi que le pH. 6. Evaluer l‟impact sur le système de modifications du fonctionnement de ces réacteurs avec : (a) le recyclage des nitrites ; (b) la quantité d‟ajout de méthanol. 7. Arrêter l‟ajout de chaux dans le réacteur de nitritation. Observer l‟impact sur le pH et sur les performances. 8. Retirer les réacteurs de traitement des retours en tête du schéma, et retourner directement les effluents concentrés du digesteur vers la filière boues activées principale. Quel est l’impact ? 124 Cours de 2 jours ANNEXES PRESENTATIONS Introduction à la modélisation – 7p L‟abattement biologique des nutriments (BNR) – 3p Le fractionnement des eaux uses – 14p La séparation de phase (Phase separation) – 20p La modélisation de l‟aération – 7p Le Calage (Calibration) – 11p Les fonctionnalités avancées – 5p Cours de 2 jours 125 126 Cours de 2 jours BioWin – Formation de 2 jours Contexte Le traitement des eaux usées urbaines ou industrielles est nécessaire pour Modélisation et Simulation des STEP Boues Activées préserver les milieux récepteurs. Les objectifs de dépollution portent principalement sur : le carbone, l’azote, le phosphore Cours à Bordeaux Du 25.11.08 Les MES (matières en suspension). Les méthodes de traitement sont : Physiques (dégrillage, dessablage, décantation, séparation) Biologiques (bactéries : « boues activées) Physico-chimiques (ajout de coagulants) Objectif Objectif Ville Eaux usées Meilleure qualité possible : - Minimum de nutriments - Minimum de MES Ville Station d’épuration Rivière Industrie Eaux usées Station d’épuration Rivière Industrie Boues Boues Intro - 1 BioWin – Formation de 2 jours Objectif Ville Eaux usées Objectif Minimiser les dépenses de gestion : (surtout électriques) -Fonctionnement des pompes - Aération - Coagulants Station d’épuration Ville Rivière Industrie Eaux usées Station d’épuration Industrie Réduire la production des boues et assurer leur qualité Boues Méthodes Rivière Boues Outils 1 – Modèles Mathématiques 1 – Optimisation du dimensionnement - Taille des ouvrages (volume des bassins, profondeur du clarificateur) - Puissance des pompes et des aérateurs - Boucles de recyclage interne -… 2 – Optimisation de la gestion - Programmation du fonctionnement de l’aération - Fréquence de l’extraction des boues - Dosage des coagulants -… - Biologiques (croissance/mortalité des biomasses/bactéries) - Physiques (décantation, floculation, séparation… ) - Chimiques (hydrolyse, précipitation, pH…) 2 – Pilotes - Mini station d’épuration en laboratoire 3 – Simulateurs - Logiciel intégrant différents modèles mathématiques - Des solveurs stationnaires et dynamiques - Et une interface graphique! Intro - 2 BioWin – Formation de 2 jours Outils 1– Demande de l’expérience et de Modèles Mathématiques l’expertise. - Biologiques (croissance/mortalité des biomasses/bactéries) Fondée sur plusieurs décennies - Physiques (décantation, floculation, séparation… ) de recherche internationale. - Chimiques (hydrolyse, précipitation, pH…) 2 – Pilotes - Mini station d’épuration en laboratoire 3 – Simulateurs - Logiciel intégrant différents modèles mathématiques - Des solveurs stationnaires et dynamiques - Et une interface graphique! Outils 1 – Modèles Mathématiques Outils 1 – Modèles Mathématiques - Biologiques (croissance/mortalité des biomasses/bactéries) - Physiques (décantation, floculation, séparation… ) - Chimiques (hydrolyse, précipitation, pH…) 2 – Pilotes - Mini station d’épuration en laboratoire Très couteux (10 à 100 k€). Demande de l’expertise. Expériences longues. Parfois nécessaire cependant! 3 – Simulateurs - Logiciel intégrant différents modèles mathématiques - Des solveurs stationnaires et dynamiques - Et une interface graphique! Projet de simulation Simulations Construction d’un modèle de la station - Biologiques (croissance/mortalité des biomasses/bactéries) - Physiques (décantation, floculation, séparation… ) - Chimiques (hydrolyse, précipitation, pH…) 2 – Pilotes - Mini station d’épuration en laboratoire 3– Peu couteux (ex BioWin : 1.5 kUSD/an). Plusieurs niveaux d’utilisation (expert, Simulateurs utilisateurs, élève…). - Logiciel intégrant différents modèles mathématiques Mise à jour des avancées scientifiques. - Des solveurs stationnaires et dynamiques Possibilités infinies de tests. - Et une interface graphique! Consignes de dimensionnement et/ou de gestion Collecte de données Analyse des résultats Intro - 3 BioWin – Formation de 2 jours L’interface du simulateur Les modèles publiés Panneau de dessin Synoptique de la STEP (schéma) • Traitement de C et N – IWA n°1 & 3 (ASM1 & ASM3) • Traitement biologique du phosphore Information sur un élément du schéma – IWA n°2 & 2d (ASM2 & 2d) – Ancien Modèle BioWin (Dold & Baker) • Digestion Anaérobie – 1, 2 et 4 populations – IWA ADM1 (7 populations) Le modèle « BioWin » Modèle général de boues activées Modèle de digestion • • • • • • • Abattement du carbone Nitrification Dénitrification Abattement biologique du carbone Fermentation Production de méthane Interactions physiques/chimiques Composition de la biomasse Hétérotrophes non déphosphatantes Hétérotrophes déphosphatantes Utilisateurs anoxiques du méthanol Nitrifiantes Acétogènes propioniques Méthanogènes acétoclastiques Méthanogènes hydrogènotrophiques Résidu endogène Intro - 4 BioWin – Formation de 2 jours Autres éléments de la boue activées Les processus du modèle Matière organique (soluble/particulaire, biodeg/inerte) Croissance biologique Azote (ammoniac, nitrates, soluble/particulaire, N organique) Transferts gazliquide Mortalité Phosphates Métaux Réactions d’hydrolyse Précipitation Cations/Anions Précipités Relargage de stockage du phosphore Dioxyde de Carbone Ammonification Oxygène Formulation du modèle Présentation du modèle Type Monod Cinétique rSs : Vitesse de consommation du substrat SS µ : vitesse max de croissance (/d) Y : rendement biomasse/substrat Ss : concentration substrat (mgDCO/l) Ks : constante de demi saturation (mgDCO/l) XH : concentration en biomasse (mg DCO/l) Stœchiométrique • 1 unité de substrat utilisée • Y unités de biomasse produite • (1-Y) unités d’O2 consommées • ixbn unités de N-NH3 utilisées pour la synthèse • ixbp unités de P-PO4 utilisées pour la synthèse Fermentation Matrice (de Gujer) Composés Processus Consommation du substrat Mortalité endogène Substrat Ss Biomasse XH -1 +Y 1 Résidu XE Oxygène O2 Vitesse -(1-Y) +f -(1-f) b.XH Intro - 5 BioWin – Formation de 2 jours Les fonctions du simulateur • Modèles « embarqués » dans les unités de procédé • Simulations en régime permanent – Résolution d’équations algébriques non linéaires – Concentration de chaque composés en tout point de la STEP – Bilan de masse • Simulations dynamiques Exemple Une station près de Toulouse. 10 000 Habitants. Objectif : Optimiser l’aération Moyen : Réduction du temps d’aération De 2 hrs en hiver De 4 hrs en été Optimisation d’une STEP • Dimensionnement • Gestion Définition des objectifs de l’étude Exemple Etapes Données de dimensionnement Définition des objectifs de l’étude Exemple Etapes Construction du schéma Choix du/des modèles mathématiques ASM, BioWin, Décantation,Chimie… Consigne de fonctionnement et eau usée type Etape I : Préparation Données de dimensionnement Construction du schéma Représentation de la station à étudier ou à construire dans le simulateur. Choix du/des modèles mathématiques Collectes des données nécessaires. ASM, BioWin, Décantation,Chimie… Consigne de fonctionnement et eau usée type Régime stationnaire Régime stationnaire Etapes de calage, Analyses d’autosurveillance, Campagne de mesure Hydraulique Analyse résultats Production de boue Etapes de calage, Analyses d’autosurveillance, Campagne de mesure Hydraulique Analyse résultats Production de boue Résultats en sortie Résultats en sortie … (dynamique) … (dynamique) Simulations de scénarios (dynamiques/stationnaires) Simulations de scénarios (dynamiques/stationnaires) Application des résultats Application des résultats Intro - 6 BioWin – Formation de 2 jours Définition des objectifs de l’étude Exemple Etapes Définition des objectifs de l’étude Etape I : Préparation Données de dimensionnement Construction du schéma Représentation de la station à étudier ou à construire dans le simulateur. Choix du/des modèles mathématiques Collectes des données nécessaires. Exemple Etapes Etape I : Préparation Données de dimensionnement Représentation de la station à étudier ou à construire dans le simulateur. Choix du/des modèles mathématiques Collectes des données nécessaires. ASM, BioWin, Décantation,Chimie… Consigne de fonctionnement et eau usée type Etape II : Calage/validation du modèle Etapes de calage, Analyses d’autosurveillance, Campagne de mesure ASM, BioWin, Décantation,Chimie… Consigne de fonctionnement et eau usée type Régime stationnaire Hydraulique Modification des paramètres du modèles Production de boue en fonction de la comparaison entrée Résultats en sortie données mesurées et simulées. Analyse résultats … (dynamique) Construction du schéma Régime stationnaire Etape II (bis) : Collecte de données Analyses d’autosurveillance, Campagne de mesure Etape II : Calage/validation du modèle Etapes de calage, Hydraulique Si besoin… Campagne de mesure sur site réel ou en pilote/laboratoire Modification des paramètres du modèles Production de boue en fonction de la comparaison entrée Résultats en sortie données mesurées et simulées. Analyse résultats Simulations de scénarios (dynamiques/stationnaires) Simulations de scénarios (dynamiques/stationnaires) Application des résultats Application des résultats … (dynamique) Définition des objectifs de l’étude Exemple Etapes Etape I : Préparation Données de dimensionnement Construction du schéma Représentation de la station à étudier ou à construire dans le simulateur. Choix du/des modèles mathématiques Collectes des données nécessaires. ASM, BioWin, Décantation,Chimie… Consigne de fonctionnement et eau usée type Régime stationnaire Etape II (bis) : Collecte de données Analyses d’autosurveillance, Campagne de mesure Etape II : Calage/validation du modèle Etapes de calage, Hydraulique Si besoin… Campagne de mesure sur site réel ou en pilote/laboratoire Modification des paramètres du modèles Production de boue en fonction de la comparaison entrée Résultats en sortie données mesurées et simulées. Analyse résultats Exemple - Résultats La concentration d’azote ammoniacal diminue grâce à la nitrification qui elle dépend du temps d’aération … (dynamique) Etape III : Simulation Simulations de scénarios (dynamiques/stationnaires) Simulation de scénarios. Analyse de résultats et application au Application des résultats consigne de dimensionnement/ gestion Graphique de résultat 3D : -Concentration de l’azote ammoniacal (N-NH3) en 4 points de la station (entrée, zone d’anoxie, bassin d’aération et sortie). Evolution sur 2 jours. -La sortie garde un niveau < 1 mgN-NH3/L : Solution validée ! Intro - 7 Formation – BioWin de 2 jours Objectives • Remove Carbon – O2 demand Nutrient removal Course in Bordeaux E n v i r o S i m A S S O C I A T E S L T D . Pathways • Nitrification – Nitritation, nitratation • Denitrification – Denitritation, denitratation • Bio-P • Chemical P • Anammox – BOD, COD, TSS • • • • • Remove N Remove P Remove other components Use minimum energy, chemicals Produce minimum GHG Environments • Aerobic – O2 • Anoxic – No DO, but NO2 and/or NO3 – Anoxalic – mainly NO3 – Anoxilic – mainly NO2 • Anaerobic- no DO or NOX • Other electron acceptors, Fe3+, SO4, etc.? BNR - 1 Formation – BioWin de 2 jours Electron equivalences (COD/N) Reaction steps – Two step nitrification • NH3 – 0.5N2 – NO2 – NO3 • Nitritation by AOBs (NH3 → NO2) • Nitratation by NOBs (NO2 → NO3) – Two step denitrification 4.57 • Denitratation by heterotrophs (NO3 → NO2) • Denitritation by heterotrophs (NO2 → N2) – Anammox reaction (NH3 + NO2 → N2) 2.86 3.43 1.14 Two step nitrification/denitrification (simplified) Autotrophic Aerobic Environment 1 mol Nitrate (NO3- ) Nitritation/denitritation (simplified) Heterotrophic Anoxic Environment Autotrophic Aerobic Environment 1 mol Nitrate (NO3- ) 40% Carbon Heterotrophic Anoxic Environment 40% Carbon 25% O2 25% O2 1 mol Nitrite (NO2- ) 1 mol Nitrite (NO2- ) 1 mol Nitrite (NO2- ) 60% Carbon 75% O2 75% O2 1 mol Ammonia (NH3/ NH4 +) ½ mol Nitrogen Gas (N2 ) 1 mol Ammonia (NH3/ NH4 +) 1 mol Nitrite (NO2- ) 60% Carbon • 25% Reduction in Oxygen Demand • 40% Reduction in Carbon (e½ mol Nitrogen donor) Demand Gas (N2 ) • 40% Reduced Biomass Production BNR - 2 Formation – BioWin de 2 jours Anammox reaction (simplified) Autotrophic Aerobic Environment 1 mol Nitrate (NO3- ) Heterotrophic Anoxic Environment Roles of PAO and OHO organisms 40% Carbon 25% O2 ANAEROBIC BEHAVIOR ANOXIC BEHAVIOR POLYP ORGANISMS POLYP ORGANISMS ( a fraction ) PO4 PO4 1 mol Nitrite (NO2- ) 1 mol Nitrite (NO2- ) POLYP 60% Carbon 75% O2 ½ mol Nitrogen 1 mol Ammonia Gas • 63% Reduction in Oxygen Demand (N2 ) (NH3/ NH4 +) • 100% Reduction in Carbon (e- donor) Demand • Much Reduced Biomass Production BioWin reactions Aerobic heterotrophic growth using complex substrate, acetate, propionate and methanol Anoxic heterotrophic growth on nitrate and nitrite using complex substrate, acetate and propionate Anaerobic fermentation of complex substrate, propionate and methanol Growth of bio-P microorganisms and storage of polyphosphate Various hydrolysis, ammonification and colloid flocculation reactions Assimilative nitrate and nitrite reduction Anoxic growth of methylotrophs on nitrate and nitrite Growth of ammonia and nitrite oxidizer biomasses Growth of Anammox microorganisms Growth of autotrophic and heterotrophic methanogens Decay of all nine (9) active biomasses in different environments pH estimation based on the phosphate, carbonate, ammonia, acetate and propionate systems, including strong acids and bases, plus other relevant reactions Precipitation of various calcium, magnesium, aluminium and iron complexes (struvite, HDP, HAP, etc) Gas transfer of O2, CO2, N2, NH3, H2 and CH4 gases Inorganic suspended solids fixation during polyphosphate storage and heterotrophic growth POLYP ORGANISMS PO4 POLYP POLYP PHB PHB NO3 SCFA Autotrophic Anaerobic Environment AEROBIC BEHAVIOR NON-POLYP ORGANISMS PHB N2 O2 NON-POLYP ORGANISMS PARTICULATE SUBSTRATE SOLUBLE SUBSTRATE CO2 NON-POLYP ORGANISMS PARTICULATE SUBSTRATE SOLUBLE SUBSTRATE SCFA COMPLEX SOLUBLE SUBSTRATE NO3 N2 O2 CO 2 Considerations • Models are simplifications • Data is error-prone • At low concentrations – Inert fractions become important – Mass balances are difficult to verify – Energy demand increases exponentially BNR - 3 BioWin – Formation de 2 jours Fractionnement des eaux usées Fractionnement des eaux usées Cours à Bordeaux Du 25.11.08 I – Fractionnement de la DCO II – Fractionnement de l’azote III – Autres composés des ERU Les fractions de la DCO et leur mesure Avant propos Sommaire Fractionnement EAU = Fractionnement BOUE – Composés de la DCO – Quantification des composés organiques Données échangées entre deux unités du schéma Compromis entre : Réalité, Besoins du modèle, Niveau de résultat souhaité. • Fractions de la DCO – Parcours des techniques de mesure – Mesures des composés de la DCO – Ordres de grandeur typiques DCO Qualité de mesure Bilan O2 Ratio DCO/MVS Fractionnement des ERU - 1 BioWin – Formation de 2 jours Matière organique : DCO Matière organique : DCO ST DCOTotale DCObiomasse DCObiodégradable XB DCOinerte DCObiodégradable DCOinerte SBS Facilement biodégradable Lentement biodégradable Inerte soluble Inerte Particulaire SBSC Complexe Acides gras à chaine courte Colloïde Xs Ss SBSA XSC Sup Si Xi XSP Particulaire Rôles des fractions Rôles des fractions ST XB SUS DCOT DCObiodégradable XB DCOinerte DCObiodégradable DCOinerte DCO Biodégradable SBS Xs Demande en oxygène Abattement biologique du phosphore SBSC SBSA XSC SUS XSP Xi SBS SBSC DCO Soluble non SBSA XSC biodégradable Xs SUS Xi XSP Concentration en DCO de l’effluent Info sur Ss (par calcul de différ.) Fractionnement des ERU - 2 BioWin – Formation de 2 jours Rôles des fractions Rôles des fractions ST DCO particulaire non biodégradable XB ST DCObiodégradable XB DCOinerte Concentration en MVS de la boue SBS Xs SUS DCObiodégradable Xi DCOinerte DCOXbiomasse SUS s SBS Xi Boue activée enrichie SBSC SBSA XSC XSP SBSC Fractions de DCO & Filtration ASM1 BioWin SUS Lentement biodégradable XS (+ XB) SUS Solubles inertes XSC Colloïdes XS fBS (fAC) Particulaire Xi Sup fUS SUS 1-fBS-fUS-fUP XS (fXSP) XB Xi DCO rapidement biodégradable SBS XSP XB Particulaire inerte XI SBSC Autres solubles biodégradables DCO Totale Soluble inerte SI Acides gras solubles DCO Filtrée SBS SBSA XSP Fractions dans BioWin Filtration DCO Floculée, filtrée Soluble biodégradable Ss Etat physique SBSA Fermentation XSC SBSA Acides gras volatiles : acétates, propionate, butyrate SBSC SBS « complexe » (fermentable) : sucres, acides aminés, acides non volatiles, lipides DCO soluble non biodégradable : acides humiques, phénols, surfactants DCO lentement biodégradable XSC XS colloïdal : polysaccharides, protéines, graisses XSP XS particulaire (> 1.2 micron) : résidus de nourriture, microorganismes incl Xh Particulaire fup (SUP) Xi DCO particulaire non biodégradable : matières humiques, fibres (ex : papier hygiénique), cheveux, lignine Note : les fraction entre parenthèses (fac, fxsp) sont relatives à leur variable composée (resp. Sbs et Xs) et non à la DCOtotale Fractionnement des ERU - 3 BioWin – Formation de 2 jours Fractions dans BioWin SUS = fUS.DCOT Xi = fUP.DCOT (= SUP) Les techniques de mesure Fractions de l’eau usée Protocole expérimental Facilement biodegradable 1. Réacteur boues activées en flux continu avec une charge en créneaux 2. Méthode « batch » 3. Méthode physico-chimiques Inerte soluble et particulaire 1. Réacteur boues activées (site reel ou pilote) 2. Pilote SBR Biomasse 1. Méthode « batch » SBS = fBS.DCOT XSP + XSC = (1 – fBS – fUS – fUP).DCOT DCOT = SBS + SUS + XSP + XSC + Xi DCO Soluble inerte DCO Soluble inerte SUS = fUS.DCOT Mesure Commentaires (& hypothèses): SUS = DCOeffluent filtrée (× 90%) – or -1.5 mg (eff specifier) – Ressort par l’effluent – Pas de DCO soluble biodégradable résiduelle dans l’effluent (ou considérée = 10%) – Pas de production de DCO non biodégradable dans le système Fractionnement des ERU - 4 BioWin – Formation de 2 jours DCO Soluble inerte DCO Particulaire inerte Remarques Xi = fUP.DCOT = (SUP Xi) • Fraction fUS plus élevée pour les eaux primaires que pour les eaux brutes • Varitions journalières DCO Particulaire inerte Mesure/estimation Calage sur les MVS observées par ajustement itératif de fUP Soit XMVS : quantité de MVS (en g/m3) produite pdt un âge de boue θx par une charge Q.DCOT (gDCO/d) dans un volume V (m3) X VSS Q CODT X (1 f US f UP )YHET (1 fb HET X ) f UP f CV V 1 bHET X Commentaires: – Accumulation dans le système – Sort par (1) extraction, (2) effluent – Proportion croissante des MVS lorsque l’âge de boue augmente DCO Particulaire inerte Impact de l’âge de boue 12 10 Temps de rétention hydraulique de 6hrs DCOT ERU = 500 g/m3 MVS boue (g/L) • Filtration 0.45µm 8 A=5d 6 A = 10 d A = 15 d 4 A = 20 d 2 0 0 L’âge de boue du système doit être connu avec précision! 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 Fup Fractionnement des ERU - 5 BioWin – Formation de 2 jours DCO Particulaire inerte DCO Particulaire inerte Remarques Remarques (suite) • L’âge de boue est le paramètre clé Deux indicateurs • Souvent mal défini sur sites réels • Etude pilote suggérée • Ratio DCO/DBO5 ERU • La mesure de la respiration permet une bonne vérificaiton du résultat • Augmentation de fUP – Ratio élevé => Fup élevé • Ratio MVS/MES boues – Ratio élevé => Fup élevé • Augmentation des MVS • Diminution de la respiration • fUP plus faible pour effluents primaires que pour ERU brutes DCO Particulaire inerte Exemple de résultat Valeur observée MVS (mg/L) Brutes Primaires DCO/cDBO5 ERU 2.0 – 2.5 1.9 – 2.0 MVS/MES boues 0.75 0.83 DCO facilement biodégradable Retenu : 0.18 SBS = fBS.DCOT Valeurs obtenues avec différents fUP Paramètre Type d’eaux usées 0.10 0.15 0.20 0.25 1784 1478 1613 1748 1883 TUO (mg/L/h) 24.1 28.5 27.2 25.8 24.4 NO3 (mgN/L) 25.2 26.3 25.6 25.0 24.3 SBS = SBSA + SBSC SBSA = fAC.SBS SBSC =(1 - fAC).SBS Avec fAC = fraction d’AGV (VFA) de la DCO facilement biodégradable Fractionnement des ERU - 6 BioWin – Formation de 2 jours DCO facilement biodégradable DCO facilement biodégradable Mesures Mesure par respirométrie « Bioassay » Physico-chimique Alimentation continue/discontinue Floculation - Filtration Mélange d’eaux usées et de liqueur mixte (non bioP) avec suivi de la respiration 45 Batch aérobie (respirométrie) Batch anoxie ? TUO : taux d’utilisation d’O2 = OUR : Oxygen Uptake rate Autres ??? TOU mg/L/h 40 35 30 25 20 15 10 5 0 0 DCO facilement biodégradable 40 50 Temps (min) 60 70 80 TOU mg/L/h M0= 10 et 11 mgO2/L Aire = M0 mgO2/L 45 35 30 TOU mg/L/h TOU mg/L/h 30 Exemples 40 VLM : Volume de liqueur mixte VERU : Volume d’eaux usées 20 DCO facilement biodégradable Mesure par respirométrie Calcul 10 25 20 15 Temps (h) 10 5 0 0 10 20 30 40 50 Temps (min) 60 70 80 Temps (min) Fractionnement des ERU - 7 BioWin – Formation de 2 jours DCO facilement biodégradable Mesure par filtration floculation Fraction d’AGV (fAC) de SBS SBS + SUS + XSC + XSP + Xi Sources – Fermentation dans le système de collecte – Fermentation dans le décanteur primaire – Fermenteurs de la step Echantillon brut Filtration Fibre de verre (1.2 µm) SBS + SUS + XSC Filtrat 1 Floculation Mesure – Chromatographie gazeuse – Chromatographie ionique Filtration Membrane (0.45 µm) SBS + SUS Mesure par filtration floculation SBS + SUS + XSC + XSP + Xi Estimée par différence Fibre de verre (1.2 µm) SBS + SUS + XSC DCO lentement biodégradable Echantillon brut P Filtration Filtrat 2 : DCOff XS Filtrat 1 Floculation Filtration DCOT = SBS + SUS + Xi + XSP + XSC Membrane (0.45 µm) SBS + SUS Filtrat 2 : DCOff SBS (SBS SUS ) - SUS DCOffEau usée - DCOsEffluent f BS S BS DCOt Difficultés possibles avec la flocculation: Importance d’utiliser le flocculant adapté (sulfate de zinc). La capacité d’apsorbtion de certains peuvent retenir une partie de la DCO soluble. Alternative : ultrafiltration XSP + XSC = (1- fBS + fUS + fUP )DCOT Fractionnement des ERU - 8 BioWin – Formation de 2 jours DCO lentement biodégradable DCO biomasse ERU Fraction particulaire vs colloïdale SBS + SUS + XSC + XSP + Xi Echantillon brut Filtration Fibre de verre (1.2 µm) XS = XSP + XSC SBS + SUS + XSC Filtrat 1 Floculation XSP = fXSP.XS Filtration Membrane (0.45 µm) Filtrat 2 : DCOff SBS + SUS XSC = DCOS - DCOff f XSP 1 DCOT = SBS + SUS + Xi + XSC + XSP + XB Peut être associé à XSP Mesure • Wentzel et al. (1995) • Aération de l’eau usée (sans ajout de liqueur mixte) et suivi de la respiration (TUO) pour une période de 10 à 24 h X SC XS Eviter les transferts d’O2 par la surface qui conduisent à des respirations plus faibles (donc faussées) DCO biomasse ERU Mesure de la biomasse dans l’eau usée - TUO DCO biomasse ERU Mesure de la DCO biomasse dans l’eau usée 10 9 12 7 10 6 5 4 3 2 1 0 0 2 4 6 8 10 12 Temps (h) 14 16 18 20 Avec TUO(0) = 2 mg/L/h YHET= 0.666 gDCO/gDCO bHET=0.24 /d µHET = 3.2 /d XHET(0) = 18 mgDCO/L TUO mg02/L/h TUO mg02/L/h 8 8 6 4 2 0 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Temps (h) Fractionnement des ERU - 9 BioWin – Formation de 2 jours Fractionnement de la DCO Fractionnement de la DCO Ordres de grandeur courants Ordres de grandeur courants Soit une ERU avec une DCO totale de 500 mg/L Caractéristiques des eaux usées Brutes (mg/L) Primaires (mg/L) Facilement biodégradable 25 - 125 25 – 125 Non-biodégradable soluble 20 - 50 20 – 60 Non-biodégradable particulaire 35 - 110 Lentement biodégradable Caractéristiques des eaux usées Brutes Primaires fBS 0.05 – 0.25 0.08 – 0.35 fUS 0.04 – 0.10 0.05 – 0.20 10 – 45 fUP 0.07 – 0.22 0.03 – 0.12 200 - 400 150 – 250 fXSP 0.70 – 0.80 0.50 – 0.65 DCO biomasse 0 – 15 (co-décantation??) DCO Biomasse 0.00 – 0.03 ? (co-décant.??) AGV (VFA) en HAc 5 – 15 ? AGV (VFA) en HAc 5 – 15 mg/L 5 - 15 mg/L Fractionnement de l’azote Azote Total Fractionnement des eaux usées I – Fractionnement de la DCO II – Fractionnement de l’azote III – Autres composés des ERU Azote ammoniacal Nitrites and nitrates Azote organique Biodégradable Soluble Particulaire Inerte Soluble Biodégradable Fractionnement des ERU - 10 BioWin – Formation de 2 jours Fractionnement de l’azote Fractionnement de l’azote NTKT = N-NH3 + NUS + XIN + NOS + XON Nitrites + Nitrates N-NH3 = fNA.NTKT Azote ammoniacal NTK Biodégradable Inerte NT Soluble Particulaire Soluble Particulaire Mesure des fractions de l’azote Azote ammonical Analyse directe XIN = fUPN.SUP = fUPN.fUP.DCOT Mesure des fractions de l’azote Azote organique inerte - soluble Analyse à partir de l’effluent NTKeffluent,filtré = N-NH3 + NOS + NUS N-NH3 = fNA.NTKT 𝑓𝑁𝐴 NUS = fNUS.NTKT 𝑁 − 𝑁𝐻3,𝐸𝑅𝑈 = 𝑁𝑇𝐾𝐸𝑅𝑈 Si la nitrification est complète, généralement : NTKeffluent,filtré = 0.5 mgN/L N-NH3 = 0.1 mgN/L NOS = 0.4 mgN/L NUS = 0.0 mgN/L Fractionnement des ERU - 11 BioWin – Formation de 2 jours Mesure des fractions de l’azote Azote organique inerte - particulaire Pas de méthode pour distinguer biodégradable et inerte dans le NTK particulaire de l’eau usée •Une hypothèse nécessaire pour estimer XIN La fraction d’azote de la DCO particulaire non biodégradable de l’eau usée est la même dans la liqueur mixtes 𝑓𝑁𝑈𝑃 𝑓𝑁𝑈𝑃 𝑋𝐼𝑁 = 𝑆𝑈𝑃 𝑁𝑇𝐾𝑀𝐸𝑆 𝑏𝑜𝑢𝑒𝑠 𝑚𝑔𝑁 ≈ (≈ 0.007 ) 𝐷𝐶𝑂𝑏𝑜𝑢𝑒𝑠 𝑚𝑔𝐷𝐶𝑂 XIN = fUPN.SUP = fUPN.fUP.DCOT Mesure des fractions de l’azote Azote organique biodégradable - Soluble NOS = NTKfiltré – N-NH3 - NUS Dans biowin fNOX = Fraction particulaire de l’azote organique ERU 𝑓𝑁𝑂𝑋 𝑋𝑂𝑁 = 𝑋𝑂𝑁 + 𝑁𝑂𝑆 Mesure des fractions de l’azote Azote organique biodégradable - particulaire × × × NTKT = N-NH3 + NUS + XIN + NOS + XON NTKfiltré = N-NH3 + NOS + NUS NTK = NTKfiltré + XIN + XON XON ≈ NTK - NTKfiltré - 0.07×SUP Ordres de grandeur fractions N Azote organique biodégradable - Soluble Hypothèse TKN = 40 mgN/L Caractéristiques ERU Brutes (mg/L) Primaires (mg/L) Azote ammoniacal 20 - 30 20 - 30 Non biodégradable soluble 0-2 0-2 Non biodégradable particulaire 2 - 10 1-5 Biodégradable particulaire 0-5 0-2 Biodégradable Soluble 0-5 0-2 fNA 0.50 – 0.75 0.60 – 0.85 fNUS 0.00 – 0.03 0.00 – 0.05 fUPN 0.07 0.07 Fractionnement des ERU - 12 BioWin – Formation de 2 jours Autres composés des ERU Fractionnement des eaux usées I – Fractionnement de la DCO II – Fractionnement de l’azote III – Autres composés des ERU Autres composés des ERU Phosphore Phosphore Matières minérales Ca, Mg, alcalinité Autres composés des ERU Phosphore – Quantification des fractions Phosphore Total Beaucoup de modèles ne considérent que les phosphates (P-PO4) Biodégradable Soluble Dans BioWin : Phosphore organique Orthophosphates Particulaire 𝑓𝑃𝑂4 = Inerte Soluble 𝑃𝑇 = 𝑃 − 𝑃𝑂4 + 𝑋𝐼𝑃 + 𝑋𝑂𝑃 Particulaire 𝑃 − 𝑃𝑂4 𝑃𝑇 𝑋𝐼𝑃 = 𝑓𝑢𝑝𝑝 × 𝑆𝑈𝑃 = 𝑓𝑢𝑝𝑝 × 𝑓𝑈𝑃 𝐷𝐶𝑂𝑇 𝑋𝑂𝑃 = 𝑃𝑇−P-PO4 − 𝑋𝐼𝑃 Fractionnement des ERU - 13 BioWin – Formation de 2 jours Autres composés des ERU Phosphore – Quantification des fractions Autres composés des ERU Matières minérales (inorganiques) en suspension Besoin d’une évaluation plus rigoureuse ? S’accumlent dans la liqueur mixte Phosphore soluble non réactif Impactent la taille des ouvrages et la gestion des solides Modélisation de la fermentation dans les clarificateurs primaires Mesure : MMS = MES - MVS Valeurs Typiques ERU brute Primaire MMS (mg/L) 25 - 45 10 - 25 Fractionnement des ERU - 14 BioWin – Formation de 2 jours Outline 1. Introductory – Phase separation in BioWin – the basics Phase separation in BioWin Course in Bordeaux 2. Advanced – Flux theory – Dynamic modelling of clarifiers Settling simplified... Phase separation in BioWin • • • • Primary and final settlers, SBRs Thickeners Sludge dewatering (GBT, centrifuge, etc.) Filters – Deep bed (sandfilter), membrane, microscreen • Grit tanks, cyclones Phase Separation - 1 BioWin – Formation de 2 jours Phase separation in BioWin Three types of models available 1. Point separator – Volumeless (V=0) – Percent solids removal 2. Ideal settler (primary and final)* – Percent solids removal – Fixed sludge blanket 3. Model settler (1-D)* Phase separation in BioWin In Version 3.1 • Fast SBRs • Membrane bioreactors • Micro-screens (XI removal) • Cyclones (ISS removal) – Modified Vesilind – Double Exponential – Several settling parameters * With or without biological reactions Simple Solids/Liquid Separators • Percent solids removal – Primary ≈ 65% – Final ≈ 99.8 % – Membrane ≈ 100% – Thickener ≈ 85 – 95 % – Centrifuge solids capture ≈ 90% – Sand filter ≈ 70% • Calculated on mass flow basis • Difference provides effluent solids Flux-based settlers • Two 1-D models available – Modified Vesilind (default) – Double Exponential • • • • Hydraulics Hindered, zone and flocculent settling Model parameters Calibration procedures Phase Separation - 2 BioWin – Formation de 2 jours Flux-based settlers Flux-based settlers – 1D • “Predict” effluent solids – Effluent quality – SRT Effluent • Predict RAS concentration – SRT (through wastage) – Biomass distribution • Predict sludge blanket (solids profile) – Biomass distribution Flux-based settlers – 1D RAS MLSS Flux-based settlers • Mass balance on each layer Quantify movement of solids between layers Divide settler into layers • Bulk movement • Gravity settling flux • Boundary conditions Phase Separation - 3 BioWin – Formation de 2 jours Vesilind settling function Vesilind settling function • Zone settling velocity test (SZSV) vs = vs - settling velocity – Repeat on a range of MLSS . v0.e-phin X 0.6 Level of interface (m) 0.5 [m/h] Concentration higher in this direction 0.4 0.3 0.2 0.1 0.0 X – solids concentration [g/L] 00 10 20 30 40 50 60 Time (min) Vesilind settling function Modified Vesilind model • Fit 2 parameters (or semi-log plot linearization) • Settler model includes zone settling velocity parameters (VO and phin) • Experimental effort • To avoid effort these are sometimes linked to traditional settleability tests (SVI, etc.) 20.0 Vs [m/h] 15.0 vs = 18.2e-0.36*MLSS 10.0 R2 = 0.999 5.0 0.0 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 10000 MLSS (mg/L) Phase Separation - 4 BioWin – Formation de 2 jours SVI SVI • 30-minute settled volume • Divide by MLSS • SVI = ml/g • Correlations for zone settling velocity parameters VO = f(SVI,DSVI,SSVI3.5) phin = f(SVI,DSVI,SSVI3.5) INTERFACE HEIGHT Avoid experimental effort, but….. 30 TIME (min) SVI Mass balance constraint • Limitations SV30=1000 ml SVI (ml/g) – SVI changes with column height – SVI changes with concentration – Use correlations for VO and phin with caution! QI + QR X0 XE 0 SV30=250 ml QR INITIAL X (g/l) R 1 R XR X0 R QR QI Phase Separation - 5 BioWin – Formation de 2 jours Mass balance constraint Mass balance constraint Underflow concentration, XR for X0 =2500 mg/l R (%) Thickening Factor 1 R R Underflow TSS (mg/l) Modified Vesilind model – includes a maximum solids compactibility (XM) parameter to limit the underflow concentration 1 R XR X0 R 100 2 5,000 50 3 7,500 25 5 12,500 10 11 27,500 Maximum solids compactibility, XM Clarification • Flux theory and zone settling Clarification Modified Vesilind approach Thickening What about clarification and effluent solids? VS Various empirical approaches • • • Non-settleable solids fraction Pflanz model “Switch off” settling at low solids concentration X VS V0 e phin X K X C X Phase Separation - 6 BioWin – Formation de 2 jours Clarification Biological reactions in sludge blanket • Clarification switch, KC • Use reactions in settler if: Switching function to reduce settling velocity at low solids concentration X VS V0 e Phin X KC X If X large X 1 KC X If X small X 0 KC X – Settler contains significant mass fraction – In final settlers: K C 20 - 200 mg/L 1 • Denitrification occurs (nitrate) • P release occurs (ortho-phosphate) – In primary settlers: X KC X 0 • Fermentation occurs (VFA) • TKN hydrolysis occurs (ammonia) KC X Summary •Start simple with ideal settler •Use model settler if necessary – changes in effluent solids, sludge blanket – changes in mass stored in settler •Calibrate Vesilind settling model parameters – Maximum compactibility (XM) – Zone settling parameters (VO and K) – Clarification switch (KC) •Use biological reactions if necessary •Advanced course – State Point Analysis and the Double exponential model Summary Typical Modified Vesilind default parameters Parameter Unit Normal Bulking Old sludge sludge sludge KC mg/l 100 20 200 phin l/g 0.4 0.6 0.25 Vo m/d 170 130 200 XM mg/l 15 000 7 000 20 000 Phase Separation - 7 BioWin – Formation de 2 jours Outline Example Settler model in BioWin 1. Introductory Waste sludge Influent – Phase separation in BioWin – the basics Bioreactor Effluent 2. Advanced – Flux theory – Dynamic modelling of clarifiers State Point Analysis Solids flux State Point Diagram 10 Flux Flux (kg/m2/h) 8 kg _____ m2.h 6 4 2 0 0 2 4 6 8 10 12 14 Solids concentration (kg/m3) Overflow flux kg/m2/h Underflow line kg/m2/h Settling flux kg/m2/h MLSS kg/m3 Phase Separation - 8 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Measures of sludge settleability ZSV Zone Settling Velocity Functions of the secondary settling tank Interface subsidence rate in m/h Standard: stirred (SZSV) – Clarification – Thickening – Sludge storage Measures of sludge settleability Flux theory ZSV Zone Settling Velocity • • • • • • Interface subsidence rate in m/h Standard: stirred (SZSV) 60 Level of interface (cm) Linear section 50 40 30 20 Zone settling velocity test Settling types Vesilind settling function Gravity, bulk and total flux curves Solids handling criteria State Point Analysis 10 0 00 10 20 30 40 50 60 Time (min) Phase Separation - 9 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Symbols used – Lag phase – Linear phase – Compression phase (m3/h) Q q X j v A Flow Flow rate, Q/A (m/h) Solids concentration (kg/m3) Flux (kg/m2/h) Velocity (m/h) Area (m2) 60 Linear section Level of interface (cm) • • • • • • Zone settling velocity test 50 40 30 20 10 0 00 10 20 30 40 50 60 Time (min) Flux theory Flux theory Zone settling velocity test Zone settling velocity test – Repeat on range of MLSS – Repeat on range of MLSS too low too high 0.6 0.6 0.5 Concentration higher in this direction Level of interface (m) Level of interface (m) 0.5 0.4 0.3 0.2 Concentration higher in this direction 0.4 0.3 0.2 0.1 0.1 0.0 00 10 20 30 40 50 60 Time (min) 0.0 00 10 20 30 40 50 60 Time (min) Phase Separation - 10 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Settling types Vesilind settling function – Discrete – Flocculent – Read SZSV test slopes 0.6 • Hindered (zone) • Compression Clear supernatant - Discrete MLSS - Zone settling Transitional Level of interface (m) 0.5 Concentration – Settling region Concentration higher in this direction 0.4 0.3 0.2 0.1 Sludge - Compression 0.0 00 Stages: 1 2 3 4 10 20 30 40 50 60 Time (min) Flux theory Flux theory Vesilind settling function Vesilind settling function - form 20.0 . vs - settling velocity Vs [m/h] 15.0 vs = 18.2e-0.36*MLSS 10.0 R2 = 0.999 vs = v0.e-phin X [m/h] 5.0 0.0 0 1000 2000 3000 4000 5000 MLSS (mg/L) 6000 7000 8000 9000 10000 X – solids concentration [g/L] Phase Separation - 11 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Vesilind settling function - parameters Vesilind settling function - parameters . vs - settling velocity vs = v0.e-phin X . vs = v0.e-phin X vs - settling velocity [m/h] [m/h] X – solids concentration [g/L] X – solids concentration [g/L] Flux theory Vesilind settling function - parameters Flux theory Vesilind settling function - evaluation 20.0 vs = 15.0 Vs [m/h] vs - settling velocity . v0.e-phin X vs = 18.2e-0.36*MLSS 10.0 R2 = 0.999 [m/h] 5.0 0.0 0 X – solids concentration [g/L] 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 10000 MLSS (mg/L) Phase Separation - 12 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Vesilind settling function - evaluation Gravity flux curve • JS = vS.X [kg/m2/h] 3.0 Gravity flux 30 25 ln(Vs) =2.82 - 0.36*MLSS Gravity flux (kg/m2/h) Ln(Vs) 2.0 R2 = 0.990 1.0 0.0 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 20 15 10 9000 5 -1.0 0 0 MLSS (mg/L) 3 6 9 12 15 12 15 Concentration (kg/m3) Flux theory Flux theory Bulk flux curve Total flux curve Q • JB = __R. X [kg/m2/h] A • JT = JB+JS [kg/m2/h] Bulk flux Total flux 30 30 Total flux (kg/m2/h) Bulk flux (kg/m2/h) 25 20 15 10 20 Gravity flux 10 5 Bulk flux 0 0 0 3 6 9 Concentration (kg/m3) 12 15 0 3 6 9 Concentration (kg/m3) Phase Separation - 13 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Total flux curve – limiting flux Total flux curve – limiting flux • JL = JT @ XL [kg/m2/h] • JL = JT @ XL [kg/m2/h] • Total applied flux cannot be larger Total flux Total flux (kg/m2/h) 30 QI+QR . 2 • Total applied flux: JAP = _______ A X [kg/m /h] Minimum flux 20 • JAP also called solids loading rate, SLR 10 Limiting concentration, X L 0 0 3 6 9 12 15 Concentration (kg/m3) A • Surface overflow rate, SOR: qI = ___ [m/h] QI • Flux theory Flux theory Solids handling criteria • Underflow QR<QR,crit Solids handling criteria • Underflow QR=QR,crit Total flux Total flux 30 Total flux (kg/m2/h) Total flux (kg/m2/h) 30 Minimum flux 20 10 20 10 Lowest limiting concentration, X L,min Limiting concentration, X L 0 0 0 3 6 9 Concentration (kg/m3) 12 15 0 3 6 9 12 15 Concentration (kg/m3) Phase Separation - 14 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Solids handling criteria Solids handling criterion • Underflow QR>QR,crit • SHC I if underflow QR<QR,crit Total flux • JAP must be less than JL • If JAP=JL, loading is critical 30 Total flux 30 20 Total flux (kg/m2/h) Total flux (kg/m2/h) 40 10 Minimum flux 20 10 0 0 3 6 9 12 15 Limiting concentration, X L 0 Concentration (kg/m3) 0 3 6 9 12 15 Concentration (kg/m3) Flux theory Flux theory Solids handling criterion II State Point Analysis (SPA) • SHC II if underflow QR>QR,crit • JI must be less than JS, or: • QI/A must be less than vS @ MLSS Simplifications – based on steady-state conditions – only one (vertical) dimension is considered – compression is not considered – effluent solids is neglected Total flux Total flux (kg/m2/h) 40 30 20 10 0 0 3 6 9 12 15 Concentration (kg/m3) Phase Separation - 15 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory State Point Analysis - fluxes State Point Analysis State Point Diagram 20 Gravity flux Up Flux (kg/m2/h) 15 Down Overflow line Underflow line 10 5 Feed concentration 0 0 3 6 9 12 15 Solids concentration (kg/m 3) Flux theory State Point Analysis Flux theory State Point Diagram State point – Operating point of the clarifier, overflow flux at feed concentration 20 jAP • XF – Feed concentration (kg/m3) • XR – Recycle concentration (kg/m3) • XL – Limiting concentration, (kg/m3) Flux (kg/m2/h) 15 State Point jR 10 -qR XL jI 5 qI XF XR 0 0 3 6 9 Solids concentration (kg/m 3) 12 15 • qI • qR – Hydraulic loading or overflow rate, QI/A, (m/h) – Hydraulic underflow rate, QR/A, (m/h) • jI • jR • jAP – Overflow rate flux, QI/A*MLSS (kg/m2/h) – Underflow rate flux, QR/A*MLSS (kg/m2/h) – Total applied flux, (QI+QR)/A*MLSS (kg/m2/h) Phase Separation - 16 BioWin – Formation de 2 jours Flux theory Flux theory Nine possible conditions Two criteria: – SHC I – is the underflow line tangential to the gravity flux curve? – SHC II – is the State Point above the gravity flux curve? State Point Diagram 20 jAP Flux (kg/m2/h) 15 State Point jR 10 -qR XL jI 5 qI XF XR 0 0 3 6 9 12 15 Solids concentration (kg/m 3) Further reading Double exponential model in BioWin Modifications/additions to flux theory • Stable blanket: Implement minimum of fluxes (no maximum compactibility required) • Effluent solids: Slow down Vesilind settling velocity at low concentrations (second exponential) • Number of layers – important • “General” settling model Phase Separation - 17 BioWin – Formation de 2 jours Double exponential model Double exponential model Max. settling velocity Settling regions 180 Settling Velocity s = oe-rhin*X - oe-rfloc*X Max s s = oe-rh*X - oe-rf*X 160 140 Settling Velocity (m/d) o 120 100 80 60 40 20 I III IV 0 0 II Xmin 1,000 2,000 Concentration 3,000 4,000 5,000 6,000 7,000 8,000 9,000 10,000 Solids Concentration (mg/L) Vo=150 Double exponential model Vo=200 Vo=250 Double exponential model Hindered settling parameter Flocculent settling parameter 180 s = oe-rh*X - oe-rf*X 140 120 100 80 60 160 Settling Velocity (m/d) Settling Velocity (m/d) s = oe-rh*X - oe-rf*X 180 160 140 120 100 80 60 40 40 20 20 0 0 0 0 1,000 2,000 3,000 4,000 5,000 6,000 7,000 rfloc = 3e-03 9,000 2,000 4,000 6,000 8,000 10,000 10,000 Solids Concentration (mg/L) Solids Concentration (mg/L) rfloc = 1e-03 8,000 rfloc = 5e-03 rhind = 1e-04 rhind = 3e-04 rhind = 5e-04 Phase Separation - 18 BioWin – Formation de 2 jours Profiles in flux models Default dbexp model parameters Solids profile 0 1 2 3 LAYERS • Double exponential Double exponential parameters Unit Normal sludge Bulking sludge Old sludge Maximum Vesilind settling velocity (Vo) m/d 410 250 410 Maximum (practical) settling velocity (Vo') m/d 270 200 270 Hindered zone settling parameter (Kh) L/g 0.4 0.6 0.2 Flocculent zone settling parameter (Kf) L/g 2.5 3.0 1.5 mg/L 20 10 30 - 0.001 0.001 0.002 4 5 6 7 8 9 10 0 2,000 4,000 6,000 8,000 10,000 12,000 14,000 CONCENTRATION Solids profile 0 • Modified Vesilind 1 2 LAYERS 3 4 5 Maximum non-settleable TSS 6 7 8 9 Non-settleable fraction 10 0 2,000 4,000 6,000 8,000 10,000 12,000 14,000 CONCENTRATION Default dbexp model parameters Double exponential parameters Maximum Vesilind settling velocity (Vo) Maximum (practical) settling velocity (Vo') Hindered zone settling parameter (Kh) Flocculent zone settling parameter (Kf) Maximum non-settleable TSS Non-settleable fraction Specified concentration for height calculation (for sludge blanket height) Unit Final clarifier Primary clarifier Gravity thickener m/d 410 220 410 m/d 270 220 270 l/g 0.4 0.4 0.4 l/g 2.5 1.0 0.55 mg/l 20 20 20 - 0.001 0.99 0.001 mg/l 2500 3000 5000 Examples • • • • Ideal or model clarifier Step-feed example Primary clarifier modelling Storm flow Phase Separation - 19 BioWin – Formation de 2 jours Example - Ideal or model clarifier Example – Step feed (in cabinet) Influe nt T a nk 1 T a nk 2 T a nk 3 Efflue nt Sludge Example - Model primary Influent Example - Storm flow Ideal Effluent Ideal Sludge Model Effluent Model Sludge Phase Separation - 20 BioWin – Formation de 2 jours Plan – Pourquoi estimer KLa ? – Recherches associées – Approches pour l’estimation du KLa – KLa dans les application de la modélisation Modélisation de l’aération Systèmes d’aération par diffuseurs Cours à Bordeaux Du 25.11.08 Dold P L and P M Fairlamb (2001). Estimating oxygen transfer KLa, SOTE and air flow requirements in fine bubble diffused air systems. Proc. 74ndAnnual Conference of the Water Environment Federation, Atlanta (October). Dimensionnement des systèmes d’aération – Pourquoi estimer KLa ? – Recherches associées – Approches pour l’estimation du KLa – KLa dans les application de la modélisation • • • • Profondeurs et surfaces Densités des diffuseurs Débit d’air requis Débit par diffuseur •Variation de la demande en oxygène dans le temps •Variation spatiale de la D.O. Aération - 1 BioWin – Formation de 2 jours Simulation du process Simulation du process Quantification des variations de la demande en O2 Quantification des variations de la demande en O2 – dans le temps – dans l’espace Simulation du process Quantification des débits d’air requis dans le temps – dans le temps – dans l’espace Simulation du process Ces quantifications permettent une évaluation : – – – – de la densité des diffuseurs de la profondeur des bassins d’aération des besoins en débit d’air de la gestion de la gestion • Age boue • Température • Consigne en 02 – débits d’air par diffuseurs Aération - 2 BioWin – Formation de 2 jours Objectif Objectif Données de performances des diffuseurs Modèle de boues activées •Abatt. du carbone •Nitrification •Respiration Endogène Rdt d’oxygènation standard : ROs (20°C, 1 atm, %m profondeur) OUR Volumes bassins Débits Le modèle doit prendre en compte : • • Ajuster KLa La baisse du ROs avec l’augmentation de Qair L’impact de la densité des diffuseurs Besoins AH AH = Apport horaire (kg/hr) AH F K L a20 T 20 C* C V α Recherche Quelles sont les variations de KLa avec : – Pourquoi estimer KLa ? – Recherches associées – Approches pour l’estimation du KLa – KLa dans les application de la modélisation Le débit d’air, La profondeur du bassin, Le type de diffuseur, La densité des diffuseurs? Aération - 3 BioWin – Formation de 2 jours Recherche Recherche Laboratoire : Mesure de KLa Test en eau claire avec variation du débit d’air Laboratoire : Mesure de KLa Test en eau claire avec variation du débit d’air 3 8 1 6 4 0 0 5 10 15 20 -1 2 C : Oxygène (mg/L) 10 y = -0.328x + 2.2056 R² = 0.9956 2 Cs ln(Cs-C) C : Oxygène (mg/L) 10 Cs 8 6 4 2 -2 0 0 0 5 10 15 20 25 0 -3 5 Temps (min) Temps (min) 10 15 20 25 Temps (min) Recherche Recherche Laboratoire : Mesure de KLa Test en eau claire avec variation du débit d’air Laboratoire : Taille des bulles Test en eau claire avec variation du débit d’air 3 Répartition selon la taille des bulles y = -0.328x + 2.2056 R² = 0.9956 16 14 Identification : KLa = 1/0.328 = 3.05 /min ln(Cs-C) 1 0 0 5 10 15 -1 20 25 % de bulles 2 12 10 At 8 6 4 2 -2 -3 0 Temps (min) Diamétres (mm) Aération - 4 BioWin – Formation de 2 jours Recherche Recherche Facteurs déterminants pour KLa Facteurs déterminants pour KLa L’augmentation du débit d’air Répartition selon la taille des bulles 16 % de bulles 14 12 QAIR 10 8 6 4 2 L’augmentation du débit d’air… conséquences : Taille des bulles Réparation de la taille des bulles Rétention de gaz par unité de volume Surface de transfert pour l’O2 La vélocité des bulles 0 Impact interactif sur KLa Diamétres (mm) Recherche Recherche Résultats Test en eau claire sur différents types de diffuseurs fines bulles – Profondeur des bassins – Densité des diffuseurs – Débit d’air par diffuseur Avec, Correspondance avec données réelles? USG = QAIR/Surface du bioréacteur (m3/m2/d) Aération - 5 BioWin – Formation de 2 jours Recherche Recherche Mesures de KLa en eau claire/Calcul avec USG Densité des diffuseurs Analyse de tests en eau claire avec diffuseurs fines bulles (séries de densités) 80 KLa20 /h C.(Usg)Y KLa20 (/h) 60 Y : Unique pour un type de diffuseur 40 20 C : varie avec la densité des diffuseurs 0 0 200 400 600 USG (m3/m2/d) 800 1000 1200 Recherche Recherche Densité des diffuseurs : DD (%) Densité des diffuseurs : DD (%) Analyse de tests en eau claire avec diffuseurs fines bulles (séries de densités) Analyse de tests en eau claire avec diffuseurs fines bulles (séries de densités) 80 8 DD = 25% /h 70 KLa20 (/h) Paramètre C (/d) 60 6 4 y = 2.5385x + 0.0838 R² = 0.9989 2 DD = 4% /h 50 40 30 Confirmation 20 C : varie avec la DD 10 Y : constant pour un type de diffuseur 0 0 0 0.5 1 1.5 (DD%)0.25 2 2.5 3 0 1 2 3 4 5 6 QAIR par diffuseur (m3/h/diffuseur) 7 8 Aération - 6 BioWin – Formation de 2 jours Calage Calage Application du modèle de KLa Estimation de α Mesures 10 ROs (%/m - SOTE) Avec, MO2 (ou WO2) : flux 02 Dans l’air insufflé (kgO2/h) Rappel : ROs = SOTE (standard oxygène transfert efficiency) % AHs (Apport Horaire en conditions std) = SOTR kg/hr Analyses Off-gas Techniques de désoxygènation (H202) DD = 25% DD = 4% 9 8 Simulation 7 Utilisation de données dynamiques sur l’aération 6 Note 5 α varie dans l’espace, dans le temps… 4 0 1 2 3 4 5 6 7 8 Débit d'air par diffuseur (m3/h/diffuseur) Application Adapter le débit d’air à la demande en O2 Densité des diffuseurs Profondeur du bassin En résumé… La modélisation du KLa nécessite une évaluation précise de La densité des diffuseurs La profondeur du bassin Des besoins en débit d’air L’impact des conditions de gestion Age de boue Température Consignes en 02 Vérification des facteurs tels que la « fourchette » de débits d’air par diffuseur Aération - 7 BioWin – Formation de 2 jours Outline Calibration Course in Bordeaux E n v i r o S i m A S S O C I A T E S L T D . Typical Project flow • • • • • Definition of Objectives Data collection, reconciliation Model setup Calibration/validation Project work Objectives of calibration Calibration procedures Common problems Calibration example (hands-on) Objectives of Calibration – Match model to as many signals as possible, well - NOT to one perfectly – Know the validity field of the model – Have an estimation of the expected accuracy Calage - 1 BioWin – Formation de 2 jours Objectives of Calibration Model Validity Field CONFIGURE MODEL • Assumptions inherent in models – SRT range (~3 to ~30 days) – Fixed hydraulics (N tanks) – Ideal mixing – Simplified chemistry GATHER DATA HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS CALIBRATE VERIFY APPLY Calibration Procedures • Calibration Protocols – WERF (USA, Australia) – BioMath (Belgium) – STOWA (Netherlands) – HSG (Austria, Germany) Tiered Approach • Four major calibration levels using: 1. 2. 3. 4. Defaults and assumptions only Historical data only On-site, full-scale tests Direct parameter measurements (influent, kinetics) Calage - 2 BioWin – Formation de 2 jours Tiered Approach Assumptions Only • 1. No data (greenfield site) 1. Assumptions only Very rough “calibration” 2. Historical data Crude calibration 3. Intensive monitoring Much better 4. Kinetic & stoich. info. Best – Use defaults and experience – Evaluate relative trends instead of absolute numbers – Ranges Instead of – Worst case scenarios safety factors Historical Data Historical Data GATHER DATA GATHER DATA HISTORICAL ON-SITE TESTS • 2. Historical data only – Sampling OK? – Missing information – Filter data – Independent checks – What can be extracted HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS MEASUREMENTS • • • • Sample location Mixing characteristics Sample preservation, processing Repeatability Calage - 3 BioWin – Formation de 2 jours Historical Data Historical Data GATHER DATA HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS 1. Filter data • Typically missing – CODs and fractions – Profiles in process – OURs – Diurnal, dynamic variation – Aeration parameters (alpha) – Sludge blanket • Suspect: wastage Historical Data 1. Filter data 2. Make clean steady-states (winter, summer, etc.) Data preparation steps 1. Filter data 2. Make clean steady-states (winter, summer, etc.) 3. Select periods with large dynamics (upsets, storms, operational changes, etc…), run dynamically 4. Run whole dataset Calage - 4 BioWin – Formation de 2 jours Historical Data • Establishing data quality – Use statistics – Strong checks (law of nature) Historical Data • Assessing validity of influent and wastewater characterization data – Considerable variation in concentration data (day-to-day, hour-to-hour) • Flow balances • Inert mass balances • Sustained rates – Often find consistency in ratios • COD/BOD5 – Engineering checks (typical behaviour) • Traditional design guidelines • Typical ratios • Typical yields • • • • Engineering checks • • (2.0 to 2.2 for raw influent) (1.9 to 2.1 for prim. effluent) NH4/TKN VSS/TSS Mixed liquor COD/VSS …… etc. Data Reconciliation Statistical technique to maximize information content in raw data Principle 1. Use statistical evaluation 2. Apply an independent check wherever possible b a Calage - 5 BioWin – Formation de 2 jours Data Reconciliation • Individual measurements • Straight averages Data Reconciliation • Error distribution a=4 a = 4 ± 2.5 b=8 b = 8 ± 0.5 b b a a Data Reconciliation • Independent check (strong) Data Reconciliation • Reconciled data a = 4 ± 2.5 b a a = 3.0 ± 2.5 b = 8 ± 0.5 b-a b = 8.2 ± 0.5 b-a b b-a = 5.2 b-a = 5.2 a Can have its own error Calage - 6 BioWin – Formation de 2 jours Historical Data Historical Data GATHER DATA • Suspect data HISTORICAL – Out of bounds – outliers – Too fast change (sudden breaks) (dynamic mass balance) – Absolutely flat data – Too noisy data – Persistent trends without apparent cause (increasing bias) Additional Monitoring ON-SITE TESTS MEASUREMENTS • What can be extracted – – – – Inert fraction from airflows and sludge production Half saturations from effluent levels Soluble fractions from settler influent/effluent Seasonally nitrifying plants – guess growth rate • What cannot be extracted – Maximum rates – capacity – Settling parameters – Any other model parameter Additional Monitoring GATHER DATA GATHER DATA HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS • 3. On-site tests – Additional composite samples – Stress tests HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS • Typical guide for plant characterization – Two-week monitoring • Wastewater, RAS, WAS flowrates • 24 hr composites of raw, primary effluent, final effluent (COD, BOD, TSS, VSS, TKN, NH3, TP, PO4) • Process MLSS and MLVSS – Diurnal grab sampling (two or more) Calage - 7 BioWin – Formation de 2 jours Additional Monitoring • Ultimate wish list – Proper fractions (COD, N) for all input streams (filtered, etc.) – TP (or Mg) in all influent, waste, effluent for inert check – Profiles (DO, NH3, NO3-, PO4-) – MLSS profile in step-feed – flow distribution – Typical diurnal variation of all variables – Extensively sampled high-flow events – Solids profile in settlers – Data for each process train Problems • Common problems – Knowing sludge inventory Additional Monitoring GATHER DATA HISTORICAL ON-SITE TESTS MEASUREMENTS • Specifically for BNR plants – COD and TKN fractions – Nitrification rate (A) Bench-scale SBR methodologies Problems • Knowing solids inventory is fundamental to simulator calibration Reflects sludge age • Mass of sludge in clarifier – Knowing sludge wastage • WAS flow measurement ? • WAS concentration ? – Sampling Sources of the problem • Not knowing sludge mass wastage • WAS flow measurement ? • WAS concentration ? • Influent • Process Calage - 8 BioWin – Formation de 2 jours Problems • Tracking sludge wastage (contd.) • Checking WAS – Underflow TSS vs time Problems – Cumulative ISS balance CUMULATIVE ISS LEAVING (1000 kg) 500 4000 RAS TSS (mg/L) 3000 2000 1000 Actual ISS Balance 400 300 200 Ideal ISS Balance 100 0 0 0 0 30 60 90 120 TIME (mins) • Sampling (1) Problems – Influent from unmixed influent channel 100 200 300 400 500 CUMULATIVE ISS ENTERING (1000 kg) • Sampling (2) Problems – Mixed liquor SS (autosampler) Sampler location ? Calage - 9 BioWin – Formation de 2 jours Problems Problems •Sampling (3) – Are the sample lines clean? • Sampling (2 contd.) – Mixed liquor SS (diurnal grab samples) Primary Effluent BOD CONCENTRATION (mg/L) 250 PE BOD 200 150 100 50 0 01-Jan 01-Feb 01-Mar 01-Apr 01-May 01-Jun 01-Jul 01-Aug 01-Sep 01-Oct 01-Nov 01-Dec 01-Jan TIME (days) Problems Problems • Process deficiencies • Process deficiencies (contd.) – Diurnal NH3 response – Diurnal NO3 response NITRATE (mg/L) Used to estimate nitrifier MAX AMMONIA (mg/L) 20 15 10 5 0 0 6 12 18 24 TIME (hours) 30 36 42 48 20 15 10 5 0 0 6 12 18 24 30 36 42 48 TIME (Hours) Calage - 10 BioWin – Formation de 2 jours Other famous problems • P in PO4, instead of P • COD test - Hg not added • Fully aerobic SBR with DO controller •Important: – – – – – – Summary Representative sampling Lab analysis Know plant operating conditions Plant measurements Diurnal variations Understand significance of model parameters “Simulation is a useful tool ….. but it’s no substitute for experience and the art of engineering”. Calage - 11 BioWin – Formation de 2 jours Fonctionnalités avancées de BioWin Module de contrôle de BioWin • Contrôleurs existants dans BioWin Le module de contrôle • Consigne en O2 • Répartition de débit (recyclages) • Extraction/Age de boue Solveur Fraction minérale de la biomasse Les options du modèle Les paramètres de l’aération Module de contrôle de BioWin Module de contrôle de BioWin • D’autres contrôles? • Types de contrôles • NO3 Effluent > Débit recyclage Liqueurs Mixtes • NH4+ Réacteur > Q air • NO3 Réacteur > M/A aération COM – M/A : valeur haute, valeur basse – M/A : valeur cible – Haut/Bas : valeur cible –P – PI – PID – Cascade • Outil de « tuning » Fonctionnalités Avancées - 1 BioWin – Formation de 2 jours Le Solveur de BioWin Le Solveur de BioWin • Réglages du solveur • Réglages du solveur – Hybrid – Ajustement DLS • Combinaison Newton+DLS • 5 à 12 itérations généralement • Nbreuses boucles • Réduire le pas initial (ex 5 -> 1) – DLS (RLD) – Std/Régime permanent en 2 étapes • Grands systèmes • Plusieurs clarificateurs • Ex : sans puis avec calcul du pH – Conservative settings (param. Sécuritaires) • Après 15 à 20 itérations sans diminution Fraction minérale de la Biomasse Fraction minérale de la Biomasse • Eau usée synthétique (->MMS = 0) : • Schéma Glucose MESLiqueurs mixtes > MVSLiqueurs mixtes ??? Sels dissous inorganiques biomasse MESLM –MVSLM = 9.18 mg/L DCObiomasse = Hetero+Auto+Réisdu endo = Zbh + Zaob + Znob + Ze = 149.84 mgDCO/L. MVSbiomasse = 1.42 x DCObiomasse = 105.52 mgMVS/L 8% MVSbiomass e 9.18 mg / L 1 - 8% ! Ash content = 0% dans les fichier < BioWin 3.0 Fonctionnalités Avancées - 2 BioWin – Formation de 2 jours Les options du modèle Les options du modèle USE BIOWIN INTEGRATED AS/AD MODEL : modèle par défaut BioWin APPLY PH LIMITATIONS IN AS KINETIC EQUATIONS : (toujours actif dans les digesteurs) USE PROJECT MODEL BUILDER : modèle complémentaire à BioWin ou autre modèle INCLUDE CHEMICAL PRECIPITATION REACTIONS FOR STRUVITE, HDP, HAP : digesteurs struvite (MgNH4PO4.6H2O) HAP (hydroxy-apatite – Ca5(PO4)2OH) HPC (hydroxy- phosphate (di)calcium – Ca2HPO4(OH)2) Le calcul du pH doit être actif USE OXYGEN MODELLING : OFF -> Réponse instantanée si changement consigne 02 INCLUDE METAL PRECIPITATION REACTIONS FOR METAL PHOSPHATES AND HYDROXIDES : Traitement physico-chimique du P. Le calcul du pH doit être actif. INCLUDE PH CALCULATION : sinon 7.0 (option indépendante pour les digesteurs) where V0 Les options du modèle Les paramètres de l’aération • Consigne en O2 – Kla « contrôlé » SETTLING MODEL (Clarificateur et SBR) Vesiling modifié Double expo K L a C U SG /jour Y • Air supply C k1 DD0.25 k2 – – – – – k1 k2 Y DD USG – QAIR = 2.5656 /day (défaut – grosses bulles : 0.05) = 0.0432 /day (défaut – grosses bulles : 0.38) = 0.82 (défaut – grosses bulles : 1.05) = couverture en diffuseurs (%) = Vélocité surfacique du gaz (m3/m2/jour) = QAIR / Aire du bioréacteur = Débit d’air (m3/day) Calcul de l’apport horaire AH F K L a20 T 20 C * C V Fonctionnalités Avancées - 3 BioWin – Formation de 2 jours Les paramètres de l’aération Les SBR dans BioWin (ou RBS !) SURFACE Permet de calculer Le nombre de rotors nécessaires Les SBR dans BioWin (ou RBS !) • Cas d’étude – gestion pour A = 20 jours • Pdt la phase mélangée (ex 15 min) • Và extraire/j= Vmoy / A » Ici : 0.8/20 = 0.04 mgal/j • Diviser par le nbre de cycles (4) • Diviser par le temps d’extraction Les SBR dans BioWin (ou RBS !) • Méthode modélisation « pseudo permanent » • 1) Simuler 1 journée : vérif fonctionnement • 2) Simuler 3/4 âges de boue : observer pseudo permanent • 3) Simuler à nouveau 1 journée : analyse résultats. » Soit Qextrac = 0.96 mgd Etape 2 : peut prendre un certains temps ! Fonctionnalités Avancées - 4 BioWin – Formation de 2 jours Les BRM/ MBR • Pas d’unité BRM dans BioWin -> Pas de modèle de colmatage! • -> Voir schémas exercices et classeur Fonctionnalités Avancées - 5