Guide du prélèvement - Laboratoires Biofusion

Transcription

Guide du prélèvement
Version – 2
Diffusé le 10/01/2014
I.
Site du Pont de Chaume – 43 rue des Arts 82000 Montauban
I.
II.
III.
INTRODUCTION
LES DIFFERENTS SITES DU LABORATOIRE BIOFUSION
LISTE DES ANALYSES - REFERENTIEL
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IV. MATERIEL FOURNI PAR LE LABORATOIRE
IV.1 - Boîte de prélèvements
IV.2 - Matériel pour prélèvements bactériologiques
IV.3 - Autre matériel
IV.4 - Péremption du matériel
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V.
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DOCUMENTS INDISPENSABLES
V.1 - L’ordonnance
V.2 - La prescription spécifique « groupe sanguin »
V.3 - La fiche de suivi médical
V.4 - Le consentement
V.5 - Examens hors nomenclature
VI.
IDENTIFICATION DE L’ECHANTILLON
VII. LE PRELEVEMENT SANGUIN
VII.1 - Aspect psychologique du prélèvement
VII.2 - La prise en charge du malaise vagal
VII.3 - Préparation du patient
VII.4 - Réalisation du prélèvement sanguin
VII.4 – a Prélèvement veineux
VII.4 – b Recommandations techniques
VII.4 – c Prélèvements à réaliser impérativement
au laboratoire
VII.5 - Prélèvements spécifiques
VII.5 – a Le patient porteur d’une fistule artério-veineuse
VII.5 – b Le patient perfusé
VII.5 – c Les hémocultures
VII.5 – d La gazométrie
VII.5 – e Le temps de saignement
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VIII. LE PRELEVEMENT BACTERIOLOGIQUE
VIII.1 - Instruction d’utilisation d’un écouvillon «eswab»
VIII.2 - Examen cytobactériologique des urines – ECBU
VIII.3 - Examen cytobactériologique des urines
chez les patients sondés
VIII.4 - Mise en place d’un collecteur pédiatrique
VIII.5 - Recueil des urines de 24 heures
VIII.6 - Compte d’ADDIS
VIII.7 - Recueil de selles
VIII.7 – a Coproculture
VIII.7 – b Parasitologie des selles
VIII.7 – c Scotch test ou test de Graham
VIII.8 - Prélèvement auriculaire - oreille
VIII.9 - Autres prélèvements ORL
VIII.9 - a Gorge
VIII.9 - b Fosses nasales
VIII.10 - Prélèvement oculaire
VIII.10 - a Conjonctive
VIII.10 - b Cornée
VIII.10 - c Liquide de lentilles
VIII.10 - d Blépharite
VIII.11 - Sécrétions broncho-pulmonaires – expectorations
VIII.12 - Prélèvement vaginal
VIII.13 - Prélèvement urétral
VIII.14 - Spermoculture
VIII.15 - Prélèvements peau- phanère
VIII.15 - a A visée bactériologique
VIII.15 - b A visée parasitologique et/ou mycologique
VIII.16 – Prélèvements particuliers
IX.
ACCEPTATION ET OU REFUS DE L’ECHANTILLON
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X.
HYGIENE ET SECURITE – TRAITEMENT DES DECHETS
X.1 - Hygiène des mains
X.2 - Utilisation des gants
X.3 - Conduite à tenir en cas d’AES
Accident d’exposition au sang
X.4 - Gestion des déchets
XI.
ACHEMINEMENT ET TRANSPORT DES ECHANTILLONS
XI.1 - Le transport vers le laboratoire
XI.2 - Les températures de transport des échantillons
sanguins
XI.3 – L’acheminement des échantillons
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XII.
TECHNIQUES UTILISEES
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XIII.
ANALYSES COMPLEMENTAIRES/STOCKAGE DES ECHANTILLONS 54
XIV.
EXAMENS URGENTS
54
ANNEXE 1 – PROTOCOLES DE TESTS DYNAMIQUES
A. Hélicobacter pylori (test respiratoire)
B.
HGPO
C. Pool de prolactine
D.
Test à la LH – RH
E. Test au TRH
F. Test au Synacthène Immédiat
G. Test au Dexaméthasone ou Dectancyl
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ANNEXE 2 – LISTE DES ANALYSES A TRAITER RAPIDEMENT
ANNEXE 3 – CONFIRMATION D’IDENTITE
ANNEXE 4 – REFERENTIEL DES ANALYSES
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I. INTRODUCTION
Le laboratoire Biofusion vous présente la 2ème version de son guide du prélèvement. Ce document élaboré afin de vous aider dans votre pratique
professionnelle s’inscrit dans la « démarche qualité » du Laboratoire de Biologie Médicale Biofusion.
L’objectif de ce document est d’expliciter le plus simplement possible et de façon exhaustive les différentes informations nécessaires à la phase
pré analytique selon les nouvelles exigences règlementaires (ordonnance 2010-49 du 13/01/2010).
Parmi ces exigences, et notamment celles de la norme NF EN ISO 15189, les conditions de réalisation et de transmission des prélèvements biologiques
constituent une étape importante impliquant une étroite collaboration entre les préleveurs et le laboratoire.
Le respect de ces exigences est essentiel pour garantir des résultats d’analyses fiables.
Votre implication et votre participation à cette étape pré analytique nous permettent d’améliorer ensemble le service rendu aux patients.
Nous restons à votre écoute pour toute remarque ou suggestion qui pourrait contribuer à améliorer notre démarche qualité et à faciliter notre
partenariat.
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II. LES DIFFERENTS SITES DU LABORATOIRE BIOFUSION
SITE BEAUMONT DE LOMAGNE
38 rue Pierre de Fermat
82500 BEAUMONT DE LOMAGNE
05 63 02 41 86
 05 63 02 41 98
SITE BRUGUIERES
89 Av de Toulouse
31160 BRUGUIERES
05 61 82 53 97
 05 61 82 54 34
SITE CAHORS
232 rue Joachin Murat
46000 CAHORS
05 65 35 83 33
 05 65 35 83 30
Horaires d’ouverture
Du lundi au vendredi :
7H 30 à 12H 30 et 14H 30 à 17H 00
Le samedi 8H 00 à 12H 30
7H 00 à 13H 00 et 14H 00 à 17H 30
SITE CATHEDRALE
1 pl. Franklin Roosevelt
82000 MONTAUBAN
05 63 66 63 63
 05 63 66 42 16
SITE CAUSSADE
4 rue de la Gare
82300 CAUSSADE
05 63 65 08 08
 05 63 65 08 16
7H 00 à 12H 30 et 14H 00 à 18H 30
7H 30 à 12H 00 et 14H 00 à 17H 00
7H 30 à 12H 30 et 14H 00 à 18H 00
4
SITE GARRISSON
5 bd Gustave Garrisson
82000 MONTAUBAN
05 63 20 18 80
 05 63 20 37 78
SITE GRENADE
2 av Président Kennedy
31330 GRENADE
05 61 82 62 33
 05 61 82 30 31
7H 30 à 13H 00
SITE GRISOLLES
10 rue Adrien Hébrard
82170 GRISOLLES
05 63 67 30 65
 05 63 67 33 50
7H 00 à 13H 00
Fermé le samedi
7H 00 à 13H 00 et 14H 00 à 18H 30
SITE MONTECH
27 av André Bonnet
82700 MONTECH
05 63 27 05 85
 05 63 27 05 80
SITE POMPONNE
ème
72 av. du 11 Régiment d’Infanterie
82000 MONTAUBAN
05 63 63 05 17
 05 63 63 75 51
7H 00 à 12H 30 et 14H 00 à 17H 30
Le samedi de 7H 00 à 12H 00
7H 30 à 13H 00
Fermé le samedi
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SITE PONT DE CHAUME
43 rue des Arts
82000 MONTAUBAN
 05 63 22 29 99
 05 63 22 29 61
7H 00 à 19H 00
Le samedi de 7H 30 à 16H 00
SITE SAINT JORY
1 rue Cabourdy
31790 ST JORY
05 61 37 96 00
 05 34 27 70 82
7H 00 à 13H 00
Fermé le samedi
SITE VILLEBOURBON
146 av Marceau Hamecher
82000 MONTAUBAN
05 63 91 04 25
 05 63 91 04 27
7H 00 à 13H 00
Fermé le samedi
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III. LISTE DES ANALYSES – REFERENTIEL
cf. annexe 4
IV. MATERIEL FOURNI PAR LE LABORATOIRE
IV.1 - Boîte de prélèvements
Le laboratoire met à disposition des préleveurs externes des boîtes rigides « triple emballage »
conformes à la réglementation ADR avec marquage UN3373.
Ces boîtes contiennent le matériel nécessaire au prélèvement sanguin.
Tubes : emballage primaire fermé, étanche, résistant à une pression de 95 kPa.
Aiguilles + corps de pompe.
Kit de désinfection (tampon alcoolisé, pansement, compresse ou boule de coton).
Capot transparent : emballage secondaire étanche, équipé de blocs absorbants, avec calage et
séparation des tubes en position debout.
Fiche de préconisation.
Fiche de suivi.
Une boîte = un patient
Ne jamais regrouper à l’intérieur d’une même boîte des échantillons de patients différents
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IV.2 - Matériel pour prélèvements bactériologiques
Flaconnage pour prélèvement d’urines : Ce flacon stérile peut être utilisé pour d’autres prélèvements
(sécrétions bronchiques, …).
Flaconnage pour prélèvement d’urines avec percuteur.
Flaconnage pour recueil de selles : coproculture, examen de parasitologie des selles.
Système «eswab» : milieu de transport qui maintient la viabilité des bactéries anaérobies et aérobies
48h à température ambiante.
Ecouvillons divers.
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IV.3 - Autres matériels
Flacon pour recueil urinaire de 24 heures.
Flacon pour recueil urinaire pour compte d’ADDIS.
Flacons pour hémocultures (1 flacon aérobie,1 flacon anaérobie, et 1 corps de pompe adapté,
1 ailette).
IV.4 - Péremption du matériel
La date de péremption du matériel est vérifiée à la sortie du laboratoire, il est toutefois conseillé de vérifier ces dates avant
utilisation du matériel (stock de tubes ou de flacons divers au cabinet du préleveur).
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V. DOCUMENTS INDISPENSABLES
V.1 - L’ordonnance
Certains éléments d’une prescription sont absolument indispensables :

L’identité du patient :
- Nom, nom de naissance, prénom et date de naissance.
- Pour les patients hospitalisés : identité du patient (ou étiquettes autocollantes), nom du service, n° de la chambre, date du prélèvement.

L’identité du médecin prescripteur :
- Nom, prénom, adresse, date de la prescription.
- Numéro d’inscription à l’ordre des médecins et signature.

La liste des analyses à réaliser.
V.2 - La prescription spécifique « groupe sanguin »
Il est nécessaire de noter tous les éléments cités au chapitre V.1 :

L’identité du patient :
- Pour les patients hospitalisés : identité du patient (ou étiquettes autocollantes) , nom du service, n° de la chambre, date du prélèvement.

L’identité du médecin prescripteur.
- Nom, prénom, adresse, date de la prescription.
- Numéro d’inscription à l’ordre des médecins et signature.

La demande de groupe sanguin.
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De plus les éléments ci-dessous sont indispensables :

la prescription comportera obligatoirement la retranscription des éléments ci -dessous vérifiés lors du prélèvement.
Le préleveur doit :
- mentionner sa propre identité
- cocher obligatoirement l’une des cases relatives à la réalisation ou l’absence de transfusion sur le patient dans les quatre derniers mois
®
- et renseigner sur une éventuelle injection d’anti-D (Rophylac ) durant les 4 derniers mois.
Si la prescription est associée à d’autres demandes, prévoir un tube réservé à la réalisation du groupe sanguin.
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V.3 - Fiche de suivi médical
À renseigner
impérativement
Toute ambiguïté sur
l’identification du
patient, toute fiche
de prélèvement
incomplète,
l’absence de
prescription
entraîne une nonconformité qui peut
aboutir à la non
réalisation des
analyses
Toute urgence médicalement justifiée doit être transmise au laboratoire dans les meilleurs délais et signalée sur la fiche de suivi médical.
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La fiche de suivi médical doit obligatoirement être complétée des éléments ci-dessous :

L’identité du préleveur, la date et l’heure du prélèvement.

L’identité du patient.
- Nom et nom de naissance s’il s’agit d’une femme.
- Prénom.
- Date de naissance.
 Pour la prise en charge, il est essentiel de remplir la rubrique des éléments administratifs demandés dans la fiche de suivi médical. Ces
renseignements sont indispensables pour la transmission aux organismes payeurs régimes obligatoires, complémentaires.
Ils concernent le numéro de sécurité sociale, nom et prénom de l’assuré si l’assuré n’est pas le patient.
Dans le cas contraire, la note sera adressée au patient.
 Les informations cliniques pertinentes susceptibles d’avoir des répercussions sur l’interprétation des résultats d’analyses doivent être indiquées sur
la fiche de suivi, cela peut être par exemple :
- Tout traitement en cours.
- Poids et taille du patient pour la créatinine.
- Date des dernières règles en cas de test de grossesse ou de bilan hormonal.
- A jeun ou non, fièvre…
V.4 - Consentement
Certaines analyses nécessitent un accord du patient (recherche de cytogénétique, génétique moléculaire, dépistage du risque de trisomie 21…).
Les formulaires sont disponibles sur demande auprès du laboratoire.
Il est à noter que l’analyse ne pourra pas être effectuée sans ce document dûment rempli et signé par le prescripteur et le patient.
V.5 - Examens hors nomenclature
Certaines analyses ne sont pas prises en charge par les organismes de remboursement (cf. Annexe 4).
Dans ce cas, il convient de faire signer au patient une décharge ; cette décharge devra être jointe au prélèvement.
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VI. IDENTIFICATION DE L’ECHANTILLON
Les prélèvements destinés à être transmis au laboratoire doivent être parfaitement identifiés : nom de naissance, nom marital, prénom du patient,
date de naissance.
Toute ambiguïté sur l’identification du tube est une non-conformité qui peut aboutir à la non réalisation des analyses.
Positionnement des étiquettes codes à barres (prélèvements internes)
Tubes de 7 ml
L’étiquette doit
être collée
sur l’étiquette
fournisseur
existante,
comme exposé
ci-contre.
Tubes de 5 ml
L’étiquette doit
être collée
sous le
bouchon,
comme exposé
ci-contre
Le type de tube à utiliser est indiqué en haut à droite de l’étiquette
La chaîne analytique rejette tous les échantillons dont les règles d’étiquetage ne sont pas respectées.
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VII. LE PRELEVEMENT SANGUIN
VII.1 - Aspect psychologique du prélèvement
La personnalisation de l’acte :
Le préleveur appelle le patient installé en salle d’attente, par son nom lu sur l’ordonnance.
L’identité du préleveur et sa qualification sont clairement lisibles sur le badge de sa blouse.
L’information du patient :
Le préleveur signale au minimum au patient qu’il va réaliser une ponction veineuse.
Il répond aux éventuelles questions auxquelles il est soumis avec des termes simples et intelligibles.
Ces questions portent généralement sur le contenu du bilan à effectuer.
La dédramatisation de l’acte :
En toutes circonstances, le préleveur doit rassurer le patient.
Le consentement du patient :
La ponction veineuse est un acte courant et peu dangereux.
Les conditions et les conséquences sont généralement connues du patient.
Il n’est donc pas nécessaire de recueillir un consentement exprimé de façon explicite.
La réalisation des analyses génétiques et analyses hors nomenclature nécessite un consentement écrit.
La ponction veineuse chez l’enfant :
La prise en charge psychologique s’adresse autant aux parents qu’à l’enfant.
Les étapes d’information et de dédramatisation doivent être réalisées pour chacun d’eux dans la mesure du possible et en fonction
de l’âge de l’enfant. Un parent peut, s’il le désire, être présent lors de la ponction (ne pas insister s’il ne le souhaite pas).
Il y a la possibilité de mettre un « Patch d’Emla® » : pansement anesthésiant qui insensibilise la peau et qui atténue la sensation
de piqûre lors de la ponction, ce pansement n’est délivré que sur prescription médicale.
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VII.2 - Prise en charge du malaise vagal
Physiologiquement, le malaise correspond à une stimulation inadaptée du nerf vague qui se traduit par une diminution importante des battements
cardiaques, de la tension artérielle des artères situées au-dessus du cœur.
Dans la très grande majorité des cas le patient « sent » venir le malaise et généralement l’annonce (prodrome).
La sortie du malaise est assez rapide et en pleine conscience :
- Le patient est orienté dans le temps : il connaît l’heure et le jour.
- Le patient est orienté dans l’espace : il sait où il est et ce qu’il fait.
- Il n’y a pas d’amnésie du malaise.
- Le patient ressent parfois une fatigue importante après le malaise.
Si un ou plusieurs de ces éléments ne se vérifient pas, ou si le malaise perdure, prévenir un médecin car il peut s’agir d’une autre cause de malaise.
Si le malaise vagal est typique, calme et sérénité sont de rigueur car il n’est jamais dangereux.
Le malaise vagal survient presque toujours chez un patient sujet au stress du prélèvement.
Il faut donc prévenir autant que possible cet éventuel incident. Lorsqu’un patient mentionne le caractère fréquent de ce type d’incident, on peut
prévenir l’apparition en l’installant en position allongée avec les jambes surélevées et en le mettant en confiance le plus possible.
Lorsque le malaise survient, pendant ou après le prélèvement :
-
S’assurer que le patient ne se blesse pas en tombant.
L’allonger, la tête à plat et surélever ces jambes afin de faciliter le reflux sanguin plus rapide vers le cerveau.
Desserrer son col et sa ceinture pour lui permettre de respirer sans gêne.
L’appeler par son nom.
Lui demander d’ouvrir les yeux.
Prendre son pouls et éventuellement sa tension.
Engager dès que possible la conversation en dédramatisant la situation.
Dès qu’il est revenu à lui, vérifier la cohérence de son état de conscience : lui demander son nom, l’endroit où il se trouve.
Eventuellement, lui donner un verre d’eau sucrée.
Le relever progressivement, la tête d’abord, puis les jambes.
Aérer si possible la salle de prélèvement
Le biologiste devra décider si le patient est en mesure de quitter le laboratoire.
Dans la mesure où le patient est hospitalisé, l’une des infirmières de l’unité de soins en sera avisée pour le surveiller.
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VII.3 - Préparation du patient
 L’état de jeûne est un des éléments permettant la bonne exécution technique des analyses et une interprétation pertinente des résultats.
C’est pourquoi il est recommandé de prendre un repas léger la veille au soir et de venir à jeun le lendemain pour la prise de sang.
La prise d’un verre d’eau est tolérée.
Il y a deux causes d’erreurs en l’absence de jeûne :
- Par influence directe
- Par artefact analytique dû à la lipémie.
Une période de jeûne stricte d’au moins 12 heures est indispensable pour le dosage du bilan lipidique, de la glycémie…
De nombreux autres dosages nécessitent un état de jeûne d’au moins 4 heures tels que l’albumine, l’acide urique, le fer, les transaminases…
Pour les autres analyses ne nécessitant pas un état de jeûne, il est toutefois conseillé d’effectuer le prélèvement si possible au moins
2 heures après un repas pauvre en matières grasses.
 Des horaires de prélèvement sont à respecter pour des analyses telles que : CTX, cortisol, prolactine…
Pour d’autres analyses par exemple dans le cas d’exploration de la fonction ovarienne, le prélèvement doit être réalisé dans une période du cycle
bien définie (du 3ème au 5ème jour).
 Conformément aux exigences de la nomenclature des actes de biologie médicale, le dosage de médicaments nécessite l’obtention des
renseignements suivants :
- La date et l’heure du prélèvement.
- Le nom du médicament.
- La dose journalière.
- La date et l’heure de la dernière prise de médicament.
- Le motif de la prescription (recherche d’efficacité/toxicité).
- L’âge, la taille le poids du patient.
 Un régime alimentaire particulier peut être indispensable pour la réalisation de certaines analyses.
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VII.4 - Réalisation du prélèvement sanguin
VII.4 – a : Prélèvement veineux :
Le patient doit être confortablement installé.
- Procéder avant tout geste invasif à une désinfection hygiénique des mains par lavage au savon antiseptique ou application d’une solution
hydro alcoolique.
- Port réfléchi des gants.
- S’assurer de l’identité du patient en lui faisant décliner lui-même son identité, sa date de naissance.
- Contrôler l’enregistrement de la prescription (pour les prélèvements réalisés au laboratoire).
- S’assurer de la conformité des conditions de prélèvements.
- Recueillir d’éventuels renseignements cliniques pertinents.
- Sélectionner les tubes de prélèvements, en nature et en nombre, en fonction des examens prescrits.
- Poser le garrot et rechercher la veine à prélever rapidement : illustration ci-dessous N°1
- Réaliser une désinfection soigneuse de la peau à l’aide d’un coton imprégné d’une solution antiseptique : illustration ci-dessous N°2
Pour les dosages d’alcoolémie la désinfection doit se faire avec un antiseptique ne contenant pas d’alcool.
- Introduire l’aiguille dans la veine sur environ 1 cm : illustration ci-dessous N°3
- Respecter l’ordre de remplissage des tubes : cf. § VII -4-b : Recommandations techniques.
- Respecter le volume de remplissage pour les tubes avec anticoagulant liquide, plus particulièrement pour le tube citraté.
- Desserrer le garrot: illustration ci-dessous N°4
- Retirer l’aiguille tout en comprimant la veine avec un coton : illustration ci-dessous N°5
- Comprimer le point de piqûre pendant au moins de 2 min: illustration ci-dessous N°6
Le temps de compression doit être rallongé chez les patients sous anticoagulant ou antiagrégant plaquettaire.
- Eliminer l’aiguille dans le récupérateur des déchets piquants contaminés immédiatement après le prélèvement: illustration ci-dessous N°7
- Homogénéiser les tubes par 6 retournements successifs lents: illustration ci-dessous N°8
- Identifier impérativement les tubes avec les étiquettes code à barres du patient ou en écrivant lisiblement son nom, prénom, et sa date de
naissance.
- Poser un pansement adhésif.
Attention il est strictement interdit de transvaser l’échantillon d’un tube à un autre.
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ILLUSTRATION DU PRELEVEMENT
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VII.4 – b : Recommandations techniques
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Le bon remplissage des tubes est IMPERATIF pour les tubes citratés (> 80% du volume)
Limite de remplissage maximum
Limite de remplissage minimum
Le rapport sang/anticoagulant permet la réalisation des analyses de façon appropriée.
Tubes avec additifs : certains tubes pour applications spécifiques sont fournis sur demande par le laboratoire.
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VII.4 – c : Prélèvements à réaliser impérativement au laboratoire
Examens demandés par la Préfecture :
Le prélèvement doit être pratiqué au laboratoire ; en effet nous sommes tenus de nous assurer de l’identité du patient.
Tests dynamiques (cf. annexe 1) :
-
Test de O’Sullivan.
Hyperglycémie provoquée par voie orale.
Hyperglycémie provoquée sur 2 heures.
Pool de prolactine.
Test TRF.
Test LH –RH.
Test au dexaméthasone.
Prélèvements nécessitant une congélation rapide : (cf. annexe 2 - Liste des analyses à traiter rapidement)
VII.5 - Prélèvements spécifiques
VII.5 – a : Le patient porteur d’une fistule artério-veineuse :
Lorsqu’un patient est porteur d’une fistule artério-veineuse, réaliser toujours le prélèvement sur le bras opposé ; si ce dernier est perfusé, joindre
le service de dialyse, seul habilité à réaliser des prélèvements dans une fistule artério-veineuse.
VII.5 – b : Le patient perfusé :
Lorsqu’un patient est perfusé, réaliser le prélèvement sur le bras opposé.
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VII.5 – c : Les hémocultures :
But :
Réalisation d’un prélèvement aseptique de sang veineux pour ensemencer des milieux de culture permettant la mise en évidence de germes
pathogènes.
Matériel :
- 2 flacons de culture (aérobie + anaérobie).
- 1 dispositif de prélèvement spécifique (type corps de pompe avec ailette).
- 1 garrot.
- 1 paire de gants non stériles.
- 1 antiseptique.
- Compresses stériles.
- 1 rouleau de sparadrap.
Conditions de prélèvement :
- Respecter les conditions d’hygiène et de sécurité notamment sur le lavage des mains et le port de gant.
- Décapsuler les flacons aérobie et anaérobie et désinfecter l’opercule avec l’antiseptique.
- Mettre le garrot et désinfecter largement le site de ponction.
- Prélever d’abord le flacon aérobie puis anaérobie.
- Eliminer l’ailette et le corps de pompe dans le récupérateur à déchets piquants immédiatement après le prélèvement.
- Mettre un pansement ou comprimer avec une bande en mousse et une compresse sous celui-ci ; le temps de compression doit être rallongé chez
les patients sous anticoagulant ou antiagrégant plaquettaire.
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- Ecrire lisiblement sur les 2 flacons ou étiqueter avec les éléments suivants :
 Nom
et prénom du patient.
 Date de naissance.
 Numéro d’ordre des prélèvements « hémoc 1 » par exemple.
 Heure de prélèvement.
 Température du patient.
- Ecrire lisiblement sur l’ordonnance :
 Traitement
éventuel en cours.
 Heure de prélèvement.
 Température du patient.
- Acheminer rapidement les prélèvements au laboratoire à température ambiante.
Ne pas coller d’étiquettes ou écrire sur les codes à barres des flacons. Inutile de mettre un pansement sur le bouchon en caoutchouc.
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VII.5 – d : La gazométrie
Acte réservé aux établissements de soins et réalisé uniquement par les biologistes et infirmier(e)s.
But :
Prélever quelques millilitres de sang par ponction artérielle (radiale, humérale ou fémorale), afin d’évaluer l’hématose et l’équilibre acido- basique,
par détermination des pressions partielles en oxygène et en dioxyde de carbone du sang.
Matériel :
- 1 seringue stérile de 2ml spécifique à gaz du sang, pré-héparinée et munie d’un bouchon hermétique.
- 1 aiguille (préférer les aiguilles IV ou sous cutanées).
- Des compresses stériles.
- 1 rouleau de sparadrap.
- 1 antiseptique.
- Vérifier les recommandations du prescripteur (air ambiant ou avec oxygène).
- Désinfecter largement.
- Retourner la main du patient en hyper extension pour ponction dans l’artère radiale.
La ponction dans l’artère humérale ou fémorale ne peut être réalisée que dans des conditions particulières.
- Repérer l’artère à ponctionner par palpation.
- Amorcer la seringue en tirant légèrement sur le piston (en fonction du type de seringue).
- Piquer à 45° dans l’artère : soit le piston monte seul, soit il amorce une montée signifiant la possibilité de déclencher manuellement la montée du
sang dans la seringue.
- Prélever au minimum 1 à 2 ml de sang.
- Retirer l’aiguille et l’éliminer immédiatement dans la boîte à déchets piquants
- Remplacer l’aiguille sur la seringue par le bouchon prévu à cet effet.
Exercer un point de compression de plusieurs minutes : le pansement à appliquer doit être un pansement compressif à laisser en place pendant
10 à 15 mn afin d’assurer une bonne hémostase.
- Vérifier l’absence de bulle d’air et purger si nécessaire.
- Homogénéiser le sang dans la seringue pour favoriser le contact avec l’héparine.
- Ecrire lisiblement sur la seringue ou étiqueter avec les éléments suivants :
Nom, prénom du patient, date de naissance.
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- Ecrire lisiblement sur l’ordonnance : le mode de ventilation (respirateur ou oxygène mural) et le débit d’oxygène.
- Si le temps avant l’acheminement au laboratoire est supérieure à 10 mn, mettre la seringue dans de la glace.
Remarque :
Si vous ne disposez pas de seringues à gazométrie spécifiques, utilisez une seringue de 2 ml dans laquelle vous introduisez quelques gouttes
d’héparine.
LA GAZOMETRIE
1
4
2
5
3
6
26
VII.5 – e : Le temps de saignement (examen hors nomenclature)
Cette analyse ne peut être réalisée au domicile du patient.
Se renseigner au préalable auprès du patient sur la prise éventuelle d’un anticoagulant ou antiagrégant plaquettaire dans les 10 jours qui précèdent
le test, dans ce dernier cas le temps de saignement doit être reporté.
But :
Il s’agit d’un test d’exploration de l’hémostase primaire : ensemble de phénomènes aboutissant au colmatage initial d’une brèche vasculaire par
formation d’un caillot fibrino-plaquettaire.
Le temps de saignement explore le nombre et la qualité fonctionnelle des plaquettes, le rôle du vWF, la qualité du sous endothélium de la paroi
vasculaire.
 Méthode
d’IVY Incision
Matériel :
- Gants à usage unique.
- Papier buvard.
- Désinfectant, compresses.
- Dispositif à usage unique « type Surgicutt ».
- 1 tensiomètre, 1 Chronomètre.
Temps de Saignement- Méthode Ivy Incision
1
2
3
4
27
- Poser le tensiomètre et appliquer une pression permanente de 40 mmHg.
- Désinfecter la zone à inciser avec une solution antiseptique.
- Réaliser une incision avec le surgicutt sur la face antérieure de l’avant-bras, environ 5 cm sous le pli du coude, parallèlement à celui-ci, en évitant
-
les veinules superficielles et les éventuelles cicatrices ou contusions.
Ce dispositif permet une incision standardisée : 1 cm de long, 1 mm de profondeur pour le modèle adulte.
Déclencher simultanément le chronomètre.
Appliquer le buvard à proximité de la coupure, jusqu’à ce que le papier buvard soit propre.
Arrêter le chronomètre. Le temps de saignement est déterminé par le temps arrondi à 30 secondes.
Noter le temps écoulé depuis l’incision jusqu’à l’arrêt du saignement.
Enlever le brassard, mettre un pansement adhésif sur la coupure.
Valeur de référence :
Entre 4 et 8 minutes.
Temps plus long chez la femme enceinte, plus court chez l’enfant.
 Méthode
de Duke
Matériel :
- Vaccinostyle.
- Papier filtre.
- Désinfectant, compresse.
- Chronomètre.
- Réaliser une incision franche horizontale, à la partie moyenne du lobule de l’oreille, d’environ 5 mm avec un vaccinostyle ou dispositif à incision
unique.
- Déclencher le chronomètre dès la première goutte de sang.
- Appliquer un buvard à proximité de l’incision, toutes les 30 secondes, sans frotter, jusqu’à ce que le papier buvard soit propre.
- Noter le temps écoulé jusqu’à l’arrêt du saignement.
Valeurs de références :
Entre 2 et 4 minutes.
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VIII. LE PRELEVEMENT BACTERIOLOGIQUE ET CYTOLOGIQUE
La réalisation d’un examen de bactériologie dépend de l’indication et des renseignements cliniques fournis, des conditions techniques de
prélèvement et du transport de l’échantillon.
Chaque échantillon de bactériologie doit être accompagné de renseignements sur la nature du spécimen et sur le site anatomique d’origine,
ainsi que sur une éventuelle antibiothérapie. Ces renseignements doivent être notés sur la fiche de suivi médical.
VIII.1 - Instructions d’utilisation d’un écouvillon «eswab»
UTILISATION D’UN ECOUVILLON «ESWAB»
1
-
2
3
4
5
6
7
Réaliser le prélèvement.
Dévisser le tube et laisser le milieu liquide à l’intérieur. Plonger l’écouvillon dans le tube.
Briser l’écouvillon, en appuyant sur le point de brisure sur le bord du tube.
Revisser le tube.
Identifier le tube.
1 seul écouvillon par prélèvement
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VIII.2 - Examen Cytobactériologique des Urines (ECBU)
But :
Sur des urines récemment émises, l’ECBU permet de réaliser une cytologie urinaire, d’isoler et identifier les bactéries responsables d’infections
urinaires et de réaliser un antibiogramme si nécessaire.
Matériel :
1 flacon stérile.
1 lingette stérile individuelle imprégnée d’antiseptique.
- Réaliser une petite toilette génitale :
Pour les femmes : nettoyer le méat urinaire du haut des lèvres vers l’anus.
Pour les hommes : décalotter le gland et nettoyer le méat urinaire, le gland et le prépuce.
- Éliminer le 1er jet et recueillir le milieu du jet dans le flacon stérile.
- Acheminer rapidement l’échantillon au laboratoire ; conserver au réfrigérateur si l’envoi est retardé.
- Cet examen doit être réalisé de préférence sur les urines du matin pour une concentration optimale des germes, ou au moins 4 heures après la
miction précédente ; ce délai représente le temps de stase suffisant dans la vessie.
Cas particuliers de recueil d’urine :
er
- Recherche de Chlamydiae : recueil du 1 jet des urines.
er
- Recherche de Mycoplasmes : recueil du 1 jet des urines.
- Recherche de BK urinaire : après restriction hydrique la veille, recueil de la totalité des 1ères urines du matin directement dans le flacon stérile.
30
VIII.3 - Examen Cytobactériologique des Urines chez les patients sondés
But :
Matériel :
- 1 flacon stérile.
- 1 lingette stérile à usage unique imprégnée d’antiseptique.
Conditions de prélèvement:
- Respecter les conditions d’hygiène et de sécurité, notamment le lavage des mains et le port de gants.
- Désinfecter le site de prélèvement : opercule prévu à cet effet ou extrémité de la sonde avant connexion sonde-collecteur.
- Piquer dans le site du prélèvement à l’aide d’une aiguille et recueillir le volume d’urines nécessaire pour l’analyse.
- Acheminer dans les 2 heures l’échantillon au laboratoire ou conserver au réfrigérateur si l’envoi est retardé.
VIII.4 - Mise en place d’un collecteur d’urine pédiatrique
But :
Matériel :
- Poche à urine pour enfant.
- 1 compresse stérile individuelle imprégnée d’antiseptique.
- Rassurer l’enfant en lui expliquant que cela n’est pas douloureux.
- Respecter les conditions d’hygiène et de sécurité, notamment le lavage des mains et le port de gants.
- Procéder à une toilette antiseptique du méat urinaire et de la région périnéale, à l’aide d’une compresse stérile imprégnée d’antiseptique.
- Bien sécher la zone de contact de la peau de l’enfant avant d’apposer la partie adhésive de la poche.
- Retirer la protection du rabat adhésif : attention à ne pas toucher l’orifice de la poche pour ne pas la contaminer.
- Coller la poche sur la peau de l’enfant de sorte que l’orifice se trouve situé au niveau de la zone de miction.
- La période de contact entre l’adhésif et la peau de l’enfant doit être inférieure à 1 heure : au-delà, renouveler la poche.
31
- Conseiller aux parents de faire boire l’enfant et de contrôler fréquemment la miction.
- Dès l’émission d’urines, retirer délicatement la poche et identifier le recueil.
- Placer la poche à urine dans un contenant, par exemple un pot à coprologie afin d’éviter d’éventuelles fuites, et acheminer le recueil le plus
rapidement possible au laboratoire.
Remarque :
Les urines souillées par des selles ne seront pas acceptées.
Dans tous les cas préciser s’il s’agit d’un contrôle après traitement ou si le patient est en cours de traitement antibiotique.
VIII.5 - Recueil des urines de 24H
But :
Recueillir l’intégralité des urines du patient sur une pérode de 24H, afin de réaliser
des analyses spécifiques.
Matériel :
- Flacons de 2 litres en quantité suffisante.
- Etiquettes autocollantes rappelant les conditions du prélèvement.
- Suivre les instructions jointes au flacon.
- Écrire lisiblement sur les flacons :
Nom et prénom du patient.
Date de naissance.
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VIII.6 - Compte d’ADDIS – Hamburger –HLM
But :
Test fonctionnel rénal, consistant à mesurer le débit hématies-leucocytes/minutes sur le recueil d’urines, après 3 heures de stase dans la vessie.
Matériel :
- Deux grands verres d’eau.
- Un flacon fourni par le laboratoire.
- Se lever 3 heures avant l’heure habituelle et uriner dans les toilettes.
- Boire deux grands verres d’eau et se recoucher pendant 3 heures exactement.
- Se lever, recueillir la totalité des urines dans le flacon.
- Identifier le flacon avec nom, prénom et date de naissance du patient.
- Acheminer le flacon au laboratoire le plus rapidement possible.
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VIII.7 - Recueil de selles
VIII.7 – a : Coproculture
But :
Isoler des germes entéropathogènes normalement absents du tube digestif ou anormalement nombreux.
Matériel :
Pot à coproculture.
- Faire le recueil directement dans le flacon.
- Pour les bébés, la couche peut être amenée directement au laboratoire.
- L'échantillon doit être acheminé rapidement au laboratoire.
- Signaler tout traitement antibiotique suivi par le patient.
- Signaler tous voyages à l'étranger réalisés par le patient.
Recherches particulières sur prescription explicite :
Clostridium difficile, E. coli O157, coliformes entérotoxiques, vibrion, Bacillus cereus, adenovirus, rotavirus chez l’enfant de plus de 5 ans.
VIII.7 – b : Parasitologie des selles
But :
Mettre en évidence une infestation parasitaire (formes végétatives, kystiques, œufs…).
Matériel :
Pot à coproculture.
- La prélèvement doit parvenir au laboratoire dans un délai de 4 heures, ce délai est ramené à 1 heure dans le cas d’une recherche d’anguillule.
- En cas de prescription de parasitologie sur 3 jours, respecter un délai d’au moins 48 heures entre 2 prélèvements .
- Il est important de signaler tous voyages à l’étranger réalisés récemment par le patient.
- Ne pas utiliser de laxatif.
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VIII.7 – c : Le scotch test ou test de Graham
But :
Mettre en évidence d’une infestation parasitaire intestinale par oxyures.
Matériel :
Dispositif fourni par le laboratoire (lame porte objet, ruban adhésif transparent, boîte de transport de lame).
Le scotch test doit s'effectuer le matin avant la toilette et avant toute émission de selles
- Décoller le ruban adhésif de la lame et l’appliquer aux abords de la marge anale.
- Recoller le ruban sur la lame support.
- Acheminer rapidement au laboratoire à température ambiante.
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VIII.8 - Prélèvement auriculaire – Oreille
But :
Diagnostic otite externe.
Matériel :
Ecouvillon «eswab».
Ecouvillonnage du conduit auditif externe.
Cas particuliers :
Le prélèvement de pus de paracentèse n’est effectué que par le médecin ORL.
VIII.9 - Autres prélèvements ORL
VIII.9 – a : Gorge
But :
Diagnostic une angine d’origine bactérienne ou d’une candidose buccale.
Dépistage d’un portage sain de staphylocoque doré avant une intervention chirurgicale.
Matériel :
- Abaisse langue.
- Ecouvillon «eswab».
Ecouvillonnage des amygdales ou de l’amygdale en cas d’amygdalite unilatérale du pilier du voile du palais, de la paroi postérieure du pharynx.
En cas de suspicion de candidose, prélèvement au niveau de la langue et de la face interne des joues.
Suspicion d’herpès : le prélèvement s’effectue au laboratoire sur un milieu de transport particulier à la recherche de virus.
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VIII.9 – a : Prélèvement fosses nasales
But :
Rechercher une infection ou un portage sain du staphylocoque doré avant une intervention chirurgicale.
Matériel :
Ecouvillonnage des fosses nasales : 4 à 5 tours dans chaque narine.
Cas particuliers :
Recherche de coqueluche, recherche du virus de la grippe : prélèvements à réaliser uniquement au laboratoire.
VIII.10 - Prélèvements oculaires
Prélèvement à réaliser avant toute toilette faciale et en l’absence de maquillage.
VIII.10 – a : Conjonctive :
Frottis conjonctival avec recueil des sécrétions et du pus conjonctival prélevé dans l’angle interne de l’œil avec un écouvillon «eswab».
VIII.10 – b : Cornée :
Grattage sur la base et les berges de l’ulcère à l’aide d’un écouvillon avec un écouvillon «eswab».
VIII.10 – c : Liquide de lentilles :
Prélèvement sur flacon stérile type ECBU.
VIII.10 – d : Blépharite :
En cas de recherche de Démodex, le prélèvement doit être effectué au laboratoire.
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VIII.11 - Sécrétions broncho pulmonaires – expectorations
But :
Mettre en évidence une infection bactérienne ou mycologique dans les sécrétions bronchiques.
Matériel :
Utilisation d’un flacon stérile de type « ECBU ».
Le matin à jeun après rinçage buccodentaire soigneux, et après avoir éliminé le maximum de salive.
Recueil direct du crachat dans le flacon après effort de toux.
Si nécessaire, avoir recours à une kinésithérapie en particulier chez les enfants et personnes âgées (séances de clapping).
Mycobactéries : BK, pneumocystis…
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VIII.12 - Prélèvement vaginal
Acte réservé aux biologistes. Prendre rendez-vous au laboratoire.
But :
Mettre en évidence une infection bactérienne ou mycologique.
Sauf avis contraire du prescripteur, éviter le prélèvement pendant la période menstruelle, en effet durant cette période la flore est modifiée.
Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique :
- Supérieur à 15 jours pour les chlamydiae ; supérieur à 5 jours pour les germes banaux.
Matériel :
- Ecouvillon «eswab».
- Spéculum stérile à usage unique, gants.
- Kit spécifique pour la recherche de Chlamydiae trachomatis par hybridation moléculaire.
- Kit spécifique pour la recherche de Mycoplasme : écouvillon dacron dans milieu de transport.
- La patiente est placée en position gynécologique sur la table d’examen.
- Le spéculum est mis en place puis ouvert afin de positionner l’orifice du col dans la partie médiane du vagin.
- Prélever 1 écouvillon «eswab» : en fonction du contexte clinique, le prélèvement se fera au niveau du cul de sac vaginal et/ou au niveau de
l’endocol.
Recherche de Chlamydiae trachomatis
- Eliminer soigneusement les sécrétions de l’exocol avec le 1er écouvillon du kit que l’on jette.
ème
- Introduire le 2
écouvillon du kit dans l’orifice externe du col en lui imprimant un mouvement de rotation pour bien balayer toute la surface de
l’endocol et emprisonner les cellules dans les poils de l’écouvillon que l’on retire d’un geste rapide.
- Décharger et casser l’écouvillon dans le milieu de transport fourni.
Recherche des mycoplasmes urogénitaux
Gratter la muqueuse vaginale (et exocol) avec un écouvillon dacron puis décharger dans milieu de transport (UMT).
Autres recherches :
Syphilis, herpès, Recherche de virus HPV Oncogène (exclusivement chez la femme suite à un frottis avec ASCUS).
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VIII.13 - Le prélèvement urétral
Matériel :
- Ecouvillon spécifique pour le prélèvement urétral.
- Gants.
- Kit spécifique pour la recherche de chlamydiae Trachomatis par hybridation moléculaire.
- Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement.
- Mettre des gants à usage unique.
- Prélever 3 écouvillons au niveau du méat urinaire :
un pour l’état frais,
un pour la mise en culture,
un pour l’étalement de lames.
Recherche de Chlamydiae trachomatis chez l’homme :
- Introduire l’écouvillon du kit dans l’urètre sur 1 cm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de cellules.
- Chez la femme cette recherche doit être explicite sur la prescription médicale.
Recherche des Mycoplasmes urogénitaux sur prescription explicite :
- Introduire l’écouvillon du kit dans l’urètre sur 1 cm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de cellules.
VIII.14 - Spermoculture :
Matériel :
Récipient stérile spécifique.
Prélèvement de préférence au laboratoire avec les renseignements et en précisant le contexte clinique.
Chlamydiae trachomatis, mycoplasmes urogénitaux.
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VIII.15 - Le prélèvement peau – phanère
VIII.15 – a : A visée bactériologique
Matériel :
Ecouvillonnage de la lésion cutanée, ulcère, escarre, plaie après détersion et nettoyage.
VIII.15 – b : A visée parasitologique et/ou mycologique
Recherche de sarcopte – gale :
Matériel :
- Vaccinostyle.
- Lames porte-objet.
- Lamelles.
- Eau distillée.
- Microscope.
- Prélèvement à réaliser uniquement au laboratoire
- Utiliser un matériel différent pour chaque site de prélèvement.
- Gratter soigneusement avec un vaccinostyle la couche cornée au niveau de la lésion.
- Déposer dans la goutte d’eau distillée ou de KOH les squames recueillies et recouvrir d’une lamelle.
- Faire une 1ère observation au microscope.
Recherche de Démodex au niveau des cils
-
Matériel :
Lames porte-objet.
Lamelles.
Eau distillée.
Pince à épiler.
41
-
Préparer 4 lames identifiées : paupière supérieure droite ; paupière supérieure gauche ; paupière inférieure droite ; paupière inférieure gauche .
Déposer 1 goutte d’eau sur chacune des lames.
Arracher 3 à 4 cils au niveau de chaque paupière à l’aide d’une pince à épiler.
Déposer les cils en les séparant bien sur la goutte d’eau distillée et recouvrir d’une lamelle.
Recherche de démodex au niveau du front et des ailes du nez
-
Matériel :
Lames porte-objet.
Lamelles.
Scotch translucide.
Bleu de lactophénol.
Eau distillée.
-
Préparer 1 lame.
Appliquer un segment de scotch au niveau du front ou des ailes du nez.
Masser du bout des doigts pour le faire adhérer.
Coller le segment de scotch sur la lame.
Prélèvement de peau pied / main – intertrigo (peau glabre et plis)
Matériel :
- Vaccinostyle ou curette.
- Boîte de Pétri.
- Gratter l’ensemble de la lésion à l’aide d’une curette et recueillir les squames dans la boîte de Pétri.
- Rechercher systématiquement une atteinte des ongles et prélever si c’est le cas.
- Individualiser les prélèvements correspondant à chaque localisation.
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Prélèvement de poils - cheveux – folliculite du cuir chevelu – barbe
Matériel :
- Pince à épiler.
- Boîte de Pétri.
- Ecouvillon
- Arracher les poils situés au sein de la zone inflammatoire à l’aide de la pince à épiler.
- Prélever quelques gouttelettes de pus avec un écouvillon stérile préalablement humidifié.
Prélèvement d’ongle – onyxis
Matériel :
- Curette.
- Boîte de Pétri.
- Paire de ciseaux.
Atteinte superficielle
- Gratter la surface de l’ongle à l’aide d’une curette et recueillir les fragments d’ongles dans la boîte de Pétri.
-
Atteinte proximale
Eliminer le bord libre de l’ongle en le coupant à l’aide d’une paire de ciseau jusqu’au front d’avance du champignon.
Eliminer les premiers produits de grattage.
Gratter les zones hyperkératosiques à l’aide de la curette jusqu’au contact avec les tissus sains : zone où le mycélium est en activité.
Recueillir les débris dans la boîte de Pétri.
Atteinte totale
- Eliminer ce qu’il reste de l’ongle à l’aide d’une paire de ciseaux.
- Gratter la table inférieure de l’ongle à l’aide d’une curette et recueillir les débris dans la boîte de Pétri.
-
Rechercher systématiquement d’autres atteintes et les prélever séparément. Bien individualiser les prélèvements.
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VIII.16 – Prélèvements particuliers
- Myélogramme : prélèvement uniquement au laboratoire du site Pont de Chaume sur rendez-vous.
- Spermocytogramme : prélèvement uniquement au laboratoire du site Pont de chaume et site de Grenade sur rendez-vous.
- Liquides de ponction : ces prélèvements sont réalisés exclusivement par le médecin
liquide d’ascite ; liquide pleural ; liquide articulaire, LCR.
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IX. ACCEPTATION ET/OU REFUS DE L’ECHANTILLON
Le laboratoire a mis en place une procédure de critères d’acceptation des prélèvements. Certains prélèvements non conformes pourront être acceptés
après dérogation du biologiste, d’autres seront rejetés.
Dans tous les cas, le laboratoire vous informera par téléphone des prélèvements rejetés.
Le laboratoire est tenu d’informer le prescripteur de cette non-conformité sur le compte rendu du patient.
Tableau récapitulatif
Nature de la Non-conformité : ECHANTILLON
Echantillon non identifié ou illisible
Absence du nom ou illisible
Absence du prénom ou illisible
Identité discordante (échantillon et/ou documents
administratifs)
Nature de la Non-conformité : ADMINITRATIF
Absence de prescription
Elément obligatoire manquant (nom de naissance, nom
usuel, prénom ou date de naissance)
Absence d’adresse
Absence du nom du préleveur
Absence de la date du prélèvement
Absence de l’heure du prélèvement
Nature de la Non-conformité : MEDICALE
Absence de renseignements pour la demande de
groupe et/ou RAI
Décision
Rejet
Rejet
Acceptation sous réserve de l’obtention de l’information.
Traçabilité : noter par quel moyen, par qui et quand le renseignement exact a été
obtenu.
Rejet
Ou
Acceptation par dérogation du biologiste (confirmation d’identité indispensable)
Décision
Acceptation sous réserve de l’obtention de la prescription dans un délai compatible
avec la réalisation des analyses.
Acceptation sous réserve de l’obtention de l’information.
Traçabilité : noter par quel moyen, par qui et quand le renseignement exact a été
obtenu.
Acceptation : Essayer d’obtenir l’information
Acceptation.
Acceptation sous réserve de l’obtention de l’information. Garder la traçabilité
rigoureuse des informations obtenues.
Si non obtention de l’information : REJET
Acceptation ou rejet suivant l’analyse demandée
Décision
Acceptation sous réserve de l’obtention de l’information. Garder la traçabilité
rigoureuse des informations obtenues.
Si informations non obtenues : REJET
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Absence de renseignements
Nature de la Non-conformité : TECHNIQUE
Echantillon en attente non parvenu dans les délais
définis
Prélèvement réalisé côté perfusion
Prélèvement réalisé sur matériel périmé
Volume non respecté pour hémostase
Erreur du tube par rapport à l’analyse demandée
(inapproprié) ou échantillon absent
Echantillon hémolysé ou lactescent
Echantillon insuffisant
CBU non recueilli dans un flacon stérile
Hémoculture pas d’identification de la date et de
l’heure du prélèvement
Gazométrie – présence d’air
Patient non à jeun
Patient sous traitement
Echantillon non conforme du point de vue de l’hygiène
et de la sécurité du personnel du laboratoire
Acceptation si le résultat de l’analyse ou son interprétation ne sont pas impactés.
Dans le cas inverse : refus
En cas de doute : voir le biologiste.
Décision
Clôture du dossier
Rejet
Rejet ou Acceptation sur dérogation du biologiste
Rejet
Rejet
Suivant le cas : Rejet ou Acceptation sur dérogation du biologiste en précisant que
l’interprétation du résultat doit en tenir compte
Demande d’un échantillon complémentaire
Rejet
Acceptation sous réserve d’obtention de l’information
Acceptation par dérogation du biologiste
Voir le biologiste qui acceptera ou refusera l’échantillon en fonction de l’évaluation des
risques
CAS PARTICULIER DU GROUPE SANGUIN ET DE LA RAI
Décision
Nature de la Non-conformité
Absence de prescription.
Deux cas possibles :
-demande du patient sans prescription
-rajout d’un service clinique (avec nom du prescripteur)
Absence du nom du préleveur (ou illisible) sur la
prescription ou sur la fiche de suivi médical
Acceptation sous réserve de l’obtention des renseignements cliniques nécessaires
(identité complète, ATCD transfusionnels, injection de Rhophylac si grossesse) et de la
présence d’un tube primaire (tube non décanté)
Acceptation (si régularisation < 24 heures)
46
Absence ou non lisibilité sur la prescription :
Du nom de naissance, ou du prénom, ou du nom
marital (nom usuel sur kalisil), ou de la date de
naissance.
Erreur sur :
Nom de naissance ou prénom ou nom marital
Erreur d’orthographe notamment (s et ss, nom avec un
s à la fin et sans s, etc…)
Absence du nom du prescripteur (ou illisible) ou sans
prescription.
Discordance majeure entre identité sur la prescription
et la fiche de suivi médical (ex : deux noms différents,
date de naissance non concordante)
Absence de renseignements cliniques (antécédent
transfusionnel et notion d’injection d’anti D chez la
femme).
Absence de date et /ou des heures de prélèvement en
cas de double détermination demandées
simultanément.
Rejet
Excepté si :
-info donnée par le patient accueilli sur site, ou par téléphone en cas de prélèvement à
domicile (si possible avec confirmation par la carte d’identité).
-ou si fiche de suivi médical correctement renseignée par le préleveur.
Acceptation si régularisation < 24 heures et avec confirmation par la carte d’identité si
possible
Acceptation si régularisation < 24 heures
Rejet
Acceptation si régularisation < 24 heures
Rejet
Excepté si : info indiquée sur la fiche de suivi médical.
Traitement d’une seule détermination si pas de régularisation dans les 24h.
47
X. HYGIENE ET SECURITE - TRAITEMENT DES DECHETS
X.1 - Hygiène des mains
But :
Prévenir les contaminations les mains étant un des principaux vecteurs d’infection.
Quelques règles simples :
- Les ongles doivent être courts et propres, sans vernis.
- Le port de bijoux est déconseillé.
- L’utilisation des distributeurs de produit de lavage est recommandée.
- Les mains seront séchées à l’aide d’essuie main à usage unique qui sera utilisé pour la fermeture du robinet (en l’absence de commande au pied).
Le lavage est un geste primordial qui se décline en trois catégories :
Le lavage simple réduit les germes constituant la flore transitoire. Réalisé avec un savon doux, aussi souvent que nécessaire, il est obligatoire avant et
après être allé aux toilettes, après un mouchage, un éternuement, avant et après avoir mis des gants et enfin avant et après chaque manipulation.
Le temps de savonnage est de 10 secondes au minimum.
Le lavage hygiénique (ou antiseptique) supprime la flore transitoire, réduit la flore résidente. Il est réalisé avec un savon antiseptique pour chaque
geste aseptique.
Le temps de savonnage est de 40 à 60 secondes.
Le traitement hygiénique des mains par friction de solution hydro-alcoolique : pas plus de 5 applications consécutives.
48
49
X.2 - Utilisation des gants
L’utilisation des gants a pour objectif une protection cutanée efficace avec un effet de barrière vis-à-vis des micro-organismes et des produits
chimiques.
Le port des gants est recommandé lors de la manipulation d’échantillons de sang et chaque fois qu’un contact direct avec un agent infectieux est
possible.
Le gant n’exclut pas le lavage des mains, Il faut donc les changer entre deux patients ou deux activités ; la durée de protection d’un gant n’excède
pas 2 heures.
Le port de gants est indispensable lorsque l’opérateur a des lésions cutanées et pour tout prélèvement bactériologique, mycologique, parasitaire.
Les gants usagés sont considérés potentiellement contaminés et doivent suivre la filière d’élimination des DASRI.
X.3 - Conduite à tenir en cas d’Accident d’Exposition au Sang (AES)
Est considéré comme un AES :
- Toute effraction cutanée provoquée par du matériel souillé de sang ou tout autre liquide biologique.
- Toute projection sur les muqueuses, yeux ou sur une peau lésée.
Premiers soins à faire immédiatement : une trousse de 1er secours est à disposition sur chaque site :
En cas de piqûre, blessure ou contact direct avec une peau lésée :
laver soigneusement la plaie avec de l’eau et du savon doux.
appliquer sur la blessure pendant au moins 5 mn une solution de Dakin® ou à défaut de Bétadine Dermique® afin de désinfecter la blessure.
En cas de projection sur les yeux :
Rincer abondamment à l’eau ou au sérum physiologique à l’aide d’un rince œil.
Consulter un ophtalmologiste rapidement.
Avertir le biologiste responsable présent immédiatement.
Dans les trois heures suivant l’accident et au mieux, dans l’heure qui suit :
Informer le médecin référent en matière de prise en charge AES qui procèdera à l’évaluation du risque infectieux.
Les coordonnées des médecins référents sont disponibles à l’accueil de chaque site et affichées en salle technique.
50
Evaluation du risque infectieux
Vérification des dates de vaccination (Tétanos et Hépatite B)
Identification de l’origine de l’exposition (objet tranchant ou aiguille) si possible, afin de connaître le statut sérologique (HIV, Hépatite B et C) du
patient source.
Si le statut est inconnu : les sérologies ne seront réalisées qu’avec l’accord du patient, ou de la famille si le patient n’est pas en mesure d’exprimer
son accord.
En fonction du résultat, le médecin référent mettra en place des mesures prophylactiques s’il le juge nécessaire.
Déclarer l’accident dans les 48 heures suivantes :
- Déclaration d’accident du travail.
- L’employeur adresse à la CPAM la déclaration d’accident du travail dans les 48 heures.
Surveillance médicale :
- Entre J0 et J2 : transaminases, Sérologie HIV, Hépatite B (anticorps anti-HBS) et Hépatite C.
- J30 : transaminases, sérologie Hépatite C, sérologie HIV
- J90 : Sérologie HIV, transaminases, sérologie Hépatite C
- J180 : Sérologie HIV, sérologie Hépatite C, transaminases, AcHBC si AcHBS <10 au 1er contrôle.
X.4 - Gestion des déchets
Tout dispositif en contact avec du sang ou du liquide biologique doit être considéré comme potentiellement dangereux et doit donc être éliminé en
conséquence.
Les objets piquants, coupants, tranchants (aiguilles, seringues, lames,…) issus de l’acte de prélèvement doivent être jetés dans des récupérateurs
rigides spécifiques DASRI (attention à bien respecter les limites de remplissage).
Les objets contaminés non perforants issus de l’acte de prélèvement (spéculum, abaisse langue…) seront jetés dans les containers cartons avec les
objets mous.
Les sacs plastiques jaunes spécifiques DASRI sont réservés aux compresses, coton, pansement, gants.
51
L’élimination des déchets à risques infectieux est à la charge du préleveur (décret N° 97-1048 du 06 novembre 1997).
L’absence d’élimination du matériel piquant, coupant et tranchant dans un récipient conforme ou une aiguille souillée
re-capuchonnée retrouvée dans les boîtes de prélèvement mises à votre disposition par le laboratoire expose notre
personnel à des risques d’accident d’exposition au sang.
Objets piquants, coupants
tranchants (OPCT)
Objets piquants, coupants
tranchants (OPCT)
OBJETS MOUS
OU SOLIDE NON PERFORANTS
OBJETS MOUS
52
XI. ACHEMINEMENT ET TRANSPORT DES ECHANTILLONS
XI.1 - Le transport vers le laboratoire
Le transport d’échantillons de biologie médicale est régi par l’ADR (Accord européen relatif au transport international des matières Dangereuses par
Route) et assimilable au transport de matières dangereuses.
Cette règlementation s’applique à tout professionnel transportant des matières biologiques catégorie B (échantillons biologiques).
Les infirmiers prenant en charge des échantillons biologiques pour le compte de leurs patients sont responsables de ce transport, ils sont donc aussi
concernés par cette réglementation.
Le laboratoire se charge quotidiennement de transporter des échantillons prélevés par certains cabinets médicaux ou établissements de soins en lieu et
heures convenus avec les préleveurs.
En dehors de cette collecte, et sauf accord particulier avec les établissements de soin, le préleveur devra organiser cet acheminement dans les délais fixés
sur le référentiel des analyses jusqu’au laboratoire.
XI.2 - Les températures de transport des échantillons :
Echantillons sanguins :
Un intervalle de 15 à 25°C est préconisé. Les variations de température doivent être évitées ; cette recommandation est également à respecter
concernant les tubes vides parfois stockés dans les véhicules.
Echantillons urinaires :
Le délai de transmission idéal après le recueil est :
2 heures si la conservation est à température ambiante.
24 heures dans le cas d’une conservation à + 4°C.
Ces échantillons doivent être transportés en sachet avec absorbant.
XI.3 - L’acheminement des échantillons.
L’acheminement au laboratoire des échantillons prélevés en interne ou en externe doit suivre certaines recommandations :
- L’échantillon et la prescription ne doivent pas être en contact.
- L’acheminement doit se faire dans les délais préconisés : cf. référentiel annexe 4.
- La température de conservation doit être respectée : cf. référentiel annexe 4
Dans les services des établissements de soins, un système de sachet est mis en place.
Une prescription = 1 patient = 1 sachet
53
XII. LES TECHNIQUES UTILISEES
Les méthodes analytiques utilisées au laboratoire sont disponibles sur simple demande.
XIII. LES ANALYSES COMPLEMENTAIRES – STOCKAGE DES ECHANTILLONS
Des compléments d’analyses, peuvent, à titre exceptionnel, être ajoutés après la réalisation des examens à la demande du médecin prescripteur.
Cette demande doit être faite par téléphone sous réserve de la stabilité de l’analyse à ajouter et du respect des préconisations pré analytiques.
Le laboratoire précisera si la quantité et la qualité du prélèvement sont adaptées à cet ajout d’analyse.
Si la demande d’analyse complémentaire est réalisable, une prescription écrite devra parvenir au laboratoire dans les plus brefs délais.
XIV. EXAMENS URGENTS
Les examens urgents doivent être signalés téléphoniquement par le médecin, ou notés spécifiquement sur la prescription.
Ces examens étant prescrits dans le but d’une action rapide face à une éventuelle perturbation majeure ; ils pourront ne pas être effectués à jeun ;
l’interprétation du résultat devra toutefois en tenir compte.
54
ANNEXE 1 – PROTOCOLES DE TESTS DYNAMIQUES
A. Test Respiratoire à l’urée : Hélicobacter pylori
But :
Mise en évidence de la présence d’Hélicobacter pylori dans l’estomac du patient.
Contrôle de l’efficacité du traitement d’éradication.
Précautions :
- Arrêt de tout traitement antibiotique depuis au moins 4 semaines avant le test.
- Arrêt des anti-sécrétoires depuis 2 semaines.
- Arrêt des anti-acides et pansements gastro-intestinaux depuis 24 heures.
- Le contrôle chez l’enfant ne s’effectue qu’en milieu hospitalier.
Inhibiteurs de la pompe à protons
Omeprazole : Mopral®, Zoltum®
Esoméprazole : Inexium®
Lanzoprazole : Lanzor®, Ogast®
Pantoprazole : Eupantol®, Inipomp®
Rabéprazole®…
Antisécrétoires anti H2
Cimétidine : Tagamet®, Stomédine®
Ranitidine : Azantac®, Raniplex®
Famotidine : Pepcidac®, Pepdine®,
Pepciduo®
Nizatidine : Nizaxid®…
Pansements gastriques
Acidrine®, Actapulgite®, Bedelix®
Bolinan®, Contracide®, Gastropulgite®,
Gelox®, Isudrine®, Maalox®, Moxydar®,
Phosphalugel®, Rennie®, Riopan®,
Smecta®…
Matériel :
Le patient doit se procurer le test à la pharmacie sur prescription médicale.
Plusieurs types de test sont commercialisés :
55
Les plus courants sont « HELI-KIT® »
(Urée 13C : 75mg - acide citrique : 1,4 g)
Laboratoire Mayoly-Spindler
« HELICOBACTER TEST® ».
(Urée 13C : 75mg, acide citrique : 1g )
Laboratoire INFAI
Les instructions doivent être suivies conformément aux modes opératoires respectifs du test utilisé.
Préparation du patient :
Sujet à jeun depuis la veille, au repos.
a. Heli-Kit® :
- Dissoudre l’acide citrique du sachet du kit dans 200 ml d’eau
- Faire boire au patient 100 ml de cette solution et conserver le reste.
- Dissoudre l’urée du sachet du kit dans le volume restant de la solution d’acide citrique (100 ml).
- Ouvrir les deux tubes marqués T0 en dévissant le bouchon.
- Faire souffler doucement le patient dans l’un des deux tubes T0 à l’aide de la première paille pendant 20 secondes.
- Retirer la paille tout en continuant à faire souffler le patient puis reboucher rapidement le tube.
Attention ! Ne pas visser les bouchons Heli kit au-delà du pas de vis, l’étanchéité n’étant alors plus respectée.
- Renouveler la même opération avec le deuxième tube T0.
- Faire boire au patient la solution d’urée et déclencher le chronomètre.
- Faire attendre le patient 30 minutes.
- Ouvrir les deux tubes T30 en dévissant le bouchon.
- Faire souffler doucement le patient dans l’un des deux tubes T30 à l’aide de la deuxième paille pendant 20 secondes.
56
-
Retirer la paille tout en continuant à faire souffler le patient puis reboucher rapidement le tube.
Renouveler la même opération avec le deuxième tube T30.
Vérifier l’étanchéité des tubes bouchés.
Insérer les tubes dans le cartonnage prévu à cet effet et joindre le bon de demande dûment complété.
Pour les correspondants du laboratoire, remettre le kit de transport complet à l’agent de collecte habituel pour un transport à température
ambiante.
Identifier avec les nom et prénom du patient, les 4 tubes de prélèvements (2 tubes T0 et 2 tubes T30).
b. Helicobacter test INFAI® :
-
Ouvrir les deux tubes marqués T0 en dévissant le bouchon.
Faire souffler doucement le patient dans l’un des deux tubes T0 à l’aide de la première paille pendant 20 secondes.
Faire boire au patient sans attendre 200 ml de jus d’orange (100% jus de fruits) ou 1 g d’acide citrique dans 200 ml d’eau.
Dissoudre l’urée du sachet du kit dans 30 ml d’eau.
Faire boire au patient la solution d’urée et déclencher le chronomètre.
Faire attendre le patient 30 minutes.
Ouvrir les deux tubes T30 en dévissant le bouchon.
Faire souffler doucement le patient dans l’un des deux tubes T30 à l’aide de la deuxième paille pendant 20 secondes.
Vérifier l’étanchéité des tubes bouchés.
Insérer les tubes dans le cartonnage prévu à cet effet et joindre le bon de demande dûment complété.
Pour les correspondants du laboratoire, remettre le kit de transport complet à l’agent de collecte habituel pour un transport à température
ambiante.
Identifier avec les nom et prénom du patient, les 4 tubes de prélèvements (2 tubes T0 et 2 tubes T30).
Principe : Dosage du 13 C urée dans un air expiré (rapport entre T0 et T30)
57
B. Test d’hyperglycémie provoqué par voie orale : HGPO
But :
Test de tolérance au glucose indiqué dans l’exploration d’une sécrétion inappropriée d’insuline par les cellules BETA des ilôts de Langerhans du pancréas.
Produit administré:
Solution glucosée à absorber fournie par le laboratoire : 75 g de glucose (ou se conformer à la prescription du médecin).
Relever le n° de lot et l’enregistrer en commentaire sur le dossier du patient.
Préparation du patient – Durée de l’épreuve :
- Sujet à jeun depuis la veille.
- L’épreuve dure 180 minutes.
Protocole :
- Prélèvement à T0 : glycémie à jeun.
- Administration per os de la dose appropriée de solution glucosée.
- Prélèvement aux temps suivants : T30 (si prescription explicite), T60, T90 (si prescription explicite), T120, T180 mn après l’ingestion.
Cas particuliers :
- Ce test peut être associé à un dosage du C peptide à chaque temps.
T0
(T30)
Prélèvement
Prélèvement
Absorption du soluté
T60
Prélèvement
(T90)
Prélèvement
T120
Prélèvement
T180
Prélèvement
58
Test d’hyperglycémie provoquée par voie orale chez la femme enceinte :
Les conditions de réalisation de ce test peuvent être différentes d’un prescripteur à l’autre.
Dans tous les cas, respecter les consignes du médecin si celles-ci sont clairement explicitées.
1) HGPO à 75 g chez la femme enceinte :
But :
Il s’agit d’un dépistage précoce du diabète gestationnel.
Produit administré :
Solution glucosée à absorber fournie par le laboratoire (75g).
Protocole :
- Prélèvement glycémie à jeun au T0.
- Administration per os de la solution glucosée (75g).
- Prélèvements aux temps T60 et T120.
T0
Prélèvement
T60
Prélèvement
T120
Prélèvement
59
2) Test de O ’Sullivan
But :
Il s’agit d’un test simplifié d’ Hyper Glycémie Provoquée par voie Orale (HGPO) visant au dépistage précoce du diabète gestationnel.
C’est une épreuve qui s’effectue entre la 24ème et la 28ème semaine d’aménorrhée en l’absence de facteur de risque de diabète ou
dès la 1ère consultation prénatale s’il existe des facteurs de risque connus.
Solution glucosée à absorber (50g), fournie par le laboratoire.
- Sujet à jeun depuis la veille
- L’épreuve dure 60 minutes
Protocole :
-
Glycémie à jeun, T0
Absorption per os d’une solution glucosée de 50 g de glucose sur une durée inférieure ou égale à 5 minutes
Glycémie à T+ 60 mn
NB : le temps 0 est facultatif (selon prescription médicale)
T0
Prélèvement
T60
Prélèvement
60
3) HGPO de confirmation
But :
Epreuve complémentaire pratiquée en 2ème intention chez la femme enceinte pour confirmation de positivité du test de O Sullivan.
Produit absorbé :
Solution glucosée à absorber de 100 g de glucose.
Protocole :
- T0 glycémie à jeun.
- Absorption de 100 g de glucose.
- Prélèvements : T60, T120, T180.
T0
T60
T120
T180
Prélèvement
Prélèvement
Prélèvement
Prélèvement
61
C. LE POOL DE PROLACTINE
But :
Epreuve qui consiste à analyser la sécrétion de prolactine par l’antéhypophyse.
La prolactine est une hormone pulsatile menstruelle subissant des variations temporelles, nycthémérales.
Sa concentration cyclique est variable car facilement influencée par un état de stress.
Il est nécessaire de pratiquer plusieurs prélèvements à des temps différents après une période de mise au repos.
Le prélèvement s’effectue le matin à jeun entre 8 et 10 heures. Le patient doit être reposé et non stressé, levé depuis au moins 2 heures.
Chez la femme le test s’effectue en début de cycle (2ème au 5ème jour du cycle).
Généralement, on pratique 2 prélèvements de 10 à 20 minutes d’intervalle, après une mise au repos de 15 à 20 min.
Dans tous les cas, se conformer à la prescription du médecin si celui-ci mentionne des prélèvements supplémentaires.
L’épreuve dure entre 40 et 60 minutes.
Protocole
- Dans la mesure du possible, la pose d’un cathéter est préconisée.
- Le 1er prélèvement (pour le pool) est différé de 20 min après la pose du cathéter.
- Puis 2 ou 3 prélèvements à 20 min d’intervalle.
T0
Pose du cathéter / Prélèvement si
autres analyses demandées
T20
Prélèvement pour pool
T40
Prélèvement pour pool
P
62
D. TEST A LA LH-RH
But :
Exploration de la réserve hypophysaire en gonadotrophines.
Stimu-LH® (ampoule de 50µg) laboratoire Ferring SAS.
Adulte : 100 µg.
Enfant : 100 µg de lh-rh par m2 de surface corporelle sans dépasser 100 µg (dose adulte pour les plus de 15 ans ou plus de 45 kg).
- Examen à réaliser le matin entre 8h et 10h sur un sujet à jeun depuis 12 heures.
- Femme en aménorrhée ou en début de phase folliculaire (4ème ou 5ème jour du cycle) et en dehors d’une prise d’oestroprogestatif.
- Dans un bilan d’une précocité pubertaire et d’un retard pubertaire.
- Risques de manifestations allergiques - exceptionnellement nécrose d’un macro adénome.
- L’épreuve dure entre 90 minutes et 120 minutes.
Protocole :
- Placer un cathéter veineux et à T0 effectuer le 1er prélèvement.
- Injection de Stimu-LH®.
- Prélèvements sanguins à T30, T60, T90 et T+120 (si prescrit) avec dosage de LH et FSH.
Remarque :
Ce test peut être couplé à des dosages de base ou éventuellement à d’autres tests dynamiques.
Il peut, également, être prescrit avec FSH, œstradiol, testostérone, IgF-1 : un seul prélèvement à T0 sauf prescription explicite.
T0
T30
T60
T90
Prélèvement
Prélèvement
Prélèvement
Prélèvement
Pose du cathéter Injection du produit
P
63
E. LE TEST AU TRH
But :
Il s’agit d’un test d’exploration de la sécrétion de prolactine, de la fonction thyréotrope et de la fonction somatotrope.
Stimu-TSH – Ferring®.
Adulte : 250 µg.
Enfant : 200 µg de LH-RH par m2 de surface corporelle sans dépasser 250 µg.
Sujet à jeun depuis 12 heures et au repos depuis 30 mn.
L’épreuve dure 90 minutes.
Risques de bouffées de chaleur, fourmillements, nausées, céphalées, vertiges, manifestations allergiques.
Protocole :
- Poser un cathéter.
er
- 1 prélèvement au T0.
- Si prescription couplée de prolactine, attendre 15 mn avant le 1 er prélèvement au T0.
- Injection IV lente de 250 µg de TRH (Stimu-TSH – Ferring®).
- Prélever ensuite à T30mn et T60 mn, T90 pour dosage de la TSH et/ ou de la GH et ou de la prolactine.
T-15
Pose du cathéter si
prolactine couplée
P
T0
Prélèvement
Pose du cathéter
si pas de prolactine
T30
Prélèvement
T60
Prélèvement
Injection du produit
P
64
F. Le test au Synacthène Immédiat®
But :
Il s’agit d’un test visant à étudier la capacité sécrétoire de la glande cortico surrénale.
Synacthène immédiat : ampoule de 0,25 mg/ 1mL (conservée au réfrigérateur).
A jeun depuis 12 heures et au repos afin de limiter les phénomènes de stress.
En raison des variations nycthémérales de la sécrétion du cortisol (maximum à 8h et minimum à 24h), il est impératif de réaliser le prélèvement le matin
entre 8h et 9h.
L’épreuve dure 60 minutes.
Protocole :
- Prélèvement à T0 entre 8h et 9h du matin.
- Injection IM de 0.25mg de Synacthène® immédiat dans le quart supérieur externe de la fesse.
- Prélèvement sur tube sec à T30 et T60.
- En l’absence de précision sur la prescription, doser uniquement le cortisol.
T0
Prélèvement
T30
Prélèvement
T60
Prélèvement
Injection du produit
P
65
G. Le test au Dexaméthasone ou Dectancyl®
But :
Mise en évidence d’un hypercorticisme.
1mg de Dexaméthasone ou Dectancyl®.
En raison des variations nycthémérales de la sécrétion du cortisol (maximum à 8h et minimum à 24h), il est impératif de réaliser le prélèvement le matin
entre 8h et 9h.
A jeun depuis 12 heures et au repos afin de limiter les phénomènes de stress.
Protocole :
- Prélèvement à J0 à 8h (facultatif, selon la prescription médicale).
- Entre 23h et minuit le même jour, le patient prend par voie orale 1 mg de dexaméthasone ou Dectancyl®.
- Prélèvement le lendemain matin entre 8h et 9h pour dosage du cortisol et éventuellement de l’ACTH.
J-1
Prélèvement à 8h si
prescrit
J0
Prélèvement entre 8h et 9 h
Absorption du produit
entre 23h et minuit
P
66
ANNEXE 2- LISTE DES ANALYSES A TRAITER RAPIDEMENT (Prélèvement domicile déconseillé)
Cette liste n’est pas exhaustive, elle rassemble les examens demandés le plus couramment. Ces analyses sont à traiter et congeler dans l’heure ou les 4
heures suivant le prélèvement.
ACTH – Corticotrophine
Aldostérone :
Aldostérone urinaire :
AMP cyclique :
Angiotensine II :
Anticorps anti GAD :
Anticorps anti-récepteur de l’acétylcholine :
Calcitonine :
Catécholamines plasmatiques :
Chromogranine A :
CH50, complément hémolytique total :
DDimères :
Facteurs de la coagulation :
Gastrine :
GH, hormone de croissance :
HBPM :
Héparinémie :
HCG, chaine bêta libre, sous unité :
Hépatite B charge virale :
Homocystéïne :
Hydroxyproline plasmatique :
Hydroxyproline urinaire:
IGF1, stomatomédine C :
Inhibine B :
Mycoplasmes :
NSE, Neuron Spécific Enolase :
Ostéocalcine :
Rénine active :
Plasma EDTA (tube aprotinine)
Sérum, plasma hépariné ou EDTA
Urines de 24h
Plasma EDTA
Plasma EDTA
Sérum
Sérum ou plasma EDTA
Sérum
Plasma EDTA ou hépariné
Sérum
Sérum
Citraté
Plasma citraté
Sérum
Sérum
Plasma citraté
Plasma citraté
Sérum ou plasma EDTA
Plasma EDTA
Plasma EDTA ou hépariné
Plasma hépariné
10 ml urines du matin à jeun
Sérum
Sérum
Sérum
Sérum
Sérum
Plasma EDTA
67
Résistance à la protéine C activée :
Sérotonine :
Testostérone biodisponible :
Vitamine A - Rétinol
Vitamine B1, thiamine :
Vitamine B6, phosphate de pyridoxal :
Vitamine C, acide ascorbique :
Vitamine D, 1.25, dihydroxy-vitamine D :
Vitamine E, tocophérol :
Vitamine K1, phylloquinone :
5HIA, acide 5 hydroxy indol acétique :
Plasma citraté
Sang total hépariné
Sérum à jeun impératif
sérum ou plasma hépariné
Sang total EDTA
Sang total EDTA
Plasma hépariné
Sérum
Sérum ou plasma hépariné
Sérum
Plasma hépariné
68
ANNEXE 3 – BON DE CONFIRMATION D’IDENTIFICATION
CONFIRMATION D’IDENTIFICATION
Nom et prénom du préleveur :
Médecin : Infirmier (e) : 
Confirme l’identité du patient :
Nom et prénom :
Nom de naissance :
Date de naissance :
Comme étant celle correspondant au prélèvement envoyé au laboratoire le :
Signature :
MU-ENR-SEC-001-01
69
ANNEXE 4 – REFERENTIEL DES ANALYSES (MU-IT-PVT-001-version 02)
REFERENTIEL DES ANALYSES DU LABORATOIRE BIOFUSION
Origine des sources :
Préconisation des fournisseurs
OMS : WHO/DIL/LAB/99.1 Rév 2


X = à jeun sauf urgence
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
Tube recommandé
Tube accepté
R
E
N
D
U
Quantité
15-25
24 h
1ml
P
15-25
24 h
1ml
PP
8h
15-25
24 h
1ml
P
Stable 48h entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 5 mois entre + 2°C et +8°C ; sinon congelé.
Alcoolémie
8h
2-8
24 h
1 tube
PPP
Pas de désinfection à l'alcool. Le tube doit être bien fermé ;
Stable 3 jours entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
Amikacine
8h
2-8
24 h
1ml
P
P
Stable 24h entre +2°C et +8°C.
Prélèvement à réaliser une heure après injection IM.
15
minutes
Congelé
24 h

Prélèvement à déposer dans la glace immédiatement ; Stable 2h
entre +2°C et +8°C après décantation ou 3 semaines si congelé.
Analyses
H
N
J
E
U
N
Ur.
Particularités et stabilité
après traitement de l'échantillon
A
ACE
8h
(Antigène carcino embryonnaire)
Acide folique
Cf.Folates
Acide lactique
Cf. Lactate
Acide urique
(sérique ou urinaire)
Acide valproïque
X
Ammoniémie
P Stable 7 jours entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
Cf. Dépakine
AFP (alpha foetoprotéines)
Albuminémie
24 h
X
70
Analyses
Amylase
(serique ou urinaire)
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Cf. Lipase (remplacé par)
Anticorps anti ADN natif
(DNA)
8h
15-25
J+2
1ml
P
Anticorps anti-cellules
pariétales estomac
8h
15-25
J+3
1ml
P
Anticorps antierythrocytaires
8h
15-25
Anticorps anti-LKM
8h
15-25
J+3
1ml
P
Anticorps antimitochondries
8h
15-25
J+3
1ml
P
Anticorps anti-muscles
lisses
8h
15-25
J+3
1ml
P
Anticorps anti-nucléaires
(ACAN)
8h
15-25
J+1
1ml
P
Anticorps anti-ribosomes
8h
15-25
J+3
1ml
P
Anticorps antigènes
solubles (ECT)
ssa, ssb, sm, rnp, scl70,
jo1
8h
15-25
J+2
1ml
P
Anticorps anti-centromères Cf. ACAN
Tube
primaire
P

Envoi EFS : En cas de RAI positive pour titrage ou identification.
Stable 48h.
71
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Anticorps anti peptides
citrullines (ACCP)
24 h
15-25
24 h
1ml
P
Anticorps antithyroperoxydase TPO
8h
15-25
24 h
1ml
P
P
Anticorps antithyroglobuline Tg
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
Antithrombine III
4h
15-25
24 h
Tube
plein
Anti XA

Respecter le niveau de remplissage.
Cf. Héparinimémie
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
ASDOR
8h
15-25
48 h
1ml
P
Sérum du jour ; sinon congelé.
ASLO
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Beta HCG
8h
15-25
24 h
1ml
P
Préciser la date des dernières règles.
Beta 2 microglobuline
8h
15-25
24 h
1ml
P
24 h
1ml
PP
Conserver à l'abri de la lumière ;
Apolipoprotéines A ou B
X
B
Bicarbonates
Bilirubine totale et
conjuguée
Cf. Reserve alcaline
X
8h
15-25
72
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
1 tube
reservé
Ur.

Prélèvement en tube plastique.
Stabilité 24h entre +2°C et +8°C après séparation du plasma et
des globules ; Sinon plasma congelé.
PPP
Envoi Fronton : Stable 3 jours à température ambiante ; 6 jours
entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
1ml
PPP
48 h
1ml
P
15-25
24 h
1ml
P
8h
15-25
24 h
1ml
P
Immédiat
pvt.
labo
24 h
1 ml
PP
Stable 1h ; sinon congelé.
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
6h
15-25
24 h
1 tube
BNP
24h
15-25
24 h
(PRO)BNP
24h
15-25
24 h
BW (serologie syphilis)
8h
15-25
24 h
CA 125
8h
15-25
CA 15.3
8h
CA 19.9
C
Calcitonine
Calcium (serique ou urinaire)
Calcium ionisé
X
X
22€
Carbamazépine (tégrétol)
8h
15-25
24 h
CDT (Transférine
désialysée)
8h
15-25
Mardi
Jeudi
1ml

PPP
1 tube
P
reservé
P Stable 3 semaines entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
Seringue
gazo
Préciser la date et l'heure de la dernière prise .
Prélèvement à réaliser avant une nouvelle prise.
Stable 48h entre +2°C et+8°C ; sinon congelé.
Envoi Fronton: Stable 10 jours entre +2°C et +8°C ; sinon 1
mois congélé.
73
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Chlamydiae serologie
pneumoniae,trachomatis et
psitacci
8h
15-25
48 h
1ml
PP
Chlore (serique ou urinaire)
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
P Stable 7 jours entre +2°C et +8°C ; Sinon congelé.
Stable 2 semaines entre +2°C et +8°C ; Sinon congelé.
Cholesterol
X
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 7 jours entre +2°C et +8°C ; Sinon congelé.
Cholesterol HDL
X
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Cholesterol LDL
X
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
6h
15-25
48 h
1 tube
reservé

CLA 30 mixtes,
pneumallergènes et
trophallergènes
8h
15-25
48 h
1 tube
plein
PPP
Prévoir 3ml de sérum
Stable 14 jours à +4°C ; sinon congelé
CMV IgG et IgM
(cytomégalovirus)
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
Coombs direct
8h
15-25
24 h
Tube
primaire
Ciclosporine
CK
Préciser la date et l'heure de la dernière prise.
Stable 7 jours entre +2°C et +8°C ; Sinon 1 mois congelé.
Cf. CPK
Cortisol
Cotinine urinaire
Sang total
X
X
33€
8h
15-25
24 h
8h
15-25
24 h
1ml

P
Prélèvement entre 7h et 9h.
P Stable 48h entre +4°C et +8°C ; Sinon congelé.
74
Analyses
H
N
J
E
U
N
CPK (Créatinine kinase)
Créatinine ou clairance à la
créatinine
X
CRP
Cryoglobuline
X
CTX (crosslaps)
X
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
8h
15-25
24 h
1ml
PP
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 2 mois entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.

Le matériel à prélèvement doit être préchauffé à 37°C.
Coagulation de l'échantillon à 37°C pendant 2 heures.
Centrifugation à 37°C.

Envoi Fronton : Prélèvement le matin à jeun avant 9h.
Décanter et congeler le sérum.Stable 3 mois congelé.
4h
Mardi
Jeudi
1ml
Stable 1 mois entre+2°C et +8°C ; Sinon 1 mois congelé.
P
Préciser le poids du patient.
D
Ddimères
8h
15-25
24 h
1 tube
plein
Dépakine (acide valproïque)
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
Stable 48h entre +2°C et +8°C; Sinon congelé.
Digoxine
8h
15-25
24 h
1ml
P
Stable 48h entre +2°C et +8°C; sinon congelé.
Drogues urinaires
8h
15-25
24 h
24 h
15-25
24 h

P Stable 48h entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
E
EBV (Epstein barr Virus)
1ml
PPP
75
Analyses
Electrophorèse des
protéines
Ethanolémie
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
X
8h
R
E
N
D
U
Quantité
15-25
24 h
1ml
P
P
Ur.
Cf. Alcoolémie
F
Facteur rhumatoïdes
8h
15-25
24 h
1ml
Facteurs de la coagulation
II; V; VII; X
4h
15-25
24 h
Tube
reservé
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 3 semaines entre +2°C et +8°C ; sinon congelé.
Ferritine
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
Fibrine
8h
15-25
24 h
1 tube
plein
X
8h
15-25
24 h
1ml
X
8h
15-25
8h
15-25
24 h
1ml
P
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 7 jours entre +2°C et +8°C; sinon congelé.
Fer
Folates (acide folique / Vitamine
B9)
Folates erythrocytaires
(acide folique erytrocytaire)
FSH
X


Stable 4h à température ambiante ; sinon congelé.
Stable 48h entre +2°C et +8°C ; sinon congelé pendant 30 jours.
Garder à l'abri de la lumiere.
P
PP
Stable 24h ; sinon cf. notice technique.
G
Gamma GT
76
Analyses
Gazométrie
Glucose
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
Quantité
Ur.
X
15-25
Glycémie post prandiale
1ere et 2ème
determination
15-25
8h
15-25
24 h
24 h
24 h
Stable 2h entre +2°C et +8°C .
prélèvement artériel sur seringue spécifique
(serique ou urinaire)
Groupe sanguin
R
E
N
D
U
1ml
1ml
Stable 24h sur tube fluoré.
 P Autres tubes stables 24 h si centrifugés et aliquotés.
Stables 2h sur si non centrifugés et non aliquoté.
P P P

P P P
Tube
primaire
reservé
Stable 24h sur tube fluoré ou autres tubes si centrifugés et
aliquotés
Stable 1h sur autre tube non aliquoté
Prélèvement 2h après le début du repas
Pour la 2ème determination, un tube prelevé à un moment
différent de la 1ère determination.
Analyse à réaliser sur échantillon frais.
Si analyse différée, conserver entre +2°C et +8°C pendant 48
heures.

Nom de naissance indispensable.
H
Haptoglobine
HBPM
Hémoglobine glyquée
Héparinémie /HBPM
24 h
15-25
24 h
1ml
15-25
24 h
2 ml sang
total
P
Cf. Héparine
24 h
4h
15-25
24 h
1 tube
plein
P
P

Stable 14 jours entre +4°C et +8°C.
Préciser l'heure d'injection et l'heure du prélèvement, le nom de
l'héparine et la posologie.
HNF: Prél.à mi-distance entre 2 injections.
HBPM : -Fragmine, Fraxiparine, Lovenox: Prél. 3 à 4h après
l'injection. -Innohep: Prél. 4 à 6h après l'injection
77
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Hépatite A IgM et IgG
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
Hépatite B:
Anticorps anti HbC totaux
(anti Hbc II)
8h
15-25
24 h
1ml
P
Hépatite B: (CoreM/IgM) Ac
anti HbC IgM
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
Hépatite B: Anticorps anti
HbS
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
Hépatite B: Antigène HbS
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
Hépatite B: Antigène HbS
confirmation
8h
15-25
24 h
1ml
P
Hépatite C charge virale
6h
Mardi
15-25 /Vend
redi
Herpès sérologie
8h
15-25 Jeudi
1ml
P
HIV combo
24 h
15-25
24 h
1ml
P
Hépatite C
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
24 h
15-25 24 h
1ml
PP
2 tubes P 

Envoyer au moins 1,5 ml de plasma ou de sérum.
P
I
IgA/IgG/IgM
78
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
IgE totales
8h
15-25
24 h
1ml
P
IgE spécifiques
8h
15-25
24 h
1 ml
P
8h
15-25
4
jours
1ml
P
Immunoelectrophorèse des
Cf. PBJ
protéines urinaires
Immunoelectrophorèse des
protéines sériques
X
L
Conserver immédiatement l'échantillon sur de la glace.
Séparer le plasma par centrifugation dans les 30 mn après le
prélèvement.
Doser immédiatement.
30
minutes
Glace
24 h
LDH
8h
15-25
24 h
Légionelle urinaire
24 h
15-25
LH
8h
15-25
24 h
1ml
P
Lipase
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Stable 3 semaines entre +2°C et +8°C; sinon congelé.
Lithium
8h
15-25
24 h
1ml
P
Lyme
8h
15-25
24 h
1ml
P
Lactate
PP
1ml

PP
P
P
Stable 24h à température ambiante ; sinon 14 jours entre +2°C
et +4°c.
Stable 7 jours entre +2°C et +8°C; sinon congelé.
79
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
M
Magnésium (serique ou urinaire)
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Méthémoglobine
1h
15-25
24 h
1 ml
P
Microalbumine
8h
15-25
24 h
MNI test (PBD)
8h
15-25
24 h
1ml
P
3h
15-25
48 h
1ml
P
Stable 3h à température ambiante ; sinon congelé.
8h
15-25
Mardi
/Jeudi
1ml
P
8h
15-25
24 h
1ml
PP
8h
15-25
24 h
3 ml sang
total
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
8h
15-25
24 h
1ml

Mycoplasmes urogénitaux
sérologie
X 20€
Mycoplasmes respiratoires
sérologie
X
Stable 1h à température ambiante ; sinon conservation à +4°C.
Signaler la température du patient,
P Dosage possible sur recueil de 24h ou sur 1 miction.
Myoglobine
Hors nomenclature 15,66€ hors milieu
hospitalier
P Stable 7 jours entre +2°C et +8°C; sinon congelé.
P
N
NF plaquettes

O
Oestradiol
P
Parathormone
PBD
Stable 3 jours entre +4°C et +8°C.
Cf. MNI test
80
Analyses
Peptide C
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
X
8h
8h
Phadioatop
Phenotype erythrocytaire
R
E
N
D
U
Quantité
15-25
24 h
1ml
P
15-25
24 h
1ml
P
Ur.
Cf. Groupe
Phosphatase alcaline
X
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Phosphore (serique ou urinaire)
X
8h
15-25
24 h
1ml
PP
P Stable 24h entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
Attention: pas de chocs thermiques.
Prélèvement au laboratoire sur tube gel ; Prélèvement à
P
domicile sur tube hépariné.
Stable 1 semaine entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
Potassium (serique ou urinaire)
4h
15-25
24 h
1ml
P
Préalbumine
8h
15-25
24 h
1ml
P
Procalcitonine
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
Progesterone
8h
15-25
24 h
1ml
P
Prolactine
8h
15-25
24 h
1ml
P
Prélèvement au repos depuis 30 minutes,
Protéines Bence Jones
8h
15-25
24 h
Protéines seriques
24 h
15-25
24 h
P Recueil sur urines de 24 heures,
1ml
PP
Stable 4 semaines entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
81
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Protéines urinaire
8h
15-25
24 h
1ml
PSA totale et libre
8h
15-25
24 h
1ml
P
P
R
RAI (recherche
agglutinines irrégulières)
RAST
8h
15-25
24 h
Tube
P
reservé

Voir groupes (Tube sec possible : bouchon rouge uniquement) .
En cas d'identification ou de titrage, voir "anticorps antierythrocytaire"
Cf. IgE spécifiques
PP
Reserve alcaline
6h
15-25
24 h
1ml
Réticulocytes
8h
15-25
24 h
1ml

Rubéole IgM + IgG
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
SDHEA
8h
15-25
24 h
1ml
P
Sodium (serique ou urinaire)
8h
15-25
24 h
1ml
PP
T3L
8h
15-25
24 h
1ml
P
T4L
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
S
Syphilis sérologie
P Stable 2 semaines entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
Cf. BW
T
82
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
24 h
1 tube
Ur.

Sang total
Préciser la date et l'heure de la dernière prise
Tacrolimus ou Prograff
8h
15-25
Taux de Prothrombine
8h
15-25
24 h
Tube
plein

Respecter le niveau de remplissage. Préciser le traitement et la
pathologie.
TCA
6h
15-25
24 h
Tube
plein

Tégrétol
Cf. Carbamazépine
Testosterone homme
X
8h
15-25
24 h
1ml
P
Tetanos
X
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Thyroglobuline
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Toxocarose
8h
15-25 Mardi
1ml
P
Toxoplasmose IgM + IgG
8h
15-25
24 h
1ml
PPP

Transaminases ALT (TGP)
X
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Transaminases AST (TGO)
X
8h
15-25
24 h
1ml
PP
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
Transferrine
Triglycérides
X
83
Analyses
H
N
J
E
U
N
Conditions
d'acheminement
après le
prélèvement
R
E
N
D
U
Quantité
Ur.
Troponine
4h
15-25
24 h
2ml
PP
TSH
24 h
15-25
24 h
2ml
PPP
24 h
15-25
24 h
1ml
PP
8h
15-25
24 h
1ml
PPP
U
Urée (sérique ou urinaire)
X
P Stable 7 jours entre +4°C et +8°C ; sinon congelé.
V
Vancomycine
Vitamine B9
Cf. Folates
Vitamine B12
8h
15-25
24 h
1ml
PP
Vitamine D
24 h
15-25
24 h
1ml
PPP
VS
8h
15-25
24 h
3 ml sang
total
8h
15-25
24 h
1ml

W
Waaler rose
P
84
PRELEVEMENTS CYTO-BACTERIOLOGIQUE :
D'une manière générale, les délais signalés sont ceux recommandés par les sociétés savantes et les référentiels de microbiologie.
Il faut donc comprendre le laps de temps indiqué comme étant le délai idéal à respecter ; Le laboratoire se reserve le droit à toute
dérogation motivée.
Documents de références / Origine des sources:
- Référentiel en microbiologie :REMIC 4ème édition/2010.
- Coprologie parasitaire et fonctionnelle : Bailanger édition 1982.
Prélèvements à visée
cyto-bactériologique
Conditions d'acheminement
Délai de résultats
hors urgence
Particularités
Urines
Compte d'Addis
< 6 heures
15-25
24h
Protocole particulier : Contacter le laboratoire
Cytologie urinaire
< 6 heures
15-25
24h
Urines ayant séjourné si possible au moins 3 heures dans la vessie
Conservation à 4°C pendant 12 heures
Bactériologie des urines
< 2 heures
15-25
24h si négatif
48h si positif
Recherche de BK urinaires
< 2 heures
15-25
42 jours
Recherche de
mycoplasmes
< 24 heures
15-24
de 3 à 5 jours
Recueil des urines du 1er jet
Recherche Chlamydia
trachomatis (PCR)
< 24 heures
15-25
de 3 à 5 jours
Recueil des urines du 1er jet
Recueil après élimination du 1er jet.
Si collecteur pédiatrique ne pas dépasser 1 heure de pose.
Conservation à + 4°C jusqu'à 24 heures,
85
Selles
Coprologie
< 2 heures
15-25
4 jours
Recherche de rota adeno
virus
< 4 heures
15-25
24 h
Conservation 72 heures à +4°C
Recherche de toxine A et B
de clostridium difficilae
< 4 heures
15-25
24 h
Scotch test
< 24 heures
15-25
24 h
Conservation à température ambiante - dispositif fourni par le laboratoire
Parasitologie
< 24 heures
15-25
4 jours
Si recherche de formes végétatives de protozoaires, l'émission des selles doit
avoir lieu au laboratoire.
Recherche d'anguillule :
Baerman
< 3 heures
15-25
4 jours
Contacter le laboratoire - analyse non réalisée tous les jours
Recherche de sang dans
les selles
< 24 heures
15-25
24 h
Conservation à + 4 C pendant 12heures maximum.
Prélèvement uro-génitaux
Prélèvement uretral
< 6 heures
15-25
5 jours
1 écouvillon fin: Milieu de transport Eswab
Prélèvement vaginal
< 6 heures
15-25
5 jours
Ecouvillon sur milieu de transport Eswab
le plus rapidement
15-25
5 jours
Si le spermogramme est associé à la culture : le prélèvement doit être fait au
laboratoire site du PDC ou de Grenade sur rendez vous
Chlamydia par PCRendocervical et uretral
< 24 heures
15-25
3 à 5 jours
1 écouvillon dans milieu de transport spécifique- contacter le laboratoire
Mycoplasme
< 24 heures
15-25
3 jours
le plus rapidement
15-25
3 jours
Spermoculture
Papillomavirus, HPV
86
Prélèvement divers nouveaux nés
Liquide gastrique nouveau
né
< 2 heures
15-25
3 jours
Prélèvements périnataux
périphériques anus oreille
aine
< 12 heures
15-25
3 jours
Prélèvements ORL
Prélèvement de gorge
< 4 heures
15-25
3 jours
Prélèvement des fosses
nasales et sinus
< 4 heures
15-25
3 jours
15-25
24 h
15-25
3 jours
Recherche directe du virus
de la grippe
Prélèvement oculaire
< 4 heures
Contacter le laboratoire
Si PCR Chlamydiae trachomatis demandée rajouter écouvillon spécifique,
Prélèvements broncho-pulmonaires
Expectoration
< 8 heures
15-25
4 jours
Recueil dans flacon stérile type ECBU sans additif
Prélèvement endo
bronchique
< 8 heures
15-25
4 jours
Réalisé par un médecin sur flacon stérile
Recherche de BK sur
crachat
< 8 heures
15-25
J+42
Recueil dans flacon stérile type ECBU sans additif, 3 recueils sur 3 jours
87
Prélèvements cutanés
Pus simple
< 4 heures
15-25
3 jours
Ecouvillon sur milieu de transport Eswab.
Conservation 12 h à température ambiante avec milieu de transport.
Pus profond
< 4 heures
15-25
5 jours
Ecouvillon sur milieu de transport Eswab.
Conservation 12 h à température ambiante avec milieu de transport.
Prélèvement à visée
mycologique,
dermatophyte
15-25
2 à 4 semaines
Recherche de sarcopte et
démodex
15-25
24 h
Prélèvements uniquement au laboratoire (curette + boîte de pétri)
Prélèvements uniquement au laboratoire
Liquide de ponction
LCR
le plus rapidement
15-25
3 jours
Liquide ascite, pleural,
péricardique
< 2 heures
15-25
4 jours
Liquide articulaire
< 4 heures
15-25
4 jours
Flacon stérile type ECBU et tube avec anticoagulant citrate de sodium de
préférence.
Analyse d'eau
Bactériologie
24 heures
2-8
1 Semaine
Flacon spécial fourni par le laboratoire ; Tarif: contacter le laboratoire.
Chimie
24 heures
2-8
1 Semaine
Piscine de particulier
24 heures
2-8
1 Semaine
88

Guide du prélèvement - Laboratoires Biofusion

Transcription

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