Prog DU Diagnostic - Formation continue Université Paris Descartes

Le D.U. : « Diagnostic de l’infertilité et Aide Médicale à la Procréation » est organisé sous
forme de modules obligatoires et optionnels. Il s’obtient en capitalisant trois modules
obligatoires et au moins deux modules optionnels, le total horaire devant être égal au moins à
96 heures.
MODULES OBLIGATOIRES : MODULES I, II et III
Module I : SPERMIOLOGIE (J. Auger, F. Eustache) : 35 heures
Equipe pédagogique : J. Auger, F. Eustache, P. Jouannet, J.-M. Kunstmann, techniciens
hospitaliers et universitaires (C. Le Bon, G. Liméa, C. Lesaffre).
Cours théoriques :
- Spermogramme – spermocytogramme (3h00)
- Interaction spermatozoïde – glaire cervicale : test de pénétration in vitro, test de Hühner
(1h30)
- Techniques de préparation de sperme en vue d’Aide Médicale à la Procréation (3h00)
- Anticorps anti-spermatozoïdes : recherche directe sur les spermatozoïdes (Martest,
immunobilles), recherche dans le plasma séminal, le sérum et la glaire cervicale (1h30)
- Recueil et préparation des spermatozoïdes en cas d’éjaculation rétrograde (0h30)
- Biochimie séminale (1h00)
- Assurance qualité et contrôle de qualité en spermiologie (2h00)
- Les inséminations intra-utérines (1h00)
Travaux pratiques :
- Spermogramme – spermocytogramme (8h00)
- Interaction spermatozoïde – glaire cervicale : test de pénétration in vitro, test de Hühner
(2h00)
- Techniques de préparation de sperme en vue d’AMP (6h00)
- Anticorps anti-spermatozoïdes : recherche directe sur les spermatozoïdes (Martest,
immunobilles), recherche dans le plasma séminal, le sérum et la glaire cervicale (1h30)
Travaux dirigés :
- Interprétation de la biochimie du plasma séminale et de la spermoculture (1h30)
- Rédaction de conclusion d’examens en spermiologie (1h30)
- Présentation du CECOS (1h00)
Soit sur cinq jours :
Cours théoriques : 13h30
Travaux pratiques : 17h30
Travaux dirigés : 4h
Module II : FECONDATION IN VITRO SANS MICROMANIPULATION (C. Patrat) : 35 heures
Equipe pédagogique : C. Patrat, techniciens hospitaliers et universitaires (Jean-Claude
Julliard, C. Lesaffre).
Cours théoriques :
- Rappel sur l’analyse du sperme et les techniques de sélection des spermatozoïdes mobiles
- Evaluation de la qualité du sperme pour FIV (1H00)
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-
-
Techniques de préparation du sperme dans des situations particulières
(oligoasthénostératospermie – anticorps anti-spermatozoïdes – éjaculation rétrograde –
infection spermatique chronique – atteinte neurologique) (1H00)
Organisation générale et étapes de déroulement d’une FIV (2H00)
Aspects cliniques de la FIV (indications, bilan, stimulation et monitorage – ponction
folliculaire) (2H00)
Décoronisation et observation des zygotes (1h00)
Préparation des milieux et conditions de culture ovocytaire et embryonnaire (1h00)
Evaluation de la qualité embryonnaire, politique de transfert embryonnaire et transfert
embryonnaire (1h00)
Evaluation : Bilans FIVNAT, bilans ministériels, suivi des grossesses et des enfants après
FIV (2h00)
Loi, réglementation et éthique (2h00)
Assurance et contrôle de qualité en FIV (2h00)
Travaux dirigés
- Préparation du sperme (1h00)
- Discussion de dossiers (1h30)
- Evaluation sur documents photographiques et en vidéographie de la qualité des ovocytes
fécondés et non fécondés et des embryons aux différents stades de leur développement
(3h30)
Travaux pratiques
Préparation des spermatozoïdes pour la FIV (2h00)
Deux séances de réalisation de FIV chez la souris : préparation du matériel, des ovocytes,
réalisation de la FIV, culture embryonnaire chez la souris, préparation des cathéters de
transferts embryonnaires (14 heures)
Soit sur cinq jours:
- cours théoriques : 15 heures
- travaux dirigés : 6 heures
- travaux pratiques : 14 heures
PRISE EN CHARGE DE L’AIDE MEDICALE A LA PROCREATION: ASPECTS
ORGANISATIONNELS ET MEDICAUX – ASPECTS SPÉCIFIQUES CONCERNANT LA PRISE EN
CHARGE DES COUPLES À RISQUE VIRAL IDENTIFIE (E. Dulioust, JM Kunstmann) : 14
Module III :
heures
Equipe pédagogique : E. Dulioust, J.M. Kunstmann, C. Patrat, N. Thiounn, M. Leruez-Ville,
technicien hospitalier (Jean-Claude Julliard)
Cours théoriques :
- L’Assistance médicale à la Procréation (AMP) : rappel des techniques courantes, les
techniques innovantes et perspectives (1 heure)
- Organisation d’un centre d’AMP : rôle et responsabilité respectifs du biologiste et du
clinicien : liens et complémentarité (0 heure30)
- Aspects cliniques : monitorage de l’induction de l’ovulation, insémination intra-utérine,
prélèvement d’ovocytes et transfert d’embryons (1 heure)
- Programme informatique et base de données – évaluation des résultats (0 heure 30)
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-
Acquisition des bases théoriques pour la prise en charge en AMP de couples dont
l’homme et/ou la femme est porteur du VIH, VHC et/ou VHB. Apprentissage des
différentes techniques de préparation de sperme à risque viral. (7 heures)
Organisation : 14 heures - 2 jours – 25% TD
Travaux dirigés :
- Indications, résultats et limites des différentes méthodes d’AMP : analyse de dossiers et de
cas cliniques (3 heures)
- Aspects réglementaires, juridiques et éthiques (à partir de cas cliniques) (1 heure)
Soit sur deux jours :
Cours théoriques : 10 heures
Travaux dirigés : 4 heures
MODULES OPTIONNELS : MODULES IV, V, VI, VII, VIII, IX ET X
Module IV : FECONDATION IN VITRO AVEC MICROMANIPULATION (P. Fauque) : 21 heures
Equipe pédagogique : P. Fauque, technicien universitaire (C. Lesaffre).
Cours théoriques
- Organisation générale et étapes de déroulement d’une Fécondation In Vitro avec
micromanipulation (1h00)
- Techniques de micro-injection (présentation du matériel, principes de la technique et de la
confection des pipettes) (1h00)
- Principes de la préparation des boîtes pour la culture, la décoronisation et la
microinjection (1h00)
- Techniques de décoronisation des ovocytes (1h00)
- Préparation des spermes (1h00)
Travaux pratiques :
- Préparation des boîtes pour la culture, la décoronisation et la microinjection (1h00)
- Décoronisation des ovocytes (2h00)
- Préparation de sperme (1h00)
- Mise en place des pipettes de micro-injection (2h00)
- Réalisation pratique d’une microinjection par les stagiaires sur différents postes de
micromanipulation (10h00)
Soit sur trois jours:
Cours théoriques : 5h
Travaux pratiques : 16h00
Module V : CONGÉLATION DE SPERME ET D’EMBRYONS (E. Dulioust) : 21 heures
Equipe pédagogique : E. Dulioust, J.M. Kunstmann, J. Auger, C. Patrat, P. Fauque,
techniciens hospitaliers et universitaires (C. Le Bon, C. Lesaffre).
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Cours théoriques :
- Aspects théoriques de la congélation des cellules, du sperme et des embryons (1h30)
- Indications de la congélation du sperme humain – Stratégies possibles d’utilisation du
sperme congelé – Assurance et contrôle de qualité (1h30)
- Congélation et décongélation de spermatozoïdes prélevés chirurgicalement (1h30)
- Aspects réglementaires et éthiques de la conservation des gamètes et des embryons (1h)
- Congélation et décongélation de gamètes et d’embryons à risque viral (1 h30)
- Perspectives d’avenir (ovocytes, tissu gonadique) (1h30)
Travaux dirigés :
- Présentation et fonctionnement des appareils à congélation pour sperme et embryons (2h)
- Gestion d’une banque de sperme et d’embryons – Présentation du CECOS (1h30)
Travaux pratiques :
- Congélation et décongélation de spermatozoïdes humains éjaculés (2h)
- Congélation et décongélation d’embryons de souris (6h)
- Préparation d’un sperme congelé en vue d’Aide Médicale à la Procréation (1h)
Soit sur trois jours
Cours théoriques : 8 h 30
Travaux dirigés : 3 h 30
Travaux pratiques : 9 h
Module VI : ANALYSE MORPHOLOGIQUE DES SPERMATOZOÏDES (J. Auger, F. Eustache) :
14 heures
Equipe pédagogique : J. Auger, F. Eustache, techniciens hospitaliers et universitaires (F.
Roques, C. Lesaffre).
Cours théoriques :
- Les recommandations de l’OMS de 1999 (0h30)
- La classification de David modifiée : pourquoi ? comment ? (1h00)
- Techniques de préparation et de coloration d’un frottis (1h)
- Reconnaissance des cellules rondes : comment ? pourquoi ? exemples concrets (1h00)
- Intérêt clinique de l’évaluation de la morphologie spermatique : état des connaissances et
analyses de dossiers (1h00)
Travaux pratiques :
- Description de la morphologie spermatique (en commun sur vidéo-microscope et
individuellement sur microscope) (7h30)
- Contrôle de qualité de l’analyse morphologique (2h)
Soit sur deux jours
- cours théoriques : 4h30
- travaux pratiques : 9h30
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Module VII : FONCTION NUCLÉAIRE DES SPERMATOZOÏDES (J.M. Dupont, J. Auger) (7
heures)
Equipe pédagogique : J.M. Dupont, J. Auger, F. Eustache, techniciens hospitaliers et
universitaires (C. Lesaffre).
Cours théoriques :
- Cytogénétique humaine : Méthodes et domaines d’application, rappels sur la structure des
chromosomes, technique d’observation des chromosomes, anomalies chromosomiques,
applications en clinique (2 heures)
- Cytogénétique moléculaire : Principes des techniques, sondes d’hybridation, technique
d’hybridation in situ, cas particulier de l’hybridation interphasique, application aux
spermatozoïdes (2 heures)
- Organisation nucléaire du spermatozoïde humain.
Travaux pratiques :
- Hybridation : Présentations des cas cliniques (3 heures)
Soit au total sur un jour :
- cours théoriques : 4 heures
- travaux dirigés : 3 heures
Module VIII : EVALUATION
DE LA CAPACITÉ FÉCONDANTE DES SPERMATOZOÏDES
(C.
Serres, J. Auer, C. Patrat, A. Ziyyat) (21 heures)
Equipe pédagogique : C. Serres, J. Auer, C. Patrat, A. Ziyyat
Cours théoriques :
- Méthodes d’évaluation du mouvement des spermatozoïdes (0h30)
- Méthodes d’évaluation de la réaction acrosomique (1h 00)
- Méthodes d’évaluation de liaison des spermatozoïdes à la zone pellucide et de la fusion
spermatozoïde – ovocyte (2h30)
Travaux dirigés :
Indications et interprétation des résultats (à partir de cas cliniques) (2 heures)
Travaux pratiques :
- Mise en évidence de la réaction acrosomique spontanée et induite, en microscopie à
fluorescence et en cytométrie en flux (5 h00)
- Test de liaison des spermatozoïdes à la zone pellucide (4h00)
- Test de pénétration des ovocytes de hamster dépellucidés (6 heures)
Soit sur trois jours :
- cours théoriques : 4 heures
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-
travaux dirigés : 2 heures
travaux pratiques : 15 heures
Module IX : Investigation génétique dans la stérilité masculine (T. Bienvenu, C. Patrat,
F. Baverel) (16 h00)
Equipe pédagogique : T. Bienvenu, C. Patrat, F. Baverel, G. Viot
Cours théoriques :
- Aspects génétiques de l’infertilité masculine (2h00)
- Cytogénétique humaine : Méthodes et domaines d’application, rappels sur la structure des
chromosomes, technique d’observation des chromosomes, anomalies chromosomiques,
applications en clinique (2 h00)
- Principes des techniques de biologie moléculaire utilisées (PCR multiplex, Southern Blot,
DGGE) (2h00)
Travaux dirigés :
- Indications et résultats de la demande de caryotype constitutionnel et de la recherche de
microdélétion du chromosome Y, analyse de dossiers (1 h30)
- Le conseil génétique en cas d’anomalies chromosomiques et microdélétion du
chromosome Y : à partir d’un cas clinique (1h30)
Travaux pratiques :
- Réalisation d’une PCR multiplex permettant l’étude moléculaire du chromosome Y
(5h00)
- Interprétation des résultats en fonction des différentes techniques de biologie moléculaire
utilisées (2h00)
Soit sur deux jours:
- cours théoriques : 4h00
- travaux dirigés : 2h00
- travaux pratiques : 6h00
INFERTILITÉ MASCULINE, BIOPSIE TESTICULAIRE ET PRELEVEMENTS
CHIRURGICAUX DE SPERMATOZOIDES EN VUE D’AIDE MEDICALE A LA PROCREATION (A.
Module X :
Vieillefond, J.-M. Kunstmann, N. Thiounn) (7 heures)
Equipe pédagogique : A. Vieillefond, C. Patrat, N. Thiounn, J.-M. Kunstmann, technicien
hospitalier (C. Le Bon)
Cours théoriques :
- Indications de la biopsie testiculaire et des prélèvements chirurgicaux de spermatozoïdes
en cas d’infertilité masculine- Conditions et organisation technique du prélèvement (1h30)
- Cryoconservation des spermatozoïdes testiculaires et épididymaires et utilisation (1h00)
- Description des différentes techniques d’anatomo-pathologie utilisées dans les biopsies
testiculaires (1h30)
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Travaux dirigés :
Etude de cas cliniques (1h00)
Travaux pratiques :
Analyse de biopsies testiculaires normales et pathologiques (commune par vidéo-projection et
individuelle sur microscope) (3 h00)
Soit sur une journée:
- cours théoriques : 3h00
- travaux dirigés : 1h00
- travaux pratiques : 3h00
Récapitulatif des modules d’enseignement :
Modules
obligatoires
Modules
optionnels
I
II
III
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
Cours
théoriques
13h30
15h
10h
5h
8h30
4h30
4h
4h
4h
3h
Travaux
dirigés
4
6h
3h30
3h
2h
2h
1h
Travaux
pratiques
17h30
14h
4h
16h
9h
9h30
15h
6h
3h
TOTAL
35h
35h
14h
21h
21h
14h
7h
21h
12h
7h
Selon le choix des modules optionnels , la durée d’enseignement (5 modules) varie de 96
à 129 heures (moyenne 105 heures).
La formation ne comporte pas de stage.
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