ATPase Lyophilisée pour réaction histo-enzymatique 30

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ATPase Lyophilisée pour réaction histo-enzymatique 30
ATPase
Lyophilisée pour réaction histo-enzymatique
30 – 30125LY
IVD Dispositif médical de diagnostic in vitro
Code CND : W01030708
volume de la solution de travail ... temps de réalisation .................... 43 minutes
température de stockage ............. Réactif 4 (lyophilisé) : - 20°C
Réactifs 1, 2, 3, 5, 6 et 7 : 2-8 °C
équipement complémentaire ....... aucun
But prévu
Produit pour la préparation d'échantillons cyto-histologiques à examiner en microscopie optique.
Application
Coupes cryostatiques de 8 microns de muscle strié. Typisation des fibres musculaires.
Méthode
- Les solutions fournies, prêtes à l'emploi, permettent l'utilisation de la méthode simultanément sur les 3
coupes en série de l'échantillon à examiner.
- La réaction peut être obtenue en utilisant les récipients des réactifs comme cuvette d'incubation. Sinon,
il est possible d'utiliser des cuvettes verticales pour histologie de 50 ml en veillant à placer la coupe dans
la partie inférieure de la lamelle.
- Pour une application correcte de la méthode, il est nécessaire d'utiliser les réactifs portés à température
ambiante.
1) Marquer les 3 lamelles sur lesquelles ont été précédemment placées les 3 coupes en série de
l'échantillon de la façon suivante : 4,3 - 4,7 - 10,4
2) Préparation du milieu d'incubation (réactifs 4 et 5) : verser une partie (environ 10 ml) du réactif 5
(solution de régénération)dans le récipient du réactif 4 lyophilisé. Agiter jusqu'à dissolution et
réintroduire la solution obtenue dans le récipient de réactif 5.
3) Introduire la lamelle 4,3 dans le récipient de réactif 1. Incuber à 37 °C pendant 10 minutes.
4) Introduire la lamelle 4,7 dans le récipient de réactif 2. Incuber à 37 °C pendant 10 minutes.
5) Introduire la lamelle 10,4 dans le récipient de réactif 3. Incuber à 37 °C pendant 10 minutes.
6) Égoutter.
7) Introduire chaque coupe séparément dans les récipients de réactif 5. Incuber à 37 °C 30 minutes.
8) Laver dans de l'eau distillée.
9) Introduire chaque coupe séparément dans les récipients de réactif 6. Incuber 2 minutes.
10) Répéter l'opération en utilisant les récipients de réactif 6 restants.
11) Laver soigneusement dans de l'eau distillée.
12) Introduire chaque coupe séparément dans les récipients de réactif 7. Incuber pendant 1 minute.
13) Laver soigneusement dans de l'eau distillée.
14) Déshydrater, cet monter avec une solution xylénique de montage.
Résultats
Noyaux .............................................................................................................................................. bleu
Coupe 10,4 - pré-incubation à pH 10,4
Fibres type 1........................................................................................................................... beige/blanc
Fibres type 2A ........................................................................................................................ marron/noir
Fibres type 2B ........................................................................................................................ marron/noir
Coupe 4,7 - pré-incubation pH 4,7
Fibres type 1.................................................................................................................................. marron
Fibres type 2A ........................................................................................................................ beige/blanc
Fibres type 2B ......................................................................................................... marron/marron foncé
coupe 4,3 - pré-incubation pH 4,3
Fibres type 1.................................................................................................................................. marron
Fibres type 2A ........................................................................................................................ beige/blanc
Fibres type 2B ................................................................................................................................. beige
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Fabricant : Bio-Optica Milano s.p.a.
Bio Optica Milano s.p.a.
via San Faustino 58 • I - 20134 Milan
tél. +39 02212713.1 • fax +39 022153000
www.bio-optica.it
Composants
Composants
A - RÉACTIF 1 ........................... 1 x 30 ml
tampon acétate pH 4,3
B - RÉACTIF 2 ........................... 1 x 30 ml
tampon acétate pH 4,7
C - RÉACTIF 3 ........................... 1 x 30 ml
tampon glycine/NaOH pH 10,4
D - RÉACTIF 4 .......................... 3 x 15 mg
adénosine-5-triphosphate (lyophilisée)
E - RÉACTIF 5 ........................... 3 x 30 ml
milieu d'incubation (régénération du
lyophilisé)
F - RÉACTIF 6............................ 6 x 30 ml
chlorure de cobalt en solution à 2 %
G - RÉACTIF 7 ........................... 3 x 30 ml
sulfure d'ammonium en solution à 2 %
CAS
CE
Index
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7791-13-1
231-589-4
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12135-76-1
235-223-4
-
Avertissements et
précautions
Le produit doit être utilisé par du personnel technique spécialisé.
Le produit est classé comme dangereux.
Lire attentivement les informations figurant sur l'étiquette (symboles de danger, phrases de risque et de
sécurité), et consulter toujours la fiche de sécurité contenant les informations relatives aux risques
présentés par la préparation, les mesures de précaution à adopter pendant l'utilisation et les premiers
soins, ainsi que les mesures en cas de dispersion accidentelle.
Ne pas utiliser si le conditionnement primaire a été endommagé.
Conservation
Conserver le réactif 4 à -20°C et tous les autres réactifs à 2-8°C. La permanence de toutes les solutions à
-20°C ne les altèrent pas à condition de rapporter tous les réactifs à température ambiante avant de les
utiliser. Les récipients doivent être toujours bien fermés.
Stabilité
Si l'on souhaite aliquoter et congeler le produit à -20 ° C pour une utilisation ultérieure, Bio-Optica ne
répond pas des pertes d'activité résultant d'une telle pratique. Validité du produit : 1 année.
Élimination
Déchet dangereux ; confier à des entreprises spécialisées et agréées, selon les lois en vigueur.
Bibliographie
•
Brooke MH, Kaiser KK. Some comments on the histochemical characteristics of muscle adenosine
triphosphatase. J Histochem Cytochem. 1969 ;17 :431-432. Brooke MH, Kaiser KK. Three "myosin
adenosine triphosphatase" systems: the nature of the pH lability and sulphydryl dependence. J
Histochem Cytochem. 1970 ;18 :670-672. Padykula HA, Herman E. The specificity of the
histochemical method for adenosine triphosphatase. J Histochem Cytochem. 1955;3: 170-195
Date d'émission : novembre 2013
Résultats
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