Nanogénotoxicologie

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Nanogénotoxicologie
Nanogénotoxicologie
D. Marzin
Institut Pasteur de Lille
Université Lille 2
34ème Congrès annuel de la SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris.
"Nanotechnologies : Evaluation du risque toxique "
Données disponibles
• Relativement limitées
• Surtout in vitro
• Quelques NP largement étudiées
–
–
–
–
–
–
Oxyde de titane (usage en cosmétique)
Nanotubes et fullerènes
Métaux (Co, W, …)
Silice, quartz
Particules diesel, noir de carbone…
Amiante (assimilée)
• In vivo surtout au niveau du poumon
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Cibles potentielles
ROS
Interférence mécanique
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
Gonzalez et al., 2008 - Nanotoxicology sous presse
D. Marzin
Critères devant être maîtrisés
Propres aux NP
• Propriétés uniques spécifiques à chaque NP
interprétation délicate
• Plusieurs mécanismes apparents
• Nombreux paramètres à maîtriser
– Taille (distribution)
– Structure
– Composition/pureté
– Charges de surface (potentiel zéta)
– Surface spécifique
– Forme/morphologie (forme cristalline)
– Porosité
– Capacité de former des agrégats (dans un milieu)
– Traitement de surface.
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D. Marzin
Critères devant être maîtrisés
Propres au système d’essai
• Type cellulaire
• Environnement cellulaire
– Présence de protéines
– Présence de mucus (poumon)
•
•
•
•
Niveau de toxicité cellulaire (méthode/temps)
Choix de la dose forte
Schéma de traitement
In vitro/in vivo.
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D. Marzin
Les formes réactives de l’oxygène et
de l’azote (ROS/RNS) jouent un rôle
clé dans les effets génotoxiques des
nanoparticules
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Origine des formes radicalaires
génotoxiques
• Génération intrinsèque de ROS par les particules
génotoxicité primaire (directe ou indirecte)
– Surface associée avec des radicaux libres ou des
groupements oxydants (ex: SiO2 sous forme cristalline)
– Génération de formes radicalaires par certaines
particules en solution aqueuse
Ex : Réaction d’Haber-Weiss:
O 2• - + H2 O2 → OH• + HO - + O2 ,
– biotransformation de HAP associés aux particules
formant un cycle redox de semiquinones .
Schins et Knaapen,
Knaapen, (2008)
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Origine des formes radicalaires
génotoxiques
• Génération de ROS par interaction des particules
avec les cibles cellulaires
génotoxicité primaire (indirecte)
– lésions des mitochondries et interaction avec la chaîne
de transport des électrons
– Activation de systèmes enzymatiques oxydases
NAD(P)H
– Perturbation des moyens de défense endogène antioxydants.
Schins et Knaapen,
Knaapen, (2008)
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D. Marzin
Origine des formes radicalaires
génotoxiques
• Génération de ROS et RNS pendant le phénomène
inflammatoire induit par les particules génotoxicité secondaire
– Phagocytose macrophages
– Polynucléaires neutrophiles (PNN)
– oxydase NADPH, nitric oxyde synthétase (NOS),
myélopéroxydase (MPO), superoxyde dismutase (SOD).
Schins et Knaapen,
Knaapen, (2008)
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Réactions enzymatiques produisant ROS/RNS
Knappen et al. Mutagenesis (2006)
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D. Marzin
Conséquences des lésions oxydatives de l’ADN
• ROS et RNS causent de nombreux dommages
à l’ADN:
–
–
–
–
–
–
Oxydation de bases
Nitration de bases
Dépurination
Méthylation
Déamination
Induction de fapy (ouverture cycle)…
• De toutes les formes radicalaires (ROS / RNS)
le radical hydroxy (OH) est le plus réactif.
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Conséquences des lésions oxydatives de l’ADN
• 8-hydroxy-2’-déoxyguanosine (8-OH-dG) :
• lésion la plus connue
• Formation démontrée avec nanoparticules de TiO2,
silice cristalline , particules de combustion, particules
atmosphériques.
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Conséquences des lésions oxydatives de l’ADN
• ROS et RNS peuvent induire
– Des éthéno-adduits : radicaux formés pendant la
peroxydation lipidique associée à la formation de
dérivés électrophiles :
malondialdéhyde, 4-hydroxynonénal
– Démontré avec silice cristalline et amiante.
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Conséquences des lésions oxydatives de l’ADN
• ROS et RNS peuvent induire des
cassures simple brin d’ADN:
– quartz, particules diesel, noir de carbone, TiO2,
silice cristalline et fibres d’amiante
• Attaque directe du squelette d’ADN (coupure du
cycle du désoxyribose)
• Pendant le processus de réparation de l’ADN
(BER).
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Nanoparticules et lésions oxydatives de l’ADN
• Confirmation des lésions oxydatives in vivo
– Chez le rat: incidence élevée de 8-OH-dG au
niveau des poumons: (Ichinose et al., 1997; Seiler et al.,
2001; Gallagher et al. 2003)
• silice, particules diesel, noir de carbone
– Chez la souris transgénique (Big Blue® : lacI) :
mutations corrélées avec taux 8-OH-dG
• particules diesel (Sato et al. 2000)
• Mutations transversions G T
– Chez la souris transgénique mutations
mutations corrélées avec taux 8-OH-dG
• crocidolite par voie IP (Unfried et al., 2002)
• Mutations transversions G T .
D. Marzin
Nanoparticules et lésions oxydatives de l’ADN
• Confirmation des lésions oxydatives in vivo
– Chez le rat: mutations au locus HPRT
• Cellules alvéolaires (Driscoll et al., 1997)
• Silice cristalline, noir de carbone, TiO2
• Uniquement aux doses induisant une inflammation
• Ces particules n’induisent pas de mutations sur ces
cellules in vitro
– Neutrophiles activés in vivo induisent in vitro sur
des cellules épithéliales pulmonaires
• Cassures simple brin
• 8-OH-dG (Knaapen et al., 1999; 2004)
– Cellules de lavage bronchoalvéolaire traitées in
vivo par des nanoparticules cellules poumons
• 8-OH-dG (Driscoll et al., 1997)
rôle de l’inflammation
D. Marzin
Nanoparticules et lésions oxydatives de l’ADN
•MAIS
– Chez le rat: mutations au locus HPRT par la
Silice cristalline et Silice amorphe
• Même inflammation avec les 2 types de silices
• Mutations uniquement avec Silice cristalline
(Johnson et al. 2000)
– Induction de ROS et RNS par inflammation
par Silice cristalline
• Pas d’ 8-OH-dG poumon du rat (Albrecht et al. 2005)
– Serait dû à l’apoptose et à l’induction de
réparation ADN (Johnson et al. 2000)
Ramener tout à l’inflammation
serait trop simpliste
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Nanoparticules et adduits à l’ADN
Nanoparticules et adduits à l’ADN
• Particules adsorbent des composés organiques :
HAP sur particules diesel ou le noir de carbone
• Mutagenèse dépend
– Capacité de désorption dans un milieu biologique
– Des propriétés de surface des particules
• Porosité, surface spécifique, charge
– Composition des produits organiques adsorbés
– Du type cellulaire utilisé.
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Nanoparticules et adduits à l’ADN
• Produits adsorbés sur les particules
– pénétration dans la cellule
– ROS générées par particules impact sur
•
•
•
•
Métabolisme
Apoptose
Prolifération cellulaire
Réparation de l’ADN.
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D. Marzin
Nanoparticules et adduits à l’ADN
d’aprè
après
Schins et Knaapen,
Knaapen,
(2008)
biodisponibilité
Métaux, semiquinones
ROS/RNS (inflammation)
Réparation ADN,
arrêt cycle cellulaire
Apoptose/nécrose
Activation
métabolique
Adduits ADN
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
mutagenèse
D. Marzin
Inflammation induite par les NP et
mutagenèse
Rôle de polynucléaires neutrophiles
D. Marzin
Polynucléaires neutrophiles (PNN) et ROS/RNS
Knappen et al. Mutagenesis (2006)
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D. Marzin
Neutrophiles augmentent la formation des
adduits à l’ADN
Cocultures PNN activés et RLE (poumon de rat)
RLE
PNN activés
B[a]P
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
+
+
+
+
+
Borm et al, Env. Health. Persp., 1997
D. Marzin
Neutrophiles augmentent la formation des
adduits à l’ADN
PNN
PNN
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
Borm et al, Env. Health. Persp., 1997
D. Marzin
Effet des PNN sur la
réparation de l’ADN
Güngör et al,
FASEB journal 2007
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Effet des PNN sur la
réparation de l’ADN
Expression de gènes de NER
Traitement par HOCL 15 mn
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
Güngör et al,
FASEB journal 2007
D. Marzin
Effet des PNN sur la
réparation de l’ADN
Expression de gènes de NER
Traitement par HOCL 15 mn
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
Güngör et al,
FASEB journal 2007
D. Marzin
Effet des PNN sur la
réparation de l’ADN
Expression de gènes de NER
Traitement par HOCL 15 mn
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
Güngör et al,
FASEB journal 2007
D. Marzin
Mutation de la MPO et adduits à l’ADN
Génotype
sauvage
fumeurs
Génotype
muté
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Van Schooten et al,
Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2004
D. Marzin
Nanoparticules et réparation de l’ADN
• Crocidolite expression
–
–
–
–
Fpg
AP endonucléase
Le nombre de sites AP (in vitro et in vivo)
MTH1 prévient la mutagenèse en hydrolysant la 8-oxodGTP en 8-oxo-dGMP
• Certains métaux (Ni, Cd, Co, «As»…) inhibent
– BER
– NER
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D. Marzin
Nanoparticules et aneuploïdies
Nanoparticules et aneuploïdies
90
*
% 80
MN70
*
*
*
60
CC+
Total
50
40
*
30
20
10
0
témoin
MWCNT 10 MWCNT 25 MWCNT 50 WC-Co50
D’après J. Muller et al.,
Carcinogenesis 2008
MWCNT = multiwall
carbon nanotubes
WC-Co = carbure
de tungstène-cobalt
Confirmé avec des NP de silice
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D. Marzin
Mécanismes généraux de génotoxicité
d’aprè
après
Knappen et al.,
2005)
Nucléole
Fuseau
centromères
mitochondries
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Mécanismes généraux de génotoxicité
d’aprè
après
Knappen et al.,
2005)
Nucléole
Fuseau
centromères
mitochondries
SFT 20 - 21 octobre 2008, Paris
D. Marzin
Mécanismes généraux de génotoxicité
d’aprè
après
Knappen et al.,
2005)
ROS
RNS
inflammation
O2
O2•-
7
6
1
2
Radicaux
liés à la surface
3
Surface
réaction
4
ROS
RNS
Nucléole
Fuseau
centromères
M+
mitochondries
Métal
soluble
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5
Particule +
mutagène
D. Marzin
Nanoparticules et prolifération
d’aprè
après
Knappen et al.,
2005)
Métaux
solubles
ROS/RNS
Cytokines
f. croissance
Protéines
Matrice
Extra cellulaire
Récepteurs membranaires
i.e. EGF-R
Intégrines
MAPK
kinases liées
aux integrines
NFκB
Facteurs de transcriptions,
i.e. NFκB, AP-1
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D. Marzin
Nanoparticules et cancer
Exposition
aux nanoparticules
Interaction
Directe
Production
de ROS/RNS
Lésions de l ’ADN
d’aprè
après
Schins et Knaapen,
Knaapen,
2007)
Génotoxicité
Inflammation chronique
et libération de ROS/RNS
inhibition
Réparation ADN
PROLIFERATION
Apoptose
Arrêt cycle cellulaire
Réparation ADN
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Induction de tumeurs
D. Marzin
Nanoparticules et
évaluation du risque génotoxique
• Conséquences en termes d’évaluation du risque
– si l’inflammation a un rôle
nécessité de tests in vivo
ou de cultures mixtes (PNN, autres)
– Mettre en évidence les lésions oxydatives
optimiser les tests
ex : utiliser fpg et/ou hOGG1
dans le test des comètes
– Prendre en compte les effets sur l’ADN et sur le fuseau
mutations géniques, clastogenèse, aneuploïdies
– Interpréter la génotoxicité avec les études de toxicité
inflammation (Quel organe? Quelle dose?…)
– Bien choisir les cellules cibles
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Conclusions
• Besoins
– Mieux comprendre les mécanismes de la
génotoxicité des NP
– Mieux comprendre les paramètres des NP
importants dans les effets génotoxiques
– Intégrer la mutagenèse dans l’ensemble des
effets toxiques
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D. Marzin

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