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Premières identifications de Leishmania infantum MON-80 chez le chien en Algérie et en Tunisie R. BENIKHLEF1, K. AOUN2*, K. BEDOUI3, Z. HARRAT1, A. BOURATBINE2 Service d’Eco-épidemiologie Parasitaire, Institut Pasteur d’Alger, Dely Ibrahim 16 047 Alger, ALGERIE. Laboratoire de recherche «Parasitoses émergentes» LR 05-SP-03, Institut Pasteur de Tunis, 13 place Pasteur, B 74, 1 002 Tunis, TUNISIE. 3 Service Vétérinaire et d’Hygiène alimentaire, Ministère de l’Intérieur, Avenue Habib Bourguiba, 1001 Tunis, TUNISIE. 1 2 * Auteur chargé de la correspondance : [email protected] RÉSUMÉ Cette étude présente l’identification, pour la première fois, de Leishmania infantum zymodème MON-80 chez 6 chiens provenant d’Algérie et de Tunisie par la méthode de migration électrophorétique comparatives des iso-enzymes parasitaires. Ce variant enzymatique ayant déjà été signalé chez l’homme lors de leishmanioses viscérales et cutanées en Europe du sud et au Maghreb (Algérie et Tunisie), ces résultats viennent renforcer le rôle du chien comme réservoir principal du complexe Leishmania infantum. Mots-clés : Leishmaniose, Leishmania infantum zymodème MON-80, Algérie, Tunisie, iso-enzymes, chien. SUMMARY First identifications of Leishmania infantum MON-80 in dogs in Algeria and Tunisia This study presents for the first time the identification of Leishmania infantum zymodeme MON-80 in 6 dogs stemming from Algeria and Tunisia using the method of comparative electrophoresis migration of the parasite iso-enzymes. As this enzymatic variant has been already described in humans with cutaneous and visceral forms of leishmaniasis in south Europe and in the Maghreb (Algeria and Tunisia), these observations reinforce the role of the dog as the principal reservoir host for Leishmania infantum complex. Keywords: Leishmaniasis, Leishmania infantum zymodeme MON-80, Algeria, Tunisia, iso-enzymes, dog. Introduction Depuis sa première identification chez l’homme, en Espagne en 1989 chez un patient atteint de leishmaniose viscérale (LV) [13], Leishmania (L.) infantum MON-80 est régulièrement identifié en Méditerranée aussi bien au cours de LV que de leishmaniose cutanée (LC) [1, 4, 6, 7, 10]. L’incidence des isolats humains de ce zymodème semble plus importante en Algérie et en Tunisie [1, 7], où LV et LC co-existent au nord et au centre des deux pays. Cependant, malgré le nombre élevé d’isolements chez le chien dans les différents pays d’endémie et l’identification de plusieurs variants iso-enzymatiques canins du complexe L. infantum dont les zymodèmes MON-1, MON-34, MON-37, MON-77 et MON-108 [7, 8, 13], jamais L. infantum MON-80 n’a été identifié dans cette espèce « réservoir » [10]. Cette étude présente les premiers isolements de L. infantum MON-80 chez le chien, conjointement en Tunisie et en Algérie. algérienne, âgés de 3 à 7 ans, ont présenté des signes cliniques fortement évocateurs de leishmaniose (amaigrissement, asthénie, dépilation, hypertrophies ganglionnaires, onychogriffose). Le diagnostic de leishmaniose a été confirmé par sérologie par un test d’immunofluorescence indirecte (IFI) dont le seuil de positivité est de 1/80 (Tableau I). L’isolement des souches a été établi dans le cadre du diagnostic biologique ou lors d’enquêtes épidémiologiques concernant la maladie par hémoculture sur milieu NovyNicolle-Mac-Neal (NNN) [11]. Brièvement, les échantillons de sang total prélevé sur citrate ont été centrifugés pendant 10 minutes à 4°C à 2 500 g et la couche leucocytaire obtenue a été ensemencée sur le milieu NNN. Les milieux de culture ainsi inoculés ont été incubés à 24°C puis examinés et repiqués toutes les 2 semaines. Une culture a été considérée positive lorsque des promastigotes de Leishmania ont été mis en évidence à l’examen microscopique de la phase liquide du milieu. IDENTIFICATION DES LEISHMANIES Matériel et Méthodes ANIMAUX ET ISOLATS Dans cette étude, 6 chiens (4 bergers allemands, 1 Staffordshire et 1 Epagneul), 3 d’origine tunisienne et 3 d’origine Le typage des Leishmanies a été effectué par la méthode de migration électrophorétique des iso-enzymes parasitaires décrite par RIOUX et al. sur la base de 15 systèmes enzymatiques [15]: malate déshydrogénase (MDH) EC1.1.1.37; enzyme malique (ME) EC1.1.1.40; isocitrate déshydrogénase Revue Méd. Vét., 2009, 160, 10, 460-462 LEISHMANIA INFANTUM MON-80 CHEZ LE CHIEN EN ALGÉRIE ET TUNISIE N° chien 1 2 3 4 5 6 Origine Alger (Algérie) Azazga (Algérie) Alger (Algérie) Tunis (Tunisie) Tunis (Tunisie) Tunis (Tunisie) Age (an) Race 4 BA 3 BA 5 BA 3 Epagneul 7 BA 7 Staffordshire Signes cliniques Amaigrissement, Lésions cutanées Adénopathie, Dépilations, Kérato-conjonctivite Amaigrissement Amaigrissement, Adénopathie Amaigrissement, Adénopathie, Kératite Amaigrissement, Adénopathie, Epistaxis 461 IFI1 640 80 80 400 1 600 1 600 BA : berger allemand ; IFI : immunofluorescence indirecte. Titre d’anticorps en immunofluorescence indirecte. 1 TABLEAU I : Donnés épidémiologiques, cliniques et biologiques des six chiens étudiés. (ICD) EC1.1.1.42; 6phosphogluconate déshydrogénase (PGD) EC1.1.1.44; glucose-6-phosphate déshydrogénase (G6PD) EC1.1.1.49; glutamate déshydrogénase (GLUD) EC1.4.1.3; NADH diaphorase (DIA) EC1.6.2.2; purine nucléoside phosphorylase (NP1) EC2.4.2.1; purine nucléoside phosphorylase (NP2) EC2.4.2; aspartate amino-transférases (AST1, AST2) EC2.6.1.1; phosphoglucomutase (PGM) EC5.4.2.2; fumarate hydratase (FH) EC4.2.1.2; mannose phosphate isomérase (MPI) EC5.3.1.8 et glucose phosphate isomérase (GPI) EC5.3.1.9. De plus, une isoélectrofocalisation a été réalisée selon la méthode de PIARROUX et al. afin d’identifier la purine nucléoside phosphorylase (NP) [12]. Trois souches marqueurs ont été systématiquement testées lors des migrations : L. infantum zymodème MON-1 (MHOM/FR/ 78/LEM75), L. infantum zymodème MON-24 (MHOM/DZ/ 82/LIPA59) et L. infantum zymodème MON-80 (MHOM/ DZ/83/LEM425). Résultats et discussion Les 6 isolats de leishmanies ont présenté un profil de migration électrophorétique des iso-enzymes sélectionnées complètement identique à celui de la souche marqueur LEM 425 correspondant au zymodème MON-80 (Tableau II). La leishmanie identifiée est donc L. infantum MON-80. Ce variant se distingue du zymodème MON-1, beaucoup plus Souche LEM 75 LIPA 59 LEM 425 Chien n°1 Chien n°2 Chien n°3 Chien n°4 Chien n°5 Chien n°6 Zymodème MON-1 MON-24 MON-80 MON-80 MON-80 MON-80 MON-80 MON-80 MON-80 MDH 100 104 104 104 104 104 104 104 104 ME 100 100 100 100 100 100 100 100 100 fréquemment identifié chez le chien [2, 7, 8, 14] par la migration de 2 électromorphes distincts de la malate déshydrogénase (MDH104) et de la purine nucléoside phosphorylase 1 (NP1130) (tableau II). L. infantum MON-80 s’avère un zymodème rare mais non exceptionnel chez le chien. En effet, les six souches identifiées font partie d’un échantillon de 192 isolats canins (soit une proportion de 3,1 %) typés dans les laboratoires de l’Institut Pasteur d’Alger (94 isolats) et de l’Institut Pasteur de Tunis (98 isolats) [1-3, 7]. La proportion d’identification de L. infantum MON-80 chez le chien est cependant significativement inférieure à celle reportée chez l’homme dans les 2 laboratoires suscités : 10.3 % sur un total de 117 isolats humains provenant à la fois de cas de LV et de LC à L. infantum (p = 0,015) [1, 4, 7]. Il est à préciser qu’aucune technique de biologie moléculaire ne permet à ce jour de distinguer les différents zymodèmes du complexe L. infantum. Cette identification de L. infantum MON-80 chez le chien n’est pas surprenante. En effet, le chien est considéré comme un réservoir principal de L. infantum dont plusieurs variants (L. infantum MON-1, MON-24, MON-34, MON-77, MON108) ont déjà identifiés chez cet hôte [2, 3, 7, 8, 13, 14]. La mise en évidence relativement tardive de ce zymodème chez le chien, 18 ans après le lancement du typage iso-enzymatique des leishmanies [15], serait due d’une part à sa rareté et d’autre part à d’éventuelles difficultés de son isolement sur milieu NNN comme c’est aussi le cas du zymodème L. Electromorphes ICD PGD G6PD GLUD DIA NP1* NP2 AST1 AST2 PGM FH 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 140 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 130 100 100 100 100 100 MPI 100 100 100 100 100 100 100 100 100 Les 3 souches marqueurs utilisées sont LEM 75, LIPA 59 et LEM 425. *Electromorphes permettant de distinguer les zymodèmes MON-1, MON-24 et MON-80 de L. infantum TABLEAU II : Identification des souches de Leishmanies isolées sur les 6 chiens étudiés par migration électrophorétique comparative des iso-enzymes. Revue Méd. Vét., 2009, 160, 10, 460-462 GPI 100 100 100 100 100 100 100 100 100 462 infantum MON-24 [5]. Le lieu de ces premiers isolements, l’Algérie et la Tunisie, s’expliquerait quant à lui par la plus forte fréquence du zymodème en question dans ces 2 pays comparativement aux autres pays du bassin méditerranéen comme le prouvent déjà les données épidémiologiques humaines [1, 4, 6-8, 14]. En outre, même si le chien peut être aussi considéré comme un réservoir de L. infantum MON80, la nature du vecteur reste encore hypothétique [7, 14] ; Il appartiendrait cependant très probablement au sous-genre Larroussius, qui est le vecteur confirmé de L. infantum dans le bassin méditerranéen [9]. Remerciements Les auteurs remercient I. Boufaden, N. Zallagua, E. Chouihi et H. Ghorbel pour avoir participé au recrutement des chiens et à l’isolement des souches de leishmanies étudiées. Le travail a bénéficié du soutien financier du LR 05SP03 et du projet ACIP A-04-2007. AOUN (K.) ET COLLABORATEURS 6. - HAOUAS N., GORCII M., CHARGUI N., AOUN K., BOURATBINE A., MESSAADI AKROUT F., MASMOUDI A., ZILI J., BEN SAID M., PRATLONG F., DEDET J.P., MEZHOUD H., AZAIEZ R., BABBA H.: Leishmaniasis in central and southern Tunisia: current geographical distribution of zymodemes. Parasite, 2007, 14, 239-246. 7. - HARRAT Z., PRATLONG F., BELAZZOUG S., DEREURE J., DENIAU M., RIOUX J.A., BELKAID M., DEDET J.P.: Leishmania infantum and L. major in Algeria. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg, 1996, 90, 625-629. 8. - JIMENEZ M., FERRER-DUFOL M., CANAVATE C., GUTIÉRREZ-SOLAR B., MOLINA R., LAGUNA F., LOPEZVELEZ R., CERCENADO E., DAUDEN E., BLAZQUEZ J., LADRON DE GUEVARRA C., GOMEZ J., DE LA TORRE J., BARROS C., ALTES J., SERRA T., ALVAR J.: Variability of Leishmania infantum among stocks from immuno-compromised, immuno-competent patients and dogs in Spain. FEMS Microbiol. Lett., 1995, 131, 197-204. 9. - KILLICK-KENDRICK R.: Phlebotomine vectors of the Leishmaniasis: a review. Med Vet. 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