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◆ MISE AU POINT Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Intérêt des marqueurs urinaires dans le diagnostic et le suivi des tumeurs urothéliales de vessie Jean-Louis CAMPOS-FERNANDES (1), Françoise DESCOTES (2), Jean ANDRÉ (2), Paul PERRIN (1), Marian DEVONEC (1), Alain RUFFION (1) (1) Service d’Urologie, (2) Biologie des Tumeurs solides, Centre Hospitalier Lyon-Sud, Lyon, France RESUME Les tumeurs urothéliales de vessie nécessitent une surveillance régulière : la cystoscopie associée à la cytologie urinaire en sont les examens de référence. Récemment, plusieurs nouveaux marqueurs validés ou en cours d’évaluation ont été proposés afin de remplacer la cytologie et potentiellement de réduire, voire de remplacer les cystoscopies inutiles. Le liquide biologique étudié pour tous ces marqueurs est le même que la cytologie urinaire, c’est à dire l’urine. Dans ce travail, nous avons fait le point sur les résultats des travaux récents concernant ces nouveaux marqueurs urinaires. Les résultats de ces marqueurs montrent une meilleure sensibilité globale que la cytologie urinaire, mais souvent une spécificité moins bonne. Dans la majorité des cas, ces tests sont réalisés lors du suivi des patients (NMP22, BTA, CYFRA 21-1 …), mais ne remplacent pas la cystoscopie, du fait d’un nombre élevé de faux-positifs. D’autres techniques, tels que la FISH, le uCyt+ ou les microsatellites semblent être des tests plus prometteurs, notamment dans le diagnostic des tumeurs de bas grade. Dans la pratique, la solution viendra peut-être de l’association de plusieurs marqueurs pour améliorer encore la sensibilité, et diminuer le taux de faux-positifs responsables des cystoscopies inutiles. Mots clés : tumeur de vessie, marqueurs tumoraux, urine, diagnostic, pronostic. La sensibilité de la technique dépend essentiellement du grade tumoral : Dans les tumeurs de haut grade ou les carcinome in situ (CIS), les principales séries retrouvent une sensibilité entre 80 et 90% [3, 4]. Ces bons résultats sont expliqués par la facilité, pour le cytologiste, de reconnaître les atypies nettes et évidentes des noyaux cellulaires. Par contre, les tumeurs de bas grade, avec l’aspect bien différencié des cellules tumorales, ne sont diagnostiquées que dans près de 20% des cas L’association de la cystoscopie à la cytologie urinaire demeure pour l’instant la référence dans le cadre du suivi des tumeurs urothéliales de vessie. Dans les années qui viennent de s’écouler, plusieurs marqueurs ont été proposés pour améliorer les performances diagnostiques et pronostiques de ces deux tests. Dans cette étude, nous faisons le point sur les résultats des travaux récents concernant ces nouveaux marqueurs urinaires, en précisant pour chacun leur classification selon le “niveau de preuve” scientifique obtenu par les recommandations de l’ANAES [1]. De même, une revue de la littérature montre des résultats très contradictoires puisque la sensibilité varie selon les séries de 0 à 100% et la spécificité de 6 à 100%, ce qui montre la grande dépendance des résultats selon l’expérience du cytologiste [5]. Dans ces conditions, il n’est pas recommandé de l’utiliser seule pour faire le diagnostic des tumeurs urothéliales de vessie. La valeur diagnostique pourra ainsi être améliorée en y associant d’autres examens comme ceux développés récemment par la biologie moléculaire. MATERIEL ET METHODES Nous avons effectué une recherche bibliographique sur plusieurs sites bibliographiques et de bases de données sur internet : Pubmed, Auanet et Uroweb. Nous avons volontairement exclu de l’analyse les présentations de congrès, afin d’avoir le maximum de critères précis pour l’analyse des données. Lors de cette recherche, nous avons utilisé les termes suivants : “markers in bladder tumor”, “urinary markers”. La recherche bibliographique s’est ensuite intéressée plus précisément aux principaux marqueurs retrouvés dans notre sélection bibliographique. La grille de lecture de ces articles a ensuite utilisé les niveaux de preuve décrits dans la Tableau I [1]. BTA TEST (BLADDER TUMOR ANTIGEN) Le BTA correspond au hCFHrp (human complément facture Hrelated protéin). Il joue un rôle d’inhibition dans la voie accessoire CYTOLOGIE URINAIRE Manuscrit reçu : juin 2006, accepté : août 2006 Adresse pour correspondance : Dr. J.L. Campos-Fernandes, Service d’Urologie, Centre Hospitalier Lyon Sud, 69495 Pierre Bénite Cedex La cytologie urinaire reste encore la référence des examens biologiques utilisés en pratique courante surtout en terme de spécificité qui peut atteindre 100% lorsque l’examen est réalisé par un cytologiste entraîné et cela d’autant plus que la tumeur est de haut grade [2]. e-mail : [email protected] Ref : CAMPOS-FERNANDES J.L., DESCOTES F., ANDRÉ J., PERRIN P., DEVONEC M., RUFFION A. Prog. Urol., 2007, 17, 23-34 23 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau I. Niveaux de preuve recommandés par l'ANAES [1] Niveau I = Preuve scientifique établie a. Essais comparatifs randomisés de forte puissance b. Méta-analyse d'essais comparatifs randomisés c. Analyse de décision basée sur des études bien menées Niveau II = Présomption scientifique a. Essais comparatifs randomisés de faible puissance b. Etudes comparatives non randomisées bien menées c. Etudes de cohorte Niveau III Etudes cas-témoin Niveau IV = Faible niveau de preuve scientifique a. Etudes comparatives comportant des biais importants b. Etudes rétrospectives c. Séries de cas d. Etudes épidémiologiques descriptives (transversale, longitudinale) e. Accord d'expert N/A = Non applicable du complément participant à la lyse des cellules reconnues étrangères à l’hôte. Il autorise ainsi l’échappement des cellules tumorales au système immunitaire [6]. que l’organisation et l’expression des gènes. En cas de distribution anormale des chromatides durant la mitose (cas des tumeurs de vessie), on observe une concentration de la matrice nucléaire 10 à 25 fois plus élevée que celle d’un urothélium normal responsable d’une prolifération cellulaire anarchique [6]. Il existe actuellement un dosage qualitatif du BTA (BTA Stat) et un dosage quantitatif (BTA TRAK) : Principe du test Le premier est un dosage immunochromatographique détectant l’antigène tumoral de vessie 5 minutes après avoir déposé 5 gouttes d’urine mictionnelle dans le puits d’un dispositif jetable. Il s’agit d’un dosage quantitatif immuno-enzymatique (Technique ELISA). Le second est un test quantitatif immuno-enzymatique utilisant 2 anticorps monoclonaux différents, spécifiques du BTA. Les réactions sont évaluées quantitativement par étude de l’absorption d’un rayon de 405 nm, cette absorption étant proportionnelle à la concentration de l’antigène retenu par les anticorps spécifiques. NMP 22 n’est pas spécifique des cellules cancéreuses mais présente dans l’appareil nucléaire de toutes les cellules de l’organisme. La valeur seuil qui permettrait de définir un résultat normal ou pathologique n’est pas encore consensuellement établie. Stampfer a proposé la valeur seuil de 6,4 U/ml après interprétation de la courbe ROC des valeurs observées dans son étude [27]. Cette valeur seuil est actuellement la plus utilisée. Intérêt diagnostique La revue des principales séries retrouve une sensibilité diagnostic du BTA Test variant entre 37 et 83% pour le BTA Stat, avec une sensibilité moyenne de 64% [7] et entre 56 et 74% pour le BTA TRAK (en utilisant la valeur-seuil de 14 UI/ml) [23-25]. Elle est d’autant plus élevée que le stade et le grade sont élevés : 51% pour les tumeurs pTa, 85% pour les tumeurs pT1 et 61% pour le CIS [8]. De même, elle est estimée à 23% pour les tumeurs G1, 71,4% pour les tumeurs G2 et 92,8% pour les tumeurs G3 [8]. Intérêt diagnostique La sensibilité de la NMP 22 dans la détection des tumeurs de vessie est meilleure que celle de la cytologie urinaire, avec dans la littérature, une sensibilité allant de 48% à 89%, (moyenne 66%) [28, 29]. Ces résultats dépendent de : - La taille tumorale, avec une corrélation statistiquement significative entre la taille tumorale et la sensibilité diagnostique de la NMP 22 [30-32] : Sensibilité à 98,8% pour les tumeurs > 2cm vs 24,4% pour les tumeurs < 2cm (p<0,05) [28]. Quant à la spécificité, elle va de 56 à 86% (moyenne 73%) pour le BTA Stat [7] et de 51 à 95% (moyenne 71%) pour le BTA TRAK [19, 20, 21]. Elle reste cependant inférieure à celle de la cytologie chez des patients porteurs d’une pathologie du bas appareil urinaire non tumorale (hématurie essentielle, lithiases). Les résultats sont détaillés dans les Tableaux II et III. - Du stade ou du grade tumoral : de 34% pour les G1 à 98% pour les G3, de 52% pour les pTa à 90% pour les tumeurs > pT1 en passant par 72% pour les pTis [38, 39]. Intérêt pronostique du BTA Test La spécificité de la NMP 22, comme la plupart des autres marqueurs, reste inférieure à celle de la cytologie urinaire, avec une proportion significative de faux positifs, estimée en moyenne, dans la littérature à 25%, correspondant à des états inflammatoires comme les cystites ou les lithiases vésicales, voire même le carcinome rénal à cellules claires. NMP 22 semble donc plus adaptée au suivi de patients chez qui un cancer de vessie a déjà été diagnostiqué et traité. Aucune étude n’a retrouvé de relation statistiquement significative entre le dosage du BTA urinaire et en particulier le taux de BTA TRAK et le taux de récidive ou de progression tumorale. NMP 22 (URINARY NUCLEAR MATRIX PROTEIN) Caractéristiques La matrice nucléaire définit la structure tridimensionnelle du noyau cellulaire et contrôle sa morphologie. Elle possède un rôle important dans la réplication et la transcription de l’ADN en ARN, ainsi Le Tableau IV regroupe les sensibilités et spécificités des principales séries publiées. 24 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau II. Sensibilité et spécificité du BTA STAT. Références GIANNOPOULOS 2001 [9] HEICAPPELL 2000 [10] NASUTI 1999 [11] RAMAKUMAR 1999 [12] SHARMA 1999 [13] LEYH 1999 [14] SÖZEN 1999 [15] PODE 1999 [16] WIENER 1998 [17] SAROSDY 1997 [18] Moyenne Patients % Sensibilité % Spécificité Niveau Preuve* 113 354 100 196 199 240 140 350 291 220 73 63 100 74 67 65 70 83 57 67 72 65 93 84 73 82 64 68 69 68 72 74 IIc III IIc III IIc IIc III IIc III III Patients % Sensibilité % Spécificité Niveau preuve 700 518 74 411 244 220 107 316 62 63 62 72 56 66 62 72 64 68 63 79 51 67 69 95 75 71 III IIc III III III IIc III III * Niveaux de preuve recommandés par l’ANAES [1]. Tableau III. Sensibilité et Spécificité du BTA TRAK Références FERNANDEZ GOMEz 2002 [19] Priolo 2001 [20] SERRATTA 2000 [21] HEICAPPELL 1999 [22] MAHNERT 1999 [23] THOMAS 1999 [24] ABBATE 1998 [25] ELLIS 1997 [26] Moyenne Intérêt pronostique allant de 52% à 83% (moyenne 71%) pour le diagnostic des tumeurs de vessie. Elle est d’autant plus élevée que le stade et le grade sont élevés : de 25% dans les grades 1 [8], elle s’élève à 95% pour les grades 3 [39]. De même, elle est significativement supérieure à celle de la cytologie urinaire : 68% vs 34% pour la cytologie urinaire. SHARIAT, dans sa série publiée en Mai 2005 et regroupant 2542 patients sur 10 centres, a construit des normogrammes incluant la NMP 22 comme facteur pronostique de récidive ou de progression des tumeurs superficielles [38]. Les études uni et multivariées ont montré que le NMP 22 était un facteur indépendant de récidive et de progression des tumeurs pTa et pT1 [38]. Quant à la spécificité, elle varie de 68% à 86% (pour une spécificité moyenne de 76%). La limite de ce test est la présence de fauxpositifs en cas de pathologies urogénitales (lithiase, inflammation) y compris d’autres tumeurs et plus particulièrement des cancers de prostate [37]. De même, notons que la valeur-seuil de détection du test “Accu-Dx” étant de 33 ng/ml, la présence abondante du fibrinogène dans le sang peut entraîner des faux-positifs en cas d’hématurie importante [41]. FDP (FIBRIN/FIBRINOGEN DEGRADATION PRODUCTS) Caractéristiques Les tumeurs de vessie produisent un facteur de l’angiogénèse connu sous le nom de “facteur de croissance de l’endothélium vasculaire”. Ce facteur augmente la perméabilité de la paroi des micro vaisseaux tumoraux, ce qui entraîne une fuite de protéines plasmatiques et sanguines comme le plasminogène, le fibrinogène et des facteurs de coagulation dans l’espace extracellulaire. La conversion du fibrinogène en fibrine entraîne des résidus de lysine qui se lient au plasminogène. Cette liaison entraîne une conversion du plasminogène en plasmine qui permet la dégradation de la fibrine et du fibrinogène en FDP. Le FDP passe dans la circulation et l’urine des patients présentant une tumeur vésicale [6]. Les résultats des principales séries sont détaillés dans le Tableau V. Intérêt pronostique Les séries publiées ne retrouvent pas de relation statistiquement significative entre un test “Accu-Dx” positif et le taux de récidive ou de progression tumorale. FISH (FLUORESCENCE IN SITU HYBRIDIZATION) Caractéristiques Principe du test Les études cytogénétiques sur les tumeurs de vessie ont permis d’identifier des anomalies génétiques plus fréquemment observées, telles que : Le test “Accu-Dx” permet grâce à un anticorps monoclonal, de détecter qualitativement le FDP urinaire [39, 40]. Il peut se réaliser au cabinet de consultation et se présente sous forme de bandelettes. Le test est positif lorsque une couleur rouge apparaît après 7 minutes de mise en contact avec l’urine étudiée. - La perte du locus 9p21 du Chromosome 9 (locus codant pour un anti-oncogène : p16) - Des anomalies en nombre des chromosomes 3, 7 et 17, avec perte de la diploïdie chromosomique normale (2 copies de chaque chromosome soit 46 chromosomes/cellule). Intérêt diagnostique Les études utilisant le test “Accu-Dx” ont retrouvé une sensibilité 25 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau IV : Sensibilité et Spécificité du test NMP 22 Références LEKILI 2004 [32] LAHME 2001 [33] GIANNOPOULOS 2001 [9] PONSKY 2001 [34] RAMAKUMAR 1999 [12] HUGHES 1999 [35] WIENER 1998 [17] STAMPFER 1998 [27] WITJES 1998 [36] LANDMAN 1998 [37] MIYANAGA 1997 [30] MIYANAGA 2003 [31] SOLOWAY 1996 [29] Moyenne Patients % Sensibilité % Spécificité Niveau preuve 78 144 213 608 196 107 291 231 50 47 300 156 112 53 63 64 89 53 47 48 68 75 81 81 49 74 66 83 66 75 84 60 79 70 80 82 77 64 66 79 75 IIc III IIc III III IIc III III III III IIc IIc IIc Tableau V. Sensibilité et Spécificité du test "Accu-Dx". Références Ramakumar 1999 [12] Schmetter 1997 [42] Johnston 1997 [39] Mc Cabe 1984 [42] Topsakal 2001 [41] Moyenne Patients 195 192 130 242 97 G1 G2 % Sensibilité G3 G1-3 25 62 64 46 64 88 92 87 95 43 72 94 52 68 82 83 70 71 Ces anomalies chromosomiques vont pouvoir alors être identifiées et localisées par la technique de FISH. pTa pT1 45 62 74 68 74 85 50 87 % Spécificité Niveau Preuve 86 86 75 66 68 76 III IIc III IIc IIc IMMUNOCYTOCHIMIE EN FLUORESCENCE : IMMUNOCYT™/ UCYT+™ Caractéristiques Principe de la technique ImmunoCyt™/ uCyt+™ utilise une technique d’immunocytofluorescence reposant sur la combinaison de 2 anticorps (M344 et LDQ10) marqués à la fluoroscéine et d’un anticorps (19A211) marqués au Texas red. Ces anticorps reconnaissent des antigènes préférentiellement exprimés par les cellules tumorales vésicales. Le but de ce test utilisé conjointement à la cytologie urinaire conventionnelle, est d’améliorer la sensibilité de cette dernière, particulièrement pour les tumeurs de stade ou de grade peu élevés. Sur le plan moléculaire, la FISH repose sur l'hybridation de 2 brins d'ADN complémentaires avec des sondes spécifiques d’oligonucléotides marqués à la fluoroscéine. Intérêt diagnostique La revue des principales séries retrouve une sensibilité diagnostique de la FISH allant de 68% à 85% (moyenne 80%). Elle est d’autant plus élevée que le stade et le grade sont élevés : de 36% pour les tumeurs G1, elle s’élève jusqu’à 100% pour les tumeurs G3. Une récente série a montré la supériorité de la FISH sur la cytologie urinaire notamment pour les tumeurs vésicales de bas grade [43] (G1: 36% vs 27%, G2: 76% vs 54%) Tableau VI. Intérêt diagnostique Les études multicentriques récentes ont montré une sensibilité variant entre 72% et 100% en combinant uCyt+ et la cytologie urinaire. Pour les tumeurs de bas grade, la sensibilité de l’uCyt+ est bien supérieure à celle de la cytologie urinaire (78,5% vs 37,5% pour les gardes 1) [47-49]. Intérêt pronostique Il existe une corrélation statistiquement significative entre un résultat positif de FISH et le taux de récidive tumorale : Dans la série de SKACEL [44], le taux de récidive à 1 an est de 28,6% en cas de FISH initialement positive, contre 9,7% en cas de FISH négative (p=0.001). De même, les résultats positifs de la FISH peuvent précéder le diagnostic cystoscopique de tumeur de vessie : dans cette même série, parmi les 9 patients avec une FISH positive, une cytologie urinaire atypique et des biopsies vésicales négatives, 8 patients (89%) ont développé une tumeur de vessie dans un délai de 3 à 12 mois (avec un délai moyen de 5,5 mois). Pour ce qui concerne la spécificité, elle va de 61% à 82% en combinant le test uCyt+ et la cytologie urinaire [47, 48, 49, 53]. Elle reste toutefois inférieure à celle de la cytologie urinaire, qui reste encore à l’heure actuelle la technique donnant le moins de faux positif, Tableau VII. Intérêt pronostique PIATON s’est particulièrement intéressés à la valeur prédictive d’un test uCyt+ positif chez des patients suivis pour tumeur de vessie et avec cystoscopie négative [49]. Chez ces patients, ils notaient une récidive tumorale à 12 mois dans 5 cas sur 15 (33,3%) contre seulement 3 cas sur 64 (4,7%) dans la population avec cystoscopie et test uCyt+ négatifs (p<0,01), la cytologie urinaire n’ayant en ellemême aucune valeur pronostique. D’autres séries retrouvent le Il apparaît donc qu’une surveillance des tumeurs vésicales par la technique de FISH pourrait améliorer la précocité du diagnostic des récidives. Des résultats négatifs persistant devraient permettre d’espacer les cystoscopies et d’en réduire donc le nombre. 26 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau VI. Sensibilité et Spécificité de la technique FISH Références SKACEL 2003 [44] PLACER 2002 [45] SAROSDY 2002 [46] HALLING 2000 [43] FRIEDRICH 2003 [47] BUDENDORF 2001 [58] Moyenne Patients 120 86 176 265 103 97 G1 G2 % Sensibilité G3 G1-3 83 53 55 36 57 71 80 83 78 76 63 86 96 100 94 97 83 94 même intérêt prédictif du test uCyt+, avec une corrélation statistiquement significative (p<0,01) entre un test uCyt+ positif et le taux de récidives tumorales [47, 48, 53]. Ces données, si elles étaient confirmées par d’autres séries, pourraient faire discuter l’utilisation du test uCyt+ pour sélectionner des patients présentant un risque accru de récidive et donc de permettre d’espacer les cystoscopies en cas de test uCyt+ négatif. 85 80 71 81 68 80 80 pTa 83 64 72 65 62 73 % SpécificitéNiveau preuve pT1 95 100 90 95 83 100 97 85 95 96 89 96 94 IIc IIc IIc III III III semble que ce test soit prédictif d’une récidive tumorale car 40% des patients aux antécédents de tumeur vésicale et ayant au cours de leur surveillance un HA-HAase test positif et une cystoscopie négative ont présenté une récidive tumorale endoscopique 3 à 6 mois plus tard [58]. De même, près de la moitié des faux positifs (45%) présentaient en fait une récidive confirmée dans les 3 à 9 mois selon une étude menée par HAUTMANN [57]. ACIDE HYALURONIQUE ET HYALURONIDASE : TEST HA-HAASE Le HA-HAase test semble donc pouvoir être utilisé dans le suivi des patients afin de limiter les endoscopies inutiles ou à l’inverse rapprocher les endoscopies si plusieurs tests successifs reviennent positifs. Caractéristiques L’acide hyaluronique (HA) est un glycoaminoglycane non sulfaté présent dans les tissus et fluides humains normaux. Une concentration élevée est retrouvée dans certaines lésions tumorales comme les cancers colo-rectaux, les tumeurs de Wilms ou les tumeurs de vessie. L’acide hyaluronique stimule la néoangiogénèse péri-tumorale et facilite la dissémination métastatique par l’adhésion à des récepteurs cellulaires tels que le CD 44. Caractéristiques TELOMERASE Les télomères sont des séquences d’ADN, situés aux extrémités des chromosomes et formés de séquences répétitives de 6 nucléotides TTAGGG (Thymine, Adénine, Guanine). A chaque division cellulaire, on constate un raccourcissement progressif des télomères qui va aboutir à la dégénérescence de la cellule et à son apoptose. La hyaluronidase (HAase) est une enzyme (endoglycosidase) qui dégrade l’acide hyaluronique en petits fragments (oligosaccharides) qui peuvent être détectés dans l’urine de patients présentant une tumeur de vessie [54]. La télomérase est une ribonucléoprotéine qui permet la réparation des télomères et, donc maintient la stabilité chromosomique en rendant ainsi la cellule immortelle. Elle est présente dans les cellules germinales et dans la majorité des cellules cancéreuses (estomac, poumon, sein), mais absente des cellules somatiques normales. La présence d’une activité télomérasique a été identifiée dans le tissu tumoral vésical et dans les urines de ces patients [59, 60]. Principe du test Le dosage quantitatif de l’acide hyaluronique et de la hyaluronidase se fait par une technique d’ELISA-like, comme pour le PSA. Intérêt diagnostique Le test de l’acide hyaluronique urinaire (HA test) présente une sensibilité de 83,1% et une spécificité de 90,1% dans le diagnostic des tumeurs vésicales [55]. La hyaluronidase, quand à elle, a une sensibilité de 81,5% et une spécificité de 83,8% [54, 55]. La télomérase est constituée principalement de 2 sous-unités : - Une composante ARN (hTR) servant de matrice à l’élongation des télomères. En combinant les deux tests (HA-HAase test), la sensibilité atteint 91,2% avec une spécificité à 84,4% [56]. Depuis, l’association des 2 tests (HA-HAase) est réalisée de manière systématique afin de permettre le diagnostic du plus grand nombre de tumeurs : On retrouve ainsi une sensibilité du HA-HAase test allant de 83 à 100% (pour une sensibilité moyenne de 91%) et une spécificité allant de 70% à 89% (pour une spécificité moyenne de 81%) [55]. Les fauxpositifs sont principalement retrouvés dans les cas d’adénome ou de cancer de prostate, de lithiase urinaire ou de lésions inflammatoires responsables d’hématurie. Les résultats de principales séries sont détaillés dans le Tableau VIII. - Une sous-unité catalytique protéique (hTERT) dont les gênes ont été récemment identifiés. Principe du test La technique la plus utilisée est la méthode TRAP (Telomeric Repeat Amplification Protocol) correspondant à une technique colorimétrique non-radioactive développée par KIM en 1994 [61]. Par ailleurs, même si les mécanismes d’activation de la télomérase sont encore peu connus, une corrélation entre l’expression de la sous-unité hTERT et l’activité télomérasique a été mis en évidence dans la plupart des cancers humains. La mesure de l’expression du gêne hTERT (par RT-PCR) pourrait être utilisée comme une alternative à la méthode TRAP et donc améliorer les performances diagnostiques de la télomérase. Intérêt pronostique Le HA-HAase test a été évalué dans la surveillance des tumeurs vésicales récidivantes par plusieurs équipes. Pour LOKESHWAR, il 27 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau VII : Sensibilité et Spécificité du test uCyt+ combiné à la Cytologie Références OLSSON** 2001 [51] DRAPIER 2003 [50] LODDE 2003 [48] PIATON** 2004 [49] TOMA 2004 [52] PFISTER 2003 [53] Moyenne Patients 121 92 235 132 126 694 G1 G2 % Sensibilité G3 G1-3 88 85 55 67 67 100 72 78 90 100 100 87 % Spécificité Niveau preuve 69 82 (97%) 63 (94%) 80 (90%) 73 (80%) 80 (95%) 71 III IIc III IIc III IIc % Spécificité Preuve Niveau 78 84 89 81 70 81 III III III IIc IIc pTa > pT1 100 72 94 74 90 84 86 86 70 90 79 100 76 87 83 G1-3 pTa >pT1 83 92 100 88 91 91 64 87 100 94 75 90 100 92 (82% pour les pT3) *CU : Cytologie urinaire ; ** : Résultats du test uCyt+ seul Tableau VIII. Sensibilité et spécificité du HA-HAase test Références HAUTMANN 2004[57] LOKESHWAR 2002 [56] PHAM 1997 [54] SCHROEDER 2004 [55] LOKESHWAR 2002 [58] Moyenne Patients 94 513 139 138 70 G1 G2 % Sensibilité G3 50 86 87 96 91 94 75 88 84 95 96 91 Intérêt diagnostique Aucune étude n’a encore évalué l’expression du gène hTERT comme marqueur de la progression tumorale. Les séries retrouvent, pour la méthode TRAP une sensibilité allant de 46 à 90% (moyenne 73%) et une spécificité allant de 66 à 100% (moyenne 90%) dans le diagnostic des tumeurs de vessie, Tableau IX. L’étude prospective de la Mayo Clinic [12] comparant la sensibilité et la spécificité de la cytologie urinaire, le BTA stat, le NMP 22, le FDP et la télomérase, retrouve une sensibilité de ces tests allant de 44 à 70% avec 44% pour la cytologie et 70% pour la télomérase. L’examen est particulièrement efficace pour les lésions de faible grade (G1) avec une sensibilité égale à 79% contre 13% pour la cytologie classique. La spécificité allant de 60% pour le NMP 22 à 99% pour la télomérase. Caractéristiques SURVIVINE La survivine est un membre proéminent de la famille des IAP (inhibitor of apoptosis proteins), dont l’action consiste à inhiber l’activation des effecteurs de l’apoptose que sont les caspases (caspases 3, 7 et 9 notamment). Elle est exprimée normalement dans les tissus embryonnaires mais non dans les tissus normaux de l’adulte. Son action s’effectue principalement durant les phases G2 et M du cycle cellulaire, par liaison au fuseau mitotique. Elle est retrouvée dans de nombreuses tumeurs, notamment les tumeurs de vessie. La survivine peut alors être détectée dans le tissu tumoral ou dans les prélèvements urinaires. La limite de ce test serait la présence non négligeable de faux négatifs, par la contamination des échantillons par des inhibiteurs de PCR et notamment la “Taq polymérase”. Principe du Test Pour améliorer les performances diagnostiques de la télomérase, plusieurs auteurs ont proposé le dosage quantitatif de l’ARNm de la sous-unité protéique (hTERT) par RT-PCR [65, 66]. La sensibilité est améliorée (81% vs 73% pour la méthode TRAP), de même que la spécificité (96% vs 90%). Les techniques de dosage de la survivine urinaire sont essentiellement des dosages par immunohistochimie ou “Western-Blot” [69, 70]. Récemment, une technique immuno-enzymatique (EIA : Enzyme Immunometric Assay) a été développée avec des résultats encourageants [71, 72]. Le dosage de l’ARNm de l’hTERT serait pour certains auteurs le test le plus performant (sensibilité et spécificité) pour le diagnostic des tumeurs de vessie. De même, plusieurs séries ont proposé de ne plus doser la fraction protéique de la survivine urinaire mais l’expression du gène (ARNm) codant pour la protéine par technique RT-PCR. Intérêt pronostique Intérêt diagnostique De nombreuses études ont montré que l’activité télomérasique tissulaire était corrélée à un mauvais pronostic (récidive, risque métastatique) en cas de cancer gastrique, mammaire ou pulmonaire [67]. Cette corrélation n’est pas retrouvée dans les cas de tumeurs de vessie. WU a montré que l’activité télomérasique urinaire (méthode TRAP) après résection endo-urétrale de vessie n’était pas un marqueur prédictif de récidive tumorale. Dans leur série, le taux de récidive à 1 an et 2 ans entre les 2 groupes de patients (télomérase + vs télomérase -) était sans différence significative: 50% vs 58,3% à 1 an et 69,2% vs 71,4% à 2 ans (p=0.252) [68]. Les études publiées rapportent des taux de sensibilité variant de 64 à 100% (moyenne 78%) [69, 70, 73], avec pour la plupart des séries l’absence de corrélation significative entre le taux de survivine urinaire et le grade tumoral. Récemment, certaines séries ont qualifié la survivine urinaire de marqueur significatif de l’infiltration tumorale (p<0,05) [71, 72]. La spécificité de la survivine est excellente avec quelques fauxpositifs (3 à 7% en moyenne) correspondant le plus souvent à des 28 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau IX. Sensibilité et Spécificité de la télomérase (selon méthode TRAP) Références KINOSHITA 1997 [60] KAVALER 1998 [59] RAMAKUMAR 1999 [12] HALLING 2002 [61] SAAD 2002 [62] DETTLAFF 2005 [63] LANDMAN 1998 [64] Moyenne Patients 54 151 195 150 99 65 77 G1 G2 % Sensibilité G3 45 79 56 30 56 85 65 58 84 85 48 92 100 72 60 88 85 49 100 82 93 états inflammatoires ou à des cancers de prostate sécrétant la survivine [70, 74]. Les résultats des principales séries sont résumés dans le Tableau X. pTa >pT1 55 85 70 46 84 90 81 73 38 65 76 42 84 88 70 65 81 71 67 90 93 91 % Spécificité Preuve Niveau 100 66 99 91 93 100 80 90 III III III III III III III La spécificité de la technique est excellente avec quelques faux positifs (8% en moyenne) correspondant dans la plupart des cas à des états inflammatoires ou à des patients aux antécédents de tumeur de vessie [78], Tableau XI. Intérêt pronostique Intérêt pronostique Les études publiées retrouvent une corrélation significative entre le taux de survivine urinaire et la récidive tumorale [70, 75, 76]. SCHULTZ a rapporté des délais moyens de récidive de 10 et 22 mois en comparant les groupes de tumeurs dont le taux de survivine était supérieur ou inférieur au taux médian (p=0,018) [73]. Cette corrélation est encore plus nette (p<0,05) lorsque la survivine est dosée au niveau tissulaire [69, 73, 75]. Caractéristiques G1-3 La plupart des séries n’ont pas le recul suffisant pour évaluer la corrélation entre la perte d’hétérozygotie des microsatellites et le pronostic tumoral. Le seul élément retrouvé est la fréquence du marqueur D9S149 dans les tumeurs infiltrantes incitant ainsi une surveillance cystoscopique rapprochée, sans preuve actuellement d’une corrélation significative entre la présence de ce marqueur et le risque de progression tumorale [80, 81]. MICROSATELLITES LA CYTOKERATINE 19 (CYFRA 21-1) Caractéristiques Les microsatellites sont des séquences courtes (1 à 4 nucléotides) répétées 10 à 60 fois, distribuées de façon aléatoire sur l’ensemble du génome (environ 100 000 séquences). Par leur polymorphismes, ils peuvent être utilisés comme “empreinte génomique” pour la cartographie de gène. Les cytokératines sont des protéines ubiquitaires des cellules épithéliales et l’un des constituants du cytosquelette cellulaire. Il existe une vingtaine de polypeptides de cytokératines différents. Du fait de leur répartition spécifique, elles peuvent servir de marqueurs tumoraux. Les cytokératines intacts sont peu solubles, par contre leurs fragments peuvent être détectés dans le sérum ou l’urine [84, 85]. De même, la détection de microsatellites altérés dans un prélèvement cellulaire peut être utilisée comme marqueur de développement clonal de cellules tumorales. La cytokératine 19 est libérée après la mort cellulaire sous la forme de fragments solubles dans le sérum ou l’urine : CYtokératines FRAgments (CYFRA). Deux types de réarrangement sont généralement observés en pathologie tumorale : Le CYFRA 21-1 est un fragment soluble de la cytokératine 19. Il est détecté dans de nombreuses tumeurs solides tels que les cancers pulmonaires, ovariens, gastriques, mammaires ou prostatiques. La principale indication du dosage du CYFRA 21-1 reste actuellement le suivi du cancer pulmonaire [84, 85]. La perte d’hétérozygotie qui correspond à la perte de matériel génétique englobant un microsatellite et responsable alors de fragments alléliques de taille identique. L’instabilité des microsatellites correspondant à la perte de la stabilité des microsatellites précédemment définie. Principe du test Intérêt diagnostique Il s’agit d’un dosage quantitatif par technique ELISA (électrochimiluminescence) faisant appel à 2 anticorps monoclonaux spécifiques (KS 19.1 et BM 19.21). Le nombre de microsatellites étudiés varie d’une étude à l’autre mais la sensibilité et la spécificité restent élevées, variant entre 49 et 95% pour la sensibilité et entre 89 et 100% pour la spécificité. La perte d’hétérozygotie se situe essentiellement sur le chromosome 9. L’analyse des microsatellites est tout particulièrement intéressante dans les tumeurs de faible grade (G1 ou pTa) où la majorité des séries retrouvent une sensibilité supérieur à 75% [78-80]. Intérêt diagnostique Les études publiées rapportent des taux de sensibilité variant de 44 à 84% pour une sensibilité moyenne de 69%. Pour ce qui concerne la spécificité, elle varie de 75% à 89% pour une spécificité moyenne de 84%. Elle reste toutefois inférieure à celle de la cytologie urinaire. Les faux positifs sont principalement liés à l’existence de lésions inflammatoires, infectieuses ou lithiasiques du bas appareil urinaire. De même, plusieurs études retrouvent des taux élevés de CYFRA 21-1 dans l’urine des patients De même, il existe une corrélation statistiquement significative entre la perte d’hétérozygotie du chromosome 9q et le caractère infiltrant de la tumeur vésicale (p<0,03). Le marqueur D9S149 est tout particulièrement retrouvé dans les cas de tumeurs infiltrantes [81]. 29 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau X. Sensibilité et Spécificité de la Survivine urinaire. Références WEIKERT 2005 [73] Patients G1 G2 % Sensibilité G3 G1-3 pTa >pT1 % Spécificité Preuve Niveau (ARNm/ RT-PCR) 91 G1+G2= 53 83 69 56 72 100 III (ARNm/ RT-PCR) 30 57 75 93 80 - - 100 IIc (Immunohistochimie) 209 61 54 80 64 57 71 93 III (Western-Blot) 89 93 96 IIc WANG 2004 [70] SHARIAT 2004 [69] SHARP 2002 [74 ] Moyenne 100 78 Tableau XI. Sensibilité et spécificité de l'analyse de microsatellites. Références Patients Méthode % Sensibilité % Spécificité Niveau preuve LITTLE 2005 [78] 113 49% 89% IIc Mao 1996 [79] 25 95% 90% III SCHNEIDER 2000 [80] 103 84% 89% III LINN 1997 [82] 15 93% - IVc MOURAH 1998 [83] 59 83% 100% III HIRAO 2005 [81] 271 Perte d'hétérozygotie (7 microsatellites) Perte d'hétérozygotie (13 microsatellites) Perte d'hétérozygotie (17 microsatellites) Perte d'hétérozygotie (10 microsatellites) Perte d'hétérozygotie (13 microsatellites) Perte d'hétérozygotie (5 microsatellites) 75% - IVc 80% 92% Moyenne ayant bénéficié d’une immunothérapie par BCG. Il a pu être retrouvé chez près de 90% de ces patients [86]. L’explication serait la persistance d’une réaction inflammatoire de la muqueuse vésicale, responsable ainsi de faux-positifs. né à la cytologie, les microsatellites ou la FISH semblent intéressants avec notamment une sensibilité élevée et une valeur prédictive négative de l’ordre de 95% limitant ainsi les cystoscopies inutiles [53, 93]. Les résultats des principales séries sont résumés dans le Tableau XII. Un marqueur urinaire fiable doit avoir une sensibilité suffisante pour éliminer le risque d’ignorer une tumeur de haut grade, et sa spécificité doit être suffisamment élevée pour réduire les explorations invasives chez les patients dont l’urothélium est sain. Par ailleurs, la principale limite diagnostique de ces nouveaux marqueurs est la présence non négligeable de faux-positifs, diminuant ainsi la spécificité globale du test, notamment en présence de pathologies uro-génitales bénignes (lithiase, inflammation, adénome de prostate) ou d’autres pathologies tumorales tel que le cancer de prostate pour le dosage de la survivine urinaire, du test “Accu-Dx” ou le HA-HAase test [41, 70, 74]. La présence d’une hématurie macroscopique importante peux être responsable de faux-positifs (“AccuDx”) [41]. Si le dépistage de masse du carcinome vésical ne constitue pas un objectif de santé publique, le dépistage individuel, chez des patients à risque (tabac, exposition professionnelle) peut être envisagé avec tout particulièrement l’utilisation des nouveaux marqueurs urinaires associés ou non à la cytologie conventionnelle. Dans cette indication, aucun des marqueurs tumoraux actuellement commercialisés ne constitue le test urinaire idéal et ne peut prétendre remplacer la cystoscopie [93]. Toutefois, des tests tels que l’Immunocyt combi- Enfin, la présence non négligeable de faux-positifs posent plusieurs problèmes : d’une part une erreur diagnostique peut induire des examens invasifs (comme la cystoscopie) de façon injustifiée. D’autre part un test positif chez un patient à cystoscopie négative peut être indicateur d’une maladie microscopique non visible à l’œil nu, qui évoluera ultérieurement et deviendra une récidive cystoscopique [48]. Des études multicentriques récentes ont ainsi montré que des tests tels que la FISH, la survivine urinaire, Immunocyt ou le HA-HAase test sont des tests significativement prédictifs de DISCUSSION De même, de nouvelles techniques de biologie moléculaire, telles que la FISH, l’analyse des microsatellites ou le dosage de l’ARNm de l’hTERT (télomérase), malgré des performances diagnostiques et pronostiques élevées [45, 46, 65, 66, 80, 81], gardent un coût élevé, des contraintes techniques importantes limitant encore l’applicabilité quotidienne de ces techniques. Une automatisation de ces tests sera nécessaire pour autoriser leur utilisation en pratique clinique. De nombreux travaux ont été consacrés aux marqueurs urinaires pouvant compléter ou remplacer la cytologie urinaire traditionnelle. Ces études ont pour la plupart en commun une comparaison des nouveaux marqueurs et de la cytologie dans le diagnostic et le suivi des tumeurs de vessie. Sur le plan de la sensibilité diagnostique, cette comparaison est défavorable à la cytologie, notamment dans les tumeurs de bas grade. Cette dernière garde cependant certains points forts : bonne spécificité, bonne performance diagnostique dans le carcinome in situ ou les tumeurs de haut grade [4, 48, 49]. 30 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 Tableau XII. Sensibilité et spécificité du test CYFRA 21-1 Références Patients G1 G2 % Sensibilité G3 G1-3 pTa >pT1 % Spécificité Preuve Niveau PARIENTE 2000 [87] 182 42 56 75 71 71 72 75 IIc SENGA 1996 [88] 278 36 68 92 66 - - 81 IIc SANCHEZ-CARBAYO 1999 [89] 267 76 81 93 84 75 88 IIc NISMAN 2002 [90] 325 60 76 92 80 71 85 (73% pour les T2) 88 89 IIc SANCHEZ-CARBAYO 2001 [91] 112 36 67 82 67 60 66 88 IIc FATELA-CANTILLO 2005 [92] 229 18 43 64 44 36 67 (15% pour les T1) 82 IIc (4 ng/ml*) (8 ng/ml*) (5,4 ng/ml*) (4,9 ng/ml*) (5,4 ng/ml*) (2,5 ng/ml*) Moyenne 69 84 Tableau XIII. Caractéristiques diagnostiques et pronostiques des marqueurs urinaires. Sensibilité % (moyenne) Spécificité % (moyenne) Type de test Cytologie 11-76 >90% microscopie BTA Stat 57-100 (72%) 65-84 (74%) Bandelette (consultation) BTA TRAK 56-72 (64%) 51-95 (71%) Test immunoenzymatique NMP22 53-81 (66%) 60-84 (75%) ELISA FDP 52-83 (71%) 66-86 (76%) Bandelette (consultation) FISH 68-80 (80%) 85-97 (94%) Hybridation in situ + uCyt+ 72-100 (86%) 61-82 (71%) Immunocytofluorescence + HA-Haase 83-100 (91%) 70-89 (81%) ELISA + Télomérase 55-90 (73%) 66-100 (90%) TRAP Survivine 64-100 (78%) 93-100 (96%) Immunohistochimie - EIA* + Microsatellites 49-93 (80%) 89-100 (92%) PCR + CYFRA 21-1 44-84 (69%) 67-88 (84%) ELISA Test Marqueur d'infiltration Marqueur de récidive + + *EIA: Enzyme Immunometric Assay récidive tumorale, et apportent un plus à la simple surveillance “visuelle” actuelle parfois prise en défaut [93]. L’utilisation de ces marqueurs urinaires pourrait améliorer la précocité du diagnostic des récidives. Des résultats négatifs persistants devraient permettre d’espacer les cystoscopies et d’en réduire donc le nombre (Tableau XIII). De même, l’utilisation des techniques de fluorescence (acide 5-aminolévulinique) lors de l’endoscopie pourrait favoriser un diagnostic précoce des lésions non optiquement visibles de dysplasie ou de carcinome in situ [94, 95]. CONCLUSION L’analyse de la littérature retrouve une grande disparité dans les résultats obtenus par les différentes équipes concernant un même marqueur, vraisemblablement due à des conditions différentes d’applications. A l’heure actuelle, aucun test n’a fait la preuve d’une supériorité évidente soit parce que les études effectuées ne correspondent pas à des essais thérapeutiques, soit parce que le nombre de patients étu31 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 diés est insuffisant, soit parce que ces tests s’appliquent à une population de patients déjà connue pour une tumeur vésicale et donc modifiant considérablement les performances diagnostiques du marqueur étudié. 18. SAROSDY M.F., HUDSON M.A. : Improved detection of recurrent bladder cancer using the Bard BTA stat test. Urology, 1997 ; 50 : 349-353. Les champs d’application de la biologie moléculaire sont vastes et nul doute que la meilleure compréhension de la carcinogenèse permettra un jour de supplanter le couple cytologie-cystoscopie dans la détection et la surveillance des tumeurs de vessie. 21. SERRETTA V,. POMARA G., RIZZO I., ESPOSITO E. : Urinary BTA stat, BTA TRAK and NMP 22 in surveillance after TUR of recurrent superficial transitional cell carcinoma of the bladder. Eur. Urol., 2000 ; 38 : 419-425. 19. FERNANDEZ GOMEZ J.M., GARCIA RODRIGUEZ J., ESCAF BARMADAH S. : Urinary BTA TRAK in the follow-up of superficial transitional-cell bladder carcinoma. Arch. Esp. Urol., 2002 ; 55 : 41-49. Dans la pratique, la solution viendra peut-être de l’association de plusieurs marqueurs pour améliorer encore la sensibilité, et diminuer les faux-positifs. 20. PRIOLO G., GONTERO P., MARTINASSO G. : Bladder tumor antigen assay as compared to voided urine cytology in the diagnosis of bladder cancer. Clin. Chim. Acta., 2001 ; 305 : 47-53. 22. HEICAPPELL R., WETTIG I.C., SCHOSTAK M., MÜLLER M., STEINER U., SAUTER T., MILLER K. : Quantitative detection of human complement factor H-related protein in transitional cell carcinoma of the urinary bladder. Eur. Urol., 1999 ; 35 : 81-87. REFERENCES 23. MAHNERT B., KRIEGMAIR T.M., MARIASCHMITT U. : BTA TRAK : a useful diagnostic cool in urinary bladder cancer ? Anticancer Res., 1999 ; 19 : 2615-2619. 1. ANAES : Guide d’analyse de la littérature et gradation des recommandations. http://www.anaes.fr. 2000. 24. THOMAS L., LEYH H., MARBERGER M. : Multicenter trial of the quantitative BTA TRAK assay in the détection of bladder cancer. Clin. Chem., 1999 ; 45 : 472. 2. MURPHY W.M., SOLOWAY M.S., JUKKOLA A.F., CRABTREE W.N., FORD K.S. : Urinary cytology and bladder cancer. The cellular features of transitional cell neoplasms. Cancer, 1984 ; 53 : 1555-1565. 25. ABBATE L., D’INTRONO A., CARDO G. : Comparison of nuclear matrix protein 22 and bladder tumor antigen in urine of patients with bladder cancer. Anticancer Res., 1998 ; 18 : 3803-3805. 3. GROSSMAN H.B. : New methods for detection of bladder cancer. Semin. Urol. Oncol., 1998 ; 16 : 17-22. 4. KANNAN V., BVOSE S. : Low grade transitional cell carcinoma and instrument artefact. A challenge in urinary cytology. Acta. Cytol., 1993 ; 37 : 899-902. 26. ELLIS W.J., BLUMENSTEIN B.A., ISHAK L.M., ENFIELD D.L. : Clinical evaluation of the BTA TRAK assay and comparison to voided urine cytology and the Bard BTA test in patients with recurrent bladder tumours. The Multi Center Study Group. Urology, 1997 ; 50 : 882-887. 5. RENSHAW A.A., NAPPI D., WEINBERG D.S. : Cytology of grade 1 papillary transitional cell carcinoma. A comparison of cytologic, architectural and morphometric criteria in cystocopically obtained urine. Acta. Cytol., 1996 ; 40 : 676-682. 27. STAMPFER D.S., CARPINITO G.A., RODRIGUEZ- VILLANUEVA J. : Evaluation of NMP in the detection of transitional cell carcinoma of the bladder. J. Urol., 1998 ; 159 : 394-398. 6. IRANI J. : Les nouveaux tests diagnostiques des tumeurs urothéliales de vessie. Prog. Urol., 1998 ; 8 : 481-486. 28. BEREZNEY R. : The nuclear matrix : a heuristic model for investigating genomic organization and function in the cell nucleus. J. Cell. Biochem., 1991 ; 47 : 109-123. 7. BAS W.G., VAN RHIJN, HENK G., VAN DER POEL, THEO H. VAN DER KWAST : Urine markers for bladder cancer surveillance: A systematic Review. Eur. Urol., 2005 ; 47 : 736-748. 29. SOLOWAY M.S., BRIGGMAN J.V., CARPINITO G.A., CHODAK G.W., CHURCH P.A., LAMM D.L., LANGE P., SAROSDY M.F., HAYDEN C.L.: Use of a new tumor marker, urinary NMP22, in the detection of occult or rapidly recurring transitional cell carcinoma of the urinary tract following surgical treatment. J. Urol., 1996 ; 156 : 363-367. 8. GUTIERREZ BANOS J.L., MARTIN GARCIA B., DE DIEGO RODRIGUEZ E., HERNANDEZ RODRIGUEZ R., PORTILLO MARTIN J.A., RADO VELAZQUEZ M.A. : The BTA STAT test in the follow-up for bladder cancer. Arch. Esp. Urol., 1999 ; 52 : 856-861. 9. GIANNAPOULOS A., MANOUSAKAS T., GOUNARI A: Comparative evaluation of the diagnosic performance of the BTA stat test, NMP 22 and urinary bladder cancer antigen for primary and recurrent bladder tumours. J. Urol., 2001 ; 166 : 470-475. 30. MIYANAGA N., AKASA H., ISHIKAWA S. : Clinical evaluation of nuclear matrix protein 22 (NMP22) in urina as novel marker for urothelial cancer. Eur. Urol., 1997 ; 31 : 163-168. 31. MIYANAGA N., AKASA H., TSUKAMOTO S., SHIMAZUI T., OHTANI M., ISHIKAWA S, NOGUCHI R., MANABE F. : Usefulness of urinary NMP22 to detect tumor recurrence of superficial bladder cancer after transurethral resection. Int. J. Clin. Oncol., 2003 ; 8 : 369-373. 10. HEICAPPELL R., MILLER M., FIMMERS R., MILLER K. : Qualitative determination of urinary human complement factor H-related ptotein (hcfHrp) in patients with bladder cancer, healthy controls, and patients with benign urologic disease. Urol. Int., 2000 ; 65 : 181-184. 32. LEKILI M., SENER E., DEMIR M.A., TEMELTAS G., MUEZZINOGLU T., BUYKUSU C. : Comparison of the nuclear matrix protein 22 with voided urine cytology in the diagnosis of transitional cell carcinoma of the bladder. Urol. Res., 2004 ; 32 : 124-128. 11. NASUTI J.F., GOMELLA L.G., ISMIAL M., BIBBO M. : Utility of the BTA stat test kit for bladder cancer screening. Diagn. Cythopathol., 1999 ; 21 : 27-29. 12. RAMAKUMAR S., BHUIYAN J., BESSE J.A., ROBERTS S.G., WOLLAN P.C., BLUTE M.L., O’KANE D.J. : Comparison of screening methods in the detection of bladder cancer. J. Urol., 1999 ; 161 : 388-394. 33. LAHME S., BICHLER K.H., FEIL G., KRAUSE S. : Comparison of cytology and nuclear matrix protein 22 for the detection and follow-up of bladder cancer. Urol. Int., 2001 ; 66 : 72-77. 13. SHARMA S., ZIPPE C.D., PANDRANGI L., NELSON D., AGARWAL A.: Exclusion criteria enhance the specificity an positive predictive value of NMP 22 and BTA stat. J. Urol., 1999 ; 162 : 53-57. 34. PONSKY L.E., SHARMA S., PANDRANGI L., KEDIA S., NELSON D., AGARWAL A., ZIPPE C.D. : Screening and monitoring for bladder cancer: refining the use of NMP22. J. Urol., 2001 ; 1 : 75-78. 14. LEYH H., MARBERGER M., CONORT P. : Comparison of the BTA stat test with voided urine cytology and bladder wash cytology in the diagnosis and monitoring of bladder cancer. Eur. Urol., 1999 ; 35 : 52-56. 35. HUGHES J.H., KATZ R.L., RODRIGUEZ-VILLANUEVA J., KIDD L., DINNEY C., GROSSMAN H.B., FRITSCHE H.A Jr. : Urinary nuclear matrix protein 22 (NMP22) : a diagnostic adjunct to urine cytologic examination for the detection of reccurent transitional cell carcinoma of the bladder. Diagn. Cytopathol., 1999 ; 20 : 285-290. 15. SÖZEN S., BIRI H., SINIK Z., KÜPELI B., ALKIBAY T., BOZKIRLI I. : Comparison of tne nucleau matrix protein 22 with voided urine cytology and BTA stat test in the diagnosis of transitional cell carcinoma of the bladder. Eur. Urol., 1999 ; 36 : 225-229. 36. WITJES J.A., VAN DER POEL H.G., VAN BALKEN M.R., DEBRUYNE F.M., SCHALKEN J.A. : Urinary NMP22 and karyometry in the diagnosis and follow-up of patients with superficial bladder cancer. Eur. Urol., 1998, 33 : 387391. 16. PODE D., SHAPIRO A., WALD M., NATIV O., LAUFER M., KAVER I. : Noninvasive detection of bladder cancer with the BTA stat test. J. Urol., 1999 ; 161 : 443-446. 17. WIENER H.G., MIAN C., HAITEL A., PYCHA A., SCHATZL G., MARBERGER M. : Can urine bound diagnostic tests replace cystoscopy in the management of the bladder cancer ? J. Urol., 1998 ; 159 : 1876-1880. 37. LANDMAN J., CHANG Y., KAVALER E., DROLLER M.J., LIU C.S. : Sensitivity and specificity of NMP22, telomerase and BTA in the detection of human bladder cancer. J. Urol., 1998 ; 52 : 398-402. 32 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 38. SHARIAT S.F., ZIPPE C., LUDECKE G., BOMAN H., SANCHEZ-CARBAYO M., CASELLA R., MIAN C., FRIEDRICH M.G., EISSA S., AKAZA H., SAWEZUK I. et al. : Normograms including nuclear matrix protein 22 for prediction of disease recurrence and progrssion in patients with Ta, T1 or CIS transitional cell carcinoma of the bladder. J. Urol., 2005; 173 : 1518-1525. 55. SCHROEDER G.L., LORENZO-GOMEZ M.F., HAUTMANN S.H., FRIEDRICH M.G., EKICI S., HULAND H., LOKESHWAR V.B. : A side by side comparison of cytology and biomarkers for bladder cancer detection. J. Urol., 2004 ; 172 : 1123-1126. 56. LOKESHWAR V.B., ÖBEK C., PHAM H.T., WEI D., YOUNG M.J., DUNCAN R.C., SOLOWAY M.S., BLOCK N.L. : Urinary hyaluronic acid and hyaluronidase : markers for bladder cancer detection and evaluation of grade. J. Urol., 2000 ; 163 : 348-356. 39. JOHNSTON B., MORAIES A., EMERSON L., LUNDIE M. : Rapid detection of bladder cancer : a comparative study of point of care tests. J. Urol., 1997 ; 158 : 2098-2101. 40. MC CABE R.P., LAMM D.L., HASPEL M.V. : A diagnostic-pronostic test for bladder cancer using a monoclonal antibody-based enzyme linked immunoassay for detection of urinary fibrin(ogen) degradation products. Cancer Res., 1984 ; 44 : 5886. 57. HAUTMANN S.G., TOMA M., LORENZO-GOMEZ M.F., FRIEDRICH M.G., JAEKEL T., MICHL U., SCHROEDER G.L., HULAND H., JUENEMANN K.P., LOKESHWAR V.B. : Immunocyt and the HA-Haase urine tests for the detection of bladder cancer : a side-by-side comparison. Eur. Urol., 2004 ; 46 : 466-471. 42. SCHMETTER B.S., HABICHT K.K., LAMM D.L., MORALES A., BANDER N.H., GROSSMAN H.B., HANNA M.G.Jr, SILBERMAN S.R., BUTMAN B.T. : A multicenter trial evaluation of the Fibrin/Fibrinogen degradation products test for detection and monitoring of bladder cancer. J. Urol., 1997 ; 158 : 801-805. 59. KAVALER E., LANDMAN J., CHANG Y., DROLLER M.J., LIU B.C. : Detecting human bladder carcinoma cells in voided urine samples by assaying for the presence of telomerase activity. Cancer, 1998 ; 82 : 708. 58. LOKESHWAR V.B., SCHROEDER G.L., SELZER M.G., HAUTMANN S.G., POSEY J.T., DUNCAN R.C., WATSON R., ROSE L., MARKOWITZ S., SOLOWAY M.S. : Bladder tumor markers for monitoring recurrence and screening comparison of hyaluronic acid-hyaluronidase and BTA-Stat test. Cancer, 2002 ; 95 : 61-72. 41. TOPSAKAL M., KARADENIZ T., ANAC M., DONMEZER S., BESISIK A. : Assessment of fibrin-fibrinogen degradation products (Accu-Dx) test in bladder cancer patients. Eur. Urol., 2001 ; 39 : 287-291. 60. KINOSHITA H., OGAWA O., KAKEHI Y., MISHINA M., MITSUMORI K., ITOH N. : Detection of telomerase activity in exfoliated cells in urine from patients with bladder cancer. J. Nat. Cancer. Inst., 1997 ; 89 : 724. 43. HALLING K.C., KING W., SOKOLOVA I.A. : A comparison of cytology and fluorescence in situ hybridization for the detection of urothelial carcinoma. J. Urol., 2000 ; 164 : 1768-1775. 61. HALLING K.C., KING W., SOKOLOVA I.A., KARNES R.J., MEYERR.G., POXELL E.L. : A comparison of BTA stat, hemoglobin diostick, telomerase and Vysis UroVysion assays for the detection of urothelial carcinoma in urine. J. Urol., 2002 ; 167 : 2001-2006. 44. SKACEL M., FAHMY M., BRAINARD J.A. : Multitarget fluorescence in situ hybridization assay detects transitional cell carcinoma in the majority of patients with bladder cancer and atypical or negative urine cytology. J. Urol., 2003 ; 169 : 2101-2105. 62. SAAD A., HANBURY D.C., MCNICHOLAS T.A., BOUSTEAD G.B., MORGAN S., WOODMAN A.C. : A study comparing various noninvasive methods of detecting bladder cancer in urine. Br. J. Urol. Int., 2002 ; 89 : 369-373. 45. PLACER J., ESPINET B., SALIDO M., SOLE F., GELABERT-MAS A. : Clinical evaluation of multiprobe FISH assay in voided urine specimens for the detection of bladder cancer an dits recurrences compared with urinary cytology. Eur. Urol., 2002 ; 42 : 547-552. 63. DETTLAFF-POKORA A., MATUSZEWSKI M., SCHLICHTHOLZ B. : Telomerase activity in urine sediments as a tool for noninvasive detection of bladder cancer. Cancer Lett., 2005 ; 222 : 83-88. 46. SAROSDY M.F., SCHELLHAMMER P., BOKINSKY G. : Clinical evaluation of a multi-target fluorscent in situ hybridization assay for detection of bladder cancer. J. Urol., 2002 ; 168 : 1950-1954. 64. LANDMAN J., CHANG Y., KAVALER E., DROLLER M.J., LIU B.C. : Sensitivity and specificity of NMP 22, telomerase, and BTA in the detection of human bladder cancer. Urology, 1998 ; 52 : 398-402. 47. FRADET Y., LOCKHART C., EMOND J., ZADRA J., JEWETT M., BERTRAND P., HOULE J., SCHICK E., BARKIN J., BELL D., CORCOS J., TRUDEL C., CHIN J., CASEY R., SHORT T., SAAD F., VEZINA J., PARENT C., DESAULNIERS M. : Performance charactristics of a new monoclonal antibody test for bladder cancer : Immunocyt. Canad. J. Urol., 1997 ; 4 : 400-405. 65. ITO H., KYO S., KANAYA T., TAKAKURA M., KOSHIDA K., NAMIKI M. : Detection of human telomerase reverse transcriptase messenger RNA in voided urine samples as a useful diagnostic tool for bladder cancer. Clin. Cancer. Res., 1998 ; 4 : 2807. 48. LODDE M., MIAN C., NEGRI G., BERNER L., MAFFEI N., LUSUARDI L., PALERMO S., MARBERGER M., BRÖSSNER C, PYCHA A. : Role of uCyt+ in the detection and surveillance of urothelial carcinoma. Urology, 2003 ; 61 : 243-247. 66. BIALKOWSKA-HOBRZANSKA H., BOWLES L., BUKALA B., JOSEPH M.G., FLETCHER R., RAZVI H. : Comparison of human telomerase reverse transcriptase messenger RNA and telomerase activity as urine markers for diagnosis of bladder carcinoma. Mol. Diagn., 2000 ; 5: 267-277. 49. PIATON E., RUFFION A., COLLET F., LOPEZ J.G., CHAMPETIER G., HOCH M., PERRIN P., DEVONEC M. : Apport de l’immunocytochimie en fluorescence (uCyt+) dans la surveillance après résection des tumeurs vésicales. Prog. Urol., 2004 ; 14 : 315-319. 67. HIYAMA E., YOKOYAMA T., TATSUMOTO N., HIYAMA K., IMAMURA Y., MURAKAMI Y. : Telomerase activity in gastric cancer. Cancer Res., 1995 ; 55 : 3258-3262. 50. DRAPIER E., RENAUDIN K., MAILLET F., BRAUD G., LABOISSE C., BOUCHOT O. : Intérêt du test uCyt+ pour le dépistage et le suivi des tumeurs de vessie. Prog. Urol., 2003 ; 13 : 222-226. 68. WU X.X., KAKEHI Y., NISHIYAMA H., HABUCHI T., OGAWA O. : Telomerase activity in urine after transurethral resection is not a predictive marker for recurrence of superficial bladder cancer. Int. J. Urol., 2003 ; 10 : 117118. 51. OLSSON H., ZACKRISSON B. : ImmunoCyt a useful method in the follow-up prtotocol for patients with urinary bladder carcinoma. Scand. J. Urol. Nephrol., 2001 ; 35 : 280-282. 69. SHARIAT S.F., CASELLA R., KHODDAMI S.M., HERNANDEZ G., SULSER T., GASSER T.C., LERNER S.P. : Urine detection of survivin is a sensitive marker for the noninvasive diagnosis of bladder cancer. J. Urol., 2004 ; 171 : 626-630. 52. TOMA M.I., FRIEDRICH M.G., HAUTMANN S.H., JAKEL K.Y., ERBERSDOBLER A., HELLSTERN A., HULLLAND H. : Comparison of the ImmunoCyt test and urinary cytology with other urine tests in the detection and surveillance of bladder cancer. World. J. Urol., 2004 ; 22 : 145149. 70. WANG H., XI X., KONG X., HUANG G., GE G. : The expression and significance of mRNA in urinary bladder carcinomas. J. Cancer Res. Clin. Oncol., 2004 ; 130 : 487-490. 53. PFISTER C., CHAUTARD D., DEVONEC M., PERRIN P., CHOPIN D., RISHMANN P., BOUCHOT O., BEURTON D. COULANGE C., RAMBEAUD J.J. : Immunocyt test improves the diagnostic accuracy of urinary cytology : results of a French multicenter study. J. Urol., 2003 ; 169 : 921924. 71. CAMPOS-FERNANDES J.L., DESCOTES F., DECAUSSIN M., ANDRE J., PAPAREL P., PERRIN P., DEVONEC M., RUFFION A. : Urinary survivin is a biomarker for the diagnosis of invasive bladder tumour. Eur. Urol. Suppl., 2006 ; 366. 72. PESL M., BABJUK M., SOUKUP V., PAVLIK I., DVORACEK J. : Urine survivin in non invasive diagnosis of transitional cell carcinoma of the urinary bladder. Eur. Urol. Suppl., 2006 ; 822. 54. PHAM H.T., BLOCK N.L., LOKESHWAR V.B. : Tumor-derived hyaluronidase : a diagnostic urine marker for high-grade bladder cancer. Cancer Res., 1997 ; 57 : 778-783. 33 J.L. Campos-Fernandes et coll., Progrès en Urologie (2007), 17, 23-34 73. WEIKERT S., CHRISTOPH F., SCHRADER M., KRAUSE H., MILLER K., MULLER M. : Quantitative analysis of survivin mRNA expression in urine and tumor tissue of bladder cancer patients and its potential relevance for disease detection and prognosis. Int. J. Cancer, 2005 ; 116 : 100-104. 89. SANCHEZ-CARBAYO M., HERRERO E., MEGIAS J., MIRA A., SORIA F. : Comparative sensitivity of urinary CYFRA 21-1, urinary bladder cancer antigen, tissue polypeptide antigen, tissue polypeptide antigen and NMP22 to detect bladder cancer. J. Urol., 1999 ; 162 : 1951-1956. 74. SHARP J.D., HAUSLADEN D.A., MAHER M.G., WHEELER M.A., ALTIERI D.C., WEISS R.M. : Bladder cancer detection with urinary survivin, an inhibitor of apoptosis. Front. Biosci., 2002 ; 7 : 36-41. 90. NISMAN B., BARAK V., SHAPIRO A., GOLIJANIN D., PERETZ T., PODE D. : Evaluation of urine CYFRA 21-1 for the detection of primary and recurrent bladder carcinoma. Cancer, 2002 ; 94 : 2914-2920. 75. KU J.H., KWAK C., LEE H.S., PARK H.K., LEE E., LEE S.E. : Expression of survivin, a novel inhibitor of apoptosis, in superficial transitional cell carcinoma of the bladder. J. Urol., 2004 ; 171: 631-635. 91. SANCHEZ-CARBAYO M., URRUTIA M., SILVA J.M., ROMANI R., DE BUITRAGO J.M., NAVAJO J.A. : Comaparative predictive values of urinary cytology, urinary bladder cancer antigen, CYFRA 21-1 and NMP22 for evaluating symptomatic patients at risk for bladder cancer. J. Urol., 2001 ; 165 : 1462-1467. 76. SCHULTZ I.J., KIEMENEY L.A., KARTHAUS H.F., WITJES J.A., WILLEMS J.L., SWINKELS D.W., GUNNEWIEK J.M., DE KOK J.B. : Survivin mRNA copy number in bladder washings predicts tumor recurrence in patients with superficial urothelial cell carcinomas. Clin. Chem., 2004; 50 : 1425-1428. 92. FATELA-CANTILLO D., FERNANDEZ-SUAREZ A., MENENDEZ V., GALAN J.A., FILELLA X. : Low utility of CYFRA 21-1 serum levels for diagnosis and follow-up in bladder cancer patients. J. Clin. Lab. Anal., 2005; 19 : 167-171. 77. SCHLULTZ I.J., KIEMENEY L.A., WITJES J.A., SCHALKEN J.A., WILLEMS J.L., SWINKELS D.W., DE KOK J.B. : Survivin mRNA expression is elevated in malignant urothelial cell carcinomas and predicts time to recurrence. Anticancer Res., 2003 ; 23 : 3327-3331. 93. LOKESHWAR V.B., HABUCHI T., GROSSMAN H.B., MURPHY W.M., HAUTMANN S.H., HEMSTREET G.P., BONO A.V., GETZENBERG R.H.: Bladder tumor markers beyond cytology : International Consensus Panel on bladder tumor markers. Urology, 2005 ; 66 : 35-63. 78. LITTLE B., HUGHES A., YOUNG M.R., O’BRIEN A. : Use of polymerase chain reaction analysis of urinary DNA to detect bladder carcinoma. Urol. Oncol., 2005 ; 23 : 102-107. 94. ZAAK M.D., FRIMBERGER D., STEPP H., WAGNER S., BAUMGARTNER R., SCHNEEDE P., SIEBELS M., KNUCHEL R., KRIEGMAIR M., HOFSTETTER A. : Quantification of 5-aminolevulinic acid induced fluorescence improves the specificity of bladder cancer detection. J. Urol., 2001; 166 : 1665-1668. 79. MAO L., SCHOENBERG M.P., SCICCHITANO M., EROZAN Y.S., MERLO A., SCHWAB D., SIDRANSKY D. : Molecular detection of primary bladder cancer by microsatelli mmicrosatellite analysis. Science, 1996; 271 : 659-662. 80. SCHEIDER A., BORGNAT S., LANG H., REGINE O., LINDNER V., KASSEM M., E C., OUDET P., JACQMIN D., GAUB M.P. : Evaluation of microsatellite analysis in urine sediment for diagnosis of bladder cancer. Cancer. Res., 2000 ; 60 : 4617-4622. 95. KOENIG F., MAC-GOVERN F. : Fluorescence detection of bladder carcinoma. Urology, 1997 ; 50 : 778-779. ____________________ 81. HIRAO S., HIRAO T., MARSIT C.J., HIRAO Y., SCHNED A., DEVIASHOK T., NELSON H.H., ANDREW A., KARAGAS M.R., KELSEY K.Y. : Loss of heterozygosity on chromosome 9q and p53 alterations in human bladder cancer. Cancer, 2005 ; 104 : 1918-1923. SUMMARY Value of urinary markers in the diagnosis and follow-up of urothelial bladder tumours 82. LINN J.F., LANGO M., HALACHMI S., SCHOENBERG M.P., SIDRANSKY D. : Microsatellite analysis and telomerase activity in archived tissue and urine samples of bladder cancer patients. Int. J. Cancer, 1997 ; 74 : 625629. Urothelial bladder tumours require regular surveillance: cystoscopy associated with urine cytology are reference examinations. Several new markers currently under evaluation or already validated have recently been proposed to replace cytology and potentially reduce or even replace unnecessary cystoscopies. The biological fluid studied for all of these markers is the same as that of urine cytology, i.e. urine. The authors review the results of recent studies on these new urinary markers. The results of these markers demonstrate a better global sensitivity than urine cytology, but often a lower specificity. In the majority of cases, these tests are performed during patient follow-up (NMP22, BTA, CYFRA 21-l., etc.), but do not replace cystoscopy, due to a large number of false-positives. Other techniques, such as FISH, uCyt+ or microsatellites appear to be more promising, especially for the diagnosis of low-grade tumours. The best solution in practice may consist of a combination of several markers to further improve sensitivity and to decrease the false-positive rate responsible for unnecessary cystoscopies. 83. MOURAH S., CUSSENOT O., VIMONT V., DESGRANDCHAMPS F., TEILLAC P., COCHANT-PRIOLLET B., LE DUC A., FIET J., SOLIMAN H. : Assessment of microsatellite instability in urine in the detection of transitional-cell carcinoma of the bladder. Int. J. Cancer, 1998 ; 79 : 629-633. 84. BODENMUELLER H., OFENLOCH-HÄHNLE B., LAANE E.B., DESSAUER A. : Lung Cancer associated keratin 19 fragments : Development and biochemical characterization of the new serum assay enzymun-test CYFRA 21-1. Int. J. Biol. Markers, 1994 ; 9 : 75-81. 85. BODENMUELLER H. : The biochemistry of CYFRA 21-1 and other cytokeratin-tests. Scand. J. Clin. Lab. Invest., 1995 ; 55 : 60-66. 86. LAMM D.L., VAN DER MEIJDEN A.P.M., MORALES A. : Incidence and treatment of complications of bacillus Calmette-Guerin intravesical therapy in superficial bladder cancer. J. Urol., 1992 ; 147 : 596-600. 87. PARIENTE J.L., BORDENAVE L., JACOB F., GOBINET A., LEGER F., FERRIERE J.M., LE GUILLOU M. : Analytical and prospective evaluation of urinary cytokeratin 19 fragment in bladder cancer. J. Urol., 2000 ; 163 : 1116-1119. 88. SENGA Y., KIMURA G., HATTORI T., YOSHIDA K. : Clinical evaluation of soluble cytokeratin 19 fragments (CYFRA 21-1) in serum and urine of patients with bladder cancer. Urology, 1996 ; 48 : 703-710. Key-Words : bladder tumour, tumour markers, urine, diagnosis, prognosis. ____________________ 34