1 Il est possible de connaitre la structure d`une protéine par analyse
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1 Il est possible de connaitre la structure d`une protéine par analyse
Il est possible de connaitre la structure d’une protéine par analyse cristallographique (diffraction des rayons X). Mais pour cela une étape préalable est indispensable : la cristallogenèse. Cette technique consiste à faire des cristaux de protéine à partir de protéine soluble. A la différence des cristaux plus communs comme le sel où l’arrangement cristallin se fait au niveau atomique, le cristal de protéine est un arrangement d’ordre moléculaire. L’empilement, ordonné de façon périodique et régulier dans les trois directions de l’espace, des protéines donne naissance au cristal. Schémas de cristal de sel NaCl qui est un arrangement des atomes de sodium et de calcium. Schémas d’un cristal de protéine, l’arrangement n’est plus d’ordre atomique mais moléculaire. Pour obtenir des cristaux de protéine, nous devons trouver les conditions physico-chimiques qui font passer la protéine de l’état soluble à un état solide cristallin, sans faire précipiter (le cristal se différencie d’un précipité par son caractère ordonné). Pour cela, nous cherchons la zone de sur saturation pour différents agents chimiques et physiques. Diagramme de phase 1 Pour faire de la cristallogenèse, nous travaillons avec des conditions très exigeantes : -La protéine doit être PURE et EXTREMEMENT CONCENTREE (10mg/mL) - nous travaillons avec une GAMME DE PH RESTREINTE : 4.5<pH<9.5 - nous travaillons à des TEMPERATURES COMPRISES ENTRE 4 ET 37°C LE PRINCIPE DE LA CRISTALLOGENESE DE PROTEINE La diffusion en phase vapeur est la technique la plus employée au laboratoire. Elle consiste à mettre en contact une goutte de mélange de « protéine - solution de cristallisation » avec un volume de solution de cristallisation dans un environnement hermétique. La concentration en solution de cristallisation de la goutte est inférieure à celle du réservoir, naturellement la concentration de chacune des deux solutions va tendre à s’équilibrer leurs concentrations par échange gazeux. Cet échange va engendrer une dynamique dans la goutte contenant la protéine et provoquer un réagencement des molécules qui la compose. Avec du temps et les bonnes conditions de cristallisations, nous obtiendrons des cristaux de protéine. La goutte est limpide, les composants sont complètements dissous et le mélange est homogène. La dynamique engendre un agencement des molécules entre elles, la goutte se trouble. Les protéines s’associent de manière ordonnée en trois dimensions, le cristal est apparu. 2 LES DIFFERENTES ETAPES DE CRISTALLOGENESE 1- RECHERCHE DES CONDITIONS DE CRISTALLISATION Au laboratoire, pour trouver des conditions de cristallisation, nous testons un maximum de conditions au hasard à l’aide d’un robot nanogouttes Cartesien. Ce robot permet à l’aide de kits commerciaux de tester un maximum de conditions de cristallisation en goutte assise (96 par criblage) tout en consommant un minimum de protéine (60µL par criblage). En général nous testons deux types de criblage soit 192 conditions. Une fois les criblages réalisés, nous attendons une nuit et nous observons les gouttes afin de relever les conditions de cristallisations. Que peut-on observer dans les gouttes ? Autre que des cristaux : Goutte limpide Précipité léger Fort précipité Goutte gel Peau de précipitant Peau de précipitant Des éléments trompeurs : Poussière Fragment de verre 3 Des éléments intéressants : Goutte sphérolite Goutte sphérolite Goutte de déphasage Première pistes : Cristaux en cheveux ou oursin Cristaux en aiguilles Plaquette Cubique Plaquette Aiguille Oursin Carré Plaquette Plaquette maclées Des cristaux: Perle Ballon de rugby 2- REPRODUCTION DES CONDITIONS DE CRISTALLISATION Quand nous obtenons quelques cristaux, nous relevons les conditions en nous référant aux données du kit. Nous les reproduisons en faisant légèrement varier un ou deux facteurs. Par exemple : nous avons des cristaux dans la condition A1 du criblage JCSG+ :0.2M Lithium sulfate / 0.1M Sodium acétate pH 4.5 / 50% PEG 400, nous allons reproduire les conditions 0.1-0.2M Lithium sulfate / 0.1M Sodium acétate pH 4.5 / 40-45-50-55% PEG 400. 4 Quand nous obtenons de nombreux cristaux, nous relevons les conditions en nous référant aux données du kit. Nous cherchons une tendance (pH commun ou proche, même type de précipitant, même additif…). Nous mutualisons les conditions et les reproduisons en faisant légèrement varier un ou deux facteurs comme ci-dessus. 2- OPTIMISATION DES CRISTAUX Une fois les cristaux reproduits, nous allons optimiser les conditions d’obtention afin d’obtenir des cristaux isolés, de bonne taille. Pour cela nous faisons varier finement les conditions de cristallisation qui ont été reproduites. Nous procédons par des cribles en deux dimensions ce qui nous permet d’observer des tendances. Par exemple : nous avons reproduit les cristaux dans la condition A1 du criblage JCSG+. Les plus intéressants sont en présence de 0.1M Lithium sulfate / 0.1M Sodium acétate pH 4.5 / 40% PEG 400. Nous allons faire varier finement le lithium sulfate et le PEG 400. Nous pouvons faire varier les conditions chimiques en ajoutant des additifs chimiques pour jouer sur la viscosité du milieu (glycérol, MPD, isopropanol). Nous pouvons aussi faire varier les conditions physiques en faisant varier la température (4 ; 12 ; 18 ou 20°C), la taille de la goutte, le volume du puits. Pour finir nous pouvons jouer sur la vitesse de diffusion, en réalisant des gouttes en gel, batch … LES DIFFERENTES TECHNIQUES DE CRISTALLOGENESE 1-CLASSIQUE : LA GOUTTE SUSPENDUE ET ASSISE Gouttes suspendues, le mélange est suspendu au dessus de la solution de cristallisation. Gouttes assises, le mélange est déposé sur un pont au dessus de la solution de cristallisation. 5 2-BATCH Dans une solution lipidique, on dépose distinctement une goutte de solution de cristallisation et une goutte de protéine. 2-DIALYSE La protéine est déposée dans un pont recouvert d’une membrane de dialyse, le tout est placé dans la solution de cristallisation. 2-SANS CONTACT PHYSIQUE Le mélange est déposé entre deux phases lipidiques de différente densité. 6